正确采集感染监测标本的方法(一)

正确采集感染监测标本的方法(一)
正确采集感染监测标本的方法(一)

正确采集感染监测标本的方法(一)

【摘要】医院感染病原体监测是医院感染管理的一项重要内容,通过细菌培养的方法来观察细菌分布和抗菌药物敏感率、各种环境、灭菌医疗物品的细菌总数、种类、动态变化等,预测和及时发现医院感染的发生或流行趋势,有的放矢采取控制措施,杜绝感染蔓延,为制定有效的医院感染控制措施,降低医院感染率,具有十分重要的意义。

【关键词】感染标本采集

医院感染监测在医院感染控制工作中起着至关重要的作用,通过监测及时发现感染问题,提供解决问题的措施及方法,评价控制措施效果,为进一步控制医院感染提供可靠的信息资料。因此,正确的检验结果与正确的采集标本关系非常密切,采样人员必须了解掌握各种检验的临床意义,标本采集的原则、时间、方法、注意事项等,这样才能确保检验结果不受影响。1标本采集原则

首先填写检验单标明科别/室别、床号、姓名、性别、住院号、检验物、检验目的及送检日期等;选择恰当的标本容器,贴上标签。如采集细菌培养标本,容器必须无菌,无裂缝,足够的培养基,应在无菌操作下取样,切勿混入防腐剂、消毒剂及其他药物,以免影响检验结果。采集使用中消毒剂与无菌器械保存液时稀释液中必须加入相应的中和剂,以中和被检样液中的残效作用。感染患者应在使用抗菌药物之前采集,如已用药应在检验单上注明。

采集标本必须做到及时、新鲜、准确,采样后必须尽快对样品进行相应指标的检测,送检时间不得超过6h,若样品保存于0℃~4℃条件时,送检时间不得超过24h。

2常见医院感染标本的采集

2.1常见临床微生物标本的采集

2.1.1血液与骨髓标本的采集

通常采肘静脉血,如疑似细菌性心内膜炎时,采肘动脉或股动脉血;疑似菌血症在体温上升阶段及早采血可提高阳性率;疑似细菌性骨髓炎或伤寒时,在病灶部位或髂前上棘处严格消毒后无菌操作抽取骨髓1ml作细菌培养;对已用抗菌药物但又不能停药者,可在下次用药前采样。采血量成人5ml~10ml,婴幼儿1ml~5ml。培养基与血液之比1∶1,以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。

2.1.2痰标本的留取

一般留取晨痰,多数患者清晨痰量较多,即使咳痰量较少的患者在清晨采取痰液也最为容易,故清晨采集痰标本最好〔1〕。

2.1.2.1自然咳痰法

留取标本前,首先让患者反复漱口,以减少口腔寄生菌的污染,用力自气管深部咳出痰液至无菌广口瓶中或蜡纸盒内送检。对痰量少或无痰患者,可采用加温45℃左右的10%氯化钠水溶液雾化吸入,对痰量少、不易合作的儿童,可轻轻按摩(胸骨上窝处)气管,使其咳嗽,咳痰后用无菌棉拭子采取标本〔1〕。

2.1.2.2气管镜采痰法

对于痰量较多,不易咳出的患者可采用纤维支气管镜直视下吸痰,而后将痰液自灭菌吸管注入无菌试管中〔1〕。

2.1.2.3经鼻导管吸痰法

用灭菌吸痰管或导尿管经鼻腔插入气管内,刺激患者咳嗽,吸取痰液至无菌瓶内〔1〕。

注意:痰标本不能及时送检者,可存放于4℃冰箱内,若室温下搁置数小时,定植于口咽部的非致病菌呈过渡生长,可导致肺炎球菌、葡萄球菌和流感杆菌的检出率明显下降。

2.1.3化脓及创伤感染标本的采集

2.1.

3.1未破溃脓肿采集

患部皮肤黏膜常规消毒后,用灭菌生理盐水擦洗干净,取无菌干燥注射器穿刺抽取脓汁,将

采集的脓汁注入无菌试管中,也可在切开排脓时以无菌棉拭子蘸取〔1〕。

2.1.

3.2开放性脓肿脓性分泌物的采集

揭去敷料,常规消毒病灶周围皮肤、黏膜,以无菌棉拭子蘸取病灶深部的分泌物;瘘管可用无菌技术钳取组织碎片放入无菌试管;也可将蘸有脓汁的最内层敷料放入无菌平皿送检〔1〕。

2.1.

3.3对怀疑放线菌感染的标本

用无菌棉拭子挤压瘘管,选取脓液中的“硫磺样颗粒”盛于试管中,也可将无菌纱布条塞入瘘管内次日取出送检〔1〕。

2.1.

3.4疑为厌氧菌感染时

用无菌注射器抽取深部脓液,排除多余空气,针尖插入无菌胶塞中立即送检,或直接将脓液注入封闭厌氧瓶内,或直接接种于厌氧培养基中〔1〕。

2.1.4尿标本的留取

2.1.4.1中断尿的留取

女性用肥皂水清洗外阴,无菌生理盐水冲洗外阴部及尿道口;男性须翻转包皮用肥皂水清洗龟头和尿道口,无菌生理盐水冲洗尿道口,无菌纱布擦干后收集标本。

2.1.4.2留置导尿者采集尿标本

可用碘酒或安尔碘消毒尿道口处的导尿管壁,用无菌注射器抽吸尿液;或消毒后解开接口,弃取导尿管前段尿液,留取无污染的膀胱尿液,勿从集尿袋的下端管口留取尿标本。

2.1.4.3尿厌氧菌培养、婴幼儿中断尿采集困难、培养结果与病情不符时,可用膀胱穿刺法取尿。

注意:以晨起第一次尿液为佳,培养标本必须新鲜,即取即种,送检时间不得>1h,不能立即送检者,必须存放在4℃冰箱内保存。

2.1.5粪便标本的采集

排便后,挑取有脓血、黏液部分的粪便2g~3g(液状粪便取絮状物),盛于灭菌广口瓶或蜡纸盒送检。用棉拭子挑取粪便插入Cary-Blair运送培养基或pH7.0的磷酸盐甘油中送检,可提高病原菌的检出率〔2〕。但对不易获取粪便者或婴幼儿,可用直肠拭子(又称肛拭)采集将拭子前端用无菌甘油湿润,然后插入肛门约4cm~5cm(幼儿约2cm~3cm)处,轻轻旋转取直肠表面黏液后退出,置运送培养基送检〔2〕。

2.1.6鼻咽部标本的采集

疑似白喉时,直接用无菌棉拭子擦拭患者鼻咽部黏膜假膜部分,或组织深层的分泌物直接涂片或分离培养;疑似百日咳或脑膜炎奈氏菌时,自鼻咽部采集标本;疑似麻风时,取鼻黏膜标本;化脓性扁桃体炎或口腔念珠菌病,棉拭子在病灶部位擦拭数次即可。

注意:取标本时应准确在病变部位采集,避免触及舌、口腔黏膜和唾液;立即送检,防止干燥,不能立即接种,置于肉汤试管内。

重症监护室(ICU)医院感染监测方案(特选参考)

