家兔气管插管实验

家兔缺氧实验报告doc

家兔缺氧实验报告篇一：家兔解剖实验一、实验目的 1. 通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察，掌握哺乳类躯体轮廓、消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点 2. 掌握哺乳纲动物的主要特征，理解其进步性特征 3. 熟练解剖动物的方法二、实验原理将家兔处死是利用静脉注射空气致死：向静脉注射空气后，进入血液形成空气栓，空气栓随血流回流至右心室，然后被送到肺动脉，造成肺栓塞，大面积的肺栓塞使人体不能进行气体交换，发生严重的缺氧和二氧化碳储留，导致猝死。三、实验器材活家兔、解剖盘、酒精棉球、注射器、镊子、烧杯、手术刀、手术剪、骨钳、止血钳等四、实验步骤 1、外形观察，处死家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。肛门两侧各有一个无毛区，提

起此处皮肤，开口，打开皮肤。取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。挣扎一会后死亡。 2、打开皮肤润湿腹部中间的毛，小心用剪刀从泄殖孔稍前方剖一横口，向上剪至颈部，用手术刀使皮肤和肌肉分离，将剥下的皮肤向左右尽可能拉开露出腹部。 3、开腹腔：原位观察膈、胰腺、肝脏、各系统观察，肾脏冠切从泄殖孔的切口处沿腹中线同样左右割开腹壁至胸骨剑突处，暴露腹腔。先观察各器官的自然位置。可观察到：胰腺：分散附着于（十二指肠）弯曲处的肠系膜上，为粉红色、分布零散而不规则的腺体。胃：囊状，横卧于膈肌后面，入口称喷门，出口称幽门。小肠：肠管长而细，分为十二指肠、空肠和回肠三段。十二指肠呈“ U ”形，空肠和回肠界限不易区分。大肠：分为盲肠、结肠和直肠三段。盲肠为大肠的起始段，肠管最粗大，相当于一个发酵罐，其末端有蚓突，结肠表面有横褶，直肠细长。膈肌：呈粉色，上面血多有放射状红色细丝肾脏：移开胃后，可在其下观察到两肾，分布于两侧，

家兔基础实验操作及注意事项总结教学文案

家兔基础实验操作及注意事项总结

基本技能操作经验总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用 1.家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。 2.家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。 3.耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。若回抽注射器有暗红色

血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。注：本实验所用麻醉药——乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。【注意事项】1. 进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺； 2.可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作； 3.静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。在注射麻醉药物时，可先用麻醉药物总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射，以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡； 4.实验动物的固定【实验方法】将动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部伸直，口腔与气管成一直线，保持气管畅通。用粗麻绳打类蝴蝶结固定家兔四肢，用棉麻线套住家兔上切牙固定在兔台头端，使家兔四肢和头部伸展并固定。【注意事项】1.打结最好打利于捆缚的结，避免家兔挣脱。2.尽量使颈部抻直，避免扭曲。 5.清理兔毛【实验方法】使用弯头兔毛剪剪掉实验部位兔毛。【注意事项】1.左手捏住要剪的兔毛，方便剪掉后及时清理。注意不要将兔毛掕起，这样容易剪到皮肤和皮下神经，引起兔子的强烈挣扎。

家兔解剖实习报告

金山学院课程实习报告报告题目《家兔活体解剖课程实习》课程名称《家畜解剖学》实习地点动物医学家畜解剖实验室实习时间2014年12月14日专业动物医学年级 2014级学生姓名陈意学号 0146726093

（一）.实验日期2014年12月14号(8:00～11:30) （二）.家畜品种：家兔性别：母年龄：未知放血后重：6.98斤体长：75cm （三）.解剖程序和观察内容 1.活体观察 ?毛色：浅棕色前后关节：健全 ?观察巩膜为白色，瞳孔为椭圆形，眼结膜粉红色、正常 ?健康状况：良好鼻镜：湿润眼神：呆滞 2.处死 ?磨刀，绑定。 ?用手术刀切开颈动脉。进行放血。 ?放血后，用手触摸睫毛，判断是否死亡。 ?放血后称重。 3.剥皮 ?在四肢系部环切，再沿内侧正中线纵切至腹正中线。从下颌至肛门沿腹正中线做纵切切开皮肤。

?在正中线处向外顺序剥开皮肤，剥皮时其他人员将皮拉紧，沿皮下组织层切割。先剥四肢后剥躯干。 4.观察肌肉 ?冈上肌、冈下肌、肱三头肌斜方肌、背阔肌臀浅肌、阔筋膜张肌、臀股二头肌

5.胸、腹部解剖观察 ?沿着腹底正中心线切开，并剪断胸壁所有肋骨的下端和隔肌的附着线，便可把整个胸腔、腹腔暴露在外 ?肺、气管、食管(在腔静脉的背侧有气管，气管的背侧偏左有食管) ?心脏(观察心的外形，分清进出心腔的主动脉，前、腔静脉，肺动脉，肺静脉。分清心房心室的部位，以及心耳部位 ?小肠，大肠

小肠分为十二指肠、空肠、回肠。大肠分为盲肠、结肠、直肠测量肠管的长度：在胃的幽门后、降结肠入骨盆腔处及总肠系膜根部双结扎。把整个肠管摘除。把各段肠管的系膜分离。拉直肠管测量各段长度。 ?肝、胆囊、脾、胃 ?胰散在于十二指肠间的肠系膜中,形如脂肪 ?肾红褐色，卵圆形，位于最后肋骨和前两个腰椎横突的腹侧面。光滑单乳头肾。

