脐带间充质干细胞研究进展

脐带间充质干细胞研究进展
脐带间充质干细胞研究进展

的表达及NAC的干预作用[J].黑龙江医药科学,2005,28(6):30-31.

[23]路浩,达剑森,梅莉,等.母鼠妊娠期铅镐联合暴露对仔鼠脑组织的氧化损伤及乙酰半胱氨酸的保护效应[J].中国兽医

科学,2008,38(1):42-45.[24]FLORA G J,SETH P K.Beneficial effects of S-adenosyl-Lme?thionine on aminolevulinic acid hydratase,glutathione and lipid

peroxidation during acute lead-ethanol administration in mice

[J].Alcohol,1999,18(2/3):103-108.

(收稿日期:2010-02-08 编辑:张素文)

脐带间充质干细胞研究进展

蒋洁1,张雪梅1,张建湘2

1怀化医学高等专科学校组织学与胚胎学教研室(湖南怀化418000);2中南大学湘雅基础医学院组织学与胚胎学系(长沙410013)

间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)是来源于发育早期中胚层的具有高度自我更新能力和多向分化潜能的多能干细胞,广泛存在于全身多种组织中,可在体外培养扩增,并能在特定条件控制下分化为神经细胞、成骨细胞、肌肉细胞、脂肪细胞等[1],在细胞替代治疗及组织工程方面有极大的应用价值。目前,MSCs主要来源于骨髓,但由于骨髓源性MSCs存在高度病毒污染的可能,且随着年龄增长其细胞数量和扩增、分化能力出现明显下降趋势,故寻找一种能替代骨髓并可弥补其缺陷的间充质干细胞来源,已越来越受到各国学者的关注。脐带间充质干细胞作为一种多潜能干细胞,成功避开了胚胎干细胞来源缺乏、异体排斥、道德伦理等诸多限制,成为干细胞领域的研究热点。本文就近年来国内外在脐带间充质干细胞方面的相关研究进行总结和分析,对脐带间充质干细胞的分离培养、生物学特性以及分化能力等问题作简要综述。

1 脐带MSCs的来源与分离

1.1 脐带MSCs的来源 脐带中富含造血、间充质、神经及内皮等多种干/祖细胞[2],其中间充质干细胞来源分4种:(1)来源于Wharton’s jelly(WJ)[3-4];(2)来源于脐血管周围;(3)来源于脐血;(4)来源于脐静脉血管内皮下[5-6]。

KAVIANI等[7]研究发现脐带血可能含有与骨髓类似的MSCs。ERICES等[2]首次报道了从脐带血中分离培养出间充质样细胞,虽然其免疫表型和功能特点与骨髓来源的MSCs极为类似,但在处理的29份标本中只有7份表现为间充质样细胞(mesenchymal-like cell,MLC)。WEXLER等[8]研究发现脐血标本仅产生少量、非融合、异质的贴壁细胞层,这提示脐血中MSCs较稀少,脐血标本并不是MSC的丰富来源。GOODWIN等[9]认为可以从脐带血中分离出间充质样干细胞,但是培养时间较长,需要保持酸性培养环境。随着对脐带血间充质干细胞研究的深入,大家的结论也越来越趋于一致,脐血中的确存在着MSCs,但其所占比例较骨髓低的多,脐带血和外周血并非间充质干细胞的最佳来源。

另一方面,SARUGASER等[5]发现培养后的人脐带血管外周(HUCPV)细胞呈现较高水平的成纤维样集落形成(CFU-F),进行骨诱导后,细胞快速增殖并分化形成骨结节。COVAS等[10]从人脐带血管内皮和内皮下分离出形态学和免疫表型类似于BMSC的细胞,并表现出向脂肪和骨原分化的潜能。覆盖于WJ组织表面的脐带上皮(UCE)细胞被认为是来源于羊膜上皮组织。MIZOGUCHI等[11]对UCE 细胞进行分离培养时发现干细胞特征的细胞,该细胞不仅表达单层和黏液上皮角蛋白,而且还表达复层上皮角蛋白,能够转化和表达表皮细胞的表型。

1.2 脐带MSCs的分离 脐带间充质干细胞的培养并非易事,特别是如何快速、高效地从脐带中获得MSCs以满足基础和未来临床研究的需要是一个亟待解决的问题。

目前,间充质干细胞的体外分离方法主要有:(1)贴壁培养筛选法;(2)密度梯度离心法;(3)流式细胞仪或免疫磁珠分选法。贴壁培养筛选法主要是利用MSCs对培养瓶具有较强的黏附能力,而造血系细胞、内皮细胞等不贴壁,在以后的换液中逐渐被弃去,达到分离纯化干细胞的目的。密度梯度离心法是根据MSCs与其他细胞的密度不同来进行分离,如广泛采用的Percoll密度梯度离心法。随着对MSCs表面抗原认识的深入,也有人利用免疫方法如流式细胞仪分选法、免疫磁珠法等分离MSCs,此方法是根据细胞大小不同或细胞表面的一些特殊标志进行分离。在贴壁培养筛选法方面,酶消化法的使用较为广泛。如WANG等[4]将去除脐血管的脐带组织,用刀片刮除WJ组织,胶原酶消化16h,培养3d后可观察到成纤维样细胞生长。SARUGASE等[5]将包裹WJ基质的脐血管两端用缝线结扎呈环状,于胶原酶消化获得的细胞进行培养,倒置相差显微镜下可以观察到星形的成纤维样细胞。ROMANOV等[12]通过对脐带血管系统行酶消化,获得血管内皮和内皮下混合细胞群体,培养7d后可观察到成纤维样细胞。

2 脐带MSCs的生物学特性

2.1 细胞形态与增殖特性 取脐带间质组织剪碎后经酶消化,细胞贴壁后观察细胞形态呈长的扁平的梭形,类似成纤维细胞,传代后的细胞形态无明显变化[4]。MA等[13]将人脐带WJ行组织块培养,原代培养时间为10~14d,传代后增殖速度较快,但细胞传至9代后增殖速度减慢。而MITCHELL等[14]对猪脐带WJ中的MSCs进行了研究,细胞传至80代时仍未呈现衰老趋势,也未表现出生长加速。相关研究表明,脐带血管内皮经过消化获得的细胞呈贴壁生长,细胞培养24h后,可观察到2种形态的贴壁细胞:数量较多的鹅卵石样形态细胞,与血管内皮细胞相似;数量较少的纺锤状成纤维瘤样细胞,证实为MSCs的前体细胞。脐带MSCs在体外培养体系中能快速增殖,传代后3~5d能增殖

4~5倍,传代培养10代以上细胞可增加5~10倍,且增殖速度仍无明显降低,传代稳定,表明细胞增殖能力强。

2.2 免疫表型 大量研究表明从脐带分离所得的MSCs表面MHC-Ⅰ表达阳性,而MHC-Ⅱ阴性。MSCs表达的MHC-Ⅱ有着极为重要的作用,因为其表达保护MSCs免受NK细胞对其造成杀伤。MHC-Ⅱ可以引起NK或NK样细胞对于异物或肿瘤细胞杀伤作用的功能下调[15]。MHC-Ⅱ的缺失使得MSCs逃避了同种异体CD4+T细胞的识别。另外MSCs不表达共刺激分子CD40、CD40L、CD80或CD86,这些分子是效应性T细胞激活所必需的。可见这些共刺激分子的缺无,使得T细胞活化的第二信号丧失,导致Th细胞的无反应性而促成免疫耐受。