附件4.1 重症医学科(ICU)医院感染监测计划 一、监测目的 (一)监测ICU患者医院感染率; (二)发现医院感染流行和暴发; (三)减少导管留置和器械相关感染的发生; (四)利用监测资料说服医务人员遵守感染控制规范; 二、监测对象 (一)监测对象被监测的对象必须是住进ICU进行观察、诊断和治疗的所有患者;与ICU感染率计算有关的感染必须是发生在ICU,即患者住进ICU的时间≥48小时,患者转出ICU到其他病房后48小时内发生的感染仍属ICU感染。 三、监测指标 ICU的总体医院感染率。 四、器械相关感染定义 (一)呼吸机相关肺炎感染前48小时内使用过呼吸机,有全身及呼吸道感染的症状和体征并有胸部X线及实验室检查依据,或临床医生诊断的肺部感染。 (二)中心静脉导管相关血流感染感染前48小时内使用过中心静脉导管的患者有感染的临床表现(如发热、寒战和(或)低血压等),血培养至少可获得1个阳性的结果,导管半定量细菌培养阳性(>15CFU/导管尖段5cm)或导管定量培养阳性(>103CFU/导管段),并且与外周静脉血中分离出的病原菌种类和抗菌谱相同,除血管内导管外,无其他明确的血液感染源。

(三)导尿管相关泌尿道感染近期内留置导尿管史(通常为7天内),有或无泌尿道感染的临床症状和体征,尿培养革兰阳性球菌数≥104CFU/mL,革兰阴性杆菌数≥105CFU/mL。 五、监测方法 (一)前期准备工作监测开始前对微生物室及ICU主任、护士长说明该项目的意义和方法,取得支持和配合。 (二)医务人员的教育和培训 对参与ICU医院感染监测科室的医护人员进行培训,掌握器械相关感染的诊断标准;严格掌握使用导管的适应证和置管部位、执行正确的置管方法和置管后的护理。 (三)各级人员职责与任务 为了能保证ICU医院感染调查工作顺利进行,资料准确、详尽,需要各级人员积极配合。各级人员职责与任务如下。 1、医师①严格掌握使用导管的适应证、置管部位、正确的置管方法。②当发生或怀疑器械相关感染时,应送标本做细菌微生物培养。中心静脉置管患者不需常规进行导管尖端的培养,在考虑中心静脉导管相关血流感染时,应首先判断导管是否仍有保留的必要性,根据保留与否,分别采用不同的送检方法。③正确填写检验报告申请单。④根据微生物学药敏结果选择抗菌治疗。 2、护士①每日晨8时(或午夜12时)登记ICU患者日志。②观察患者生命体征及插管部位变化。如留置中心静脉导管患者出现插管局部疼痛,不明原因的发热,或其他提示发生局部或血流感染的迹象时,应检查插管部位。③记录导管置入和拔除的时间以及操作者。④加强导管和置管部位

标本采集试题67539教程文件

标本采集试题67539

(一) A 型题 () 1. 防止血标本溶血的方法,下列哪项错误 A. 选用干燥无菌注射器 B. 采血后去针头顺管壁将血浆和泡沫注入试管 C. 避免过度震荡 D. 血培养标本将血液注入培养瓶 E. 立即送验 () 2. 尿常规检查需何时留取尿标本 A. 饭前半小时 B. 晨起第一次尿 C. 12 小时尿 D. 24 小时尿 E. 随时收集尿液 () 3. 留取中段尿的正确方法是 A. 尿量不宜太多, 3ml 即可 B. 尿内勿混有消毒液 C. 女性患者须取坐位 D. 必须留取晨起第一次尿 E. 用干燥试管留取尿液 () 4. 检查粪便中的寄生虫卵应 A. 取中间部位的粪便 B. 取边缘部位的粪便 C. 取不同部位的粪便 D. 随机取少许粪便 E. 留取全部粪便 () 5. 采集痰培养标本时应用的漱口液是 A. 生理盐水 B. 1%~4% 碳酸氢钠溶液 C. 0.1% 醋酸溶液 D. 1%~3% 过氧化氢溶液 E. 朵贝尔溶液 () 6. 关于咽拭子培养,下列哪项错误 A. 采集咽部、两侧腭弓及扁桃体分泌物 B. 用无菌咽拭子培养管留取标本 C. 患者先漱口 D. 长棉签蘸无菌生理盐水擦溃疡面采集 E. 真菌培养须在口腔溃疡面采集() 7. 患者伍某,持续高热,怀疑败血症,下列采集血培养标本哪项做法错误 A. 须放入消毒容器内 B. 检查容器有无裂缝 C. 检查瓶塞是否干燥 D. 检查培养基是否足够 E. 采集时严格执行无菌操作 () 8. 患者张某,急性细菌性心内膜炎,需作血培养检查,护士应给患者采血多少为宜

A. 2ml B. 4ml C. 6ml D. 8ml E. 10ml () 9. 患者史某,查找痰中癌细胞,固定痰标本的溶液是 A. 3% 来苏儿 B. 5% 石炭酸 C. 95% 酒精 D. 0.2% 漂白粉 E. 0.2% 苯扎溴铵 () 10. 采集血标本测血糖含量,正确的是 A. 饭后 2 小时采血 B. 标本容器用抗凝试管 C. 从输液针头处抽血 D. 采血后将针头靠近管壁缓慢注入 E. 血液注入试管后不能摇动() 11. 下列关于血标本采集法的描述,错误的是 A. 血清标本应避免震荡,防止溶血 B. 全血标本采集后注入抗凝管,轻轻摇匀 C. 血气分析需用加盖抗凝管 D. 严禁在输血针头处采集血标本 E. 做二氧化碳结合力的测定时,用普通抗凝管,测定结果偏高 () 12. 不符合血培养标本采集原则的是 A. 标本容器外贴标签 B. 采集量一般为 3ml C. 在使用抗生素前采集 D. 采集时严格执行无菌操作 E. 血液注入标本瓶后轻轻摇匀 () 13. 关于采集标本,错误的是 A. 尿糖定性,留 12 小时尿标本 B. 尿妊娠试验,留清晨第一次尿 C. 痰培养标本,采集前先漱口 D. 大便查阿米巴原虫,便盆应先加温 E. 咽拭子培养,在扁桃体及咽部取分泌物 () 14. 留取 24 小时尿标本作尿糖定量检查,加防腐剂为 A. 福尔马林 B. 浓盐酸 C. 冰乙酸 D. 苯甲酸 E. 甲苯 () 15. 下列属于试验饮食的是 A. 流质饮食 B. 低蛋白饮食 C. 无盐饮食 D. 忌碘饮食 E. 要素饮食 () 16. 采集血清标本作肝功能检查,以下哪项不妥 A. 用干燥试管 B. 在清晨空腹抽血 C. 顺管壁将血液注入试管

