家兔的肺水肿实验报告

家兔的肺水肿实验报告

实验目的

本实验旨在研究家兔在特定条件下是否会出现肺水肿的症状。

实验材料

1.家兔(数量:10只)

2.实验室设备和仪器

3.实验用饲料和水

实验步骤

步骤一:实验前准备

1.确保实验室环境符合实验要求,保持室温和湿度稳定。

2.准备实验用饲料和水。

3.检查实验设备和仪器是否正常工作。

步骤二:动物选取和分组

1.从健康的家兔中随机选取10只作为试验对象。

2.将选取的家兔分为两组,每组5只。

步骤三:实验组设置

1.将实验组家兔置于高温、高湿的环境中,模拟潜在的肺水肿诱因。

2.确保实验组家兔的饮食和水源与对照组保持一致。

步骤四:对照组设置

1.将对照组家兔置于正常温度和湿度的环境中。

2.保持对照组家兔的饮食和水源与实验组保持一致。

步骤五:观察和记录

1.每天观察所有家兔的饮食摄入量、呼吸频率和体温,并记录下来。

2.定期测量家兔的体重,记录下来。

3.观察家兔是否出现呼吸困难、咳嗽和气促等肺水肿症状,并记录下来。

步骤六:实验结束和数据分析

1.根据实验时间的安排,当家兔出现肺水肿症状或实验达到预定时间时,实验结束。

2.对实验数据进行统计和分析,比较实验组和对照组之间的差异。

3.根据数据分析结果,得出结论以及对肺水肿的影响因素进行讨论。

实验结果

经过实验观察和数据分析,以下是我们得出的结果:

1.实验组家兔在高温、高湿条件下呈现出明显的肺水肿症状,包括呼吸

困难、咳嗽和气促等。

2.对照组家兔在正常环境下没有出现肺水肿症状。

3.实验组家兔的体重增长速度较慢,饮食摄入量相对减少。

4.实验组家兔的呼吸频率明显增加,体温也有所上升。

结论和讨论

通过本实验,我们得出以下结论:

1.高温、高湿条件下可能是导致家兔发生肺水肿的主要因素之一。

2.家兔在肺水肿发生过程中可能出现呼吸困难、咳嗽和气促等症状。

3.肺水肿对家兔的食欲和生理状态有一定的影响。

需要进一步研究的方向包括:

