实验动物学——参考文献-附录
主要参考文献
1.李厚达. 实验动物学. 北京:中国农业科学出版社.2003
2.贺争鸣.李冠明.动物实验替代方法概论.北京:学苑出版社.2003
3.孙敬方.动物实验方法学.北京:人民卫生出版社.2001
4. 钟品仁.哺乳类实验动物.北京:人民卫生出版社.1983
5.魏泓.医学实验动物学.成都:四川科学技术出版社.1998
6.邵义祥.医学实验动物学教程.南京: 东南大学出版社.2003
7.中华人民共和国国家科学技术委员会发布.实验动物管理条例.1988
8.北京市人大委员会.北京市实验动物管理条例.2004
9.孙靖.实验动物学基础.北京科学技术出版社.2005
10.Jann Hau and Gerald L.Van Hoosier Jr. Handbook of Laboratory Animal Science.(Second Edition).Boca Raton:CRC PRESS.2002
11.王建飞,陈筱侠. 实验动物饲养管理和使用手册.上海：上海科学技术出版社.1998
12.Michael F.W.Festing, Philip Overend, Rose Gaines Das, Mario Cortina Borja and Manuel Berdoy. The design of Animal Experiments.Oxfordshire: The Royal Society of medicine Press Limited 2000
13.霍金龙，张娟，罗古月，张美，李小梅，曾养志. 近交系实验动物在生物医学等领域中的研究和应用. 动物医学进展.2003，20（12）：59-60
14.郑继奎，岳秉飞. 日本动物实验替代法研究.中国比较医学杂志.2005，15（3）：193-194
15.贺争鸣，李冠民，岳秉飞，张宝旭，赵德明.我国动物实验替代方法研究工作的现状与发展. 实验动物科学与管理.2003,（增刊）53-55
16. Nadia Belmatoug, Bruno Fantin. Contribution of animal models of infection for the evaluation of the activityof antimicrobial agents, International Journal of Antimicrobial Agents 1997(9):73-82
17.Jan Buer, Rudi Balling. Mice, Microbes and Models of Infection ,Nature Reviews, 2003(40):195-205
18 Trevor Poole, Pauline English. The UFAW Handbook on the care and management of Laboratory Animals. Seventh Edition. Lodon:Blackwell Science Ltd .1999
19.石岩，梅世昌.医学动物实验实用手册．中国农业出版社.2002
20.Jones J.C.主编.程鸿 主译.人类疾病动物模型.上海医科大学出版社.1989
21.朱愉.实验动物的疾病模型.天津科技翻译出版公司.1997
22.刘福英, 吕占军. 实验动物学．北京: 中国农业科技出版社，1997
23.中华人民共和国卫生部. 微生物和生物医学实验室生物安全通用准则（WS 233-2002），2003
24. WHO. 实验室生物安全手册第二版（修订版），2003
25.军事医学科学院实验动物中心译.加拿大动物管理委员会编. 实验用动物管理与使用指南.原子能出版社.1993
26.国家医药管理局实验动物管理委员会.医药实验动物简明教程.北京: 中国医药科技出版社，1996
27.卢耀增.实验动物学.北京:北京医科大学 中国协和医科大学联合出版
社.1996
28.中华人民共和国国家标准 中国标准出版社 2001年
实验动物 环境及设施 GB 14925-2001
实验动物 哺乳类实验动物的遗传质量控制 GB 14923-2001
实验动物 近交系小鼠、大鼠生化标记检测法 GB 14927-2001
实验动物 微生物学等级及监测 GB 14922.2-2001
实验动物 寄生虫学等级及监测 GB 14922.1-2001
实验动物 配合饲料通用质量标准 GB 14924.1-2001
附录一中英文专业对照
A
AALAC (Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care) 国际实验动物评估和认可管理委员会
AALAS (American Association for Laboratory Animal Science) 美国实验动物学会AAALAC (American Association for Accreditation of Laboratory Animal Care)
美国实验动物饲养管理认可委员会
ABSL (Animal Biosafety Levels) 动物生物安全级别
Adjuvant 佐剂
AFSTAL (French Association of Laboratory Animal Sciences and Techniques) 法国实验动物科学和技术协会
Air cleanliness level空气洁净度
Allergy (to animals) 过敏
Alternatives 替代
Anesthesia 麻醉
Animal Experiment Technique动物实验技术
Animal Research Ethics动物实验伦理学
Antibody production 产生抗体
ANZCCART (Australian and New Zealand Council for the Care of Animals in Research and Teaching) 澳大利亚和新西兰研究、教学用动物管理委员会ANZLAS (Australian and New Zealand Society for Laboratory Animal Science) 澳大利亚和新西兰实验动物管理委员会
ASLAP (American Society of Laboratory Animal Practitioners) 美国实验动物临床学会。
Autoclave 高压锅
B
Barrier Facility 屏障设施
Beagle dog比格犬
Bedding垫料
Biological safety cabinet 生物安全柜
biological species生物学种（
Biohazard containment有害生物污染
Biosteel 生物钢
C
CAAT (Center for Alternatives to Animal Testing) 动物替代测试研究中心
Cage 笼具
Chance mating system 随选交配法
CALAM (Canadian Association for Laboratory Animal Medicine)加拿大实验动物医学委员会
CALAS /ACSAL (Canadian Association for Laboratory Animal Science) 加拿大实验动物科学委员会
CALAS (Chinese Society for Laboratory Animal Science) 中国实验动物学会Carbohydrates 碳水化合物
Cardiac assessment 心功能测定
Cardiovascular assessment 心血管测定
Catheter 插管
CCAC/CCPA (Canadian Council on Animal Care) 加拿大动物管理委员会Chimetric mice嵌合体小鼠
Chinese hamster中国地鼠
Chimpanzee Hepatitis Research 灵长类肝炎研究
clean animal清洁动物
clone animals克隆动物
Closed colony封闭群
Coisogenic inbred strain 同源突变近交系
Comparative medicine比较医学
Confocal microscopy 激光共聚焦
Congenic inbred strain 同源导入近交系
Convention for the Protection of Veterbrate Animals used for Experimental and other Scientific Purposes 保护脊椎动物用于科学实验和其它科学研究目的协议Conventional animal普通动物
Containment housing圈养
Cross-intercross杂交-互交
D
Design 设计
Dog 犬
Dystress 除应激
Dystrophia muscularis肌萎缩症
Donor strain供系
E
Ear punch 耳号
ECLAM (European College of Laboratory Animal Medicine) 欧洲实验动物医学院ECV AM (European Centre for the Validation of Alternative Methods) 欧洲替代方法验证中心
Egg yolk IgY 卵黄囊IgY
Electrocardiogram 心电图