气管插管实验报告

篇一：家兔气管插管实验兔的固定方法背位固定用棉绳拉住兔的上门牙齿固定于手术台柱上。也可用兔头架，先将兔颈嵌入半圆形铁圈，再将兔嘴套入可调节铁环内。拧紧固定螺丝，再将长柄固定于手术台的定柱上（四）常用手术的基本操作 1.备皮（1）剪毛法：常用于急性实验。用一般弯剪刀贴皮肤依次将手术范围内的皮毛剪去。勿用手提起毛剪之，以免剪破皮肤。（2）拔毛法：适用于大、小白鼠和家兔耳缘静脉，以及后肢皮下静脉的注射、取血等。（3）剃毛法：用于大动物的慢性实验，用电剃刀顺着毛方向剃毛。（4）脱毛法：用于无菌手术野备皮。小动物脱毛，脱毛剂配方：硫化钠8g，淀粉7g，糖 4g，甘油5g，硼酸1g，水75g，调成糊状。用法：先将手术野的毛剪短，后用棉球涂一薄层脱毛剂，2～3分钟后用温水洗净，擦干，涂一薄层油脂。鼠类亦可不用剪毛，直接涂脱毛剂。狗等大动物脱毛，配方：硫化碱10g，生石灰15g，加水至100ml拌匀。用法：术者戴耐酸手套，用纱布涂之，使狗毛浸透，等2～3分钟后洗净擦干，涂一薄层油脂。注意切不可在脱毛前用水弄湿脱毛部位，以免脱毛剂渗入毛根造成炎症。 2.消毒常用于慢性实验，一般用3%碘酊和75%乙醇常规法消毒。（五）常用动物的给药方法及采血方法 1.常用动物的给药方法（1）淋巴囊内注射法常用于蟾蜍。注入药物易于吸收。方法为左手取动物，右手持注射器以150角斜挑刺入尾骨两侧皮下淋巴囊，缓慢推入，量宜小于0.5ml，因动物皮薄，弹性差，拔针后应用棉球按压针孔片刻。（2）皮下注射法常用于鼠类、兔、猫、狗等。鼠类注射法为左手提起其头部皮肤，右手握注射器，以约15o角刺入皮下，缓缓注入药液，拔针后轻压针孔。小白鼠注入量应小于 0.4ml药液。大白鼠、豚鼠要用大号针头。鼠类亦可从背部皮下注射，但需两个人合作完成。兔、狗、猫常在背部或大腿内侧等皮下脂肪少的部位进行皮下注射，禽类常选翼下注射。（3）肌肉注射法鼠类常选后肢外侧肌肉。兔、猫、狗多选臀部肌肉，鸟类选胸肌和腓肠肌。方法为左手固定动物，右手持注射器，垂直刺入肌肉，缓慢注射，注射完毕用手轻轻按摩注射部位，以利药物吸收。（4）腹腔注射法除蛙类外，几乎所有动物都可使用此法给药。（5）静脉注射法 1）鼠类：常选用尾静脉。先将鼠固定于特制的鼠筒内或倒置的玻璃罩下，使鼠尾外露，用75%乙醇擦之使血管扩张。左手拉住尾端，右手持注射器（4～4.5号针头），以约15o角刺入扩张最明显的血管内，轻推药液，阻力不大，血管变色，说明已注入静脉内，如果阻力大，局部变白，应重新刺入注射部位先从远端开始，以便失败后逐步上移注射部位。 2）狗：常选用前肢内侧的皮下头静脉和后肢外侧的小隐静脉。剪毛消毒，在血管近心端先扎一条绷带，使血管充盈，左手握肢体，拇指向远端轻轻绷紧皮肤，右手持注射器，顺血管方向向心性刺入皮下，沿血管外平行走约0.5cm后，再刺入血管，有回血后即表明进入血管，放松近心端绷带，缓慢注入药液。 3）兔：常选用耳缘静脉。先拔毛，左手食指和中指夹住耳缘静脉近心端，使血管充盈；拇指和无名指固定耳朵，并与食、中指绷紧注射部位，右手持注射器，顺血管方向刺入静0.5～1cm，左手固定针头，右手缓慢注射。如阻力大或局部肿胀苍白，说明针头在血管外，应重新注射。应从血管远心端开始，以便逐次向近心端重复注射。 2.常用的采血方法（1）剪尾采血常用于小白鼠和大白鼠。小量