1.探索不同温度和湿度条件对肺水肿的影响。

2.分析肺水肿发生的机制和病理变化。

3.寻找预防和治疗肺水肿的方法和药物。

结束语

本实验的结果为肺水肿的研究提供了一定的参考和基础。我们希望这项研究能够对了解肺水肿的机制和预防措施有所帮助,并为保护家兔的健康提供参考依据。

注意:本实验中所使用的动物符合伦理和实验规范要求,且实验过程中尽可能减少动物的痛苦和不适。

肺水肿实验报告

篇一:肺水肿实验报告实验性肺血容量增高性肺水肿 一、实验目的 1. 复制家兔实验性肺水肿 2. 观察肺水肿的表现,并探讨其有关的发病机理。 二、实验药品与器材生理盐水、乌拉坦、气管插管和与之配套的呼吸描记装置(二道生理记录仪)或生物信号采集系统、血气分析仪。静脉导管和静脉输液装置,颈部小手术器械,婴儿秤,天平,听诊器,兔固定台,1ml、2ml 注射器各 2 具,丝线,纱布,滤纸,烧杯等。 三、实验步骤本实验分为实验组和对照组。 1、将实验组家兔准确称重后,麻醉、仰卧固定于兔台上,剪去颈前部手术视野被毛,切开颈部前部皮肤,然后分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉并穿线备用。切开气管,插入气管插管,用丝线结扎固定后将呼吸描记装置与之相连,以描记呼吸。结扎颈外静脉远心端,在近心端靠近结扎处剪一小口,插入静脉导管,结扎固定后将输液装置与之相接并试行滴注,通畅后暂停输液。 2、由颈总动脉插入动脉插管以描记血压,由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置缓慢滴人0.9%的生理盐水以保持管道通畅 3、描记一段正常呼吸,用听诊器听肺的呼吸音。 4、用Iml肝素化注射器从耳朵动脉抽血0. 5m1,立即将针头插入橡皮塞中以防空气进入。经血气分析仪测定血液的ph、pac02、pa02、k+、na+、cl- 等,作为实验前对照。 5、然后输入37C(摄氏度)生理盐水,输入量按100ml/ kg (体重)计算,输液速度180-200滴/min 。 6、输药液过程中密切观察机体的变化: ①呼吸曲线有否变化,有否呼吸急促,困难。 ②肺部是否出现罗音。 7、对照组除不使用肾上腺素外,其余实验步骤和条件与实验组相同。8、上述各组实验完成以后,分别夹住气管,剪开胸前壁,在气管分叉处用线结扎,防止水肿液溢出。在结扎处上方剪断气管,然后分离心脏及其血管,将肺取出。用滤纸吸干肺表面的水份后,准确称取肺重量,以计算肺系数 肺系数= 肺重量(g) 体重(kg) 正常肺系数约为4~5 g 。此后观察肺大体改变,切开肺,注意切面的变化,是否有粉红色泡沫液体溢出(注意其量,性质,颜色)。还可在显微镜下对比观察肺水肿和正常肺的组织切片。 四、实验结果 1. 家兔呼吸的变化曲线图像 2. 本组肺的重量为8.2g ,兔子重量为1.6kg ,本组所测得的肺系数为5.13(正常肺系数约为4~5)。 3. 呼吸变浅变慢,心率加快,皮肤黏膜发绀,听诊肺部出现轻度湿罗音。 4. 家兔肺水肿前后血气指标 指标肺水肿前肺水肿后ph pco2 mmhg po2 mmhg hco3 k-7.397 39.1 92.8 23.6 7.0 102 84 7.30428.9 123.7 13.9 3.9 110 60 mmol/l+mmol/lmmol/lmmol/l na cl +- 比较两次血气分析结果,ph 略降低,二氧化碳分压略下降,但氧分压升高。解剖家兔的肺显示没有明显的病变。 四、实验讨论本组虽然为对照组,从测得的肺系数来看,可能出现轻微的肺水肿。其机制为:快速注射液体,机体体循环加速,心脏容量负荷增加,导致肺毛细血管压增大,出现轻微的肺水肿。但也有可能

肺水肿实验报告(2)

实验性肺血容量增高性肺水肿 一、实验目的 1. 复制家兔实验性肺水肿 2. 观察肺水肿的表现,并探讨其有关的发病机理。 、实验药品与器材 生理盐水、乌拉坦、气管插管和与之配套的呼吸描记装置(二道生理记录仪)或生物信号采集系统、血气分析仪。静脉导管和静脉输液装置,颈部小手术器械,婴儿秤,天平,听诊器, 兔固定台,1ml、2ml注射器各2具,丝线,纱布,滤纸,烧杯等。 三、实验步骤 本实验分为实验组和对照组。 1、将实验组家兔准确称重后,麻醉、仰卧固定于兔台上,剪去颈前部手术视野被毛,切开 颈部前部皮肤,然后分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉并穿线备用。切开气管,插入气管插管,用丝线结扎固定后将呼吸描记装置与之相连,以描记呼吸。结扎颈外静脉远心端,在近心端靠近结扎处剪一小口,插入静脉导管,结扎固定后将输液装置与之相接并试行 滴注,通畅后暂停输液。 2、由颈总动脉插入动脉插管以描记血压,由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置缓慢滴人0 ? 9%的生理盐水以保持管道通畅 3、描记一段正常呼吸,用听诊器听肺的呼吸音。 4、用Iml肝素化注射器从耳朵动脉抽血0 . 5m1,立即将针头插入橡皮塞中以防空气 进入。经血气分析仪测定血液的pH、PaC02、Pa02、K+、Na+、Cl-等,作为实验前对 照。 5、然后输入37C(摄氏度)生理盐水,输入量按100ml/ kg (体重)计算,输液速度180-200 滴/min 。 6、输药液过程中密切观察机体的变化: ①呼吸曲线有否变化,有否呼吸急促,困难。 ②肺部是否出现罗音。 ③气管插管口是否有粉红色泡沫液体溢出。如果上述情况变化不明显可重复使用肾上腺素, 用法及剂量同上,直至出现明显的肺水肿表现。并迅速从耳朵动脉抽血0 ? 5m1,方法同上,测定血气指标的变化。