标本采集方法及注意事项

临床常用检验标本的采集方法及注意事项 标本的来源,性质,采集方式不同,将直接影响临床检验结果的准确性。 1 血标本采集方法及注意事项 (1)采血时机:提前向病人讲解抽血化验检查的目的,方法和采集标本的时机,根据检验的不同要求,采血的时间也不同: 1)空腹抽血适宜作血糖,血脂,肝功能,肾功能,电解质等生化检验。禁食时间约12小时,时间过长易引起低血糖虚脱。 2)餐后2小时,上午8-9时抽血,可做血液内激素测定及餐后血糖测定。 3)急性心肌梗死发病后,16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST),肌酸激酶(CK)达峰值;30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值,维 持3-6d。 4)血清淀粉酶起病后6~12小时开始升高,12~24小时达到高峰,一般持续3~5天后下降,超过500U(Somogy法)即有确诊价值。 5)留取血细菌培养标本时,应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本,阳性率较高。 (2)采血部位 1)动脉采血:常用采血部位股动脉,桡动脉,足背动脉等。由于动脉压力高,危险性较大,故采血后按压穿刺点5-10分钟。 2)静脉采血:是最常用的采血方法,可选择的表浅静脉多,要求护士必须严格无菌操作,避免感染,可选择较大的静脉穿刺,争取 一次操作成功。 3)毛细血管采血:只需很小量标本,多在手指,足趾或足跟等部位采血,如全血细胞计数,快速血糖,血脂等检验,或婴幼儿。(3)采血器材:a,注射器,B,真空采血器: (4)标本的类型:血标本有三类:即全血,血浆,血清。 1)全血:用抗凝剂。 2)血清:不用抗凝剂。常用于多种生化分析,如蛋白质,脂类,无机盐,酶,肝功能,肾功能检查。 3)血浆:有多种抗凝剂。用于红细胞积数,红细胞比容,血沉,血型鉴定,血红蛋白电泳,交叉配血等。 (5)操作重点 1)止血带的应用,一般止血带捆扎不要超过1分钟,时间过长,将影响结果。 2)当病人进行输液治疗时。切忌在有静脉穿刺针的肢体上采集血标本,以免影响检验的真实结果。 3)注射器采血后。应先取下针头后再沿试管壁将血液缓慢地注入试管中。 4)操作完毕按要求处理注射器等污染物品。 5)有抗凝剂的血标本要充分摇匀,防止凝血。 尿标本采集方法及注意事项 方法: (1)导尿法:用导尿管导尿,取10—15毫升尿业盛于无菌容器中送检。

临床常用检验标本的采集方法及注意事项

临床常用检验标本的采集方法及注意事项 1 血标本采集方法及注意事项 (1)采血时机:提前向病人讲解抽血化验检查的目的,方法和采集标本的时机,根据检验的不同要求,采血的时间也不同: 1)空腹抽血适宜作血糖,血脂,肝功能,肾功能,电解质等生化检验。禁食时间约12小时,时间过长易引起低血糖虚脱。 2)餐后2小时,上午8-9时抽血,可做血液内激素测定及餐后血糖测定。 3)急性心肌梗死发病后,16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST),肌酸激酶(CK )达峰值;30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值, 维持3-6d 。 4)血清淀粉酶起病后6~12小时开始升高,12~24小时达到高峰,一般持续3~5天后下降,超过500U (Somogy 法)即有确诊价值。 5)留取血细菌培养标本时,应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本,阳性率较高。 (2)采血部位 1)动脉采血:常用采血部位股动脉,桡动脉,足背动脉等。由于动脉压力高,危险性较大,故采血后按压穿刺点5-10分钟。 2)静脉采血:是最常用的采血方法,可选择的表浅静脉多,要求护士必须严格无菌操作,避免感染,可选择较大的静脉穿刺,争取一次操作成功。 3)毛细血管采血:只需很小量标本,多在手指,足趾或足跟等部位采血,如全血细胞计数,快速血糖,血脂等检验,或婴幼儿。 (3)采血器材:a, 注射器, B ,真空采血器: (4)标本的类型:血标本有三类:即全血,血浆,血清。 1)全血:用抗凝剂。 2)血清:不用抗凝剂。常用于多种生化分析,如蛋白质,脂类,无机盐,酶,肝功能,肾功能检查。 3)血浆:有多种抗凝剂。用于红细胞积数,红细胞比容,血沉,血型鉴定,血红蛋白电泳,交叉配血等。 (5)操作重点 1)止血带的应用,一般止血带捆扎不要超过1分钟,时间过长,将影响结果。 2)当病人进行输液治疗时。切忌在有静脉穿刺针的肢体上采集血标本,以免影响检验的真实结果。 3)注射器采血后。应先取下针头后再沿试管壁将血液缓慢地注入试管中。 4)操作完毕按要求处理注射器等污染物品。 5)有抗凝剂的血标本要充分摇匀,防止凝血。 2.尿标本采集方法及注意事项 方法: (1)导尿法:用导尿管导尿,取10—15毫升尿业盛于无菌容器中送 检。 中段尿采集法:是临床上采用最多的方法。女性病人以肥皂水或1:1000新洁尔灭或其它消毒液等冲洗外阴部及尿道口;男性病人应翻转包皮冲洗,用1:1000新洁尔灭消毒尿道口,再用灭菌纱布擦干,让病人排尿,弃去前段尿,收集中段尿10-20毫升于无菌容器内,立即加盖送检。 尿标本采集注意事项: (1)尿常规,妊娠实验等最好留取清晨第一次尿液为宜,因为较浓缩,条件恒定,便于对比,故应向病人详细说明。急诊病人应随时留取标本。

常用标本采集方法

血培养标本采集、运送与报告标准操作规程 一、血培养指征 患者出现寒战,体温超过38℃或低体温,怀疑血流感染时,尤其存在以下情况时,应抽血做细菌和真菌培养:医院内肺炎;留置中心静脉导管超过72 h;感染性心内膜炎;骨髓炎;有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状;临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。 二、采血时机 一旦怀疑有血流感染可能,应立即采血做血培养,最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24 h后,以寒战、发热时采集为宜。 三、采血流程 (一)消毒 1.培养瓶消毒程序:用消毒液消毒培养瓶橡皮塞,待干燥后使用。 2.皮肤消毒程序:用消毒液从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达5 cm 以上,待消毒液挥发干燥后(常需30 s以上)穿刺采血。 (二)静脉穿刺和培养瓶接种 成人用注射器无菌穿刺取血后,排尽针头内空气,直接注入血培养瓶,勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时,应换针头),先注于厌氧培养瓶,避免注入空气,然后注入需氧培养瓶,轻轻混匀以防血液凝固。近年来,临床普遍采用负压血培养瓶,将血从患者静脉直接吸入血培养瓶,减少污染环节。 (三)注意事项 1.检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。 2.采血部位通常为肘静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导管相关的血流感染,否则不应从留置静脉或动脉导管取血,因为导管易被皮肤正常菌群污染。 3.采血次数:对于成年患者,应该同时分别在两个部位采集血标本,在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。 4.细菌性心内膜炎:在24 h内取血3次,每次间隔不少于30 min;必要时次日再做血培养2次。 5.采血量:以培养基与血液之比10:1为宜,以稀释血液中的抗菌药物、