同时,流式细胞仪检测显示,第3、5、10代细胞间免疫表型无明显差异,均强表达CD13、CD29、CD105、CD44,弱表达CD106,不表达CD14、CD34、CD1la、CD31、CD45及HLA-Ⅱ抗原,不表达或低表达HLA-Ⅰ抗原[16]及移植免疫排斥相关的表面标记CD80(B7-1)、CD86(B7-2)、CD40、CD40L,表明细胞高表达MSCs相关的标记而不表达造血干细胞、内皮细胞特异性抗原及移植排斥相关的细胞表面标记,是一类免疫缺陷细胞。

总之,人脐带MSCs的生物学特性与骨髓MSCs非常相似,尤其是流式检测结果更是与骨髓、脐血、胎肺等其他组织来源的MSCs免疫表型一致。

3 脐带MSCs的分化能力

大量体外实验证明,在不同诱导条件下,间充质干细胞不仅可以向多种中胚层来源的组织细胞分化,如成骨细胞、软骨细胞、脂肪细胞、成肌细胞等,还可以向外胚层和内胚层来源的神经元样细胞和肝细胞样细胞分化。NEVO等[17]以维生素C、地塞米松、碱性成纤维细胞生长因子在体外诱导MSCs,细胞密度>1×106个/cm2,诱导后软骨细胞的比例达到85%。

ROMANOV等[12]将脐带血管内皮干细胞在2次传代后分别进行诱导:在脂肪培养基中培养2周后进行油红染色,几乎所有的细胞内均存在脂滴。也有相关实验用含有1-甲基-3-丁基-黄嘌呤、地塞米松、胰岛素、消炎痛的培养基诱导MSCs分化,结果分化的细胞内出现脂质空泡,并表达过氧化物酶增多活性受体r2(PPARr2)、脂多糖脂酶(LPL)和脂肪细胞的脂肪酸结合蛋白Ap2,且诱导分化率达95%。

WOODBURY等[18]首次报道MSCs在特定条件下可分化为神经元样细胞,引起了巨大的轰动。随后,国内外众多实验室分别对不同种属、不同来源的MSCs进行了大量的神经分化方面的体内外研究。研究表明,大鼠、小鼠、人、兔等MSCs在特定的诱导条件下均可分化为神经元样细胞。侯玲玲等[19]将2、5、8代的脐血间充质干细胞制备细胞爬片,诱导4、6、12h免疫组化检测细胞均有NSE和NF的表达。JEONG等[20]对脐血诱导分化,得到表达神经元和神经胶质标志的细胞,在诱导24h后多数细胞态已经发生变化。GOODWIN等[9]将4代的脐血间充质干细胞以bFGF、EGF 诱导7d后细胞形态发生明显变化,细胞免疫化学及Western blot均证实有细胞骨架蛋白β-tubulinⅢ、星形细胞胶质纤维酸性蛋白的表达。

生肌决定因子MyoD是一种肌细胞转录因子,调控成肌细胞的增殖和分化,被认为是肌细胞定向分化调控的主基因。有研究[21]将脐血MSCs以马血清、地塞米松、氢化可的松诱导3d即有MyoD和Myo-genin的表达。也有学者将形态及表面标志与人脐血MSCs相似的犬脐带血MSCs置于IMDM培养基,表达肌节性肌动蛋白和结蛋白[22]。

武开宏[23]研究在内皮细胞生长因子和碱性成纤维细胞生长因子的作用下,UCDS细胞能否向内皮细胞方向分化。实验表明,在体外经过诱导之后,细胞形态不断发生变化,形成网格样结构。免疫荧光显示,分化后的UCDS细胞CD31、CD34染色阳性,具有摄取DiI标记乙酰化低密度脂蛋白(DiI -Ac-LDL)的功能。流式鉴定细胞的分化效率可达50%左右。下肢缺血动物模型也证明,UCDS细胞能够在体内缺血环境下分化为内皮细胞,并且参与血管新生,改善下肢缺血状况。

4 应用前景

脐带MSCs目前已可稳定地在体外分离,且扩增迅速,由于其具有低免疫原性、支持造血及多向分化潜能的特点,它在多项医学组织工程方面具有广泛的临床应用前景。

张浪辉等[16]的研究表明人脐带MSCs对异源性脐带血T淋巴细胞激活和增殖具有非选择性及剂量依赖性的抑制作用;并且具有表达化学趋化因子及相关黏附分子的特性,有利于实现自身的归巢定位并引导造血干祖细胞的有效归巢与植入[24]。已有多项研究证实人脐带MSCs可在体外特定诱导条件下分化成神经元样细胞,可为神经系统疾病的治疗提供足够临床应用的神经元样细胞。除此以外,还有学者用人参总皂甙体外诱导骨髓MSCs分化为心肌样细胞,表明MSCs能在特定条件下分化成心肌细胞,限制了瘢痕变薄和室壁扩张,从而让人们看到细胞移植治疗在心脏疾病中无可比拟的优势。MSCs在肾脏疾病中的应用研究也在不断进行中。IANUS等[25]的研究表明MSCs可分化为胰岛样细胞而且具有一定的β细胞功能,能够重建胰岛功能,正常分泌和调控胰岛素,从而有效控制血糖,这对于糖尿病及其并发症的防治有着重要的意义。YOUNG等[26]将兔的自体MSCs通过载体移植到兔跟腱肌腱缺损处,使较大的肌腱缺损处在生化特性、结构特征和功能上均得到修复,表明骨髓MSCs具有良好的促进肌腱修复作用。MSCs分化为肌肉细胞将为肌营养不良、重症肌无力、多发性肌炎、皮肌炎等肌病的治疗带来希望。同时也有实验表明MSCs可以在体内分化成血管内皮细胞,参与新生血管形成[27]。血管生成的临床意义重大,可用于治疗多种血管疾病。

5 存在的问题与展望

虽然目前有关脐带MSCs的研究结果令人鼓舞,但在很多问题上仍然还存在颇多争议。如部分学者认为,在胎儿或成人全身各组织中混有一些定向某胚层或某组织的干细胞,甚至混有桑椹胚干细胞。体外实验诱导条件下的多向分化现象无法排除是否是混杂的桑椹胚干细胞多向分化的结果。而在神经分化潜能方面,LU等[28]认为MSCs诱导后出现的

神经元样细胞改变是细胞毒性损害、胞浆收缩、细胞骨架改变的结果。NEUHUBER等[29]认为诱导后出现的突起状结构是细胞骨架因子F-肌动蛋白裂解而重建的结果,而不是伸出的树突或轴突。同时,也有学者认为目前的方法分离到的MSCs并不是单一的细胞成分,没有特异性表型,是一群具有不同特征的混合细胞,存在的问题是如何找出影响成功的因素、提高产率和成功率;而在对MSCs诱导分化时都是加入化学物质或生长因子,因此不足以阐明分化的真正机制,如果将其应用于临床,则需进一步研究如何从混合细胞群中纯化,如何控制分化的适当条件等问题。相信随着研究的深入,脐带间充质干细胞的生物学特性会越来越清晰,在细胞治疗、基因治疗、组织工程创伤修复、支持造血等方面的应用前景也会越来越广阔。

参考文献

[1] PITTENGER M F,MACKAY A M,BECK S C,et al.Multilin?eage potential of adult human mesenchymal stem cells[J].Sci?

ence,1999,284(5411):143-147.

[2] ERICES A A,ALLERS C I,CONGET P A,et al.Human cord blood-derived mesenchvmal stem cells home and Survive in the

marrow of immunodeficient mice after systemic infusion[J].Cell

Transplant,2003,12(6):555-561.

[3] SOBOLEWSKI K,BANKOWSKI E,CHYCZEWSKI L,et al.