小鼠解剖实验报告

°实验五：小鼠解剖实验吴雪薇121140059 一、实验目的 1、通过实验学习给小鼠注射、灌胃等技术操作 2、了解戊巴比妥对哺乳动物的影响 3、复习解剖的基本操作 4、通过实验了解小鼠唾液腺的结构 5、通过实验了解小鼠体内器官、系统构造二、实验原理 1、小鼠唾液腺唾液腺由颌下腺、腮腺、舌下腺组成，颌下腺最明显，颌下腺两边弥散的是腮腺，舌下腺连于颌下腺上，容易与颌下腺上连的淋巴结搞混。 2、会厌软骨会厌软骨即构成会厌的软骨，形状扁平，像树叶，下部附着在喉结的内壁上。会厌是喉头上前部的树叶状结构，由会厌软骨和黏膜构成。呼吸或说话时，会厌向上，使喉腔开放；咽东西时，会厌向下，盖住气管，使东西不至进入气管内。 3、小鼠体内结构（1）胸腔：胸腔内的结构主要有食道、心、肺。（2）腹腔：主要有胃、肝、胆、胰、脾、肠、肾（包括肾上腺）、输尿管、膀胱和生殖器官：卵巢、输卵管、子宫（雌），睾丸、附睾、精囊腺、输精管（雄）。（3）胸腔与腹腔由膈膜隔开。三、实验器材注射器、烧杯、灌胃针、解剖盘、解剖剪刀、镊子、解剖针、钉子四、实验材料小鼠1只、戊巴比妥溶液五、实验操作 1、抓取一只小鼠，拎住尾巴根部，使其前肢抓在抹布上，后肢提起，用注射器向其腹腔注射0.5ml戊巴比妥溶液。 2、将小鼠放在烧杯中，观察它的反应。 3、待小鼠不再动时，用注射器向其腹腔再注射0.5ml戊巴比妥溶液，使其死亡。 4、将小鼠放在解剖盘上，用大头针将四肢固定在解剖盘上。 5、用解剖剪刀，从靠近肛门处剪开表皮直至口腔，观察唾液腺。 6、剪开口腔，观察会厌软骨。 7、剪开腹腔和胸腔，观察小鼠体内结构。 8、处理小鼠，清洗、整理实验器材。六、实验结果 1、观察注射戊巴比妥溶液后的小鼠本次实验第一次注射，注射了0.4ml的戊巴比妥溶液，第二次注射了0.6ml。

家兔呼吸运动的调节实验报告

家兔呼吸运动得调节一、实验目得 1.观察血液中化学因素(PCＯ2、PＯ2、[H+])改变对家兔呼吸频率、节律、通气量得影响及机制。观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中得作用及机制。 2.学习气管插管术与神经血管分离术。二、实验原理呼吸运动指在中枢神经系统控制下,通过呼吸肌节律性得运动造成胸廓节律性地扩大或缩小。呼吸运动除了受中枢神经系统控制外，一些理化因素(包括代谢产物、药物以及肺得扩大与缩小等）可通过如化学感受性呼吸反射、肺牵张反射直接或间接作用于中枢神经系统来调节呼吸运动,表现为呼吸运动及隔肌放电得频率与幅度等改变。化学因素(包括代谢产物、药物等）可直接作用于中枢或通过化学感受器作用于中枢后,再经传出神经纤维,如膈神经、肋间神经将控制信号传至呼吸肌,引起呼吸运动发生改变。肺牵张反射指肺扩张时引起吸气抑制得反射,其传入神经就是迷走神经。三、实验结果 1、通入CＯ２

吸入CＯ2后呼吸明显加深，频率明显加快。 2、通入N2 吸入N2后呼吸加深,频率加快,但其幅度较CO2小。

3、增大无效腔增大无效腔后呼吸显著加深,频率显著加快。 4、剪断一侧迷走神经

剪断一侧迷走神经后,呼吸深度与频率均变化不明显。５、剪断双侧迷走神经

剪断双侧迷走神经后,呼吸深度基本不变,呼吸频率大幅度减慢。四、讨论 1.通入ＣO2 CO2就是调节呼吸运动最主要得体液因素。当外周血液中CO2浓度适度增多时,呼吸表现为加深加快。CO2就是脂溶性小分子,能迅速透过血脑屏障进入脑脊液,与其中得水结合成碳酸,碳酸迅速解离出氢离子,从而以氢离子得形式刺激中枢化学感受器（分布在延髓腹外侧浅表区),兴奋呼吸。其次,一小部分ＣＯ2也能直接刺激外周化学感受器，兴奋呼吸。 2.通入N２通入Ｎ2后,因吸入气体中缺乏O2,动脉血中PO２下降,反射性使呼吸运动加深加快,肺通气量增加。并且轻度缺氧时,对外周化学感受器得兴奋作用强于对呼吸中枢得直接抑制作用,故表现为呼吸兴奋。 3.增大无效腔肺泡通气量=（潮气量-无效腔气量)*呼吸频率。增大无效腔时，肺泡通气量减少,故气体交换效率降低,导致血液缺氧与ＣO2增多,从而兴奋呼吸。 4.剪断一侧迷走神经

兔子实验报告

生理兔子实验报告主题：血压测量、呼吸运动调节实验班级：151541 实验小组：第三组实验日期：2016年5月31日具体分工：主刀：李睿哲副手：朱梦洁、周紫星麻醉：陈海芹、谢明思器械管理：李部实验数据记录整理：毕长鹏一、实验目的：通过对兔子的观察、研究和分析，更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程，更好地认识生物机体活动规律。二、实验原理：正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显着影响各组织、器官的正常活动。动脉血压是心血管功能活动的综合指标。通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化情况，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。呼吸运动能够有节律地进行，并与机体代谢水平相适

应，主要是由于体内外各种刺激，可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢，反射性地调节呼吸运动的结果。三、实验器材：实验动物：一只健康兔子（实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素? 实验设备：兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针四、实验步骤 1.实验仪器的准备首先打开计算机采集系统，通道1接通压力换能器，通道2接通呼吸流量换能器，从系统的“生理学实验”中找出“血压-呼吸的（学生)实验”，使显示器显示压力和呼吸的读数，并调节至合适比率。 2.连接压力传感器和液体传递系统用注射器向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的生理盐水，使之充满液体。 3.动物准备 1)术前准备