临床标本采集指南资料

临床检验标本采集指南及注意事项 临床检验标本采集和处理问题已普遍引起了人们的重视。为做到临床检验质量保证,中华人民共和国卫生部卫生技术标准化委员会已将临床检验标本采集和处理的有关问题,列为国家和行业的标准化文件,以达到对临床检验工作的规范化要求。如中华人民共和国卫生行业标准 ws/T225-220.WS/T229-202.WS/T223-2002.WS/T222-2002.WS/T230-2002和中华人民共和国国家标准GB 19489-2004等,分别对临床化学检验标本、便携式血糖仪血标本、凝血因子测定标本、尿液标本、乙型肝炎表面抗原酶免疫检测标本、临床酶活性浓度测定标本、临床诊断中聚合酶链反应标本和实验室生物安全等标本均提出了标准化的要求。实践证明,为保证临床检验质量,必须做到全过程质量控制,即对实验检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。这里包括:实验前(分析前)、实验中(分析中)和实验后(分析后)三个阶段的质量控制,其中实验前质量控制尤其重要。国内外均有报道,试验误差中60~70%来自实验前(分析前),而且实验前(分析前)误差是仪器、试剂、质控品和标准品等再好也无法解决的。因此,必须注意做好实验前质量管理。实验前质量控制主要包括: (1)病人准备(2)标本采集(3)标本运送(4)标本处理等 一、病人准备 标本采集前病人的状态对检测结果会有一定的影响,因此,各种不同检测项目对标本采集前病人的状态有不同的要求。如血脂测定须病人禁食12~14h后采血(否则出现脂血);情绪紧张会使血糖升高;吗啡、可待因可使淀粉酶(AMS)升高;吃香蕉能使尿液5-羟吲哚乙酸升高等。所以,在病人要做某些化验检查之前,必须嘱咐病人做好相应的准备。 二、标本采集 1、血液标本 1.1防止干扰物污染(特别是定量分析标本) 1.2采血方法要正确。 1.3信息无误:标本采集后,必须在试管或容器上贴上检验申请单号码、住院病人应有床号、姓名,且应当场核对无误。 1.4叮嘱病人采血前4小时勿喝茶或咖啡、勿吸烟饮酒。尽量了解病人对刺激物和成瘾药物的接触史,供评价检验结果时参考。 1.5采血时间在上午7~9时进行,采血前病人应禁食12小时。

传染性疾病标本采集方法

---------------------------------------------------------------最新资料推荐------------------------------------------------------ 传染性疾病标本采集方法 标本采集、运送与报告操作规程一、血培养指征患者出现寒战,体温超过38℃或低体温,怀疑血流感染时,尤其存在以下情况时,应抽血做细菌和真菌培养: 医院内肺炎;留置中心静脉导管超过 72 h;感染性心内膜炎;骨髓炎;有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状;临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。 二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能,应立即采血做血培养,最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物 24 h 后,以寒战、发热时采集为宜。 三、采血流程(一)消毒 1.培养瓶消毒程序: 用消毒液消毒培养瓶橡皮塞,待干燥后使用。 2.皮肤消毒程序: 用消毒液从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达 5 cm 以上,待消毒液挥发干燥后(常需 30 s 以上)穿刺采血。 (二)静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后,排尽针头内空气,直接注入血培养瓶,勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时,应换针头),先注于厌氧培养瓶,避免注入空气,然后注入需氧培养瓶,轻轻混匀以防血液凝固。 近年来,临床普遍采用负压血培养瓶,将血从患者静脉直接吸入血培养瓶,减少污染环节。 1 / 10

(三)注意事项 1.检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。 2.采血部位通常为肘静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。 除非怀疑有导管相关的血流感染,否则不应从留置静脉或动脉导管取血,因为导管易被皮肤正常菌群污染。 3.采血次数: 对于成年患者,应该同时分别在两个部位采集血标本,在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。 4.细菌性心内膜炎: 在 24 h 内取血 3 次,每次间隔不少于 30 min;必要时次日再做血培养 2 次。 5.采血量: 以培养基与血液之比 10: 1 为宜,以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。 采血量过少会明显降低阳性率。 成人每次每培养瓶采血 8~ 10 ml,婴幼儿每次每培养瓶采血 2 ml。 四、运送要求 1.所有标本采集后都应立即送往实验室,最好在 2h 内。 如果不能及时送检,宜置于室温环境。 血培养瓶送到检验科放入培养箱前,不应暂存于冰箱内。

标本采集方法及注意事项

临床常用检验标本的采集方法及注意事项 医学检验又称临床检验,是指通过感官观察,试剂反应,仪器分析等,对离体标本如体液,分泌物,排泄物和脱落物进行的检验。它为临床诊断,病情判定,疗效观察,预后评估等提出实验数据。 检验结果的准确与否,与病人采样前的状态,准备,取样方法和标本携带等因素有关。临床护士必须掌握各种检验标本采集的方法,时间,饮食的要求,药物的影响,标本的存放温度及采集标本时的体位等状况。为此,护士要有对病人负责的精神,科学的工作态度,严谨的工作作风,一丝不苟地做好临床标本的采集工作,并根据本地区或本医院所提供的正常参考值及临床表现进行结果判断,为治疗护理提供参考依据。 各种标本采集的注意事项的重要意义 护士承担着大多数标本的采集任务,由于标本的来源,性质,采集方式不同,将直接影响临床检验结果的准确性。因此,护士必须熟悉自己所在单位有关实验室的情况,明确采集标本的要求,以保证标本质量,为临床诊断提供可靠依据。 1 血标本采集方法及注意事项 采血时机:提前向病人讲解抽血化验检查的目的,方法和采集标本的时机,解除病人的恐惧或焦虑,安慰病人,使之处于安定状态,避免因精神-体液变化影响检验的结果。根据检验的不同要求,采血的时间也不同: 空腹抽血适宜作血糖,血脂,肝功能,肾功能,电解质等生化检验。禁食时间约12小时,时间过长易引起低血糖虚脱。 餐后2小时,上午8-9时抽血,可做血液内激素测定及餐后血糖测定。 急性心肌梗死发病后,16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST),肌酸激酶(CK)达峰值;30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值,维持3-6d。 急性胰腺炎发作后2-12小时血清淀粉酶开始上升,12-72小时达高峰,4小时左右恢复正常。留取血细菌培养标本时,应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本,阳性率较高。 采血部位 动脉采血:常用采血部位股动脉,桡动脉,足背动脉等。由于动脉压力高,危险性较大,故采血后按压穿刺点5-10分钟。 静脉采血:是最常用的采血方法,可选择的表浅静脉多,要求护士必须严格无菌操作,避免感染,可选择较大的静脉穿刺,争取一次操作成功。 毛细血管采血:只需很小量标本,多在手指,足趾或足跟等部位采血,如全血细胞计数,快速血糖,血脂等检验,或婴幼儿。 采血器材:a,注射器,瓶塞,玻璃或塑料试管,防腐剂,抗凝剂,标签等。B,真空采血器:以不同彩色标记各种试管盖,用于不同实验。(我院常用的真空采血管规格及标志) 添加剂:一般分防腐剂和抗凝剂二类。常用抗凝剂有乙二胺四乙酸(EDTA)二甲抗凝,枸橼酸盐,草酸钠(钾)均系与钙作用而抗凝;肝素则抑制凝血酶活性而有抗凝作用,用于血PH,血气,内分泌激素,氨基酸,药物浓度,6-磷酸葡萄糖,染色体等检查。用抗凝试管时,每管的抗凝剂与采血最大量有关,要求与血液充分混匀,不够可致血液凝固。 标本的类型:血标本有三类:即全血,血浆,血清。 全血:用抗凝剂。 血清:不用抗凝剂。常用于多种生化分析,如蛋白质,脂类,无机盐,酶,肝功能,肾功能检查。 血浆:有多种抗凝剂。用于红细胞积数,红细胞比容,血沉,血型鉴定,血红蛋白电泳,交