肺水肿实验报告

篇一:肺水肿实验报告 实验性肺血容量增高性肺水肿 一、实验目的 1.复制家兔实验性肺水肿 2.观察肺水肿的表现,并探讨其有关的发病机理。 二、实验药品与器材 生理盐水、乌拉坦、气管插管和与之配套的呼吸描记装置(二道生理记录仪)或生物信号采集系统、血气分析仪。静脉导管和静脉输液装置,颈部小手术器械,婴儿秤,天平,听诊器,兔固定台,1ml、2ml注射器各2具,丝线,纱布,滤纸,烧杯等。 三、实验步骤 本实验分为实验组和对照组。 1、将实验组家兔准确称重后,麻醉、仰卧固定于兔台上,剪去颈前部手术视野被毛,切开颈部前部皮肤,然后分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉并穿线备用。切开气管,插入气管插管,用丝线结扎固定后将呼吸描记装置与之相连,以描记呼吸。结扎颈外静脉远心端,在近心端靠近结扎处剪一小口,插入静脉导管,结扎固定后将输液装置与之相接并试行滴注,通畅后暂停输液。 2、由颈总动脉插入动脉插管以描记血压,由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置缓慢滴人0.9%的生理盐水以保持管道通畅 3、描记一段正常呼吸,用听诊器听肺的呼吸音。 4、用lml肝素化注射器从耳朵动脉抽血0.5m1,立即将针头插入橡皮塞中以防空气进入。经血气分析仪测定血液的ph、pac02、pa02、k+、na+、cl-等,作为实验前对照。 5、然后输入37℃(摄氏度)生理盐水,输入量按100ml/㎏(体重)计算,输液速度180-200滴/min。 6、输药液过程中密切观察机体的变化: ①呼吸曲线有否变化,有否呼吸急促,困难。 ②肺部是否出现罗音。 7、对照组除不使用肾上腺素外,其余实验步骤和条件与实验组相同。8、上述各组实验完成以后,分别夹住气管,剪开胸前壁,在气管分叉处用线结扎,防止水肿液溢出。在结扎处上方剪断气管,然后分离心脏及其血管,将肺取出。用滤纸吸干肺表面的水份后,准确称取肺重量,以计算肺系数 肺系数= 肺重量(g) 体重(kg) 正常肺系数约为4~5 g。 此后观察肺大体改变,切开肺,注意切面的变化,是否有粉红色泡沫液体溢出(注意其量,性质,颜色)。还可在显微镜下对比观察肺水肿和正常肺的组织切片。 四、实验结果 1.家兔呼吸的变化曲线图像 2.本组肺的重量为8.2g,兔子重量为1.6kg,本组所测得的肺系数为5.13(正常肺系数约为4~5)。 3.呼吸变浅变慢,心率加快,皮肤黏膜发绀,听诊肺部出现轻度湿罗音。 4.家兔肺水肿前后血气指标 指标肺水肿前肺水肿后ph pco2 mmhg po2 mmhg

家兔实验性肺水肿实验报告

竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔实验性肺水肿实验报告 篇一:家兔实验性肺水肿实验报告 家兔实验性肺水肿实验 实验名称:家兔急性肺水肿实验探讨 实验目的:通过复制家兔实验性急性肺水肿,观察肺水肿的临床表现,分析肺 水肿发病机制。 实验原理:水肿是指组织间隙内的体液增多。肺间质有过量液体积聚和/或溢 入肺泡腔内,称为肺水肿引起肺水肿最常见原因是左心室心力衰竭。水肿液积聚 于肺泡腔内,使肺肿胀有弹性,质变实,重量比正常增加2~3倍。 1.毛细血管血压的增加或胶体渗透压的降低都能引起组织间液的增 加和水肿的形成。 2.当淋巴管阻塞,淋巴液回流障碍时也会导致水肿