家兔气管插管实验

兔的固定方法背位固定用棉绳拉住兔的上门牙齿固定于手术台柱上。也可用兔头架，先将兔颈嵌入半圆形铁圈，再将兔嘴套入可调节铁环内。拧紧固定螺丝，再将长柄固定于手术台的定柱上（四）常用手术的基本操作 1.备皮（1）剪毛法：常用于急性实验。用一般弯剪刀贴皮肤依次将手术范围内的皮毛剪去。勿用手提起毛剪之，以免剪破皮肤。（2）拔毛法：适用于大、小白鼠和家兔耳缘静脉，以及后肢皮下静脉的注射、取血等。（3）剃毛法：用于大动物的慢性实验，用电剃刀顺着毛方向剃毛。（4）脱毛法：用于无菌手术野备皮。小动物脱毛，脱毛剂配方：硫化钠8g，淀粉7g，糖4g，甘油5g，硼酸1g，水75g，调成糊状。用法：先将手术野的毛剪短，后用棉球涂一薄层脱毛剂，2～3分钟后用温水洗净，擦干，涂一薄层油脂。鼠类亦可不用剪毛，直接涂脱毛剂。狗等大动物脱毛，配方：硫化碱10g，生石灰15g，加水至100ml 拌匀。用法：术者戴耐酸手套，用纱布涂之，使狗毛浸透，等2～3分钟后洗净擦干，涂一薄层油脂。注意切不可在脱毛前用水弄湿脱毛部位，以免脱毛剂渗入毛根造成炎症。 2.消毒常用于慢性实验，一般用3%碘酊和75%乙醇常规法消毒。（五）常用动物的给药方法及采血方法 1.常用动物的给药方法（1）淋巴囊内注射法常用于蟾蜍。注入药物易于吸收。方法为左手取动物，右手持注射器以150角斜挑刺入尾骨两侧皮下淋巴囊，缓慢推入，量宜小于，因动物皮薄，弹性差，拔针后应用棉球按压针孔片刻。（2）皮下注射法常用于鼠类、兔、猫、狗等。鼠类注射法为左手提起其头部皮肤，右手握注射器，以约15o角刺入皮下，缓缓注入药液，拔针后轻压针孔。小白鼠注入量应小于药液。大白鼠、豚鼠要用大号针头。鼠类亦可从背部皮下注射，但需两个人合作完成。兔、狗、猫常在背部或大腿内侧等皮下脂肪少的部位进行皮下注射，禽类常选翼下注射。

狗的解剖实验报告

狗的解剖实验报告篇一：解剖母鸡实验报告实验报告--母鸡的解剖试验时间：XX年12月7日一、解剖程序把鸡处死，方法：在鸡的颈部靠近头处开口放血致死，然后进行解剖观察二、观察内容（一）消化系统 1. 口腔：无软腭，无唇齿，有上下喙，舌形态与喙相似。 2.嗉囊：食管的膨大部，位于叉骨之前，直接在皮下，偏右 2. 腺胃：纺锤形，粘膜层有胃腺 3. 肌胃：紧接腺胃，近圆形，呈暗红色，粘膜面被覆的角质膜又称鸡内金 4. 十二指肠：位于腹腔右侧，前端与肌胃相接，灰白色，管状

5. 空肠：前接十二指肠，后接回肠，灰白色，管状 6. 回肠：前接空肠，后接结直肠，夹在两条盲肠之间，灰白色，管状 7. 直肠：管腔较大，自回盲口直达泄殖腔 8.盲肠：一对相对很长的盲肠，壁内有丰富的淋巴组织，基部处集成盲肠扁桃体 9.泄殖腔：是消化泌尿生殖系统后端共同通道，由前向后分为粪道泄殖道肛道 10.胰腺：夹在十二指肠肠袢之间，淡黄色，长条形 11. 肝：位于腹腔前下部，暗褐色，分左右两叶，右叶内侧有一绿色胆囊（二）呼吸系统 1.气管：较长而粗，半透明管状，位于皮下，偏右，进入胸腔在心基上方分为两个支气管 2. 鸣管：位于气管与支气管交叉处，分鸣骨和内外鸣膜，是发声器官 3. 肺：鲜红色，位于胸腔背侧，有很深的肋压迹。 4.气囊：肺内支气管粘膜突出形成，外被浆膜。

（三）心血管系统心脏：位于胸腔前下方，心基朝向前方，椎体形（四）生殖系统 1. 卵巢：位于左侧前半部的腹侧，上有大小不一的卵泡。 2. 输卵管：分为：漏斗部，壶腹部，峡部，子宫，阴道五部分壶腹部：受精部位壶腹部：卵白分泌部位峡部：形成卵壳膜子宫部：形成卵壳阴道部：在蛋壳外面形成一层角质薄膜（五）淋巴系统 1.腔上囊（法氏囊）：位于鸡的泄殖腔的背侧，是泄殖腔的一个盲囊 2.脾：位于腺胃和肌胃交界处背侧，深红色（六）泌尿系统

家兔呼吸运动神经的调节(实验报告)

