(精选)动物麻醉剂及麻醉剂量

(精选)动物麻醉剂及麻醉剂量
(精选)动物麻醉剂及麻醉剂量

动物麻醉方法及给药剂量

一、动物麻醉的目的

1. 清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态,但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制,使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。甚至引起动物死亡或休克。

2. 防止动物伤害实验操作者。

3. 基于人道主义的考虑,麻醉是动物保护所必需采取的措施。

二、麻醉的类型和方法

1. 全身麻醉的方法:吸入麻醉:吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等,其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点,使用最为广泛。

1)大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉:将含有乙醚的棉球/ 纱布放在大烧杯中,将动物放入,封

口。动物先兴奋后抑制,自行倒下。当动物角膜反应迟钝,肌肉紧张度降低时,即可取出动物。如果动物逐渐恢复肌肉紧张(挣扎),可重复麻醉一次,待平静后即可开始试验。如果试验时间较长,可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布,并在实验中注意动物的反应,适时追加乙醚的吸入量,以维持麻醉的深度和实践。

2)猫、兔的乙醚麻醉:将动物放进内装含有乙醚的棉球/ 纱布的麻醉瓶中,封口。经过1~2min,从动物后腿依次出现麻痹现象,而后失去运动能力,表明动物进入麻醉状态。4~6min 后可以将动物麻醉,如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时,说明动物已经深度麻醉,立即取出动物,这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低,角膜反射迟钝,皮肤痛觉消失,可进行试验。

3)犬的乙醚麻醉:首先将犬用绳子绑定,根据犬的大小选择适合的麻醉口罩,将纱布/ 棉花放到口罩内,加入乙醚。一人固定犬的前后肢,另一人用膝盖顶住犬的胸颈处,一手捏住头颈(注意力量,防止窒息),将口罩套在犬嘴上。开始乙醚用量可大一些,之后逐渐减少。犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象,而后呼吸逐渐平稳,肌肉紧张度逐渐消失,角膜反射迟钝,对皮肤刺激无反应,此时可开始试验。

乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚,等呼吸恢复后在继续吸入。随着吸入乙醚麻醉的加深,犬的呼吸加深,肌肉紧张度增加,可能会出现窒息。预防的办法是:在犬每吸入数次乙醚后,取下口罩,让其呼吸一次新鲜空气。

非吸入麻醉:该方法是一种简单方便能够让动物很快进入麻醉期,而且没有明显的兴奋期麻醉方法。一般采用注射的方法,有静脉注射、肌肉注射、腹腔注射等。

静脉注射、肌肉注射主要用于较大的动物的麻醉,如兔、猫、猪、犬等;腹腔注射多用于较小动物的麻醉,如

小鼠、大鼠、沙鼠、豚鼠等。

静脉注射的部位是:兔、猫、猪由耳缘静脉注射,犬由后肢静脉注射,小鼠、大鼠由尾静脉注射。肌肉注射多选择臀部。腹腔注射部位约在腹部后1/3 处略靠外侧(避开肝脏、膀胱)麻醉注意药物的浓度和使用量,后面的内容中介绍。

动物经注射麻醉药物后约几分钟到下,全身无力,反映消失,表明已经达到适宜的麻醉效果,是手术最佳的时间。接近苏醒时,动物的四肢开始抖动,此时如果手术没有结束可采用乙醚麻醉。在手术过程中如果发现动物抽搐、排尿,说明动物麻醉过深,是死亡的前兆,应立即进行急救。

动物做完手术后应注意保温,促使其苏醒。

注意事项

1)麻醉前注意:动物应禁食,大动物禁食10~12 小时;不能使用泻剂,因为泻剂可降低血液的碱储,增加血液和组织的酸度,在麻醉和失血时容易发生酸中毒,容易降低损伤组织的抗感染能力;用犬做长时间的实验(1小时以上)时应灌肠,排除粪便;应检查麻醉剂质量、数量是否满足要求,麻醉固定器是否破损,深度麻醉应准备急救器材、药品;准确计算麻醉的剂量和浓度,书中介绍的麻醉剂量仅供参考;要考虑麻醉剂的纯度,如果使用国产的应增加麻醉剂的量。

2)麻醉时注意:静脉注射必须缓慢,同时观察肌肉的紧张度、角膜反射和对皮肤疼痛的反应,当这些活动明显减弱或消失时,要立即停止注射并进行抢救。

3)麻醉后注意:采取保温措施,在麻醉期间动物的体温调节机能受到抑制,会出现提问下降,影响试验结果;必须保持动物的气道通畅和组织(眼球、舌、肠等)的营养;麻醉过深情况下应急救措施。