目标性检测_ICU医院感染监测方案

ICU医院感染监测方案 一、监测目的 1、感染率的监测; 2、发现医院感染流行和暴发; 3、减少导管留置和导管相关感染的发生; 4、利用监测资料说服医务人员遵守感染控制规范; 5、评价控制效果。 二、参加监测医院 根据《医院感染管理办法》要求已开展2年以上的医院可停止全面综合监测,集中力量开展目标性监测;若未满2年的医院必须继续做好全院综合性监测,期满后再按要求开展目标性监测。 三、监测流程见图1-3 四、监测对象及不同类型ICU的选择 监测对象:住进ICU超过48小时的患者;从ICU转出到其他病房后,48小时内确定的感染仍属ICU感染。 选择ICU类型:我院选择综合ICU和神经外科ICU作为监测病房。各医院根据本院情况选择不同类型ICU作为监测对象,如新生儿ICU,神经外科ICU,内科ICU,外科ICU 等。可以选择一个ICU或多个ICU作为监测对象。选择不同ICU,其感染率不同. 五、监测内容 ICU医院感染病例的监测与普通病房的监测方法相同。由于患者侵袭性操作增多,留置导管引起相关的感染也增多,因此重点应加强导管相关感染的监测。包括呼吸机相关肺部感染(VAP)、中心静脉相关血流感染(CR-BSI)、导尿管相关尿路感染(CA-UTI)的监测。六、导管相关性感染定义 (一)呼吸机相关性肺部感染定义 感染前48小时内使用过呼吸机,有呼吸道感染的全身及呼吸道感染症状,并有胸部X 线征状及实验室依据。 (二)中心静脉导管相关血流感染定义及结果判断 1、CR-BSI的定义 感染前48小时内使用过中心静脉导管。是指留置血管内导管患者的细菌血症(真菌血症)和至少有1次外周静脉血培养阳性,具备感染的临床表现(如发热、寒颤和(或)低血压等),除血管内导管外,无其它明确的血液感染源。CR-BSI诊断成立至少还需具备以下各项中的1项:1)导管半定量细菌培养阳性(>15CFU/导管尖段5cm)或者定量培养阳性(>103CFU/导管段),同时从导管培养出的细菌与外周血培养结果一致(种属和药敏结果);2)从中心静脉(CVCs)、外周静脉同时抽血送细菌定量培养,二者细菌浓度比例超过5∶1;3)同时从CVCs、外周静脉抽血送细菌培养,CVCs所取血样培养出现阳性的时间比外周血早2个小时以上。 2、结果判断 根据导管是否仍有保留的必要性有两种采取方法,保留导管:外周V血1份,中心V血

护理7种常用标本采集

护理7种常用标本采集 正确的检验结果对疾病的诊断、治疗和预后判断具有非常重要的意义,而正确的检验结果与正确采集标本关系密切。作为标本采集者,护士应了解各种检验的目的,掌握正确采集标本的方法,采集过程中严格执行查对制度、遵守无菌技术操作原则及标准预防措施,以保证检验结果的准确性。 一、血标本采集 (一)评估和观察要点。 1.评估患者病情、意识及配合程度,需空腹取血者了解是否空腹。 2.评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。 (二)操作要点。 1.真空采血法:根据标本类型选择合适的真空采血管,将采血针与持针套连接,按无菌技术操作规程进行穿刺,见回血后,按顺序依次插入真空采血管。 2.注射器直接穿刺采血法:根据采集血标本的种类准确计算采血量,选择合适的注射器,按无菌技术操作规程进行穿刺。采集完成后,取下注射器针头,根据不同标本所需血量,分别将血标本沿管壁缓慢注入相应的容器内,轻轻混匀,勿用力震荡。 3.经血管通路采血法:外周血管通路仅在置入时可用于采血,短期使用或预期使用时间不超过48h的外周导管可专门用于采血,但不能给药。采血后,血管通路要用足够量的生理盐水冲净导管中的残余血液。(三)指导要点。

1.告知患者血标本采集的目的及配合方法,如需空腹采血应提前告知。 2.告知患者按压穿刺部位及按压时间。 (四)注意事项。 1.在安静状态下采集血标本。 2.若患者正在进行输液治疗,应从非输液侧肢体采集。 3.同时采集多种血标本时,根据采血管说明书要求依次采集血标本。 4.采血时尽可能缩短止血带的结扎时间。 5.标本采集后尽快送检,送检过程中避免过度震荡。 二、血培养标本采集 (一)评估和观察要点。 1.评估病情、治疗、心理状态及配合程度。 2.了解寒颤或发热的高峰时间。 3.了解抗生素使用情况。 4.评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。 (二)操作要点。 1.注射器直接穿刺采血法(同血标本采集)。 2.经血管通路采血法(同血标本采集)。 3.经外周穿刺的中心静脉导管取血法:取1支注射器抽生理盐水20ml 备用,另备2支注射器。取下肝素帽,连接1支空注射器,抽出5ml 血液弃去;如正在静脉输液中,先停止输液20s,再抽出5ml血液弃去。另接1支注射器抽取足量血标本。然后以生理盐水20ml用注射器以脉冲式冲洗导管。消毒导管接口,清除残留血迹。连接肝素帽或