Electroencephalogram 脑电图
Embryonic Stem (EC) Cell 胚胎干细胞
Embryo transfer 胚胎抑制
ESLA V (European Society of Laboratory Animal Veterinarians) 欧洲实验动物兽医学会
Ethical theory 伦理
Euthanasia 安乐死
Experimental Procedure实验程序
F
F1-hybrid F1代杂交
Face mask 面具
Feces collection收集粪便
FELASA (Federation of European Laboratory Animal Science Organizations) 欧洲实验动物科学组织联盟
Ferret 雪貂
FESSACAL (Federation of South American Societies and Associations of Laboratory Animal Science Specialists) 南美洲实验动物科学学会联盟
FinLAS (Finland Laboratory Animal Science) 芬兰实验动物科学
Five Freedoms 五项自由
FRAME (Fund for the Replacement of Animals in Medical Research)医学实验动物替代研究基金
Foundation stock基础群
Freund,s adjuvant 弗氏佐剂
Fruit fly 果蝇
Fungi真菌
G
Gas anesthesia 气体麻醉
Gene farming 基因农场
Genetic Defined Animal遗传限定的动物
Genetically engineered mouse 遗传工程小鼠
Genetic fingerprint遗传指纹图
Genetically heterogeneous stocks 遗传变异群
Germ free animal 无菌动物
GLP (Good Laboratory Practice) 良好实验室操作规范
Gnotobiotic animal 悉生动物
Golden hamster金黄地鼠
Guinea pig 豚鼠
GV-SOLAS (German Society for Laboratory Animal Science) 德国实验动物学会
H
Halothane 氟烷
Hamster 仓鼠（地鼠）
HEPA (High-Efficiency Particulate Air) filtration 高效过滤膜
Hepatitis 肝炎
HSUS (Humane Society of Biomedical and Laboratory Animal Science) 生物医学和实验动物科学人性化学会
Humane endpoint人性化终点
Humane killing 人性化处死
Hybrid strain杂交群
Hypnotics 催眠
I
Laboratory Animal Science实验动物科学
IACUC (Institutional Animal Care and Use Committee )研究机构实验动物饲养管理和使用委员会
IAT (Institute of Animal Technology) 动物实验技术研究所
ICLAS (International Council for Laboratory Animal Science) 国际实验动物科学委员会
ICCV AM (Interagency Coordinating Committee on the Validation of Alternative Methods) 替代方法认证协调委员会
ILAR (Institute for Laboratory Animal Research) 实验动物研究所
Immunization Protocol 免疫程序
Immunofluorescence Flow Cytometry 免疫荧光流式细胞计数Immunomodulation 免疫调节
Inbred strains近交品种
Inbreeding coefficient近交系数
Inhalation 吸入
Injection 注射
International Committee on Standardized Genetic Nomenclature for Mice国际标准化遗传命名委员会
InterNICHE (International Network for Humane Education )国际人性化教育网络Intrabronchial instillation 气管内吸入
In Vitro assays 活体试验
In Vitro research 活体研究
ISCOM (Immunostimulatory Complexes) 免疫刺激复合物
ISO (International Organization for Standardization)国际标准组织
Isogenic strains 同源突变近交系
Isolators 隔离器
IVC (Individually Ventilated Cage) systems 独立通风笼具系统
J
JZLAS (Japanese Association for Laboratory Animal Science) 日本实验科学学会JCLAM (Japanese Association for Laboratory Animal Medicine) 日本实验动物医学学会
K
Knockout mouse基因敲除小鼠
Koch 库彻
L
LAMA (Laboratory Animal Management Association) 实验动物管理协会
LASA (Laboratory Animal Science Association) 实验动物科学学会
LAWTE (Laboratory Animal Welfare Training Exchange) 实验动物福利培训交流协会
Lidocaine 利多卡因
Limulus assay，LAL test鲎试验
M
Maximum avoidance of inbreeding system最佳避免近交法
Microbiological eradication methods 微生物杀灭法
Microchip (marking) 微芯片
Microsatellite markers 微卫星标记
Molecular farming 分子农场
Morphological species形态学种
Monophosphoryl lipid A 单磷酰酯A
MRI (Magnetic Resonance Imaging) 核磁共振图象
N
Necropsy 坏死
NIH (National Institutes of Health) 国家卫生研究所
Nitrous oxide 二氧化氮
Nonhuman primate 非人灵长类
NSAID (Nonsteroidal anti-inflammatory drugs) 非固醇类抗炎症药物
NVP (Dutch Association for Laboratory Animal Science)荷兰实验动物科学学会
O
Obesity 肥胖
OECD (Organization for Economic Cooperation and Development) 紧急合作和发展组织
OLAW (PHS) (Office of Laboratory Animal Welfare) 实验动物福利办公室Outbred stocks 远交系（群）
P
Pedigree expansion stock血缘扩大群
Primate 非人灵长类
Passenger gene乘客基因
Partner strain配系
Pedigree expansion stock血缘扩大群
Phenotyping 表现型
Polyclonal antibody 多克隆抗体
Polymerase chain reaction，PCR多聚酶链反应技术
Postmortem 死后变化
Primate 灵长类
production stock 生产群
Progenitor strains祖系
Progenomics 蛋白基因组学
Purified diets 纯合日粮
Q
Quarantine 隔离
R
Recombinant Congenic strains重组同源系
Recombinant Inbred Strains 重组近交系
Reproductive barrier生殖屏障
Reptiles 爬行类
RFLP（Restriction fragment length polymorphism）限制性片断长度多态性Robert Koch 罗伯特库彻
Rodents 啮齿动物
Rotational mating system 循环交配法
RSPCA (Royal Society for the Prevention of Cruelty to Animals) 皇家反虐待学会
S
Segregation inbred strain分离近交系
SPF (Specified Pathogen Free) 无特殊病原
Staples 主要成分
Stock，breed) 品种
Subline 支系
Supreovulation超级排卵
Sterilization 消毒
T
Tasonomic species分类学种
Traffic-light system交通信号灯方式