3.毛细血管和肺泡上皮通透性增高时,血浆白蛋白从毛细血管和微 静脉壁滤出,于是毛细血管静脉端和微静脉内的胶体渗透压下降, 组织液胶体渗透压上升,导致水肿。 4.肺系数=肺重量(g)/体重(kg) 实验对象:家兔 实验器材:家兔,体重2~3kg;兔手术台、实验动物常用手术器械一套、γ型 气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器(1ml、5ml)及针头各一具、 小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、 输液装置、血压计。 实验试剂:25%乌拉坦、0.9%生理盐水、1%肝素生理盐水、1%肾上腺素溶液 实验步骤: 1.麻醉动物:取家兔一只,称体重,用25%乌拉坦4ml/kg 由兔外侧耳 缘静脉缓慢注入,将动物麻醉后仰卧位固定于手术台 2.气管插管在气管上方做倒“T”型切口,注意先横剪一刀,再向上方

剪开,将气管插管向心脏方向插入,用棉线结扎固定于“u”型管上 3.分离一侧颈总动脉与对侧颈总静脉:剪毛,切开颈部中正皮肤,钝 性分离气管、一侧颈总动脉与对侧颈总静脉,各在其下穿线备用 4.动脉插管:结扎颈总动脉远心端,在其近心端夹动脉夹,在颈总动脉 上用眼科剪剪一楔形小口,由此将充满肝素的细塑料管朝心脏方向插入血管,并 用棉线结扎固定,打开动脉夹,记录血压 5.颈总静脉插管:分离颈总静脉1-2厘米,远心端用线打活结,在结扎 处的近端用眼科剪剪一楔形小口,将输液管排空气后向心脏方向插入,此时打开 输液器,如果有液体滴下,则表明插管成功,用棉线结扎固定 实验观察 1.观察正常的呼吸、血压、呼吸。 2.按100ml/kg,180-200滴/分的速度大量快速的输入生理盐水。 3.观察呼吸、血压。

肺水肿实验报告

篇一:肺水肿实验报告 实验性肺血容量增高性肺水肿 一、实验目的 1. 复制家兔实验性肺水肿 2. 观察肺水肿的表现,并探讨其有关的发病机理。 二、实验药品与器材 生理盐水、乌拉坦、气管插管和与之配套的呼吸描记装置(二道生理记录仪)或生物信号采集 系统、血气分析仪。静脉导管和静脉输液装置,颈部小手术器械,婴儿秤,天平,听诊器,兔 固定台, 1ml 、 2ml 注射器各 2 具,丝线,纱布,滤纸,烧杯等。 三、实验步骤 本实验分为实验组和对照组。 1、将实验组家兔准确称重后,麻醉、仰卧固定于兔台上,剪去颈前部手术视野被毛,切开颈 部前部皮肤,然后分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉并穿线备用。切开气管,插入气管 插管,用丝线结扎固定后将呼吸描记装置与之相连,以描记呼吸。结扎颈外静脉远心端,在近 心端靠近结扎处剪一小口,插入静脉导管,结扎固定后将输液装置与之相接并试行滴注,通畅 后暂停输液。 2、由颈总动脉插入动脉插管以描记血压,由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置缓慢滴人 0.9%的生理盐水以保持管道通畅 3、描记一段正常呼吸,用听诊器听肺的呼吸音。 4、 用Iml 肝素化注射器从耳朵动脉抽血 0 . 5m1,立即将针头插入橡皮塞中以防空气进入。 经血气分析仪测定血液的 ph 、 pac02 、 pa02 、 k+ 、 na+ 、 cl- 等,作为实验前对照。 5、 然后输入37 C (摄氏度)生理盐水,输入量按 100ml/ kg (体重)计算,输液速度 180200 滴/min 。 6、 输药液过程中密切观察机体的变化: ① 呼吸曲线有否变化,有否呼吸急促,困难。 ② 肺部是否出现罗音。 7、 对照组除不使用肾上腺素外,其余实验步骤和条件与实验组相同。 8、上述各组实验完成 以后,分别夹住气管,剪开胸前壁,在气管分叉处用线结扎,防止水肿液溢出。在结扎处上方 剪断气管,然后分离心脏及其血管,将肺取出。用滤纸吸干肺表面的水份后,准确称取肺重 量,以计算肺系数 肺系数 = 肺重量( g ) 体重 (kg ) 正常肺系数约为 4~5 g 。 此后观察肺大体改变,切开肺,注意切面的变化,是否有粉红色泡沫液体溢出(注意其量,性 质,颜色)。还可在显微镜下对比观察肺水肿和正常肺的组织切片。 实验结果 家兔呼吸的变化曲线图像 本组肺的重量为 8.2g ,兔子重量为 1.6kg ,本组所测得的肺系数为 5.13 (正常肺系数 约为 4~5 )。 呼吸变浅变慢,心率加快,皮肤黏膜发绀,听诊肺部出现轻度湿罗音。 家兔肺水肿前后血气指标 肺水肿前 肺水肿后 ph mmhg +- 比较两次血气分析结果, ph 略降 低,二氧化碳分压略下降,但氧分 压升高。解剖家兔的肺显 示没有明 显的病变。 四、实验讨论 本组虽然为对照组,从测得的肺系数来看,可能出现轻微的肺水肿。其机制为:快速注射液 体,机体体循环加速,心脏容量负荷增加,导致肺毛细血管压增大,出现轻微的肺水肿。但也 有可能是由于单纯注射大量液体使测得的肺系数增大。 与本组相对的实验组注射肾上腺素,经一段时间后可观察到气管处有淡粉色的泡沫痰,其肺系 数大于 10 ,即出现明显的肺水肿。其机制为:首先快速注射液体,使得机体体循环加速。肾 上腺素具有缩血管的作用,使大量血量转移至肺循环,致肺毛细血管压明显增加,出现了明显 肺水肿。实验前肺部听诊正常。肺水肿时,由于呼吸道内有体液渗出,形成水泡,水泡破裂后 便可产生湿罗音。本四、 1. 2. 3. 4. 指标 pco2 po2 mmhg hco3 k-7.397 39.1 92.8 23.6 7.0 102 84 7.30428.9 123.7 13.9 3.9 110 60 mmol/l+mmol/lmmol/lmmol/l na cl