标本采集试题

(一) A 型题 ()1. 防止血标本溶血的方法,下列哪项错误 A. 选用干燥无菌注射器 B. 采血后去针头顺管壁将血浆和泡沫注入试管 C. 避免过度震荡 D. 血培养标本将血液注入培养瓶 E. 立即送验 ()2. 尿常规检查需何时留取尿标本 A. 饭前半小时 B. 晨起第一次尿 C. 12 小时尿 D. 24 小时尿 E. 随时收集尿液 ()3. 留取中段尿的正确方法是 A. 尿量不宜太多,3ml 即可 B. 尿内勿混有消毒液 C. 女性患者须取坐位 D. 必须留取晨起第一次尿 E. 用干燥试管留取尿液 ()4. 检查粪便中的寄生虫卵应 A. 取中间部位的粪便 B. 取边缘部位的粪便 C. 取不同部位的粪便 D. 随机取少许粪便 E. 留取全部粪便 ()5. 采集痰培养标本时应用的漱口液是 A. 生理盐水 B. 1%~4% 碳酸氢钠溶液 C. 0.1% 醋酸溶液 D. 1%~3% 过氧化氢溶液 E. 朵贝尔溶液 ()6. 关于咽拭子培养,下列哪项错误 A. 采集咽部、两侧腭弓及扁桃体分泌物 B. 用无菌咽拭子培养管留取标本 C. 患者先漱口 D. 长棉签蘸无菌生理盐水擦溃疡面采集 E. 真菌培养须在口腔溃疡面采集 ()7. 患者伍某,持续高热,怀疑败血症,下列采集血培养标本哪项做法错误 A. 须放入消毒容器内 B. 检查容器有无裂缝 C. 检查瓶塞是否干燥 D. 检查培养基是否足够 E. 采集时严格执行无菌操作 ()8. 患者张某,急性细菌性心内膜炎,需作血培养检查,护士应给患者采血多少为宜A. 2ml B. 4ml C. 6ml D. 8ml E. 10ml ()9. 患者史某,查找痰中癌细胞,固定痰标本的溶液是 A. 3% 来苏儿 B. 5% 石炭酸 C. 95% 酒精 D. 0.2% 漂白粉 E. 0.2% 苯扎溴铵 ()10. 采集血标本测血糖含量,正确的是 A. 饭后2 小时采血 B. 标本容器用抗凝试管 C. 从输液针头处抽血 D. 采血后将针头靠近管壁缓慢注入 E. 血液注入试管后不能摇动 ()11. 下列关于血标本采集法的描述,错误的是 A. 血清标本应避免震荡,防止溶血 B. 全血标本采集后注入抗凝管,轻轻摇匀 C. 血气分析需用加盖抗凝管 D. 严禁在输血针头处采集血标本 E. 做二氧化碳结合力的测定时,用普通抗凝管,测定结果偏高

正确采集感染监测标本的方法(一)

正确采集感染监测标本的方法(一) 【摘要】医院感染病原体监测是医院感染管理的一项重要内容,通过细菌培养的方法来观察细菌分布和抗菌药物敏感率、各种环境、灭菌医疗物品的细菌总数、种类、动态变化等,预测和及时发现医院感染的发生或流行趋势,有的放矢采取控制措施,杜绝感染蔓延,为制定有效的医院感染控制措施,降低医院感染率,具有十分重要的意义。 【关键词】感染标本采集 医院感染监测在医院感染控制工作中起着至关重要的作用,通过监测及时发现感染问题,提供解决问题的措施及方法,评价控制措施效果,为进一步控制医院感染提供可靠的信息资料。因此,正确的检验结果与正确的采集标本关系非常密切,采样人员必须了解掌握各种检验的临床意义,标本采集的原则、时间、方法、注意事项等,这样才能确保检验结果不受影响。1标本采集原则 首先填写检验单标明科别/室别、床号、姓名、性别、住院号、检验物、检验目的及送检日期等;选择恰当的标本容器,贴上标签。如采集细菌培养标本,容器必须无菌,无裂缝,足够的培养基,应在无菌操作下取样,切勿混入防腐剂、消毒剂及其他药物,以免影响检验结果。采集使用中消毒剂与无菌器械保存液时稀释液中必须加入相应的中和剂,以中和被检样液中的残效作用。感染患者应在使用抗菌药物之前采集,如已用药应在检验单上注明。 采集标本必须做到及时、新鲜、准确,采样后必须尽快对样品进行相应指标的检测,送检时间不得超过6h,若样品保存于0℃~4℃条件时,送检时间不得超过24h。 2常见医院感染标本的采集 2.1常见临床微生物标本的采集 2.1.1血液与骨髓标本的采集 通常采肘静脉血,如疑似细菌性心内膜炎时,采肘动脉或股动脉血;疑似菌血症在体温上升阶段及早采血可提高阳性率;疑似细菌性骨髓炎或伤寒时,在病灶部位或髂前上棘处严格消毒后无菌操作抽取骨髓1ml作细菌培养;对已用抗菌药物但又不能停药者,可在下次用药前采样。采血量成人5ml~10ml,婴幼儿1ml~5ml。培养基与血液之比1∶1,以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。 2.1.2痰标本的留取 一般留取晨痰,多数患者清晨痰量较多,即使咳痰量较少的患者在清晨采取痰液也最为容易,故清晨采集痰标本最好〔1〕。 2.1.2.1自然咳痰法 留取标本前,首先让患者反复漱口,以减少口腔寄生菌的污染,用力自气管深部咳出痰液至无菌广口瓶中或蜡纸盒内送检。对痰量少或无痰患者,可采用加温45℃左右的10%氯化钠水溶液雾化吸入,对痰量少、不易合作的儿童,可轻轻按摩(胸骨上窝处)气管,使其咳嗽,咳痰后用无菌棉拭子采取标本〔1〕。 2.1.2.2气管镜采痰法 对于痰量较多,不易咳出的患者可采用纤维支气管镜直视下吸痰,而后将痰液自灭菌吸管注入无菌试管中〔1〕。 2.1.2.3经鼻导管吸痰法 用灭菌吸痰管或导尿管经鼻腔插入气管内,刺激患者咳嗽,吸取痰液至无菌瓶内〔1〕。 注意:痰标本不能及时送检者,可存放于4℃冰箱内,若室温下搁置数小时,定植于口咽部的非致病菌呈过渡生长,可导致肺炎球菌、葡萄球菌和流感杆菌的检出率明显下降。 2.1.3化脓及创伤感染标本的采集 2.1. 3.1未破溃脓肿采集 患部皮肤黏膜常规消毒后,用灭菌生理盐水擦洗干净,取无菌干燥注射器穿刺抽取脓汁,将

标本采集方法

标本采集方法 标本的定义:是指采取患者少许的血液、排泄物(粪、尿)、分泌物(痰、鼻分泌物)、呕吐物、体液(胸腔积液、腹腔积液)和脱落细胞(食道、阴道)等样品,经过物理、化学和生物学的实验室技术和方法对其进行检验,作为判断患者有无异常存在的依据。 本章重点: ●掌握标本采集的原则 ●掌握痰标本、咽拭子标本、血标本、尿标本、粪标本的采集方法 标本采集的意义 ●明确诊断观察病情指导制定治疗措施 标本采集的原则 ●遵照医嘱 ●充分准备: ● 1)患者准备 2)用物准备 3)护士自身准备 ●严格查对:检查项目、患者姓名、床号、住院号 ●正确采集:方法、时间、量、容器 ●及时送检 ●明确检验项目、检验目的及注意事项 ●标本的容器贴好标签,附上验单:患者的姓名、科室、床号、住院号、送检 目的、送检日期和时间等 ●每次采集血标本时应做到“三个一”:一患者、一化验单、一容器 ●一般培养标本的采集应在使用抗生素之前 各种标本的采集 一、痰液标本的采集 ★痰常规标本★痰培养标本★24小时痰标本 三种痰标本的区别 分类目的 痰常规标本痰液一般形状,涂片查细胞、细菌、虫卵等痰培养标本痰中的致病菌