Collagen and glycosamino glycans of wharton’s jelly[J].Biol Neo?

nate,1997,71(l):11-21.

[4] WANG H S,HUNG S C,PENG S T,et al.Mesenehymal stem cells in the wharton’s jelly of the human umbilical cord[J].Stem

Cells,2004,22(7):1330-1337.

[5] SARUGASER R,LICKORISH D,BAKSH D,et al.Human um?bilical cord perivascular cells:a sourse of mesenchy mal progeni?

tors[J].Stem Cells,2005,23(2):220-229.

[6] TROYER D L,WEISS M L.Wharton’s jelly-derived cells are a primitive stromal cell population[J].Stem Cells,2008,26(3):

591-599.

[7] KAVIANI A,PERRY T E,BARNES C M,et al.The placenta as

a cell source in fetal tissue engineering[J].J Pediatr Surg,2002,

37(7):995-999.

[8] WEXLER S A,DONALDSON C,DENNING KENDALL P,et al.

Adult bone marrow is a rich source of human mesenchymal pstemp

cells but umbilical cord and mobilized adult blood are not[J].Br

J Haematol,2003,121(2):368-374.

[9] GOODWIN H S,BICKNESE A R,CHIEN S N,et al.Multilin?eage differentiation activity by cells isolated from umbilical cord

blood:expression of bone,Fat,and neural makers[J].Biol

Blood Marrow Transplant,2001,7(11):581-588.

[10]COVAS D T,SIUFI J L,SILVA A R,et al.Isolation and culture of umbilical vein mesenchymal stem cells[J].Braz J Med Biol

Res,2003,36(9):1179-1183.

[11]MIZOGUEHI M,SUGA Y,SANMANO B,et https://www.360docs.net/doc/5d2249185.html,anotypic culture and surface plantation using umbilical cord epithelial cells:morpho?

genesis and expression of differentiation markers mimicking cutaneous

epidermis[J].J Dermatol Sci,2004,35(3):199-206.

[12]ROMANOV Y A,SVINTSITSKAYA V A,SMIRNOV V N.

Searching for altenative sources of postnatal human mesenchymal

stem cells:candidate MSC-like cells from umbilical cord[J].

Stem Cells,2003,21(l):105-110.

[13]MA L,FENG X Y,CUI B L,et al.Human umbilical cord Wharton’s Jelly-derived mesenchymal stem cells differentiation

into nerve-like cells[J].Chin Med J(Engl),2005,118(23):

1987-1993.

[14]MITCHELL K E,WEISS M L,MITCHELL B M,et al.Matrix cells from Wharton’s jelly form neurons and glia[J].Stem Cells,

2003,21(1):50-60.

[15]RUGGERI L,CAPANNI M,MARTELLI M F,et al.Cellular therapy:exploiting NK cell alloreactivity in transplantation[J].

Curr Opin Hematol,2001,8(6):355-359.

[16]张浪辉,刘拥军,吕璐璐,等.脐带源间充质干细胞对异源性脐带血T淋巴细胞激活与增殖的抑制作用[J].中国肿瘤生物

治疗杂志,2006,13(3):191-195.

[17]NEVO Z,ROBINSON D,HOROWIRE S,et al.The manipulated mesenchymal stem cells in regenerated skeletal tissues[J].Cell

Transplant,2003,7(1):1528-1530.

[18]WOODBURY D,SHCWAZ E J,POREKOP D J,et al.Adult rat and human bone moarrw stormal cells differentiate into neurons

[J].J Neurosci Res,2000,61:364-70.

[19]侯玲玲,曹华,魏国荣,等.人脐血间充质干细胞体外扩增和向神经元样细胞定向诱导分化的研究[J].中华血液学杂志,

2002,23(8):415-419.

[20]JEONG J A,GANFG E J,HONG S H.et al.Rapid neural differ?entiation of human cord blood derived mesenchymal stem cells[J].

Neuroreport,2004,15(11):1731-1734.

[21]GANG E J,JEONG J A,HONG S H,et al.Skeletal myogenic differentiation of mesenchymal stem cells isolated from human um?

bilical cord blood[J].Stem Cells,2004,22(4):617-624.[22]罗凯,单根法,钟竑,等.脐血间充质干细胞肌源性诱导分化的研究[J].上海第二医科大学学报,2005,25(2):134-137.

[23]武开宏.脐带干细胞的分离鉴定及分化为心肌和内皮细胞的实验研究[D].北京:中国协和医科大学,2004.

[24]张浪辉,陈志哲,吕璐璐,等.脐带源间充质干细胞促进造血细胞在NOD/SCID小鼠归巢[J].福建医科大学报,2006,40

(3):203-206.

[25]IANUS A,HOLZ G G,THEISE N D,et al.In vivo derivation of glucose-competent pancreatic endocrine cells from bone marrow

without evidence of cell fusion[J].J Clin Invest,2003,111(6):

843-850.

[26]YOUNG R G,BUDER D L,WEBER W,et https://www.360docs.net/doc/5d2249185.html,e of mesenchy?mal stem cells in a collagen matrix for acrdlles tendon repair[J].J

Orthop Res,1998,16(4):406-413.

[27]ZHANG Z G,ZHANG L,JIANG Q,et al.Bone marrow-derived endothelial progenitor cells participate in cerebral neovasculariza?

tion after focal cerebral ischemia in the adult mouse[J].Circ Res,

2002,90(3):284-288.

[28]LU P,BLESCH A,TUSZYNSKI M H.Induction of bone marrow stromal cells to neurons:differentiation,transdifferentiation,or ar?

tifact[J].J Neurosci Res,2004,77(2):174-191.

[29]NEUHUBER B,GALLO G,HOWARD L,et al.Reevaluation of in vitro differentiation protocols for bone marrow stromal cells:dis?

ruption of actin cytoskeleton induces rapid morphological changes

and mimics neuronal phenotype[J].J Neurosci Res,2004,77

(2):192-204.

(收稿日期:2009-12-24 编辑:王冰)

脐带间充质干细胞综述(转)

脐带间充质干细胞概述 医学实验班70080103 王雪彤 脐带是胎儿时期连接母体与胎儿的索状结构,其外被羊膜,内含2条脐动脉、1条脐静脉,在动静脉之间含有特殊的胚胎粘液样结缔组织———华尔通氏胶(Whartonps Jelly) ,从华尔通氏胶分离得到的基质细胞即为人脐带间充质干细胞(HUMSCs) 。 1人脐带间充质干细胞(HUMSCs) 的形貌分析: 倒置显微镜下观察人脐带间充质干细胞贴壁生长, 为形态相对均一的梭形细胞,呈平行排列生长或旋涡状生长,低密度时较扁平, 密度增加趋于融合时细胞变细长。扫描电镜下观察呈长条状纤维样, 细胞膜表面不光滑, 有小结节状物, 细胞无明显突起,细胞间无网络状连接。透射电镜观察核大, 不规则, 核仁明显, 常染色质多, 异染色质少, 胞浆少。胞质内细胞器较少, 以粗面内质网和线粒体为主, 内有大量游离核糖体, 部分细胞可见内质网肿胀。 ——植块法培养获得的人脐带间充质干细胞(×200) 例如三代细胞的形态学特征——人体脐带间充质干细胞离体培养后,培养至第三代。第三代人脐带间充质干细胞以均一长梭形的细胞为主,细胞周边有较多的丝状伪足,见图1,2;并形成毗邻细胞之间的网状连接,见图3;细胞核较大,核膜清晰,含两三个核仁,核质比较小,见图4。 图1图