家兔实验性肺水肿实验报告

家兔实验性肺水肿实验 实验名称:家兔急性肺水肿实验探讨 实验目的:通过复制家兔实验性急性肺水肿,观察肺水肿的临床表现,分析肺 水肿发病机制。 实验原理:水肿是指组织间隙内的体液增多。肺间质有过量液体积聚和/或溢 入肺泡腔内,称为肺水肿引起肺水肿最常见原因是左心室心力衰竭。水肿液积聚于肺泡腔内,使肺肿胀有弹性,质变实,重量比正常增加2~3倍。 1.毛细血管血压的增加或胶体渗透压的降低都能引起组织间液的增 加和水肿的形成。 2.当淋巴管阻塞,淋巴液回流障碍时也会导致水肿 3.毛细血管和肺泡上皮通透性增高时,血浆白蛋白从毛细血管和微 静脉壁滤出,于是毛细血管静脉端和微静脉内的胶体渗透压下降, 组织液胶体渗透压上升,导致水肿。 4.肺系数=肺重量(g)/体重(kg) 实验对象:家兔 实验器材:家兔,体重2~3kg;兔手术台、实验动物常用手术器械一套、γ型 气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器(1ml、5ml)及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、输液装置、血压计。 实验试剂:25%乌拉坦、0.9%生理盐水、1%肝素生理盐水、1%肾上腺素溶液 实验步骤: 1.麻醉动物:取家兔一只,称体重,用25%乌拉坦4ml/kg由兔外侧耳缘静脉缓慢注入,将动物麻醉后仰卧位固定于手术台 2.气管插管在气管上方做倒“T”型切口,注意先横剪一刀,再向上方剪开,将气管插管向心脏方向插入,用棉线结扎固定于“U”型管上 3.分离一侧颈总动脉与对侧颈总静脉:剪毛,切开颈部中正皮肤,钝性分离气管、一侧颈总动脉与对侧颈总静脉,各在其下穿线备用 4.动脉插管:结扎颈总动脉远心端,在其近心端夹动脉夹,在颈总动脉上用眼科剪剪一楔形小口,由此将充满肝素的细塑料管朝心脏方向插入血管,并用棉线结扎固定,打开动脉夹,记录血压 5.颈总静脉插管:分离颈总静脉1-2厘米,远心端用线打活结,在结扎处的近端用眼科剪剪一楔形小口,将输液管排空气后向心脏方向插入,此时打开输液器,如果有液体滴下,则表明插管成功,用棉线结扎固定