24小时痰标本24小时痰液的量和性状 分类用物 痰常规标本普通容器,痰盒 痰培养标本无菌集痰器,漱口液 24小时痰标本500ml的广口玻璃瓶,内盛少量清水 分类采集方法 痰常规标本幻灯片 10 能自理的患者; 无法咳痰或不合作者 痰培养标本步骤基本同上。不同的是先用漱口液漱口,再用 清水漱口;无菌容器,无菌操作。 24小时痰标本从晨7时~次晨7时第一口痰结束。全部痰液留 在容器中送检。 能自理的患者: 1、晨起后用清水漱口 2、以清晨第一口痰为宜 3、深吸气后用力咳出气管深处的痰液 4、不可混入漱口液、唾液、鼻涕 无法咳痰或不合作者:用吸痰法收集(集痰器) 痰标本采集注意事项 1、如查癌细胞,应立即送检或用95%乙醇或用10%甲醛固定后送检 2、不可将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰液中 3、收集痰液宜在清晨,因此时痰量较多,痰内细菌也较多,提高阳性率。 二、咽拭子标本采集 目标:从咽部和扁桃体取分泌物作细菌培养或病毒分离,协助诊断。 操作步骤及要点 操作前准备核对点燃酒精灯,指导患者张口发“啊”音,用长棉签蘸以敏捷、轻柔的动作擦拭两侧腭弓、咽扁桃体上的分泌物,取毕,将试管口及棉塞在酒精灯火焰上消毒后插入棉

医院感染监控中常用的检测方法

医院感染监控中常用的检测方法 采样及检查原则:采样后必须尽快对标本进行相应指标的检测,送检时间不得超过6 h;若标本4 ℃保存时,送检时间可延长,但不得超过24 h。 1.医务人员手的微生物学监测 (1)采样时间:在接触患者或从事医疗活动前进行采样。 (2)采样面积及方法:被检人五指并拢,将浸有无菌9g/L氯化钠溶液的棉拭子一支在双手曲面从指根到指端来回涂擦各两次(一只手涂擦面积约30cm2),并随之转动采样棉拭子,剪去手接触部位,将棉拭子放入装有10ml采样液的试管内送检。采样面积按平方厘米cm2) 计算。(3)细菌菌落总数检查:1ml采样液放入灭菌平皿内,用普通营养琼脂作倾注培养,放35℃温箱内培养24~48 h计数菌落。 手细菌菌落总数(cfu/ cm2)= 平板上菌落数×采样液稀释倍数30×2(4)判断标准:见表6-3-1。 2.物体表面的微生物学监测 (1)采样时间:消毒处理后4 h内采样。 (2)采样面积:被采表面<100 cm2,取全部表面;被采表面≥100 cm2,取100 cm2。 (3)采样方法:用5cm×5 cm的标准灭菌规格板,放在被检物体表面,用浸有灭菌9g/L氯化钠溶液的棉拭子1支,在规格板内横竖往返各涂抹5次,并随之转动棉拭子,连续采样式1~4个规格板面积,剪去手接触部分,将棉拭子入装10ml采样液的试管内送检。门把手等小

型物体则采用棉拭子直接涂抹物体的方法采样。 (4)细菌菌落总数检查:1ml采样液放入灭菌平皿内,用普通营养琼脂作倾注培养,放35℃温箱内培养24~48 h计数菌落。 物体表面细菌菌落总数(cfu/ cm2)= 平板上菌落数×采样液稀释倍数 采样面积(cm2) (5)判断标准:见表6-3-1。 3.空气的微生物学监测 (1)采样时间:选择消毒处理后与进行医疗活动之前期间采样。(2)采样高度:与地面垂直高度80~150 cm。 (3)布点方法:室内面积≤30 m2,设一条对角线上取3点,即中心一点、两端各距墙1m处取一点;室内面积>30 m2,设东、西、南、北、中5点,其中东、西、南、北点均距墙1m。 (4)采样方法:用90mm直径普通营养琼脂平板在采样点暴露5~30 min后送检培养。 (5)细菌菌落总数检查:将平板置37℃温箱内培养24 h计数菌落。 空气细菌菌落总数(cfu/ m3)= 50000NAT 式中:A—平板面积(cm2) T—平板暴露时间(min) N—平均菌落数(cfu/平板) (6)判断标准:见表6-3-1。 4.使用中消毒剂和无菌器械保存液的微生物学监测

各种标本的采集方法

各种标本的采集方法 1.粪便标本:对水样便以吸管吸取1~3毫升,成型便采集成人拇指大小的便量,置于灭菌管内或经增菌后送检。任何容器均应加橡皮塞或将螺旋盖旋紧,容器外壁不可沾染粪便。采集肛拭子标本,以直肠拭子用保菌液或生理盐水润湿后,由肛门插入直肠内3~5厘米处采集,转动取出,插入保存液或无菌试管内送检。粪便标本应在2小时内尽快送检,否则标本应放入Cary-Blair运送培养基中。沾染粪便的衣物、物品、地面,以及尸体肠内容物等也可作为检材。所有采集的拭子标本(肛拭子、食品及操作台等的涂抹拭子),当直接用于PCR检测时,不能使用棉拭子和木质拭子棒,因为这类材料中含有核酸扩增抑制剂,而要使用灭菌人造纤维拭子和塑料棒。 2.呕吐物标本:以吸管吸取1~3毫升,置可密闭样品管立即送检。 3.食品标本:采集50~100克置于可密闭灭菌广口瓶、塑料瓶或厚的自封塑料袋内,常温下迅速送实验室。 4.水产品标本:通常选取活的或新鲜水生动物为采集对象,冰冻水生动物也可作为采集标本。采集水生动物鳃部和/或肠内容物等标本,置于采样瓶(管)或食品采样袋中密封,常温下送检;同时,以无菌棉签涂抹五只(条)以上的某类水生动物体表和/或水生动物肛门,置于碱性蛋白胨水中送检,每管碱性蛋白胨水作一份样品看待。有条件的可将水生动物整体采回实验室再进行处理。 5.水体标本:用灭菌的500毫升玻璃瓶采集相对静止的表层水(深度30 厘米以内)500毫升,加盖密封后以牢固自封塑料袋包裹密封,常温下送实验室。取水点的选择应结合流行病学调查资料而确定;每个采样点应相距数米;同一采

样点采集样本不少于2瓶,用于平行检测。采集标本的水体按可能污染有霍乱弧菌对待,因此采样者应注意自身防护,同时避免水样沾染周围环境。 6.物体表面标本:以灭菌拭子蘸碱性蛋白胨水涂抹可疑物体表面,置于装有碱性蛋白胨水的可密闭玻璃或塑料试管中,常温送检。