2 .局部麻醉方法

局部麻醉的方法常采用的是浸润麻醉。浸润麻醉时将麻醉药物注射在皮肤、肌下组织或手术视野深部组织,以阻断用药局部的神经传导,使其痛觉消失。

进行局部麻醉时应首先将动物固定好,后在实验操作的局部区域,用皮试针头作皮内注射,形成橘皮样皮丘。然后换成局麻长针头,由皮点进针,放射到皮点周围继续注射,直到要求麻醉区域的皮肤都浸润到为止。可以根据实验操作的要求的深度按照皮下、筋膜、肌肉、腹膜或骨膜的顺序,依次注入麻药,以达到麻醉神经末梢的目的。

三、麻醉药物与麻醉剂用量(后续)不同动物的全身麻醉剂用量和用法

动物麻醉剂及麻醉剂量

动物麻醉方法及给药剂量 一、动物麻醉的目的 1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态,但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制,使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。甚至引起动物死亡或休克。 2.防止动物伤害实验操作者。 3.基于人道主义的考虑,麻醉是动物保护所必需采取的措施。 二、麻醉的类型和方法 1.全身麻醉的方法: 吸入麻醉:吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等,其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点,使用最为广泛。 1)大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉:将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中,将动物放入,封口。动物先兴奋后抑制,自行倒下。当动物角膜反应迟钝,肌肉紧张度降低时,即可取出动物。如果动物逐渐恢复肌肉紧张(挣扎),可重复麻醉一次,待平静后即可开始试验。如果试验时间较长,可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布,并在实验中注意动物的反应,适时追加乙醚的吸入量,以维持麻醉的深度和实践。 2)猫、兔的乙醚麻醉:将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中,封口。经过1~2min,从动物后腿依次出现麻痹现象,而后失去运动能力,表明动物进入麻醉状态。4~6min后可以将动物麻醉,如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时,说明动物已经深度麻醉,立即取出动物,这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低,角膜反射迟钝,皮肤痛觉消失,可进行试验。3)犬的乙醚麻醉:首先将犬用绳子绑定,根据犬的大小选择适合的麻醉口罩,将纱布/棉花放到口罩内,加入乙醚。一人固定犬的前后肢,另一人用膝盖顶住犬的胸颈处,一手捏住头颈(注意力量,防止窒息),将口罩套在犬嘴上。开始乙醚用量可大一些,之后逐渐减少。犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象,而后呼吸逐渐平稳,肌肉紧张度逐渐消失,角膜反射迟钝,对皮肤刺激无反应,此时可开始试验。 乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚,等呼吸恢复后在继续吸入。随着吸入乙醚麻醉的加深,犬的呼吸加深,肌肉紧张度增加,可能会出现窒息。预防的办法是:在犬每吸入数次乙醚后,取下口罩,让其呼吸一次新鲜空气。