Transgenic animal转基因动物
Three Rs 3R
Tranquilizers 镇定
Tumor assessment 肿瘤评价
U
UFAW (Universities Federation for Animal Welfare) 动物福利大学
V
Ventilation 通风
Vermin control 体外寄生虫控制
V olatile anesthetics 吸入麻醉
X
Xenopus有爪蟾蜍
W
Welfare (animal)
WHO (World Health Organization) 3
Z
Zebrafish 斑马鱼
附录二 国内外实验动物网站
一．国际实验动物组织机构网站：
国际实验动物科学协会（ICLAS, International Council for Laboratory Animal Science ）
http:// https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,
国际实验动物评估和认可管理委员会(AAALAC, Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care Internation)
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,
实验动物管理协会(LAMA, Laboratory Animal Management Association)
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/lama
欧洲实验动物科学委员会联盟(FELASA, federation of European Laboratory Animal Science Associations)
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,
澳大利亚和新西兰研究、教学用动物管理委员会(ANZCCART, Australian and New Zealand Council for the Care of Animals in Research and Teaching)
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,.au/ANZCCART/
加拿大动物管理委员会(CCAC, Canadian Council on Animal Care)
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,ac.ca
英国实验动物科学协会(LASA, The laboratory Animal Science Association of the United Kingdom)
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,
日本实验动物医学委员会(JALAM, Japanese Association for Laboratory Animal Medicine)
hayato.med.osak-u.ac.jp/index/societies/jalam.html
日本实验动物医学学院（JCLAM, Japanese College of laboratory Animal Medicine）hayato.med.osak-u.ac.jp/index/societies/jalam.html
中国境内研究机构：
中国实验动物学会（CALAS，Chiness Association for Laboratory Animal Science）https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,
中国药品生物制品研究所
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,
广东省实验动物信息网
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,
北京市实验动物管理办公室
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
中国医学科学院实验动物研究所
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,
国家啮齿类实验动物种子中心上海分中心
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,
二．著名实验研发机构：
杰克逊实验室(Jax, The Jackson Laboratory)
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,
美国查士利实验室( Charles River Laboratories)
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,
丹麦葛廷根小型猪
www.minipigs.dk
美国Mattek公司
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,
法国Skinethic公司
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,
三．3R研究网站和动物福利：
减少
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/publications/ECV AM/ecvam29.htm
优化
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/Animal_Alternatives/REFINE.htm
代替
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
医学实验中动物替代基金会(Frame Fund for the Replacement of Animals in Medical Experiments)
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
皇家反蔑待动物学会
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
动物福利大学联合会(UFAW The Universities federation for Animal Welfare)
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
实验动物福利培训交流(LAWTE,Laboratory Animal Welfare training Exchange) http:// https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,
四．实验动物在科学研究争论
研究防卫社团
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
英国生命科学委员会（动物科学组织）
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/asg/default.htm
医学研究用动物信息中心
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/asg/default.htm
五．反活体解剖动物组织、极端组织和团体：
声援动物组织https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
英国废除活体解剖联盟
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
国家反活体解剖社团
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
动物解放阵线
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
六．信息服务组织结构：
实验动物资源研究所(ILAR, Institute for Laboratory Animal Research) https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/cls/ilarhome.nsf
动物福利信息中心（AWIC）
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/awic/
动物替代检测研究中心（CAAT）
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
实验动物技术研究所（IAT）
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
实验动物科学学会（LASA）
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
实验动物兽医学会
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