医院感染爆发及突发事件监测制度精选文档

医院感染爆发及突发事 件监测制度精选文档 TTMS system office room 【TTMS16H-TTMS2A-TTMS8Q8-

郑州有源中医院 医院感染暴发及医院感染突发事件的监测、报告、调查与控制制度一、监测 (一)培养医院感染专职人员和临床、医技医务人员识别医院感染暴发和突发事件的意识与能力。(二)建立和完善医院感染监测网:医院感染专职人员经常性深入临床进行前瞻性全院综合性监测,及时收集、汇总、分析监测资料,了解感染发生动态变化,可及时察觉感染暴发的迹象,适时提出疫情预警报告。临床医技医务人员能很好掌握医院感染诊断标准,密切观察病情。 对医院感染暴发保持高度警惕性,及时发现并上报医院感染病例。医学影像、检验等多部门联动,及时发现感染聚集流行态势及同种同源或特殊病原体。 二、报告 (一)科室及医务人员发现医院感染病例(短时间内发生3例以上同种同源感染病例)或疑似医院感染暴发(短时间内出现3例以上临床症候群相似、怀疑有共同感染源的感染病例或3例以上怀疑有共同感染源或感染途径的感染病例)时及时上报医院感染管理科。 (二)医院感染管理科发现医院感染流行、疑似医院感染暴发和医院感染暴发趋势,经调查证实上述情况及时报告主管院长。 (三)医院发生5例以上疑似医院感染暴发,3例以上医院感染暴发,由于医院感染暴发直接导致患者死亡,由于医院感染暴发导致3人以上人身损害后果情形时,经调查证实后应于12小时内向区卫生局和省卫生厅报告,并同时向区疾控中心和省疾病预防控制中心报告。 (四)医院发生10例以上医院感染暴发,特殊病原体或者新发病原体的医院感染,可能造成重大公共影响或者严重后果的医院感染情形时,应按《国家突发公共卫生事件相关信息报告管理工作规范(试行)》要求,在2小时内向区卫生局和省卫生厅报告,并同时向疾控中心和省疾控预防控制中心报告。 (五)发生的医院感染和医院感染暴发属于法定传染病的,还应按照《中华人民共和国传染病防治法》和《国家突发公共卫生事件应急预案》的规定进行报告。 (六)报告包括初次报告和订正报告,订正报告应在暴发终止后一周内完成。 三、调查 (一)成立由医院感染管理科牵头负责,相关临床科室、检验、后勤等多部门的联合调查组,及时查找原因。 (二)及时进行流行病学调查处理: 1、证实流行或暴发:对怀疑患有类似感染的病例进行确诊,计算罹患率,若罹患率显着高于该科室或病房历年同期医院感染一般发病率水平,则证实有聚集、流行。短时间

重症监护室(ICU)医院感染监测方案

附件1 重症监护室(IC U)医院感染监测方案 1 监测目的 1.1监测ICU患者医院感染率; 1.2建立ICU患者医院感染相关数据比较体系; 1.3发现医院感染流行和暴发; 1.4减少导管留置和器械相关感染的发生; 1.5利用监测资料说服医务人员遵守感染控制规范; 1.6评价控制效果。 2 监测对象及ICU类型的选择 2.1监测对象被监测的对象必须是住进ICU进行观察、诊断和治疗的所有患者;与ICU感染率计算有关的感染必须是发生在ICU,即患者住进ICU的时间≥48小时,患者转出ICU到其他病房后48小时内发生的感染仍属ICU感染。 2.2 ICU类型的选择各医院根据本院情况只少选择一个ICU或选择多个ICU作为监测单位,优先选择综合ICU和侵入性操作较多、医院感染率较高的ICU。 3 监测指标 不同类别ICU的总体医院感染率,日感染率及调整感染率,器械(中心静脉导管、导尿管、呼吸机)使用率及其相关感染率。 4 器械相关感染定义 4.1呼吸机相关肺炎感染前48小时内使用过呼吸机,有全身及呼吸道感染的症状和体征并有胸部X线及实验室检查依据,或临床医生诊断的肺部感染。 4.2中心静脉导管相关血流感染感染前48小时内使用过中心静脉导管的患者有感染的临床表现(如发热、寒战和(或)低血压等),血培养至少可获得1个阳性的结果,导管半定量细菌培养阳性(>15CFU/导管尖段5cm)或导管定量培养阳性(>103CFU/导管段),并且与外周静脉血中分离出的病原菌种类和抗菌谱相同,除血管内导管外,无其他明确的血液感染源。 4.3导尿管相关泌尿道感染近期内留置导尿管史(通常为7天内),有或无泌尿道感染的临床症状和体征,尿培养革兰阳性球菌数≥104CFU/mL,革兰阴性杆菌数≥105CFU/mL。 5 监测方法 5.1前期准备工作监测开始前对微生物室及ICU主任说明该项目的意义和方法,取得支持和配合。 5.2 医务人员的教育和培训 5.2.1对参与ICU医院感染监测科室的医护人员进行培训,掌握器械相关感染的诊断标准;

传染性疾病标本采集方法

标本采集、运送与报告操作规程 一、血培养指征 患者出现寒战,体温超过38℃或低体温,怀疑血流感染时,尤其存在以下情况时,应抽血做细菌和真菌培养:医院内肺炎;留臵中心静脉导管超过72 h;感染性心内膜炎;骨髓炎;有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状;临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。 二、采血时机 一旦怀疑有血流感染可能,应立即采血做血培养,最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24 h后,以寒战、发热时采集为宜。 三、采血流程 (一)消毒 1.培养瓶消毒程序:用消毒液消毒培养瓶橡皮塞,待干燥后使用。 2.皮肤消毒程序:用消毒液从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达5 cm以上,待消毒液挥发干燥后(常需30 s以上)穿刺采血。 (二)静脉穿刺和培养瓶接种 成人用注射器无菌穿刺取血后,排尽针头内空气,直接注入血培养瓶,勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时,应换针头),先注于厌氧培养瓶,避免注入空气,然后注入需氧培养瓶,轻轻混匀以防血液凝固。近年来,临床普遍采用负压血培养瓶,将血从患者静脉直接吸入血培养瓶,减少污染环节。 (三)注意事项

1.检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。 2.采血部位通常为肘静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导管相关的血流感染,否则不应从留臵静脉或动脉导管取血,因为导管易被皮肤正常菌群污染。 3.采血次数:对于成年患者,应该同时分别在两个部位采集血标本,在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。 4.细菌性心内膜炎:在24 h内取血3次,每次间隔不少于30 min;必要时次日再做血培养2次。 5.采血量:以培养基与血液之比10:1为宜,以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。采血量过少会明显降低阳性率。成人每次每培养瓶采血8~10 ml,婴幼儿每次每培养瓶采血2 ml。 四、运送要求 1.所有标本采集后都应立即送往实验室,最好在2h内。如果不能及时送检,宜臵于室温环境。血培养瓶送到检验科放入培养箱前,不应暂存于冰箱内。 2.送检标本应正确粘贴条形码,注明采样时间和送检时间。 3.安全防护:放标本的容器必须防漏,禁止将渗漏的标本送往实验室。 五、报告要求 (一)紧急口头(电话)报告 血培养出现阳性报警时,立即进行革兰氏染色、镜检,并在最短时

相关文档
最新文档