肺水肿实验报告

肺水肿实验报告 篇一:肺水肿实验报告 实验性肺血容量增高性肺水肿 一、实验目的 1.复制家兔实验性肺水肿 2.观察肺水肿的表现,并探讨其有关的发病机理。 二、实验药品与器材 生理盐水、乌拉坦、气管插管和与之配套的呼吸描记装置(二道生理记录仪)或生物信号采集 系统、血气分析仪。静脉导管和静脉输液装置,颈部小手术器械,婴儿秤,天平,听诊器,兔 固定台,1ml、2ml注射器各2具,丝线,纱布,滤纸,烧杯等。 三、实验步骤 本实验分为实验组和对照组。 1、将实验组家兔准确称重后,麻醉、仰卧固定于兔台上,剪去颈前部手术视野被毛,切开颈 部前部皮肤,然后分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉并穿线备用。切开气管,插入气管 插管,用丝线结扎固定后将呼吸描记装置与之相连,以描记呼吸。结扎颈外静脉远心端,在近 心端靠近结扎处剪一小口,插入静脉导管,结扎固定后将输液装置与之相接并试行滴注,通畅 后暂停输液。 2、由颈总动脉插入动脉插管以描记血压,由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置缓慢滴人 0.9%的生理盐水以保持管道通畅 3、描记一段正常呼吸,用听诊器听肺的呼吸音。 4、用lml肝素化注射器从耳朵动脉抽血0.5m1,立即将针头插入橡皮塞中以防空气进入。

经血气分析仪测定血液的ph、pac02、pa02、k+、na+、cl-等,作为实验前对照。 5、然后输入37℃(摄氏度)生理盐水,输入量按100ml/㎏(体重)计算,输液速度180-200滴/min。 6、输药液过程中密切观察机体的变化: ①呼吸曲线有否变化,有否呼吸急促,困难。 ②肺部是否出现罗音。 7、对照组除不使用肾上腺素外,其余实验步骤和条件与实验组相同。8、上述各组实验完成以后,分别夹住气管,剪开胸前壁,在气管分叉处用线结扎,防止水肿液溢出。在结扎处上方 剪断气管,然后分离心脏及其血管,将肺取出。用滤纸吸干肺表面的水份后,准确称取肺重 量,以计算肺系数 肺系数= 肺重量(g) 体重(kg) 正常肺系数约为4~5 g。 此后观察肺大体改变,切开肺,注意切面的变化,是否有粉红色泡沫液体溢出(注意其量,性 质,颜色)。还可在显微镜下对比观察肺水肿和正常肺的组织切片。 四、实验结果 1.家兔呼吸的变化曲线图像 2.本组肺的重量为8.2g,兔子重量为1.6kg,本组所测得的肺系数为 5.13(正常肺系数 约为4~5)。 3.呼吸变浅变慢,心率加快,皮肤黏膜发绀,听诊肺部出现轻度湿罗音。 4.家兔肺水肿前后血气指标 指标肺水肿前肺水肿后ph pco2 mmhg