七．生物医学研究中人性化动物处死终点：
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/endpoints1.html
八．实验动物应用：
鼠类目录大全
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/wmc/
啮齿类生理学
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
基因敲除数据库
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/knockout/knochome.htm
小鼠、大鼠品种
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/external/festing/search_form.cgi
大鼠解剖进展
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/~rirwin/RatAnat.htm
转基因和目的基因突变信息
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
英国医药工业协会（ABPI）
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
葛兰素史密斯在线
https://www.360docs.net/doc/ed3307305.html,/
实验动物学实验报告
实验动物学实验报告 一、实验动物：小鼠 二、操作流程：抓取，固定，编号，给药，取血，麻醉，绝育，解剖。 三、具体操作 1、抓取：抓取小鼠时，右手抓住小鼠尾巴，不要过于用力，以免惊吓小鼠。左手从小鼠身体后部向前抓（以免小鼠向后缩咬伤自己），抓住小鼠颈部。固定住小鼠后，将小鼠皮肤往上抓，尽量将小鼠背部皮肤抓住。左手将小鼠腹部朝向自己，把小鼠尾巴用左手无名指和小指夹住，这时小鼠腹部皮肤紧绷，不能动弹。 2、固定：通常使用固定器进行固定。将固定器拧开后，抓住小鼠尾巴，使其钻入固定器中，再将拧下的固定器部分装好，使小鼠尾部露出，再将可旋转的铁片固定住即可进行后续实验。 3、编号：编号方式有两种：①剪脚趾编号：把小鼠腹面朝上，在下的脚趾从左至右依次编为1~10号，剪10号脚趾加1~9号脚趾依次编为11~19号，在上的脚趾依次编为20,30,40,50,60,70,80,90号，其余编号与11~19号类似。②打耳钉编号：耳钉上均有唯一编号，通过使用耳钉钳将耳钉打在小鼠耳朵上即可。实验时通常使用的是第一种方式进行编号，第二种编号通常用于需要长距离运输的动物。 4、给药：常用的给药方式有： ①口服给药：即灌胃。将注射器装入药物溶液，装上灌胃针（灌胃针有直头和弯头两种，区别不大）。如上所述，抓取小鼠后，使其头部朝上，尽量呈一直线，取灌胃针，从小鼠嘴角一侧缓缓插入（保持刻度在自己能看到的位置），顺着小鼠口腔食道的弧度让小鼠将针咽入，灌胃过程中如果遇到阻碍一定要及时拔出灌胃针，不可强行灌胃以免伤及小鼠食道以及肺部。灌胃针顺利进入后基本与小鼠身体呈一条直线，注入适量体积后再顺着食道缓缓取出灌胃针。 ②静脉注射：小鼠尾部有3条静脉和1条动脉，3条静脉非别位于背部，及两侧。静脉注射时一般选取两侧静脉，因为其相对于背部静脉更为清晰饱满。将小鼠固定后，用酒精擦拭其尾部静脉，使其充血，以便注射。之后使注射器针孔处朝上，针与尾部呈约30°扎入尾部后向上轻挑，再向内扎入部分，此过程应该比较顺畅，没有阻碍，若阻碍较大则有可能扎入到了皮肤中。扎入后将活塞向后回抽一点可见到有血回流，则说明成功扎入静脉当中，注射适当体积后迅速拔针，用酒精进行消毒。 5、取血：有断尾取血法和眼眶取血法两种。本次实验使用的是眼眶取血法。抓取小鼠，固定其头部用手指将其上下眼睑分开，露出其眼球并且不能闭上。用玻璃毛细管从其上眼角处扎入眼球后方毛细血管从，使血液顺着毛细管留下，取血完成后快速将毛细管取下。 6、麻醉：抓取老鼠，使其头部朝下，使其腹部脏器向胸腔靠拢，露出腹部空腔，以免刺伤脏器。将注射器竖直扎入靠近后腿部腹腔，刺入之后稍微向前倾斜但不要向前刺入，一般注入0.5mL麻醉剂即可。随后拔出针，方向小鼠，等待几分钟后即可麻醉。 7、绝育：绝育手术是通过剪除雌鼠卵巢或雄鼠输精管来实现的。将麻醉的雌鼠背面朝上，从其胸腔和尾部之间向下三分之一处剪开一个小口，用镊子将其卵巢取出，上面呈现红色斑点的部分即为卵巢，用剪刀将这一部分剪除，然后用缝合针线将其缝合，缝合方法为将针穿过后，将线缠绕镊子两圈再逆时针缠绕两
北医实验动物学名词解释和简答题整理
北医实验动物学名词解释和简答题整理
————————————————————————————————作者: ————————————————————————————————日期： ?
实验动物学 2017．11.10 LHQ 一、名词解释 Chapteｒ1 绪论 1.实验动物(lａboratoｒｙ aｎimals） 实验动物是指经人工饲育，对其携带的微生物和寄生虫实行控制，遗传背景明确或者来源清楚的，用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的动物。 2.实验用动物 泛指用于各类实验的所有动物,即用于实验的动物（anｉmal ｆｏr reｓear ｃｈ)。包括实验动物、经济动物、野生动物和其他动物。 3.实验终点 发生在达到科学目标和目的后。 4.仁慈终点 是指实验中动物的疼痛或不适得到阻止、终止或缓解。 Chaptｅr ２遗传和微生物 1.近交系(ｉｎｂrｅd sｔraiｎ） 在一个动物群体中,任何个体基因组中９9%以上的等位位点为纯合时定义为近交系。经典近交系经至少连续20代的全同胞兄妹交配（或亲代与子代交配)培育而成，近交系数大于99％,品系内所有个体都可追溯到起源于第２０代或以后代数的一对共同祖先。 2.近交系数 群体中某个体通过遗传携带两个同源等位基因的概率。 3.亚系 是育成的近交系在培育过程中,由于杂合子基因的分离、基因突变的产生以及抽样误差导致部分遗传组成改变而形成遗传差异的近交系动物群。 4.封闭群（closed colonｙ) 以非近亲交配方式进行繁殖生产的一个种群,在不从外部引入新血缘的条件下,至少连续繁殖4代以上称封闭群动物。
医学实验动物学考试重点总结
名词解释：实验动物（laboratory animal）：指经人工培育，对其携带的微生物、寄生虫进行严格控制，遗传背景明确，可用于科学实验、药品、生物制品的生产和检定及其它科学研究的动物。 实验用动物：是指一切用于实验的动物，除了符合严格要求的实验动物外，还包括家畜和野生动物等。 实验动物与实验用动物：遗传控制不同,微生物控制等级不同,培育的形质和目标不同。 人类疾病的动物模型：是指医学研究中建立的具有人类疾病模拟表现的动物实验对象和相关材料。 实验动物标准化：遗传质量标准化微生物质量标准化环境标准化营养标准化 按遗传控制标准，实验动物分为：近交系（CH3），突变系（裸鼠），杂交系（F1），封闭群（远交系）（KM小鼠，wister大鼠） 按基因型分：1、同基因型动物（如近交系、F1代） 2、不同基因型动物（如封闭群） 按微生物控制程度分级：普通级，清洁级，SPF级，无菌级（2001年版的国家标准中，大小鼠取消普通级动物，犬、猴只分普通级和SPF级，豚鼠、地鼠和兔仍然分4级） SPF动物定义：除清洁动物应排除的病原外，不携带主要潜在感染或条件致病和对科学实验干扰大的病原。（屏障环境中饲养，种子群来源于无菌动物或剖腹产动物。饲养管理同清洁动物） 无菌动物的特点：形态学及生理学特点： ①形态学：盲肠肥大（增大5～6倍），肠壁薄，易发肠扭转。心脏、肝脏、脾脏相对较小。 ②生理学: 血中无抗体，巨噬细胞吞噬能力弱。体内不能合成维生素B和K。无菌鸡生长较快、无菌豚鼠和无菌兔生长较慢。无菌大小鼠与普通大小鼠生长速度相同。
（3)饲养要求：隔离环境中饲养，种子群来源于剖腹产动物或无菌卵的孵化。由于肠道无菌，饲养困难，应注意添加各种维生素。每2～4周检查一次动物的生活环境和粪便标本。 悉生动物：概念：悉生动物是指在无菌动物体内植入已知微生物的动物。又称已知菌动物。植入一种细菌的动物叫单菌动物；植入两种细菌的动物叫双菌动物；植入三种细菌的动物叫三菌动物；植入多种细菌的动物叫多菌动物。（由于肠道接种有利于消化吸收的细菌，故饲养较无菌动物容易，形态学和生理学方面与普通动物无异。） 近交系：经至少连续20代的全同胞兄妹交配培育而成，品系内所有个体都可追溯到起源于第20代或以后代数的一对共同祖先。 特点： 1、其基因纯合度达到98.6%，个体差异小，似同卵双生反应一致重复性好，用少量动物即可获得精确度很高的实验结果，个体相互之间可以接受皮肤、器官移植。 2、隐性基因纯合使许多病态性状得以暴露，可获得大量先天性畸形及先天性疾病的动物模型.如高血压、白内障、糖尿病.动物模型。 缺点：出现近交衰退。近交衰退是近交过程中动物群体由于基因分离与纯合发生一系列不利于个体或群体发育的变化和现象。 F1代动物：两个无关近交系杂交形成的第一代动物。 特点：虽然基因杂合，但个体之间基因杂合的一致,个体差异小。除具有近交系的优点,还具有生命力强耐受性强,可长期进行观察，具有杂交优势，个体相互之间可以接受皮肤、器官移植。 封闭群动物（远交系）：以非近亲交配方式繁殖生产的一个实验动物种群，5年以上不从外部引新血缘或至少繁殖四代以上，在封闭条件下交配繁殖，保持了一定杂合性和群体遗传特征。每代近交系数增加量<1％。在人类遗传研究、药物筛选、毒物实验等方面起着不可代替的作用等。 突变系动物：指正常染色体的基因发生了变异，动物具有一种或多种遗传缺陷。例如：无胸腺裸鼠、严重联合免疫缺陷动物SCID小鼠。为肿瘤、免疫疾病的研究提供了理想的材料。