家兔呼吸运动神经的调节【实验目的】 1.学习测定兔呼吸运动的方法。 2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。 3.学习哺乳类动物的手术操作，掌握气管插管和神经血管分离术 4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制 5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理【实验器材】 1.1 动物体重 2.5 kg家兔(rabbit)，雌雄不拘。 1.2 器材BL420E+生物信号处理系统，呼吸换能器（pressure-gradient transducer） 1.3 药品试剂20%乌来糖（urethane)，12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate)，5%碳酸氢钠（Sodium bicarbonate)，N2，CO2。【实验步骤】 1. 家兔称重，按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔，家兔麻醉后将其仰卧，固定四肢和头。 2. 颈部手术颈正中切口5～7 cm左右皮肤。用血管钳钝性分离出气管穿线备用，用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。 3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管，结扎固定。 4.将气管插管一端连接呼吸换能器。

5观察记录（observations) 1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量 2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化 3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液，注射速度5-6 ml/min，观察家兔呼吸运动的变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 4.. 按bm nnnBE×0.5×体重计算出50 g/L碳酸氢钠剂量，按4 ml/min速度静脉注射，观察呼吸变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 5. 记录切断一侧、两侧迷走神经前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 6. 记录用强度5 V、频率20 Hz、波宽2 ms的连续电脉冲刺激一侧迷走神经中枢端前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。【实验结果】图1.正常呼吸曲线

家兔缺氧实验报告

竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔缺氧实验报告篇一：家兔缺氧实验家兔低张性缺氧(hypotonichypoxiaofRabbit) [实验目的]：缺氧指组织供氧不足或用氧障碍，从而引起细胞代谢，功能以致形态结构发生异常变化的病理过程。缺氧分为低张性缺氧，血液性缺氧，循环性缺氧，组织性缺氧四种类型。本次实验通过复制低张性缺氧动物模型,观察急性缺氧过程中机体的代偿适应性变化,分析其发生机制。 [实验动物]：家兔 [实验药品及器材]： bL-410生物机能实验系统，动脉插管,气管插管,缺氧瓶,注射器,注射针头,动脉夹,常规手术器械,血气分析仪,针;1%普鲁卡因,钠石灰,肝素生理盐水。 [实验步骤]： 1.称重，全麻（3%戊巴比妥钠，1ml/kg）,固定，剪毛。 2.气管插管，颈总动脉插管，剑突连拉力换能器描记呼吸。

3.描记正常血压，呼吸（频率/节律），心率，口唇颜色。 4.将气管插管与缺氧瓶连接，记录缺氧开始后上述指标变化。〔实验结果〕血压心率呼吸频率呼吸幅度动脉血液颜色粘膜颜色正常缺氧5min 缺氧10min 缺氧20min 〔讨论〕： 1.缺氧早期，呼吸加深加快，心率加快，粘膜及血液颜色变化不大。机制如下：本实验中，家兔的呼吸仅与缺氧瓶相通，呼出的co2被钠石灰吸收，吸入气体的氧分压不断下降，最终导致pao2下降，当pao2＜60mmhg的时候，便可以引起如下变化：由于上述机体代偿性改变，pao2有所恢复，脱氧血红蛋白仍小于5g/dl，故不能出现发绀,血液及粘膜颜色无明显变化。 2．缺氧晚期：pao2越来越低，过低的pao2可抑制呼吸、心血管、神经等系统的功能。使机体处于失代偿状态，出现呼吸减慢或不规则，血压↓，心率↓此时pao2↓↓，cao2↓↓。脱氧血红蛋白可超过5g/dl,出现发绀（cyanosis）。

家兔实验性肺水肿实验报告

家兔实验性肺水肿实验实验名称：家兔急性肺水肿实验探讨实验目的：通过复制家兔实验性急性肺水肿，观察肺水肿的临床表现，分析肺水肿发病机制。实验原理：水肿是指组织间隙内的体液增多。肺间质有过量液体积聚和/或溢入肺泡腔内，称为肺水肿引起肺水肿最常见原因是左心室心力衰竭。水肿液积聚于肺泡腔内，使肺肿胀有弹性，质变实，重量比正常增加2~3倍。 1.毛细血管血压的增加或胶体渗透压的降低都能引起组织间液的增加和水肿的形成。 2.当淋巴管阻塞，淋巴液回流障碍时也会导致水肿 3.毛细血管和肺泡上皮通透性增高时，血浆白蛋白从毛细血管和微静脉壁滤出，于是毛细血管静脉端和微静脉内的胶体渗透压下降，组织液胶体渗透压上升，导致水肿。 4.肺系数=肺重量（g）/体重（kg）实验对象：家兔实验器材：家兔，体重2～3kg；兔手术台、实验动物常用手术器械一套、γ型气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器（1ml、5ml）及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、输液装置、血压计。实验试剂：25%乌拉坦、0.9%生理盐水、1%肝素生理盐水、1%肾上腺素溶液实验步骤： 1.麻醉动物：取家兔一只，称体重，用25%乌拉坦4ml/kg由兔外侧耳缘静脉缓慢注入，将动物麻醉后仰卧位固定于手术台 2.气管插管在气管上方做倒“T”型切口，注意先横剪一刀，再向上方剪开，将气管插管向心脏方向插入，用棉线结扎固定于“U”型管上 3.分离一侧颈总动脉与对侧颈总静脉：剪毛，切开颈部中正皮肤，钝性分离气管、一侧颈总动脉与对侧颈总静脉，各在其下穿线备用 4.动脉插管：结扎颈总动脉远心端，在其近心端夹动脉夹，在颈总动脉上用眼科剪剪一楔形小口，由此将充满肝素的细塑料管朝心脏方向插入血管，并用棉线结扎固定，打开动脉夹，记录血压 5.颈总静脉插管：分离颈总静脉1-2厘米，远心端用线打活结，在结扎处的近端用眼科剪剪一楔形小口，将输液管排空气后向心脏方向插入，此时打开输液器，如果有液体滴下，则表明插管成功，用棉线结扎固定