肺水肿实验报告

1.复制家兔实验性肺水肿 2.观察肺水肿的表现,并探讨其有关的发病机理。 生理盐水、乌拉坦、气管插管和与之配套的呼吸描记装置〔二道生理记录仪或者生物信号采集 系统、血气分析仪。静脉导管和静脉输液装置,颈部小手术器械,婴儿秤,天平,听诊器,兔固定 台,1ml 、 2ml 注射器各 2 具,丝线,纱布,滤纸,烧杯等。 本实验分为实验组和对照组。 1、将实验组家兔准确称重后,麻醉、仰卧固定于兔台上,剪去颈前部手术视野被毛,切开颈部 前部皮肤,然后分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉并穿线备用 。切开气管,插入气管 插管,用丝线结扎固定后将呼吸描记装置与之相连 ,以描记呼吸 。结扎颈外静脉远心端 ,在近 心端挨近结扎处剪一小口 ,插入静脉导管 ,结扎固定后将输液装置与之相接并试行滴注 ,通畅 后暂停输液。 2、 由颈总动脉插入动脉插管以描记血压 , 由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置 缓慢滴人 0.9%的生理盐水以保持管道通畅 3、描记一段正常呼吸,用听诊器听肺的呼吸音。 4、 用 lml 肝素化注射器从耳朵动脉抽血 0.5m1, 立即将针头插入橡皮塞中以防空气 进入 。 经血气分析仪测定血液的 pH 、 PaC0 2 、 Pa0 2 、 K+ 、 Na+ 、 Cl- 等,作为实验前 对照 。 5、然后输入 37℃<摄氏度>生理盐水,输入量按 100ml/㎏〔体重计算,输液速度 180-200 滴 /min 。 6、输药液过程中密切观察机体的变化: ①呼吸曲线有否变化,有否呼吸急促,艰难。

②肺部是否浮现罗音。 ③气管插管口是否有粉红色泡沫液体溢出 。如果上述情况变化不明显可重复使用肾上腺素, 用法及剂量同上 ,直至浮现明显的肺水肿表现 。并迅速从耳朵动脉抽血 0. 5m1, 方法同 上,测定血气指标的变化 。 7、对照组除不使用肾上腺素外,其余实验步骤和条件与实验组相同。 8、上述各组实验完成以后,分别夹住气管,剪开胸前壁,在气管分叉处用线结扎,防止水肿液溢 出。在结扎处上方剪断气管,然后分离心脏及其血管,将肺取出。用滤纸吸干肺表面的水分后, 准确称取肺分量,以计算肺系数 肺分量〔g 体重 正常肺系数约为 4 5 g 。 此后观察肺大体改变,切开肺,注意切面的变化,是否有粉红色泡沫液体溢出〔注意其量,性 质,颜色。还可在显微镜下对照观察肺水肿和正常肺的组织切片。 1.家兔呼吸的变化曲线图象 2.本组肺的分量为 8.2g,兔子分量为 1.6Kg,本组所测得的肺系数为 5.13〔正常肺系数约为 4~5。 3.呼吸变浅变慢,心率加快,皮肤黏膜发绀,听诊肺部浮现轻度湿罗音。 4.家兔肺水肿先后血气指标 指标 肺水肿前 肺水肿后 PH 7.397 7.304 PCO 2 mmHg 39.1 28.9 PO 2 mmHg 92.8 123.7 HCO mmol/L 23.6 13.9 K + mmol/L 7.0 3.9 Na + mmol/L 102 110 肺系数= ~ 3-

肺水肿实验报告

肺水肿实验报告 实验性肺血容量增高性肺水肿 一、实验目得 1。复制家兔实验性肺水肿2、观察肺水肿得表现,并探讨其有关得发病机理。 二、实验药品与器材 生理盐水、乌拉坦、气管插管与与之配套得呼吸描记装置(二道生理记录仪)或生物信号采集系统、血气分析仪、静脉导管与静脉输液装置,颈部小手术器械,婴儿秤,天平,听诊器,兔固定台,1m l、2ml 注射器各 2 具,丝线,纱布,滤纸,烧杯等。 三、实验步骤本实验分为实验组与对照组、 1、将实验组家兔准确称重后,麻醉、仰卧固定于兔台上,剪去颈前部手术视野被毛,切开颈部前部皮肤,然后分离气管及一侧颈外静脉与二侧颈总动脉并穿线备用。切开气管,插入气管插管,用丝线结扎固定后将呼吸描记装置与之相连,以描记呼吸、结扎颈外静脉远心端,在近心端靠近结扎处剪一小口,插入静脉导管,结扎固定后将输液装置与之相接并试行滴注,通畅后暂停输液。 2、由颈总动脉插入动脉插管以描记血压,由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置缓慢滴人 0.9%得生理盐水以保持管道通畅 3、描记一段正常呼吸,用听诊器听肺得呼吸音、4、用 lml 肝素化注射器从耳朵动脉抽血0.5m1,立即将针头插入橡皮塞中