动物实验报告
实验动物学实验报告 学院： 学号： 姓名 时间： 实验一：小鼠实验
一、实验目的 1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法； 2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法； 3、掌握小鼠的标记方法； 4、掌握小鼠的基本采血技术； 5、掌握小鼠的常用给药方法； 6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置； 二、实验材料 1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠； 2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛； 三、实验内容及方法 1、小鼠的抓取和固定 抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。 2、小鼠的雌雄鉴别 雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。 3、小鼠的标记方法 1）耳孔法 用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位。 2）剪趾法 适用于出生一周以内新生仔鼠； 3）染色法 用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。
4、小鼠的基本采血 1）剪尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 2）眼眶后静脉丛取血 当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠，尽量捏紧头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突（示眼眶后静脉丛充血），右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。刺入深度小鼠2～3mm。当感到有阻力时再稍后退，保持水平位，稍加吸引，由于血压的关系，血液即流人玻璃管中。得到所需的血量后，拨出毛细管。若手法恰当，小鼠约可采血0.2～0.3ml。 3）心脏取血 动物仰卧固定在固定板上，剪去心前区部位的被毛，用碘酒酒精消毒皮肤。在左侧第3～4肋间，用左手食指摸到心搏处，右手取连有4～5号针头的注射器，
实验动物学重点题库
复习题 1、简述动物实验中3R原则内容及其意义。 Replacement 替代1.尽量使动物一体多用2、用低等动物代替高等动物3、尽量使用高质量动物4、使用恰当的试验设计和统计学方法 Reduction 减少1、用有生命的物体代替动物进行研究2、用数理化方法模拟动物进行研究Refinement 优化1、改善实验设施条件，提高动物实验质量2、改善控制技术，减少对机体的干扰 3R研究的意义 1、作为提升突破技术壁垒能力的载体和具体体现“标尺”，在经济发展和国际贸易中发挥不可替代的重要作用。 2、为科学发展提供了新思路和新方法。 3、体现时代发展、社会进步 2、简述免疫缺陷动物的概念以及生物学特性（主要是裸鼠和联合免疫缺陷鼠）。 指由于先天性遗传突变或用人工方法造成一种或多种免疫系统组成成分缺陷的动物。 一、T淋巴细胞功能缺陷动物：1、裸小鼠（nude mice）：1）被毛生长异常，呈裸体外表。2）无胸腺，仅有胸腺残迹或异常胸腺上皮，不能使T-cell正常分化，导致细胞免疫力低下。幼龄鼠有残存的未分化的上皮细胞。3）B细胞功能正常，NK细胞活力增强。4）繁育能力差，乳腺发育缺损，以雄性纯合子与雌性杂合子繁育。5）T细胞缺陷可通过移植成熟T细胞、胸腺细胞或正常胸腺上皮得到校正。2、裸大鼠(nude rat)：基因符号为rnu，一般特征似裸小鼠。1）发育迟缓，体重为正常大鼠的70%。2）裸大鼠较裸小鼠对多种传染病更敏感。3）比裸小鼠更强壮、寿命更长。4）体型较大，对大范围的外科手术方法较有利。二、联合免疫缺陷动物1、严重联合免疫缺陷小鼠(SCID mice)：突变基因scid位于16号染色体。1）该突变基因造成编码Ig重链和TCR的基因重排异常，抑制B-cell和T-cell前体的正常分化。2）C.B-17Icr为携带来自C57BL/ka小鼠的免疫球蛋白重链Igh-1b等位基因的 BALB/cAnIcr的同源近交系。3）纯合子血清中无免疫球蛋白，淋巴结、胸腺变小，缺乏体液、细胞免疫功能。饲养于SPF环境中。4）通过移植人免疫组织或免疫细胞，可使SCID 小鼠具有人类部分免疫系统，称为SCID-hu小鼠。
医学实验动物学简答题.doc
1.简述“近交系动物” 2.经至少连续 20 代的全同胞亲兄妹或亲子交配培育而成，同品系内所有个体都可追溯到 起源于第 20 代或以后代数的共同祖先，该品系称为近交系。 3.近亲交配的弊端 固定基因时，有害的隐性基因也会纯合，出现不利的性状而造成育种失败；近交可能导致 多基因之间丧失平衡，从而使高度纯化的动物对不良环境的调节适应能力降低；近交 使动物失去为保持足够生物适合度所必需的最低水平的基因杂合性，从而影响动物生长率，寿命，对疾病的感受性，生活力，体力及繁殖能力。 4.简述“封闭群动物” 以非近交交配方式进行繁殖生产的一个实验动物种群，在不从其外部引入新个体的条件下，至少连续繁殖 4 代以上，称为一个封闭群，或叫远交群。 5.简述“哨兵动物” 指为微生物检测所设置的指示动物，用于监控实验动物饲养环境中病原及病原感染的动 物。哨兵动物一般采用来源于与被监测动物遗传背景相同的、免疫功能正常的清洁级或 SPF级封闭群动物。通常有二个功能： 1. 实验初期意外缺损时的补充； 2. 微生物定期检测 6.简述空气洁净度“级”的含义，各种动物实验环境设施对“级”的要求是什么 级是空气洁净度的计量单位，含义:每立方英尺空气中含有大于等于0.5μm的尘埃粒子数。 屏障环境：洁净度7 级 (英美制一万级)；隔离环境：洁净度 5 级 (英美制一百级) 7.简述营养 动物从外界摄取自身所需要的食物，经消化、吸收，用来维持生命活动的行为或作用。 8.简述标准化饲料 根据不同动物的营养需求和动物的食性，经人工配合、加工而成的营养全面、适口性好、符合微生物要求的饲料。 9.简述颗粒饲料优越性 ①原料配合合理，符合营养标准和不同动物的食性；②加工过程中经过高温、挤压，杀 灭了大量微生物和寄生虫，普通级动物可直接饲喂；③压制成型，避免了动物采食过程 中的大量浪费；④大幅度减少了粉尘；⑤颗粒饲料有利于进一步包装灭菌处理。 10.简述人类疾病动物模型的定义和分类 定义：在生物医药研究中建立的具有人类疾病模拟表现的动物实验对象和材料。 分类：诱发性动物疾病模型、自发性动物模型、抗疾病型动物模型、生物医学动物模型 11.简述安乐死 在动物实验过程中或结束时，对不欲保留的动物（动物承受不可缓解的疼痛、非存活手 术和样本采集），实施痛苦感最低或者无痛苦感死亡的科学方法。 12.裸鼠的解剖生理特点 ①毛囊发育不良，外观几乎全身没有被毛，称裸体外表，故称“裸鼠”；②胸腺严重萎缩， 仅有胸腺残迹或异常的胸腺上皮。故不能分泌胸腺素，不能使T 细胞正常分化，因而细胞免疫力低下；③IgG 的产生需要T 细胞和巨噬细胞的参与，因此其免疫球蛋白主要是IgM ，只有极少量的 IgG；④自发肿瘤现象罕见，可能与 NK 细胞的活性高有关；⑤裸鼠 易患鼠肝炎和病毒性肺炎；⑥纯合裸鼠母性极差，且受孕率低，乳房发育不良。通常以 纯合雄鼠与带有nu 基因的杂合雌鼠交配，可获1/2裸小鼠；⑦必须饲养在屏障环境中。13.在动物实验设计、实施和完成阶段，有关动物福利和保护环境方面我们应该注重哪些？ 设计阶段 :①动物福利法核心：善待活着的动物，减少死亡的痛苦；②“3R”原则：替代、
动物实验报告
动物实验（小鼠）的一般操作技术 实习日期：2007—11—13 一目的和要求： 通过实际操作，使学生掌握实验的一般操作方法，包括动物的抓去和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。 二实习内容： 1 实验动物的抓取 2 实验动物性别的鉴定 3 实验动物编号的标记方法 4实验动物被毛的去除 5 实验动物的给药途径和方法 6 实验动物的麻醉 7实验动物的采血 8 实验动物的处死方法 9 解剖 三实验的方法 1 小鼠的抓取：抓取时先用手将鼠尾提起，放在实验台上，轻轻拉尾，用左手拇指和食指抓住小鼠两耳和头颈部皮肤，将鼠置于左手中心，用左手无名指和小指按住尾巴和后肢，即可做其他实验操作作用。 2 小鼠性别的鉴定：抓取小鼠后，观察动物肛门与生殖器之间的距离。距离远的为雄性，距离近的为雌性。成熟的雄性小鼠可看到小鼠睾丸的轮廓。 3 小鼠编号的标记方法：用被毛染色法做小鼠编号。用苦味酸（黄色），一般左前肢为1，左侧腹部为2，左后肢为3，头颈部为4，背部为5，尾根部为6，右前肢为7，右腹部为8，右后肢为9。用两种颜色可以染到99。 4 小鼠被毛去除：有剪毛法，拔毛法，剃毛法，用硫化钠脱毛法。 5 给药途径和方法：给药途径有经口灌胃法，经呼吸道吸入，经皮肤吸入和注射给药法。用一支特制的灌胃针进行灌胃，小鼠一般给1.5ml以下。用注射器抽好液体，然后抓取小鼠，针头延侧角通过食管进入胃内，然后将液体注入。 6 小鼠的麻醉：麻药有挥发性的和非挥发性两种。给药途径有吸入性麻醉，注射给药。小鼠一般用腹部麻醉的方法。用水合氯醛300ml／kg，根据小鼠的体重给药0.25ml。抓取小鼠后，使针头和腹部成30度的角，刺入腹腔，回抽若无回血或者肠内容物可以注入。注入麻药5分钟后，小鼠失去知觉。 7 小鼠的采血的方法：有静脉采血法，尾部采血法，眼眶静脉采血法和心脏采血法。将小鼠装入固定盒中，露出尾部，用二甲苯图擦，使尾静脉充盈。用锋利的刀片切断一根尾静脉即可用毛细管采血，也可用细注射器从尾静脉采血。 8 小鼠的处死方法：用颈椎脱臼的方法或者注射过量的麻药使小鼠死亡。 9 解剖：从腹部开始，查看腹部脏器，以肝脏胃脾肾输尿管姨小肠大肠膀胱前列腺性腺顺序。然后再看胸部，看到肺脏心脏胸腺等器官，并在直视的情况下进行了心脏的采血。然后再看颈部的解剖。最后解剖头部。 四讨论和结论： 通过此次实验，我们学到了实验动物的一般操作技术，如抓取和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。为以后进入临床进行实验研究做好了初步的准备。