家兔血压实验报告

家兔血压实验报告文件排版存档编号：[UYTR-OUPT28-KBNTL98-UYNN208]

家兔血压实验报告家兔血压实验报告实验报告实验次序:一实验项目:家兔血压调节班级:11临本姓名:符宏展学号:112号实验类型: 二、实验操作原始记录及实验结果的分析实验时间:2016年4月11日马健明符宏展朱佛妹叶超群黄小花张鹏黄锦霞 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器, 由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器,生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素,肾上腺素,已酰胆碱【方法与步骤】 1、实验仪器的准备打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器

家兔呼吸运动的调节实验报告

家兔呼吸运动的调节一、实验目的 1.观察血液中化学因素（PCQ、PC2、［H+］）改变对家兔呼吸频率、节律、通气量的影响及机制。观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机制。 2.学习气管插管术和神经血管分离术。二、实验原理呼吸运动指在中枢神经系统控制下，通过呼吸肌节律性的运动造成胸廓节律性地扩大或缩小。呼吸运动除了受中枢神经系统控制外，一些理化因素（包括代谢产物、药物以及肺的扩大与缩小等）可通过如化学感受性呼吸反射、肺牵张反射直接或间接作用于中枢神经系统来调节呼吸运动,表现为呼吸运动及隔肌放电的频率与幅度等改变。化学因素（包括代谢产物、药物等）可直接作用于中枢或通过化学感受器作用于中枢后，再经传出神经纤维，如膈神经、肋间神经将控制信号传至呼吸肌，引起呼吸运动发生改变。肺牵张反射指肺扩张时引起吸气抑制的反射，其传入神经是迷走神经。三、实验结果 1.通入CQ2

克龟阴几CON产主气吸入CQ后呼吸明显加深，频率明显加快。 2.通入N2 訓节R 家免吸AN2.产生戏应后淳止谨气吸入N2后呼吸加深，频率加快，但其幅度较CC2小。 3.增大无效腔 =■: 二 I L -- - J el —lu i_L J. IV? 叮 t 一厂一，窜狂肯jf： *乌开辻

i pr ；"? 5_. 呼吸懊能關开口iSg 上5CkE 氏橡战g.产生MEi^T 增大无效腔后呼吸显著加深，频率显著加快。 4. 剪断一侧迷走神经 II 调节区雲断一侧述走押红剪断一侧迷走神经后，呼吸深度和频率均变化不明显。丄! 0 t — w f, 「 d J H —」」 —r 1 ! i| If 'f r ir - ? y ?■ |W j ■5^ 「厂ir i t JI 1 1 1 1 H 1； I II II 1 1 1 1 1 1 '1 1 j ( 1 '1 "n' 11 11 II J llf 丄上 J 'll 11 「'」 i 『

家兔基本手术操作实验报告

竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔基本手术操作实验报告篇一：家兔解剖实验一、实验目的 1.通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察，掌握哺乳类躯体轮廓、消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点 2.掌握哺乳纲动物的主要特征，理解其进步性特征 3.熟练解剖动物的方法二、实验原理将家兔处死是利用静脉注射空气致死：向静脉注射空气后，进入血液形成空气栓，空气栓随血流回流至右心室，然后被送到肺动脉，造成肺栓塞，大面积的肺栓塞使人体不能进行气体交换，发生严重的缺氧和二氧化碳储留，导致猝死。三、实验器材活家兔、解剖盘、酒精棉球、注射器、镊子、烧杯、手术刀、手术剪、骨钳、止血钳等四、实验步骤

1、外形观察，处死家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。肛门两侧各有一个无毛区，提起此处皮肤，开口，打开皮肤。取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。挣扎一会后死亡。 2、打开皮肤润湿腹部中间的毛，小心用剪刀从泄殖孔稍前方剖一横口，向上剪至颈部，用手术刀使皮肤和肌肉分离，将剥下的皮肤向左右尽可能拉开露出腹部。 3、开腹腔：原位观察膈、胰腺、肝脏、各系统观察，肾脏冠切从泄殖孔的切口处沿腹中线同样左右割开腹壁至胸骨剑突处，暴露腹腔。先观察各器官的自然位置。可观察到：胰腺：分散附着于（十二指肠）弯曲处的肠系膜上，为粉红色、分布零散而不规则的腺体。胃：囊状，横卧于膈肌后面，入口称喷门，出口称幽门。小肠：肠管长而细，分为十二指肠、空肠和回肠三段。十二指肠呈“u”形，空肠和回肠界限不易区分。

小鼠解剖实验报告(干货)