2图3 图4 2人脐带间充质干细胞(HUMSCs) 的生物学特性: HUMSCs既非胚胎干细胞又非成体干细胞,是别于两者之间的一类新的多能间充质细胞,它们之间既有联系又有差异。根据国际细胞疗法间充质与组织干细胞委员会( the Mesenchymal and Tissue Stem Cell Committee of the Internation2 al Society for Cellular Therapy)制定的最低标准, 脐带间充质干细胞(MSCs)需满足以下条件: 1)MSCs在标准培养条件下呈贴壁生长; 2 )MSCs表达CD105, CD73和CD90,不表达CD45, CD34, CD14或CD11b, CD79a或CD19和HLA2DR; 3)MSCs在体外至少能向成骨细胞、脂肪细胞和软骨细胞分化。和其他来源的 MSCs一样HUMSCs呈长条梭形贴壁生长,表达CD73、CD90、CD105、CD166、CD10、CD13、CD29、CD44 及HLA2ABC ,不表达CD34、CD45、CD31等造血干细胞标记或CD33、CD14、CD56及HLA2DR、2DA、2DP、2DQ ,体外诱导培养能向多种成体细胞分化。比照这些条件,表明华尔通氏胶来源的间质细胞具有MSCs特性。HUMSCs还表达原始干细胞标记,如白血病抑制因子受体通路、胚胎干细胞特异基因Ⅰ及端粒逆转录酶及Nanog、STAT3、AP、Oct24、BMP4、PAX6、ADAM12、Nestin、HLA2Ⅰ。另外, HUMSCs低表达移植相关的细胞表面标记CD80、CD86、CD40 和CD40 l等。在混合淋巴细胞检测中呈免疫抑制,并抑制T细胞的增殖,异体移植该细胞可产生免疫耐受性,表明其为一类免疫缺陷细胞,异基因移植不会发生免疫排斥反应。 3脐带间充质干细胞(UMSCs)的移植治疗作用: 骨髓MSCs用于改善心、脑功能的机制主要在于其分泌SDF一1和VEGF 等局部细胞因子, 诱导微血管的生成, 改善缺血组织微环境。UMSCs表达SDF 一1和VEGF, 提示了UMSCs治疗心脑梗塞、脊髓损伤的可能。 1)UMSCs对脑损伤的治疗作用 外源性UMSCs对脑组织的修复机理可能涉及到诱导内源性VEGF表达, 局部微血管增生, 抑制细胞凋亡等。利用液压冲击脑损伤模型, 证明

脐带干细胞综述

脐带间充质干细胞的研究进展 间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSC S )是来源于发育早期中胚层 的一类多能干细胞[1-5],MSC S 由于它的自我更新和多项分化潜能,而具有巨大的 治疗价值 ,日益受到关注。MSC S 有以下特点:(1)多向分化潜能,在适当的诱导条件下可分化为肌细胞[2]、成骨细胞[3、4]、脂肪细胞、神经细胞[9]、肝细胞[6]、心肌细胞[10]和表皮细胞[11, 12];(2)通过分泌可溶性因子和转分化促进创面愈合;(3) 免疫调控功能,骨髓源(bone marrow )MSC S 表达MHC-I类分子,不表达MHC-II 类分子,不表达CD80、CD86、CD40等协同刺激分子,体外抑制混合淋巴细胞反应,体内诱导免疫耐受[11, 15],在预防和治疗移植物抗宿主病、诱导器官移植免疫耐受等领域有较好的应用前景;(4)连续传代培养和冷冻保存后仍具有多向分化潜能,可作为理想的种子细胞用于组织工程和细胞替代治疗。1974年Friedenstein [16] 首先证明了骨髓中存在MSC S ,以后的研究证明MSC S 不仅存在于骨髓中,也存在 于其他一些组织与器官的间质中:如外周血[17],脐血[5],松质骨[1, 18],脂肪组织[1],滑膜[18]和脐带。在所有这些来源中,脐血(umbilical cord blood)和脐带(umbilical cord)是MSC S 最理想的来源,因为它们可以通过非侵入性手段容易获 得,并且病毒污染的风险低,还可冷冻保存后行自体移植。然而,脐血MSC的培养成功率不高[19, 23-24],Shetty 的研究认为只有6%,而脐带MSC的培养成功率可 达100%[25]。另外从脐血中分离MSC S ,就浪费了其中的造血干/祖细胞(hematopoietic stem cells/hematopoietic progenitor cells,HSCs/HPCs) [26, 27],因此,脐带MSC S (umbilical cord mesenchymal stem cells, UC-MSC S )就成 为重要来源。 一.概述 人脐带约40 g, 它的长度约60–65 cm, 足月脐带的平均直径约1.5 cm[28, 29]。脐带被覆着鳞状上皮,叫脐带上皮,是单层或复层结构,这层上皮由羊膜延续过来[30, 31]。脐带的内部是两根动脉和一根静脉,血管之间是粘液样的结缔组织,叫做沃顿胶质,充当血管外膜的功能。脐带中无毛细血管和淋巴系统。沃顿胶质的网状系统是糖蛋白微纤维和胶原纤维。沃顿胶质中最多的葡萄糖胺聚糖是透明质酸,它是包绕在成纤维样细胞和胶原纤维周围的并维持脐带形状的水合凝胶,使脐带免受挤压。沃顿胶质的基质细胞是成纤维样细胞[32],这种中间丝蛋白表达于间充质来源的细胞如成纤维细胞的,而不表达于平滑肌细胞。共表达波形蛋白和索蛋白提示这些细胞本质上肌纤维母细胞。 脐带基质细胞也是一种具有多能干细胞特点的细胞,具有多项分化潜能,其 形态和生物学特点与骨髓源性MSC S 相似[5, 20, 21, 38, 46],但脐带MSC S 更原始,是介 于成体干细胞和胚胎干细胞之间的一种干细胞,表达Oct-4, Sox-2和Nanog等多

人脐带间充质干细胞操作规范

人脐带间充质干细胞操作规范 一、人脐带间充质干细胞的分离和培养 1. 准备4~5个培养皿,打开放在超净台中,将消毒过的平剪×1,弯剪×2, 有齿镊子×4,放入超净台,紫外照射30 min,通风10 min; 2. 在1#、3#和4#号培养皿倒入25 ml生理盐水,在2#培养皿倒入25 ml酒精; 3. 将盛放脐带的器皿用酒精消毒外表面后放入超净台,用弯嘴钳取出脐带放入1# 培养皿,清洗残留血渍,用第2把弯嘴钳配合挤出脐带血管内的积血; 4. 将脐带 转移至2#培养皿,完全浸泡,计时1 min; 5. 将脐带转移至3#培养皿,用平剪剪成3 cm左右的小段,清洗脐带内的积血(如果积血较多,可再次转入另一加盐水的培养皿); 6. 用有齿镊子分离2根动脉和1根静脉,剥离华尔通氏胶,放入4#培养皿; 7. 将剥离的胶体转移至50 ml离心管中,2000 rpm离心5 min; 8. 弃上清液,将胶 体倒入干净的培养皿中,用小剪刀将其剪成糊状并转移至50 ml离心管中; 9. 以0.5 ml/瓶的量将胶体组织块接种至T75培养瓶,每瓶加入4 ml脐带有 血清培养液(DMEM/F12 + 10% FBS + 1% L-Glutamine + 1% MEM NEAA + 10 ng/ml bFGF),水平摇晃培养瓶使组织块分布均匀; 10. 第2天观察是否有污染,每3天换一次液,并观察细胞爬出情况(过程中 须注意平稳地拿放培养瓶,避免组织块发生移动); 11. 培养14天左右,倒去上清培养液,加生理盐水(3 ml/瓶)洗涤,用0.25% 胰酶(2 ml/瓶)消化下爬出细胞及组织块,并用上清培养液(1 ml/瓶)终止消化; 12. 收集细胞及组织块悬液,2000 rpm离心5 min; 13. 弃上清液,加入适量生理盐水混匀,用70 μm滤网过滤去除组织块,即 得到P0代脐带间充质干细胞;