实验动物学试题及答案
《实验动物学》复习题及答案 1、小鼠的给药途径有那些？请演示一下 答：灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 皮下注射（sc）：常在背部皮下注射。一手固定动物，另一只手注射给药。 腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45 度角刺入腹腔，进针约3～5mm。 肌内注射（im）：多注射后肢股部肌肉，如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药 尾静脉注射（iv）：将动物固定，鼠尾巴露在外面，用70%～75%的酒精棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～50℃温水中。待尾部左右静脉扩张后，左手拉着尾，右手进针 2、请演示一下大鼠、小鼠的捉持、固定及灌胃给药 答：（1）小鼠的捉持：捉拿时可先用右手抓住并提起鼠尾，置于实验台或鼠笼上，并稍向后拉；用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳后颈背部的皮肤，将鼠置于左手心中，拉直后肢，以无名指及小指按住鼠尾或小鼠的左后肢即可。 （2）大鼠的捉持：大鼠的捉拿时，可戴上手套。实验者可用右手捉住鼠尾，放在实验台或鼠笼上，并稍向后拉；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。 （3）灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 3、大鼠的给药方法有那些？请演示一下常用的给药方法 答：灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 皮下注射（sc）：常在背部皮下注射。一手固定动物，另一只手注射给药。 腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45 度角刺入腹腔，进针约3～5mm。
药理学实验动物的基本操作实验心得
这次是第一次药理学实验，我们学习了很多实验动物的基本操作方法。在做药理学实验之前我们就有做过人体解剖生理学实验，解剖过蟾蜍，小白鼠和家兔，这次的药理学实验更是一次对所学知识的巩固和深化，教给了我们很多在生理学实验中并没有学过的知识点。在刚做实验时，黄老师就向我们介绍了3R原则，即减少，优化，替代。动物是我们人类的朋友，首先我们应该尊重动物。它们用生命来换取人类的健康，推动着医学的进步，人类医学的发展离不开动物实验，动物为我们人类的健康做出了牺牲，我们应遵循“3R”原则。黄老师还通过视频给我们重点介绍了常用麻醉药及用法，实验动物的捉拿、麻醉、固定、给药、取血和处死方法。让我学到了很多实用性很强的东西。 之后便是分组自己做实验了，首先陈老师向我们讲解了小白鼠的标记方法，用中性品红表示十位数，苦味酸表示个位数，加上空白对照，一共可以标记一百支小白鼠。标记顺序为先左后右，从上至下。用苦味酸作为标记物的一个原因是它不容易被分解和弄掉，不会因为小鼠的活动而消失。其次是因为其有苦味，避免了被其他老鼠舔掉。之后讲解了小鼠的性别鉴定方法，除了书上说的方法外还可通过观察小鼠的乳房辨别。关于大鼠和家兔的捉持方法，大鼠在捉持前最好对其进行安抚，避免其急躁而咬人，而家兔则不可用手扯其双耳将其拉起。在给药方法方面，灌胃法要注意从口角插入口腔，用灌胃针抵住舌头，插入不可过深，一般入喉即可。腹腔注射时最好将其倒转，头部朝下，这样不容易刺入内脏。是否插入腹腔的判断方法：推注完后，轻微回抽，若有负压将注射器的推杆拉回，则已入腹腔。皮下注射时是否的入皮下的判断方法上同，皮下无负压，回抽不拉回。尾静脉注射时注意静脉在尾的两侧，不在上下，注射时用手捏住尾巴前段有利于暴露血管。 家兔的灌胃用木质开口器，使用时要想办法将其舌头压在开口器下，因为舌头会阻碍导尿管插入口腔，可以另外使用棉签配合，一边用棉签压住舌头，一边将开口器插入口腔。耳缘静脉注射时要注意选择小号针头，因家兔耳静脉较小，插入时应仔细谨慎。 家兔的麻醉与手术操作由老师演示进行。注射11ml麻醉剂后家兔很快被麻醉，用镊子夹其腿部无反应。气管插管时，在气管处以倒“T”字切开，插入气管插管，气管插管为三通管，除一个用来跟呼吸测定器连接外，另一个用来防止家兔舌头被麻醉后堵住气管不能呼吸从而起到辅助呼吸作用。颈动脉分离时在颈动脉剪三分之一插管，颈动脉较一般血管粗，韧性很好，在剪口前后需各用动脉夹夹住并用细线绑住，插管成功后拔掉近心端动脉夹，远心端不动。血液迅速流向插管。最后是家兔的空气拴塞法处死，用注射器注射一管空气后，家兔逐渐呼吸急
实验动物学实验报告大鼠,小鼠,小鼠的基本实验操作,大鼠的基本实验操作
实验一小鼠的基本实验操作 一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌 胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。 二、实验动物:昆明小鼠2只(1雌1雄) 三、实验步骤 1、抓取与固定,标记 2、去毛 3、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射 4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法 5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉 6、处死:脊椎脱臼法 7、解剖: 雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明) 雌性:双角子宫、卵巢 肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺 四、实验结果 1、抓取与固定标记: 抓取:抓小鼠的尾根部 固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇 指与食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指与无名指将尾巴固定在手掌面。并标记: 2、灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0、5ml 3、注射给药: 腹腔注射: 从下腹部的两侧进针 ,进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物 尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指与拇指将尾拉直,食指托住尾部,在尾动脉位置进针注射0、5ml生理盐水。注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。 4、采血 从眼角内侧0、5cm处进针 眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。 5、麻醉: 0、5%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重22g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功 6、处死: 脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死 7、解剖: 雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺 雌性:双角子宫、卵巢 3、7、2 肾上腺:米粒大小 胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状 3、7、4 ,胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,
动物学实习心得体会