以防空气进入。经血气分析仪测定血液得 pH、PaC0 2 、Pa02 、K+、Na+、Cl-等,作为实验前对照。 5、然后输入37℃(摄氏度)生理盐水,输入量按 100ml/㎏(体重)计算,输液速度 180-20__滴/min。 6、输药液过程中密切观察机体得变化: ①呼吸曲线有否变化,有否呼吸急促,困难。 ②肺部就是否出现罗音。 ③气管插管口就是否有粉红色泡沫液体溢出。如果上述情况变化不明显可重复使用肾上腺素,用法及剂量同上,直至出现明显得肺水肿表现、并迅速从耳朵动脉抽血 0.5m1,方法同上,测定血气指标得变化、 7、对照组除不使用肾上腺素外,其余实验步骤与条件与实验组相同。 8、上述各组实验完成以后,分别夹住气管,剪开胸前壁,在气管分叉处用线结扎,防止水肿液溢出。在结扎处上方剪断气管,然后分离心脏及其血管,将肺取出、用滤纸吸干肺表面得水份后,准确称取肺重量,以计算肺系数 肺系数= 正常肺系数约为 4 ~ 5 g。 此后观察肺大体改变,切开肺,注意切面得变化,就是否有粉红色泡沫液体溢出(注意其量,性质,颜色)、还可在显微镜下对比观察肺水肿与正常肺得组织切片。 四、实验结果 1、家兔呼吸得变化曲线图像

家兔实验性肺水肿实验报告计划

家兔实验性肺水肿实验 实验名称: 家兔急性肺水肿实验商讨 实验目的: 经过复制家兔实验性急性肺水肿,察看肺水肿的临床表现,剖析肺水肿发 病体制。 实验原理: 水肿是指组织空隙内的体液增加。肺间质有过度液体聚集和/ 或溢入肺泡腔内,称为肺水肿惹起肺水肿最常有原由是左心室心力弱竭。水肿液聚集于肺泡腔内,使 肺肿胀有弹性,质变实,重量比正常增添 2~3 倍。 1.毛细血管血压的增添或胶体浸透压的降低都能惹起组织间液的增添和水肿 的形成。 2.当淋巴管堵塞,淋巴液回流阻碍时也会致使水肿 3.毛细血管和肺泡上皮通透性增高时,血浆白蛋白从毛细血管和微静脉壁滤 出,于是毛细血管静脉端和微静脉内的胶体浸透压降落,组织液胶体浸透压上 涨,致使水肿。 4.肺系数 =肺重量〔 g〕/ 体重〔 kg〕 实验对象: 家兔 实验器材: 家兔,体重2~3kg;兔手术台、实验动物常用手术器材一套、γ型气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器〔1ml、5ml〕及针头各一具、小橡 皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、输液装置、血压计。

实验试剂: 25%乌拉坦、 0."9%生理盐水、 1%肝素生理盐水、 1%肾上腺素溶液实验步骤: 1.麻醉动物: 取家兔一只,称体重,用 25%乌拉坦 4ml/kg 由兔外侧耳缘静脉迟缓注入,将动物麻醉后仰卧位固定于手术台 2.气管插管在气管上方做倒“ T型〞切口,注意先横剪一刀,再向上方剪开,将气管插管向心脏方向插入,用棉线结扎固定于“U型〞管上 3.分离一侧颈总动脉与对侧颈总静脉: 剪毛,切开颈部中正皮肤,钝性分离气管、一侧颈总动脉与对侧颈总静脉,各在其下穿线备用 4.动脉插管: 结扎颈总动脉远心端,在其近心端夹动脉夹,在颈总动脉上用眼科剪剪一楔形小口,由此将充满肝素的细塑料管朝心脏方向插入血管,并用棉线结扎固定,打开动脉夹,记录血压 5.颈总静脉插管: 分离颈总静脉 1-2 厘米,远心端用线打活结,在结扎处的近端用眼科剪剪一楔形小口,将输液管排空气后向心脏方向插入,此时打开输液器,假如有液体滴下,那么说明插管成功,用棉线结扎固定 实验察看 1.察看正常的呼吸、血压、呼吸。 2.按 100ml/kg,180-200 滴/ 分的速度大批迅速的输入生理盐水。 3.察看呼吸、血压。 4.液体快输完时,参加

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