脐带间充质干细胞(MSCS)抗衰老的临床实验

脐带间充质干细胞(MSCS)抗衰老的临床实验 作者:Simon Sun Isa Li 【摘要】目的:观察脐带间充质干细胞对人体衰老的影响和安全性,对比观察脐带间充质干细胞对衰老的逆转现象。方法:抽取20名健康人作为志愿者,进行脐带间充质干细胞静脉回输(其中男性6人,女性14人,年龄为50-80岁),实验组10名志愿者进行静脉滴注3个疗程脐带间充质干细胞,对照组滴注生理盐水。实验组和对照组志愿者均为双盲实验,疗程结束后3个月、6个月、12个月的对比观察。结论:治疗组有效率为90%,从外表、内分泌、精神状态、体能、睡眠均表现出有效性。 Abstract: Objective: To observe the effect and safety of umbilical cord mesenchymal stem cells (MSCs) on human aging. Methods: a total of 20 healthy volunteers, of umbilical cord mesenchymal stem cells reinfusion (6 males, 14 females, aged 50-80 years old), the experimental group of 10 volunteers were intravenous infusion of 3 cycles of umbilical cord mesenchymal stem cells, the control group of normal saline drip. The experimental group and the control group were double blind experiment, 3 months after the end of treatment, and the observation of 6 months and 12 months. Conclusion: the effective rate of the treatment group was 90%, which was effective from the appearance, endocrine, mental state, physical fitness and sleep. 对抗衰老延长寿命是人类的梦想,但以往的方法以失败见终,究其原因均是不能针对衰老的根本原因所致。而人类衰老的原因一是衰老的细胞不能被代替,正常的新陈代谢因为干细胞的补充不足所致。随着干细胞和研究的发展,以及进行临床治疗中所带来的抗衰老表现,提示脐带间充质干细胞会对衰老的过程产生正影响,具有良好的市场应用价值。本实验就是采取双盲实验的方法来进行对证,验证MSCS对衰老的逆转影响。 脐带间充质干细胞(Mesnchymal Stem Cells,MSCs)是指存在于新生儿脐带组织中的一种多功能干细胞,它能分化成许多种组织细胞,具有广阔的临床应

脐带间充质干细胞培养方法

(一)1.Sections of 8–10 cm of umbilical cords, which are routinely discarded, were internally washed with phosphate-buffered saline (PBS), supplemented with 3% penicillin/streptomycin (Invitrogen-Gibco, Grand Island, NY, https://www.360docs.net/doc/5d2249185.html, ) and immediately immers ed in Dulbecco ’s modi fied Eagle ’s medium- low glucose (DMEM-LG; Invitrogen-Gibco) supplemented with 10% fetal bovine serum (FBS; Invitrogen-Gibco) and 3% penicillin/streptomycin (Invitrogen-Gibco). All samples were processed within 12 –15 h after collection. 2. UCs were fil led with 0.1% collagenase (Sigma-A ldrich, St. L oui s, https://www.360docs.net/doc/5d2249185.html,/sigma-aldrich/home.h tml) in PBS and incuba ted at 37°C for 20 min. Each UC was washed wi th proli feration medium, and the detach ed cell s were harvested after gentl e mass age of the UC. Cells were centr ifuged at 300 g for 10 min, resus -pended in prolifera tion medium, and seeded in 25-cm^ 2 flasks at a densi ty of 5 × 10^7 cells per ml.After 24 h of incubation, non-adherent cells were removed, and culture medi um was replace d every 3 days. (二)HuMSCs were prepared as previously described.8 Wharton's jelly was processed within 24 hours of collection and cut into pieces of about 1 mm3 for culture. These pieces were placed in 24-well plates and cultured in DMEM supplemented with 10% fetal bovine serum (FBS), 5 ng/ml EGF, 5 ng/ml basic fibroblast growth factor, 100 U/ml penicillin and 100 mg/ml streptomycin, and 1 μg/ml amphoterin B. The culture plate was placed in an incubator with saturated humidity at about 37°C containing 5% (v/v) CO2. The medium was changed every three days and the cells were passaged when they reaching 70% confluence. Adherent cells were recovered by treatment with 0.25% trypsin for 3 to 5 minutes then centrifuged. (三) 脐带间充质干细胞的分离:脐带自手术台取下后,浸入含抗生素的生理盐水中,4 ℃保存,在操净台内取出脐带,用D-PBS冲洗净脐动脉和脐静脉内的残余血液,用止血钳和剪刀剔除上述血管,将脐带剪成1 mm^3大小的组织块后放入200 mL 蓝盖试剂瓶,加入质量/ 体积比为0.1%的Ⅱ型胶原酶30 mL,置于恒温振荡仪内持续消化6 h ,100 目筛网过滤收集细胞。加入D-Hank’s液冲洗细胞3 次,用含体积分数为10%胎牛血清的DMEM/F12重悬细胞,调整细胞密度为(4.8×10^3~1×10^4)/cm^2,接种于6 孔板内,于37 ℃、体积分数为5%的CO2孵箱内培养,24 h 后换液。 脐带间充质干细胞在不同培养体系中的体外扩增:待原代培养的脐带间充质干细胞贴壁后,在两个6 孔板中进行3 种培养体系的生长对比实验。第1 个6孔板中细胞密度为1×10^7 L^-1,采用连续适应法使细胞由原代培养时使用的DMEM/F12分别逐步过渡到低糖DMEM、MesenPRO RS?Medium 和STEMPRO?MSC SFM 3 种培养体系,即用含体积分数为10%胎牛血清的DMEM/F12培养基和相应的3种培养基按体积比1 ∶1 混合培养细胞,通过下列混合培养基的方式,连续几代减少当前培养基的量,即1 ∶2 ,1 ∶4 ,1 ∶16和100% 替代培养基,每次适应改变培养体系时,传代细胞一两次,其中孔 1 为原代培养时的DMEM/F12培养液,孔2为低糖DMEM,孔3 为MesenPRO RS?Medium ,孔4 为STEMPRO? MSC SFM。第2 个6孔板中细胞密度为2×10^7 L^-1,每孔培养液设置同上,目的是避免在不同时间消化传代间充质干细胞时出现实验操作上的误差。 (四)脐带间充质干细胞的体外分离培养 (1)脐带白手术台取下后,浸入含抗生素的0.9%生理盐水中,4"C保存; (2)在超净台内取出脐带,用生理盐水冲洗净脐动脉和脐静脉内的残余血液,用止血 钳和剪刀剔除上述血管,将脐带剪成1mm^3大小的组织块; (3)加入质量/体积比为0.1%的II型胶原酶至完全覆盖组织块,置于培养箱内持续消化