小鼠解剖实验报告°实验五:小鼠解剖实验吴雪薇 1２11４0０59 一、实验目的 1、通过实验学习给小鼠注射、灌胃等技术操作 2、了解戊巴比妥对哺乳动物的影响 3、复习解剖的基本操作 4、通过实验了解小鼠唾液腺的结构 5、通过实验了解小鼠体内器官、系统构造二、实验原理 1、小鼠唾液腺唾液腺由颌下腺、腮腺、舌下腺组成,颌下腺最明显，颌下腺两边弥散的是腮腺，舌下腺连于颌下腺上，容易与颌下腺上连的淋巴结搞混。 2、会厌软骨会厌软骨即构成会厌的软骨，形状扁平，像树叶,下部附着在喉结的内壁上。会厌是喉头上前部的树叶状结构,由会厌软骨和黏膜构成。呼吸或说话时，会厌向上，使喉腔开放；咽东西时，会厌向下，盖住气管，使东西不至进入气管内。 3、小鼠体内结构

（1）胸腔：胸腔内的结构主要有食道、心、肺。（2）腹腔：主要有胃、肝、胆、胰、脾、肠、肾（包括肾上腺）、输尿管、膀胱和生殖器官:卵巢、输卵管、子宫(雌），睾丸、附睾、精囊腺、输精管（雄）。（3）胸腔与腹腔由膈膜隔开。三、实验器材注射器、烧杯、灌胃针、解剖盘、解剖剪刀、镊子、解剖针、钉子四、实验材料小鼠1只、戊巴比妥溶液五、实验操作 1、抓取一只小鼠，拎住尾巴根部，使其前肢抓在抹布上，后肢提起,用注射器向其腹腔注射0。５ml戊巴比妥溶液。 2、将小鼠放在烧杯中，观察它的反应. 3、待小鼠不再动时，用注射器向其腹腔再注射0．5ｍｌ戊巴比妥溶液,使其死亡. 4、将小鼠放在解剖盘上，用大头针将四肢固定在解剖盘上。 5、用解剖剪刀，从靠近肛门处剪开表皮直至口腔,观察唾液腺。

6、剪开口腔，观察会厌软骨。 7、剪开腹腔和胸腔，观察小鼠体内结构. 8、处理小鼠,清洗、整理实验器材。六、实验结果 1、观察注射戊巴比妥溶液后的小鼠本次实验第一次注射，注射了0．4ｍl的戊巴比妥溶液，第二次注射了0.6mｌ。小鼠先是身体颤抖,趴在烧杯底不怎么动，后开始出现用爪子挠脸的行为,然后开始乱动甚至依靠烧杯壁直立起来，最后倒下，身体仍在颤抖且较剧烈,在大约两分半后不怎么动了，但身体还在颤抖。 2、观察唾液腺

家兔气管插管实验

兔的固定方法背位固定用棉绳拉住兔的上门牙齿固定于手术台柱上。也可用兔头架，先将兔颈嵌入半圆形铁圈，再将兔嘴套入可调节铁环内。拧紧固定螺丝，再将长柄固定于手术台的定柱上（四）常用手术的基本操作 1. 备皮（1）剪毛法：常用于急性实验。用一般弯剪刀贴皮肤依次将手术范围内的皮毛剪去。勿用手提起毛剪之，以免剪破皮肤。（2）拔毛法：适用于大、小白鼠和家兔耳缘静脉，以及后肢皮下静脉的注射、取血等。（3）剃毛法：用于大动物的慢性实验，用电剃刀顺着毛方向剃毛。（4）脱毛法：用于无菌手术野备皮。小动物脱毛，脱毛剂配方：硫化钠8g,淀粉7g,糖4g,甘油5g,硼酸Ig,水75g,调成糊状。用法：先将手术野的毛剪短，后用棉球涂一薄层脱毛剂，2?3分钟后用温水洗净，擦干，涂一薄层油脂。鼠类亦可不用剪毛，直接涂脱毛剂。狗等大动物脱毛，配方：硫化碱IOg,生石灰15g,加水至100ml 拌匀。用法：术者戴耐酸手套，用纱布涂之，使狗毛浸透，等2?3 分钟后洗净擦干，涂一薄层油脂。注意切不可在脱毛前用水弄湿脱毛部位，以免脱毛剂渗入毛根造成炎症。 2. 消毒常用于慢性实验，一般用3%碘酊和75%乙醇常规法消毒。（五）常用动物的给药方法及采血方法 1.常用动物的给药方法（1 ）淋巴囊内注射法常用于蟾蜍。注入药物易于吸收。方法为左手取动物，右手持注射器以150角斜挑刺入尾骨两侧皮下淋巴囊，缓慢推入，量宜小于0.5ml ，因动物皮薄，弹性差，拔针后应用棉球按压针孔片刻。（2）皮下注射法常用于鼠类、兔、猫、狗等。鼠类注射法为左手提起其头部皮肤，右手握注射器，以约15o角刺入皮下，缓缓注入药液，拔针后轻压针孔。小白鼠注入量应小于0.4ml 药液。大白鼠、豚鼠要用大号针头。鼠类亦可从背部皮下注射，但需两个人合作完成。兔、狗、猫常在背部或大腿内侧等皮下脂肪少的部位进行皮下注射，禽类常选翼下注射。