动物学实习心得体会 专业：生物科学类08级一班 2009年12月21~25日，我们进行了野外实习。记得陆游有一句诗：纸上得来终觉浅，知此事要躬行！意思是说，从书本上得到的知识毕竟比较肤浅，要透彻地认识事物还必须亲自实践。野外实习正是将课堂上学的理论知识与野外实际或生产实践相结合，从而达到巩固理论知识的目的。动物学野外实习，不仅验证了书本知识和巩固理论知识，而是更加重视理论知识的应用，强调整个过程的参与和学习，充分发挥我们学习的主动性，激发同学们的学习兴趣和创造力，也培养了我们的团队精神和协作意识。动物学野外实习是动物学生教学计划中重要的组成部分，让我们更加了解无脊椎动物学和脊椎动物学。动物世界如此浩瀚，大到能创造和使用工具的人类，小到要在显微镜下才能观察到的微生物群。因而要了解动物世界，我们就必须要躬行啦！ 时间: 09年12月21日 内容: 采集河流标本和池塘标本,下午标本鉴定 地点：花溪公园、池塘 工具：浮游生物网 采集结果 1细丝澡：蓝藻门 2扁藻：绿藻门、绿藻纲、团藻目、衣藻科、扁藻属 3轮虫（产卵期）
4新月藻：绿藻门，鼓藻科 5颤藻：颤藻科蓝藻门 6阔口游仆虫：原生动物门纤毛纲下毛目游仆虫科 7晶囊轮虫：晶囊轮科、晶囊轮属 8集星藻：韩氏集星藻柵藻科集星藻属河流集星藻（柵藻科） 9蓝纤维藻：蓝藻门 10弹跳虫：弹尾目纤毛纲 11腺见虫 12六肢幼虫甲壳动物 13鞘丝藻绿藻门，丝藻科 14异端藻硅藻门 15盘腥藻绿藻门 16 念珠藻念珠藻目蓝藻门 17角星鼓藻角星鼓藻属鼓藻科 18角突臂尾轮虫 19舟形藻金藻门、羽纹纲、舟形藻目、舟形藻科舟形藻属。 20水绵水绵(属) （水绵科）绿藻门 21桥弯藻属硅藻门、羽纹纲、舟形藻目、桥弯藻科。 22针杆藻属硅藻门、羽纹纲、等片藻目、等片藻科。 23矩形龟甲轮虫轮虫
青蛙解剖实验报告
2012 级应心班《人体解剖生理学》实验内容 一、人体基本组织的观察 （一）实验目的观察并掌握人体四大基本组织的结构特点及功能。 （二）实验材料四大基本组织的永久装片；显微镜 （三）实验要求正确使用显微镜，观察各种组织的基本特征。注：实验前请复习四大基本组织的结构特点和功能。 二、人神经系统的形态观察 （一）实验目的 1. 观察脊髓的形态结，了解脊神经的组成。 2. 观察脑干的的形态结构和脑神经进出脑干的部位，了解脑干中的主要神经核团和纤维束的位置。 3. 观察间脑、小脑和大脑的形态结构，辨认大脑半球的主要沟、回和分叶。 （二）实验材料脊髓模型；脑干模型；人脑模型；脊髓横切片；显微镜 （三）实验要求观察各模型加深对神经系统的认识；正确使用显微镜，观察脊髓横切片。注：实验前请复习神经系统的结构组成和功能。 三、反射弧的分析和脊髓反射的观察 （一）实验目的 1. 通过用脊蛙（去除脑保留脊髓的蛙，成为脊蛙）分析屈肌反射的反射弧的组成部分，探讨反射弧的完整性与反射活动的关系。 2. 观察脊髓的反射活动并研究脊髓反射中枢活动的若干特征。 （二）实验原理 （三）材料与方法 1 材料 1.1 实验动物青蛙 1.2 器材蛙类手术器械 1 套，铁支架，电刺激器，刺激电极，秒表，棉球，纱布，培 养皿 2 个，烧杯 1.3 药品 0.5% 硫酸， 1%硫酸 2 试验方法与步骤 2.1 制备脊髓动物：取青蛙一只，用剪刀横向插入口腔，从鼓膜后缘处剪去颅脑部，保留下颌部分。以棉球压迫创口止血，然后用止血钳夹住下颌，悬挂在铁支架上。 2.2 正常脊髓反射的观察 2.3 搔扒反射：将浸以 0.5%硫酸的小滤纸片一块，贴在青蛙腹部下段的皮肤上，可见四肢向此处搔扒，直到去掉滤纸片为止，之后用清水冲洗皮肤。 2.4 反射时的测定：用培养皿分别盛 0.5%和 1%硫酸溶液，将青蛙左后肢的脚趾尖浸于硫酸溶液中，同时用秒表记录从浸入时起到发生屈腿发射所需的时间，即反射时。观察后立即将该足趾浸入清水中浸洗几次，然后用纱布拭干。按上法重复三次，求其平均值，此值即为反射时。 2.5 将两对电极连接到刺激器 2.6 反射弧的分析 2.6.1 剥去左肢皮肤：在左侧后肢趾关节上方，将皮肤作一环状切口，将足部皮肤剥掉。 2.6.2 1% 硫酸刺激左趾尖，观察腿部活动情况。 2.6.3 1% 硫酸刺激右趾尖，观察腿部活动情况。 2.6.4 1% 硫酸滤纸片贴在左小腿切口上面的皮肤上，观察活动情况。 2.6.5 分离右侧大腿背侧坐骨神经干，两侧结扎，中间剪断，1%硫酸刺激右趾尖，观察腿部活动。 2.6.6 刺激神经两端：以连续方式分别刺激右侧坐骨神经中枢端和外周端，观察腿部反应。 2.6.7 破坏脊髓：以探针捣毁青蛙脊髓后，以连续方式分别刺激右侧坐骨神经中枢端和 外周端，观察腿部反应。 2.6.8 刺激腓肠肌：直接刺激右侧腓肠肌，观察有何反应。
实验动物学总结(1)
名词： 1、实验动物:Laboratory Animal 经人工培育，对其携带的微生物和寄生虫实行控制，遗传背景明确或来源清楚，用于科学研究、教学、生产、检定及其他科学实验的动物。 2、实验用动物:Animal for research用于实验研究的各种动物。包括实验动物Laboratory Animals、家畜/禽Domestic Animals/Fowls和野生动物Animals Obtained From Nature。 3、实验动物学：实验动物学是一门研究实验动物及其培育和应用的科学。 实验动物学包括了实验动物培育和实验动物应用两部分内容。 4、ICLAS:国际实验动物科学委员会（International Council for Laboratory Animal Science, ICLAS）1956年，由联合国教科文组织（UNESCO）、国际医学组织联合会（CIOMS）、国际生物学协会（IUBS）共同发起成立了实验动物国际委员会（ICLA）。这是一个以促进实验动物质量、健康和应用达到高标准的非官方组织。1961年，ICLA的活动得到WHO的合作，并于1979年改名为国际实验动物科学委员会（International Council for Laboratory Animal Science, ICLAS）。 5、AAALAC:AAALAC International 是一个总部位于美国的私营的、非政府组织，它通过自愿评估和认证计划促进在科学领域人道对待动物。AAALAC International 代表“国际实验动物评估和认可管理委员会(Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care International)。” (下面4个知道立法) 1.实验动物许可证； 2，实验动物国家标准；, 3.猕猴实验应用的管理；《中华人民共和国野生动物保护法》 禁止出售、收购国家重点保护野生动物或者其产品。因科学研究、驯养繁殖、展览等特殊情况，需要出售、收购、利用国家二级保护野生动物或者其产品的，必须经省、自治区、直辖市政府野生动物行政主管部门或者其授权的单位批准。 4.实验动物运输管理:《中华人民共和国动物防疫法》 ?2007年8月30日颁布。共分十章八十五条，分别为总则，动物疫病的预防，动物疫情的报告、通报和公布，动物疫病的控制和扑灭，动物和动物产品的检疫，动物诊疗，监督管理，保护措施，法律责任，附则。 ?本法适用于在中国领域内的动物防疫及其监督管理活动。实验动物的防疫和运输等也属于该法规的调整范围。 ?本法对动物疫情的报告、认定和公布提出了以下新的要求：一是明确疫情报告的主体；二是明确疫情的认定程序；三是规范疫情的公布制度。 ?本法规定了动物疫病分为四个等级，其中一类疫病是指对动物危害严重，需要采取紧急、严厉的强制预防、控制、扑灭等措施的传染性疾病。 名词： 1.3Rs：replacement替代即替代方法，其原意是指应用无知觉（non-sentient）材料的科学方法来代替使用活的有知觉的（conscious）脊椎动物的方法。reduction减少是指在能够保证获取一定数量与精确度的数据信息的前提下，减少动物的使用数量。通过使用合适的动物品种、品系和高质量的实验动物，改进实验设计，规范实验操作程序等，达到动物使用数量的减少。refinement优化是指在必须使用动物时，要尽量减少非人道程序的影响范围和程度。另一方面，从科学的角度理解，优化试验程序，减少动物因紧张、痛苦而表现出的非正常特性，是取得科学数据的重要前提。 2.IACUC:Institutional Animal Care and Use Committee实验动物福利伦理委员会 3.3Rs的含义:Since then the principles have become the bedrock of ethical and responsible use of animals in scientific research. replacement替代即替代方法，其原意是指应用无知觉（non-sentient）材料的科学方法来代替使用活的有知觉的（conscious）脊椎动物的方法。reduction减少是指在能够保证获取一定数量与精
实验动物学重点整理