脐带间充质干细胞治疗再生障碍性贫血的护理

脐带间充质干细胞治疗再生障碍性贫血的护理 发表时间:2015-02-02T16:09:14.103Z 来源:《医药界》2014年11月第11期供稿作者:黄颉[导读] 。患者的病情能够有一定程度的改善,表现为输血间隔时间延长,出血症状明显好转,感染有所减轻等. 黄颉(上海市交通大学附属第一人民医院南院8B血液科上海200000)【中图分类号】R556.5【文献标识码】A【文章编号】1550-1868(2014)11【摘要】再生障碍性贫血(aplasticanemia,AA)是由于物理、化学、生物或不明因素作用使骨髓造血干细胞和骨髓微环境严重受损,造成骨髓造血功能低下或衰竭,以全血细胞减少为主要表现的一组综合征。间充质细胞(MSC)是属于中胚层的多能干细胞,不仅具有多向分化潜能,还有多种免疫调节作用,尤其是脐带MSC(UC-MSC)具有独特的优势成为干细胞治疗AA的 新热点。本文是为了探讨此项新治疗方法的护理。 【关键词】脐带;间充质干细胞;再生障碍性贫血;护理1.概述目前普遍认为,AA是一种主要由于T淋巴细胞免疫紊乱介导的获得性骨髓造血功能衰竭症,其发生、发展与T细胞功能亢进引起的造血微环境与造血干细胞的免疫损伤密切相关[2]基于此,目前免疫抑制治疗和造血干细胞移植已成为AA的主要治疗方法,大大改善了本病的预后。但免疫抑制治疗疗程较长,复发率高,副作用较大,有的抑制剂价格昂贵;异基因造血干细胞移植可望彻底治愈AA,但同样费用高、移植相关风险高,干细胞来源有限。目前免疫抑制治疗无效、不适合移植或不能耐受相关副作用的AA患者的治疗仍然是个棘手的问题。 MSC是一类起源于中胚层的成体干细胞,除具备自我更新及多向分化潜能外,还有很强的免疫调节及支持造血双重作用。众多实验研究证实,MSC可以通过多种途径发挥免疫调节及支持造血作用,应用于异基因造血干细胞移植,能有效治疗移植物抗宿主病(GVHD)和促进造血重建,这些均提示,MSC在AA患者的细胞治疗中可能发挥重要作用。 2.案例本例患者为男性,14岁,于2012年12月在无明显诱因下出现头晕乏力,牙龈出血,全身散在瘀点瘀斑,当地医院行骨髓穿刺后确诊为再生障碍性贫血。 予以输血、止血治疗后予以环孢素(CSA)150mg/d治疗,治疗中血常规WBC(2-3)×109/L,HB50-88g/L,PLT(10-70)×109/L。2013年3月因症状反复加重予以强的松60mg/d治疗效果不佳,PLT长期<10×109/L,期间平均每周输少浆血400ml,单采血小板1个单位。由于无合适的异基因造血干细胞移植配对故考虑进行脐带间充质细胞治疗。患者分别于2013年5月和2013年6月两次输注脐带间充质共计80ml。输注2个月后复查血象均有所上升WBC5.1×109/L,HB86g/L,PLT30×109/L。2013年8月至今输血频率大大下降,患者目前仍予随访中,病情稳定。 3.护理3.1输注中的护理3.1.1病情观察输注过程中密切监测生命体征和一般情况特别是血压及心率的变化。输注过程予以心电监护2小时,该患者输注时出现血压骤升,立即予以速尿20mg静脉推注,甘露醇100ml静脉快滴后症状有所缓解。输注过程中,患者若出现寒战、发热、恶心、呕吐、气促、心悸等不适,立即停止输注,按输血反应处理。 3.1.2输注的技巧间充质细胞在送至病房后应立即输予患者,注意控制输入速度,应快速输注一般在20—30min输完。由于间充质干细胞体外易贴壁生长的特性,输注前摇晃细胞悬液.输注中需每3min摇晃细胞悬液及轻弹输血器管路,防止干细胞贴壁。输注前后生理盐水冲洗输液管道。输注时应暂停所有补液,不得与其他药物一同输注。 3.2心理护理由于目前UC-MSC在临床应用较少,患者对UC-MSC知识也了解甚少,加上其在对治疗有效的强烈期盼和实施过程的过分担心使之产生了异常的复杂心理。因此,我们在护理上应充分讲解UC-MSC的特性、来源、培养、传代、冻存和目前临床应用效果,在使用前充分预防可能发生的不良反应,通过以上心理护理,患者依从性好,积极配合治疗。 3.3并发症的预防及处理3.3.1感染向患者做好宣教,严格注意感染的预防,如:定时使用漱口水防止口腔溃疡的发生,晚上睡觉前使用金霉素眼膏涂鼻腔保护鼻腔黏膜,使用信立妥眼药水滴眼防止眼睛干涩及感染。告知患者勤洗手,注意保持大便通畅,便后睡前使用痔疾洗液坐浴预防肛周感染,食物应选择干净、清淡饮食,防止腹泻的发生。同时要做好患者静脉穿刺点(如PICC、深静脉穿刺、PORT等)消毒护理,严格执行无菌操作防止穿刺点的感染。保持病室环境整洁,定时通风。限制探视人数及次数,避免到人多的地方,避免与有呼吸道感染的人接触,必要时戴口罩。 3.3.2出血密切观察患者皮肤黏膜情况,观察有无瘀点瘀斑。观察患者呕吐物、尿液及粪便的色、质、量,如有立即异常留取标本送检。密切观察患者有无头痛、喷射性呕吐、视物模糊等颅内出血症状。做好患者相关宣教,如嘱患者要剪去指甲,不得用手挖鼻防止鼻出血,不要用力排便,血小板底下时要卧床休息,下床时要有人搀扶。如有头痛、视物模糊时立即告诉医护人员采取相应措施。 4.小结UC-MAC可促进造血重建,使造血功能得到有效、稳定的恢复,暂无明显不良反应。患者的病情能够有一定程度的改善,表现为输血间隔时间延长,出血症状明显好转,感染有所减轻等。其费用比骨髓移植少是再障患者较经济、理想的治疗方法之一。但该方法目前仍处于起步阶段,并没有大量开展于临床,相信在不久的将来便会用于造福广大患者,护理在其中起到了关键的作用,护士应做好观察及护理来提高该病种治疗的成功率。 参考文献[1]叶红高,陆再英.内科学[M].第6版.北京:人民卫生出版社,2004:787[2]YoungNS,ScheinbergP,CaladoRT.Aplasticanemia[J].CurtOpinHematol,2008,15(3):162-168