羊解剖实验报告.doc

羊解剖实验报告一、实验名称：羊的解剖二、报告人:张向阳化柯发三、试验时间：20XX年月27日四、实验地点：牧医楼一楼操作：张向阳化柯发五、老师：张书松六、使用器械：镊子（带齿）、手术刀、手术剪刀、骨钳、止血钳七、解剖程序：首先把羊处死，处死方法：在羊的颈静脉沟处开口，在颈静脉沟深处找到颈总动脉，在颈总动脉上开口放血，使羊致死；然后进行解剖观察八、观察内容： 1. 肩带肌：躯干与前肢连接的肌肉，大多为板状肌，起于躯干止于前肢的肩胛骨和肱骨 2. 斜方肌：扁平的三角形肌，位于肩颈上半部的浅层，其作用是提举、摆动和固定肩胛骨 3. 菱形肌：在斜方肌和肩胛软骨的深面，起点同斜方肌，止于肩胛软骨的内侧面。起作用为向前上方提举肩胛骨 4. 背阔肌：位于胸侧壁的上部，三角形大板状肌 5. 臂头肌：位于颈侧部浅层，长而宽的带状，起于枕骨、颞骨和下颌骨，止于肱骨嵴；作用：牵引前肢向前，伸肩关节，提举侧偏头颈 6. 肩胛横突肌：呈薄带状，起于环锥翼，止于肩峰部的筋膜

7. 腹侧锯肌：大型的扇形状，下缘呈锯齿状，位于颈、胸部的外侧面 8. 膈：位于胸、腹腔之间，呈圆顶状突向胸腔，上面有3个孔： ①主动脉裂孔②食管裂孔③腔静脉孔 9. 腹外斜肌：为腹壁肌的最外层，以肌齿起于第5至最后肋骨的外面 10. 腹内斜肌：位于腹外斜肌深层，肌纤维向前方，起于髋结节，止于腹白线，呈扇形向下方扩展 11. 臀股二头肌：长而宽，位臀股部的外侧。起点分为两头椎骨头起于荐骨和荐结节阔韧带；坐骨头起于坐骨结节，下方有坐骨神经. 肋间外肌：位于肋间隙的浅层，起于前一肋骨的后缘，肌纤维斜向后下方，止于后一肋骨的前缘。作用向后方牵引肋骨，使胸廓扩大，引起吸气。 13. 肋间内肌：位于肋间外肌的深层。起于后一肋骨的前缘，肌纤维斜向前下，止于前一肋骨的后缘。作用:向后方牵引肋骨,使胸廓变小,帮助呼气. 14. 胃：羊的胃为复胃，分为： ① 瘤胃：最大，约占4个胃总容积的80%，呈椭圆形 ② 网胃：4个胃中最小，呈梨形 ③ 瓣胃：约占4个胃的7%或8%，呈两侧稍扁的圆球形 ④ 皱胃：约占4个胃的8%到7%，呈一端粗一端细的弯曲长囊其中瘤胃、网胃、瓣胃称前胃，内无腺体；皱胃称为真胃，内有腺体

家兔血压实验报告

竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔血压实验报告篇一：4.兔血压实验报告实验题目：传出神经系统药物对家兔心血管系统的影响班级：12级临七3班姓名：廖梦宇学号：20XX021320 一、实验原理： 1.传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受体而产生心血管效应，导致血压变化。 2.本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化，分析肾上腺素受体激动剂与拮抗剂之间的相互作用。二、实验目的： 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率的影响三、实验步骤： 1.麻醉：取家兔，称重，用25%乌拉坦麻醉,4ml/kg,耳缘静脉注射； 2.备皮：麻醉后，将家兔仰位固定于手术台上，剪去颈

部的毛，正中切开颈部皮肤； 3.气管插管：分离气管，在气管上作一倒“T”型切口，插入气管插管并以粗线固定。 4.动脉插管：自气管左侧分离颈总动脉1.5到2cm，动脉下穿两根丝线。结扎远心端，近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后，插入颈总动脉，并用手术线固定。松开动脉夹。 5.记录血压：将压力传感器连接于主机前面板的1通道，打开bL-410生物机能实验系统，将1通道设置成血压和心电，点击开始记录血压。 6.稳定5~10min，记录正常血压和心率。 7.给药：按下列顺序静脉给药肾上腺素0.2ml/kg,10min 去甲肾上腺素0.2ml/kg,10min 异丙肾上腺素0.2ml/kg,10min 8.给药：按下列顺序静脉给药酚妥拉明0.2ml/kg,5min 肾上腺素0.2ml/kg,5min 去甲肾上腺素0.2ml/kg,5min 异丙肾上腺素0.2ml/kg,10min 9.给药：按下列顺序静脉给药

家兔基础实验操作及注意事项总结

家兔基础实验操作及注意事项总结文件编码（GHTU-UITID-GGBKT-POIU-WUUI-8968）

【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。注：本实验所用麻醉药——乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。【注意事项】1. 进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺； 2.可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作； 3. 静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。在注射麻醉药物时，可先用麻醉药物总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射，以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡； 4.实验动物的固定【实验方法】将动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部伸直，口腔与气管成一直线，保持气管畅通。用粗麻绳打类蝴蝶结固定家兔四肢，用棉麻线套住家兔上切牙固定在兔台头端，使家兔四肢和头部伸展并固定。

家兔动脉血压的神经体液调节实验报告

家兔动脉血压的神经体液调节实验报告 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称。 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg时既可关闭三通管。观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的