实验动物学重点整理 1大小鼠年龄、体重、寿命的比较数据？ 成年动物的年龄、体重和寿命比较 小鼠大鼠 成年日龄（天）65-90 85-110 成年体重（克）20-28 200-280 平均寿命（年）1-2 2-3 2动物实验的对照类型？ （一）空白对照： 不给任何措施的情况下观察动物自发变化的规律。家兔白细胞数每天上下午有周期性的生物钟变化。 （二）实验对照： 采用与实验组相同操作条件下对照，如给药实验中的溶媒（Nacl），手术，注射以及观察时的抚摩等都可以对动物发生影响。有人报告，针刺犬的人中穴对休克、心脏血液动力学有改变，但采用空白对照（不针刺）不够，应该设有针刺其它部位或穴部的实验对照。 （三）有效（标准）对照： 常用于药物研究。对一新药疗效可用一已知有效药或能引起标准反应药物做对照，可考核实验方法可靠性，又可通过比较，了解新药疗效和特点（普鲁卡因---对皮肤黏膜穿透力弱，用纳塞卡因---穿透力强，作用快、持久）。（四）配对对照： 同一个体不同眼睛比较对照期和实验期差异（左眼试验，右眼对照）；同一种动物后代分成左右两部分进行对照和实验以比较差异，此法可大大减少抽样误差。实验中可用同卵双胎或同窝动物。 （五）组间对照： 将实验对象分成两组或几组比较其差异。这种对照个体差异和抽样误差比较大，可用交叉对照方法以减少误差。观察某药物疗效可用两组犬先分别做一次实验和对照，再相互交换，以原实验组做对照组，原对照组做实验组重复第一次实验，观察疗效或影响，切记检查指标和条件要等同。 （六）历史对照与正常值对照： 此种对照要慎重，similar background ---条件、背景、指标和技术方法相同才进行对比，否则得出不恰当的甚至错误结论。 3转基因动物的概念、制备过程? 转基因动物： 用物理、化学、生物手段将确定外源基因通过生殖细胞或早期胚胎导入动物染色体，其基因组内稳定整合导入外源基因，能遗传给后代的一类动物,使其获得人类需要新功能。 技术程序：
动物实验报告修订稿
动物实验报告 集团文件发布号：（9816-UATWW-MWUB-WUNN-INNUL-DQQTY-
实验动物学实验报告学院： 学号： 姓名 时间： 实验一：小鼠实验 一、实验目的 1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法； 2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法； 3、掌握小鼠的标记方法； 4、掌握小鼠的基本采血技术； 5、掌握小鼠的常用给药方法； 6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置； 二、实验材料 1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠； 2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛； 三、实验内容及方法 1、小鼠的抓取和固定 抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠
尾，小指按住后腿即可。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。 2、小鼠的雌雄鉴别 雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。 3、小鼠的标记方法 1）耳孔法 用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位。 2）剪趾法 适用于出生一周以内新生仔鼠； 3）染色法 用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。 4、小鼠的基本采血 1）剪尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml 血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 2）眼眶后静脉丛取血
动物病理学学习心得
动物病理学学习心得 我认为要想成为一位称职的兽医，必须学好各门专业课，而动物病理学又是重中之重。通过近一学期的学习，我了解到动物病理学是研究动物疾病的原因，发生机制及其发展过程中各器官组织功能，代谢和形态结构等变化的一门科学，由病理解剖学和病理生理学两门科学组成。 大二上学期我们主要学习了病理解剖学，在郑明学老师的引导下，我们学习了疾病的概念，疾病发生的原因，疾病的经过和转归，血液循环障碍，细胞与组织的损伤，炎症，败血症，肺炎，非化脓性脑炎，肾小球肾炎等一些最基本，最普遍的病理变化。最后我们做了一个病鸡解剖的实验。通过一个学期的学习我感到受益匪浅。接下来是我对这一学期所学知识的大体总结。 首先，我了解到疾病是机体与互作用产生的损伤与抗损伤的复杂斗争过程，在此过程中机体对环境的适应能力下降，动物的生产力降低。疾病有如下特点；一是在一定条件下由病因作用于机体而引起的；二疾病是完整机体的反应；三疾病是一个矛盾斗争的过程；四是生产力降低是疾病的一个标准。疾病有多种分类方法，依据病因分类可分为传染病，寄生虫病，普通病。依据病程长短可为最急性病，急性病，亚急性病，慢性病。依据治疗方法分类可分为内科病和外科病。疾病发展有四个阶段，分别为潜伏期，前驱期，明显期，终结期。致病因素有外因和内因之分，外因有生物性致病因素，化学性致病因素，物理性致病因素，机械性致病因素，营养型致病因素。内因主要包括机体对外界致病因素的反应性，机体的防御能力。 然后，我学习了一系列最基本的病理变化。其中有血液循环障碍，细胞与组织损伤，炎症，肿瘤。这些病理变化在绝大部分疾病中都有体现。 血液循环是指血液在心血管系统周而复始的流动过程。它是机体的重要生理机能之一，他通过血液循环向各器官及组织输送氧气，营养物质，激素和抗体等，同时又不断从器官和组织代谢产物，从而保证机体物质代谢正常进行。血液循环受神经和体液因素调节，并与其他系统之间有着密切联系。无论是心血管系统本身及其调节过程发生损伤或障碍，还是血液，呼吸系统出现病理过程，都可使血液循环障碍与其病理过程也有着密切关系。血液循环障碍根据其发生原因与波及范围不同，可分为全身性和局部性两类。局部血液循环障碍表现为局部血量改变引起的充血和缺血，血管壁的通透性和完整性改变引起的血栓形成和栓塞，由于缺血而引起的坏死。充血指某些器官或局部组织血液含量增多的现象。可分为静脉性充血和动脉性充血两种。血液流出心脏或血管的现象称为出血。血液流至体外称为外出血，血液流入组织间隙或体腔内称为内出血。血栓形成指在活体心脏或血管内流动的血液形成固体物质的过程。所形成的固体物质称为血栓。栓塞指正常血液中不存在的物质随血液运行而阻塞血管的过程。引起栓塞的物质称为栓子。局部缺血指局部组织或器官血液量供应不足或缺失。个梗死指局部组织或器官因动脉血流断绝而引起的坏死。 组织与细胞损伤包括萎缩，变性，坏死。萎缩是指已经发育成熟的组织，器官，细胞，由于物质代谢障碍而体积缩小，功能减退的变化过程。是由于组成该器官的实质细胞体积缩小或数量减少所致。萎缩的病理变化为眼观全身脂肪，心冠脂肪，肾周围脂肪萎缩变为灰白色或灰黄色，呈半透明胶冻样，即发生浆液萎缩。实质器官体积成比例缩小，器官边缘变薄变锐，被膜增厚皱缩，重量减轻，质度变硬，管状器官管壁变薄，管腔变大，出现衰竭症象逐渐消弱严重贫血，被毛粗乱无光，全身水肿。镜检﹕实质细胞体积减小，数量减少，线粒体,内质网等细胞器数量减少，溶酶体和自噬体增多。变性是在致病因素的作用下，物质代谢障碍而引起细胞内或细胞间出现某些异常物质或正常物质蓄积过度的现象，细胞变性有颗
实验动物学重点
实验动物学重点
1.实验动物学绪论 2.实验动物质量控制 3.常用实验动物 4.实验动物营养与饲料 5.实验动物环境和设施 6.基因工程动物 7.“3Rs”理论及其研究进展 8.怎样才能作好动物实验 实验动物学绪论 实验动物学：以生物学、动物科学、动物医学、医学,药理学、毒理学等学科为基础，综合发展而形成的一门覆盖 面极广的边缘学科。 实验动物学包括：实验动物，实验动物医学，比较医学，动物实验 实验动物：是指经人工培育的、遗传背景清楚、对其携带微生物和寄生虫实行控制、用于科学实验、教学、检定及 药品、生物制品生产的动物。 实验用动物：实验动物、家畜、野生动物、伴侣动物 概况：实验动物科学内容：实验动物、实验动物医学、比较医学、动物实验 1988年，国家科委发布《实验动物管理条例》 1996年10月，《北京市实验动物管理条例》出台，于2005年1月1日实施 实验动物伦理：是人与实验动物关系的伦理信念、道德态度和行为规范。主要体现在尊重实验动物的价值和权利。 实验动物福利：实验动物的一种康乐状态。在此状态下，其基本需求得到满足，而痛苦被减至最小。 五项基本福利：一，提供适当的清洁饮水和保持健康和精力所需要的食物，使动物不受饥渴之苦 二，提供适当的栖息场所，能够舒适地休息
和睡眠，使动物不受困顿不适之苦 三，做好防疫，预防疾病和给患病动物及时诊治，使动物不受疼痛、伤病之苦 四，保证拥有良好的条件和处置（包括安乐死），使动物不受恐惧和精神上的痛苦 五，提供足够的空间、适当的设施以及与同类动物伙伴在一起，使动物能够自由表达正常的习性 动物实验需要考虑实验动物伦理的几个环节：实验目的确定和必要性评估、实验设计遵循3Rs原则、实验操作过程避免或减轻动物疼痛及恐惧、日常饲养及护理、安乐死 CRO：Contract Research Organization Include: Clinical trial、Preclinical research AAALAC认证（国际实验动物管理评估和认证协会）实验动物学发展趋势：基因修饰技术运用； 实验动物福利与“3Rs”原则； 实验动物商品化及SPF动物广泛应用； 人源化小鼠模型的建立。 实验动物科学发展简史：1909年，Prof. Little 采用近交方法 培育出首个近交系小鼠DBA 1943年，美国Dr. Reynier研制出第一台金属隔离器，饲养无菌 大鼠 1948年，美国成立实验动物管理小组，后又成立实验动物科 学学会（AALAS） 1966年，美国国会批准《实验动物福利法案》 1982年，第一例转基因小鼠问世 实验动物学、比较医学等专业的设立及建立相应培训制度 我国实验动物科学发展概况：1918年，原北平中央防疫处开 3