人脐带源间充质干细胞分离培养方法的改进_李艳琪

中国组织工程研究 第18卷 第10期 2014–03–05出版 Chinese Journal of Tissue Engineering Research March 5, 2014 Vol.18, No.10 ISSN 2095-4344 CN 21-1581/R CODEN: ZLKHAH 1609www.CRTER .org 李艳琪,女,1988年生,山东省淄博市人,汉族,天津大学在读硕士,主要从事脐带间充质干细胞分离培养等方面的研究。 通讯作者:靳继德,博士,副研究员,军事医学科学院放射与辐射研究所,北京市 100039 并列通讯作者:吴祖泽,研究员,中国科学院院士,天津大学化工学院制药工程系系统生物工程教育部重点实验室,天津市300072;军事医学科学院放射与辐射研究所,北京市 100039 doi:10.3969/j.issn.2095-4344. 2014.10.021 [https://www.360docs.net/doc/5d2249185.html,] 中图分类号:R394.2 文献标识码:A 文章编号:2095-4344 (2014)10-01609-06 稿件接受:2014-01-18 Li Yan-qi, Studying for master’s degree, Key Laboratory of Systems Bioengineering, Ministry of Education, and Department of Pharmaceutical Engineering, School of Chemical Engineering and Technology, Tianjin University, Tianjin 300072, China Corresponding author: Jin Ji-de, M.D., Associate investigator, Institute of Radiation Medicine, Academy of Military Medical Sciences, Beijing 10039, China Corresponding author: Wu Chu-tse, Academician, Investigator, Key Laboratory of Systems Bioengineering, Ministry of Education, and Department of Pharmaceutical Engineering, School of Chemical Engineering and Technology, Tianjin University, Tianjin 300072, China; Institute of Radiation Medicine, Academy of Military Medical Sciences, Beijing 10039, China Accepted: 2014-01-18 人脐带源间充质干细胞分离培养方法的改进 李艳琪1,王洪一2,姚 尧2,刘晶晶3,徐 潇2,张 宇2,刘 洋3,吴祖泽1, 4,靳继德4(1天津大学化工学院制药工程系系统生物工程教育部重点实验室,天津市 300072;2解放军沈阳军区总医院,辽宁省沈阳市 110016;3北京工业大学生命科学与生物工程学院,北京市 100022;4军事医学科学院放射与辐射研究所,北京市 100039) 文章亮点: 在脐带干细胞的培养过程中,实验特色性的对传统的组织块贴壁法进行了改进,将传统组织贴壁法中本应丢 弃的组织转移到新的培养瓶中,进行二次贴壁培养,在较短时间内获得更多数量的间充质干细胞。通过二次 贴壁法得到的细胞经流式细胞仪检测符合间充质干细胞的特性,且增殖能力旺盛,具有体外多向分化潜能, 可成为临床研究和应用的细胞来源。 关键词: 干细胞;脐带脐血干细胞;脐带;间充质干细胞;分离培养;二次贴壁 主题词: 干细胞;脐带;间质干细胞;细胞培养技术 摘要 背景:脐带来源的间充质干细胞因其具有高度的自我更新和多向分化潜能,以及取材方便等优点而日益受到 关注。 目的:建立一种改进的人脐带间充质干细胞分离、培养方法,并对其生物学特性进行分析。 方法:无菌条件下获取足月妊娠分娩胎儿脐带,利用改良的组织块贴壁法分离培养脐带间充质干细胞,即将 传统组织贴壁法中本应丢弃的组织转移到新的培养瓶中进行二次贴壁培养,取第3代脐带间充质干细胞进行 生物学特性分析。 结果与结论:组织贴壁后第5-7天可见有梭形细胞从组织块边缘爬出,第10天左右可形成明显的细胞克隆。 将组织块转移到新培养瓶中继续培养,2 d 后即可见有细胞爬出,细胞生长速度较快,5 d 即可形成细胞克隆。 传代后的细胞形态均一,呈成纤维细胞样的长梭形。流式细胞仪检测细胞高表达CD90、CD105,不表达CD34、 CD45、HLA-DR 。细胞增殖能力旺盛,平均倍增时间为50 h 左右,41.24%的细胞处于G 2/S 期。体外可诱导 分化为成骨细胞和脂肪细胞。上述实验结果证明二次贴壁培养出的细胞也具有间充质干细胞的生物学特性, 而且通过这种培养方法获得的原代间充质干细胞数是传统方式培养的2倍。 李艳琪,王洪一,姚尧,刘晶晶,徐潇,张宇,刘洋,吴祖泽,靳继德. 人脐带源间充质干细胞分离培养方法 的改进[J].中国组织工程研究,2014,18(10):1609-1614. An improved method for isolation of human umbilical cord mesenchymal stem cells Li Yan-qi 1, Wang Hong-yi 2, Yao Yao 2, Liu Jing-jing 3, Xu Xiao 2, Zhang Yu 2, Liu Yang 3, Wu Chu-tse 1, 4, Jin Ji-de 4 (1Key Laboratory of Systems Bioengineering, Ministry of Education and Department of Pharmaceutical Engineering, School of Chemical Engineering and Technology, Tianjin University, Tianjin 300072, China; 2the General Hospital of Shenyang Military Region, Shenyang 110016, Liaoning Province, China; 3College of Life Sciences and Bio-engineering, Beijing University of Technology, Beijing 100124, China; 4Institute of Radiation Medicine, Academy of Military Medical Sciences, Beijing 10039, China) Abstract BACKGROUND: Human umbilical cord mesenchymal stem cells with capabilities for self-renewal and multi-differentiation have attracted widespread attention. OBJECTIVE: To develop an efficient method for isolation and culture of human umbilical cord mesenchymal stem cells, and to analyze the cell biological features. METHODS: Mesenchymal stem cells were isolated and cultured from human umbilical cord by improved tissue cultivation. Immunophenotype and cell cycle were analyzed by flow cytometry. Growth curve was determined by MTT assay, and differentiation ability was evaluated by in vitro osteogenic and adipogenic induction as well. RESULTS AND CONCLUSION: Some fusiform cells crawled out from human umbilical cord tissues after cultivation for 5 days and formed colonies about 10 days later. When the removed tissues were further cultured, more cells appeared again within 2 days and formed colonies after 5 days. The isolated cells exhibited similar morphology of fibroblast-like shape after passage. Furthermore, the cells expressed CD90, CD105, but were negative for the markers of CD34, CD45, HLA-DR. Population doubling time of the cells calculated from the result of MTT was about 50 hours and cell cycle analysis showed that 41.24% cells were in the G 2/S phrase. Therefore, the isolated cells had a high prolification ability. In addition, the isolated cells could be induced into osteoblasts

脐带间充质干细胞知识问答

脐带间充质干细胞26问 1. 什么是干细胞? 干细胞是指那些具有自我复制和多向分化能力的细胞,它们可以不断地自我更新,并在特定条件下转变分化成为一种或多种构成人体组织或器官的细胞。 2. 什么是成体干细胞? 成体干细胞是指存在于成体不同组织中的干细胞,当机体需要时可以被激活分化成具有特定功能的细胞,如造血干细胞可分化形成各种血细胞等。 3. 什么是胚胎干细胞? 胚胎干细胞是指来源于早期胚胎的干细胞,它们可以产生构成机体所有组织器官的细胞。 4. 干细胞如何分类? 有几种分类方法。根据发育阶段不同,分为胚胎干细胞、胎体和成体干细胞。根据来源不同,可分为骨髓、骨膜、脂肪、滑膜、骨骼肌、肝、乳牙、脐带、脐带血干细胞等,根据功能不同,可分为造血、神经、心肌、血管、皮肤干细胞等。 5. 什么是多向分化? 在特定的生理或体外诱导条件下,可以分化成具有不同功能的成熟细胞,如心肌细胞,神经细胞,血细胞等。 6. 什么是自我复制? 通过细胞分裂的方式复制自身,完成数量上的飞跃。 7. 间充质干细胞只存在于脐带吗? 不是,间充质干细胞广泛分布于胎儿、成体骨髓、骨膜、松质骨、脂肪、滑膜、骨骼肌、胎肝、乳牙、脐带、脐带血中。 8. 什么是间充质干细胞(MSC)? 间充质干细胞是干细胞的一种,因能在体内外特定环境下,分化成为骨、软骨、肌肉、脂肪等间叶组织而得名。 间充质干细胞(Mesenchymal Stem Cell,MSC)是干细胞的一种,因能分化为间质组织而得名,具有亚全能分化潜能,在特定的体内外环境下,能够诱导分化成为多种组织细胞。间充质干细胞具有干细胞的共性,即具有自我更新和多向分化潜能的生物学特性;此外,间充质干细胞还具有体外扩增的特性。 9. 什么是脐带间充质干细胞? 我们所说的脐带间充质干细胞是指存在于新生儿脐带中的间充质干细胞。

【CN110050780A】冻存液及其在脐带间充质干细胞冻存中的应用【专利】

(19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 (10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201910216830.0 (22)申请日 2019.03.21 (71)申请人 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公 司 地址 510000 广东省广州市开发区广州国 际生物岛螺旋四路一号生产区第五层 502单元 (72)发明人 陈海佳 葛啸虎 王小燕 杨祖婷  (74)专利代理机构 北京集佳知识产权代理有限 公司 11227 代理人 温可睿 赵青朵 (51)Int.Cl. A01N 1/02(2006.01) A61K 35/28(2015.01) A61P 19/02(2006.01) A61P 19/08(2006.01) (54)发明名称 冻存液及其在脐带间充质干细胞冻存中的 应用 (57)摘要 本发明涉及干细胞技术领域,尤其涉及冻存 液及其在脐带间充质干细胞冻存中的应用。 本发明提供的组合物,能够显著性的提高脐带间充质 干细胞在冻存条件下的活性,而以其制得的干细 胞制剂,具有良好的成骨分化、成软骨分化的潜 能,从而能够具有良好的修复软骨损伤的作用, 从而起到治疗骨关节炎的效果。权利要求书1页 说明书6页 附图3页CN 110050780 A 2019.07.26 C N 110050780 A

1.一种冻存液, 其由如下体积份的液体组成: 2.根据权利要求1所述的冻存液,其特征在于, 由如下体积份的液体组成; 3.根据权利要求1或2所述的冻存液,其特征在于, 所述人血白蛋白注射液中人血白蛋白的质量分数为20%; 所述葡萄糖注射液中葡萄糖的质量分数为5%; 所述羟乙基淀粉注射液中羟乙基淀粉的质量分数为6%。 4.权利要求1~3任一项所述的冻存液在脐带间充质干细胞冻存中的应用。 5.一种脐带间充质干细胞冻存方法,其特征在于,以权利要求1~3任一项所述的冻存液重悬脐带间充质干细胞。 6.根据权利要求5所述的冻存方法,其特征在于,所述重悬至细胞密度为5×107cells/mL。 7.权利要求1~3任一项所述的冻存液在制备干细胞制剂中的应用。 8.一种干细胞制剂,其包括:脐带间充质干细胞和权利要求1~3任一项所述的冻存液。 9.根据权利要求8所述的干细胞制剂,其特征在于,所述脐带间充质干细胞的密度为5×107cells/mL。 10.权利要求7~9任一项所述的干细胞制剂在制备治疗骨关节炎的药物中的应用。 权 利 要 求 书1/1页2CN 110050780 A

脐带间充质干细胞的前世今生

脐带间充质干细胞的前世今生 概念:脐带间充质干细胞是以人脐带血血清为主体的培养体系的脐带间充质干细胞培养扩增的方法:流式细胞仪检测结果显示,贴壁细胞均表达CD44、CD29,低表达CD106,不表达造血细胞表型CD14、CD34、CD45和内皮细胞表型CD31,也不表达HLA-DR:细胞倍增时间为30h,细胞周期分析表明,G0~G1期和+G2+M期所占比例分别为78.84%和11.16%。结论:应用灭活脐带血清培养体系可成功扩增人脐带间充质干细胞,培养的细胞具有间充质干细胞的基本特性,为建立间充质干细胞库和临床应用提供了理论依据。 分离培养方法:取新鲜健康脐带,用PBS冲洗干净后,用剪刀镊子剔去血管,剥出里面的华氏胶组织,将所得组织充分剪碎至 1 mm3大小,加入α-MEM培养液置于37℃,5%的CO2培养箱培养,培养液中含10% FBS,100U/ml青霉素,100U/ml链霉素。脐带组织培养5-7天后,可见有部分细胞从组织块周围爬出,形态呈细小的梭形,一周后,细胞开始迅速增殖,形成大小不等的细胞集落,待细胞长满后,用0.25%胰蛋白酶消化传代。 优势:脐带间充质干细胞(MSCs)具有较高的分化潜能,可向多个方向进行分化。它在骨、软骨、肌肉、肌腱、韧带、神经、肝、内皮和心肌等组织工程方面具有广阔的临床应用前景。有报道从人脐带中分离出MSCs,且细胞含量、增殖能力优于骨髓MSCs,免疫原性比骨髓MSCs低[2] ,并且具有取材方便,无伦理学争议等优点,因此越来越受到研究工作者们的关注。干细胞的培养体系主要应用含动物血清(如胎牛血清)的培养基,在此种环境下生长的干细胞,其内部结构会发生何种变化尚未可知,为避免含动物血清培养中病毒等病原体污染和异种血清所致的过敏反应,课题组进行了以人脐带血血清为主体的培养体系体外培养扩增脐带间充质干细胞的实验研究。以探讨人脐带血血清替代动物血清用于培养临床组织工程用干细胞的可行性。同时研究脐带间充质干细胞形态学、生长特性、细胞周期、免疫表型等特性,旨在建立脐带间充质干细胞的富集方法,为建立脐带间充质干细胞库和临床应用提供有力的理论依据。

脐血间充质干细胞分离培养与鉴定-新桥医院

脐血间充质干细胞分离、培养与鉴定 李启明1程天民1李宁2*粟永萍1冉新泽1 (1.第三军医大学全军复合伤研究所,创伤、烧伤与复合伤国家重点实验室 2.第三军医大学新桥医院, 高压氧中心重庆400038) 摘要:目的研究脐带血(HUCB)中含有的间允质干细胞(MSCs)体外分离、培养条件,探讨其作为种子细胞用于下一步实验研究的稳定性与实用性。方法无菌条件下取正常足生产的脐带血,经CPDA-1复合抗凝剂抗凝,然后经过去红细胞处理,再用淋巴细胞分离液分离脐血的单个核细胞,DMEM/F12培养基进行培养和纯化获得贴壁细胞层,采用定向诱导分化方法检测鉴定获得的MSCs 结果来源于脐血的单个核细胞经体外培养贴壁后出现形态学上可见间充质样的细胞,问充质样细胞为类似成纤维样的细胞形态,但偏向半月形弯曲状,经过成肌、成脂肪、成神经细胞诱导分化成功后确定为间充质干细胞。结论脐血来源的间充质干细胞能够在体外分离、培养出有用的进一步实验所需要的种子细胞。 关键词:脐带血;间充质干细胞;细胞培养;诱导分化鉴定 中图法分类号:文献标识码: THE ISOLATION CULTURE AND IDENTIFICATION OF HUCA MSCs LI Qi-ming, CHEN Tian-min LI ning, SU Yong-ping, RUAN xin-ze (1.State Key Laboratory of Trauma, Burns and Combined Injury, Institute of Combined Injury, 2. Hyperbaric oxygen Center Xinqiao Hospital, Third Military Medical University, Chongqing, 400038, China) Abstract: Objective To investigate the isolation,cultivation, differentiation and identification of human umbilical cord blood(HUCB) mesenchymal stem cells(MSCs) in vitro,and to observe the feasibility of using MSCs as seed cells in experimental furthermore.Methods HUCB were collected from full term childbirth scheduled for Cesarean section and vagina deliveries, a11 specimens was obtained sterilely with Preservative-free CPDA-1 compound natrium citricum. After lyse red blood cell, the cord blood mononuclear cell was isolated by human lymphocyte separating medium. culture with dulbecco's modified eagle's medium(DMEM/F12) medium to produce adherent layer and identification with orientation differentiation results. Results The UCB-derived mononuclear cells,when set in culture,gave rise to adherent cells, which exhibited either a fibroblast-1ike but crescent-shaped or bending-shaped morphology or mesenchymal-like phenotype. It can be affirmed as the MSCs which characterized with multi-differentiating potentiality after the myogenic、lipogenic and neurogenic differentiation. Conclusion MSCs in HUCB can be isolated and cultivated in vitro,which could be regarded as an alternative source of MSCs for further experimental tests。 Key words: umbilical cord Blood;mesenchymal stem cells;culture in vitro;differentiation and identification *通信作者

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