实验动物手术及麻醉

实验动物手术及麻醉 一、概论 实验操作过程为减轻动物的疼痛及紧迫,常需给予止痛或麻醉。动物麻醉属医疗行为,因此不论是实验前对麻醉药物与方式的选择,或麻醉前中后对动物生理心理状态的评估,均需兽医师专业知识的建议。动物的麻醉必须兼顾:(1)不影响实验结果;(2)临床实际可行;(3)避免动物承受非必要的痛苦。适当的麻醉不但能减轻动物的痛苦,也能减少研究人员承受过多的精神压力。 1. 名词解释: ?Analgesia:止痛,对疼痛失去敏感性。 ?Tranquillization:精神安定,动物呈现一种行为改变状态,精神与动作迟缓,松懈,对周围环境的反应冷淡、对小疼痛常不在意。 ?Sedation:镇静,轻微程度的中枢神经抑制状态,保持醒觉,但安静。 ?Anesthesia:麻醉,以药物或其他方式抑制动物局部(周边性)或全体(中枢性)神经组织的活性,使动物部分或整个身体完全失去感觉作用。 ?Local anesthesia:局部麻醉。 ?General anesthesia:全身麻醉。完全无知觉与感觉(中枢性)。 ?Surgical anesthesia:外科手术麻醉。完全无知觉与感觉,并有充分的肌肉松弛和痛感消失。 2. 手术分类 实验动物的手术可分为存活手术(Survival surgery)和不存活手术(Nonsurvival surgery)两类,前者指麻醉后或所有手术结束后动物还需生存着,后者指麻醉后或所有手术结束后动物即给与安乐死。进行存活手术时,不论是剖腹、截肢或注射药物、处理伤口,皆需严格执行手术部位的剃毛消毒(beta-iodine scrub/alcohol),材料灭菌(autoclave)及无菌操作(surgical glove & aseptic operation)视实验需求动物可在术前注射抗生素以避免感染。如进行不存活手术,虽不需存活手术般严格无菌操作,但至少要行操作部位的剃毛消毒和戴手套。 存活手术依对动物的影响程度区分为Major与Minor。Major survival surgery指任何需将体腔暴露在外或严重影响动物正常身体与生理功能的手术,例如:胸腔手术、关节手术、截肢手术...等;Minor survival surgery则是指不需暴露体腔或者对动物生理影响很小的手术,例如:伤口缝合、安装周边血管的导管……基于人道考量单一动物不可执行重复的Major survival surgery,如有必要需于动物实验申请表内提出详细的说明,取得IACUC同意后才可执行。 二、术前照顾 犬、猫、灵长类与猪在进行麻醉前8至12小时需禁食。而小型啮齿类动物及兔不易发生呕吐,因此一般手术前不需禁食,天竺鼠的唾液分泌较多,需多加注意。任何怀孕或健康不良之动物皆须审慎评估麻醉对动物的影响。手术前也需有急救动物的概念,预先准备Atropine、CaCl2 10%、Dexamethasone、Dopamine、Doxapram、Epinephrineate 等急救药物。 (一) 麻醉前给药

实验动物的麻醉方法

实验动物麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉,保障实验动物的安全,使动物在实验中服从操作,确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 (一)常用局部麻醉剂:普鲁卡因,此药毒性小,见效快,常用于局部浸润麻醉,用时配成0.5%~1%;利多卡因,此药见效快,组织穿透性好,常用1%~2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉,也可用0.25%~0.5%溶液作局部浸润麻醉。 (二)常用全身麻醉剂: 1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动,并且容易引起窒息,在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多,如麻醉深度易于掌握,比较安全,而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉,在麻醉初期出现强烈的兴奋现象,对呼吸道又有较强的刺激作用,因此,需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉),通常在麻醉前20-30分钟,皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5~10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性,提高痛阈,还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用,可

避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞,或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中,需要继续给予吸入乙醚,以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程中,仍用麻醉口罩给药,而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中,要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失,瞳孔突然放大,应立即停止麻醉。万一呼吸停止,必须立即施行人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2. 苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便,在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法为:狗腹腔注射80~100mg/kg 体重,静脉注射70~120mg/kg体重( 一般每公斤体重给70~80mg即可麻醉,但有的动物要100~120mg才能麻醉,具体用量可根据各个动物的敏感性而定)。兔腹腔注射150~200mg/kg 体重。 3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长,一次给药的有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般使用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用,药品价格也很便宜。用时配成1~3%生理盐水溶液,必要时可加温溶解,配好的药液在常温下放置1~2月不失药效。静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期,使用剂量及方法为:狗、猫、兔静脉注射30~35mg/kg体重,腹腔注射40~45mg/kg体重。 4. 硫喷妥钠为黄色粉末,有硫臭,易吸水。其水溶液不稳定,故必须现用现配,常用浓度为1~5%。此药作静脉注射时,由于药液迅速进入脑组织,故诱导快,动物很快被麻醉。但苏醒也很快,一

实验动物的麻醉方法

实验动物麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程屮所至的疼痛和不适感觉,保障实验动物的安全,使动物在实验屮服从操作,确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 (一)常用局部麻醉剂:普鲁卡因,此药毒性小,见效快,常用于局部浸润麻醉,用时配成0.5 % 1%;利多卡因,此药见效快,组织穿透性好,常用 1 %?2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉, 也可用0. 25 %-0. 5 %溶液作局部浸润麻醉。 (二)常用全身麻醉剂: 1. 乙醯乙瞇吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。但由于乙瞇局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动,并且容易引起窒息,在麻醉过程屮要注意。但总起来说乙醛麻醉的优点 多,如麻醉深度易于掌握,比较安全,而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉,在麻醉初期岀现强烈的兴奋现象,对呼吸道又有较强的刺激作用,因此,需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉),通常在麻醉前20- 30分钟,皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5-10mg)及阿托品(每公斤体重0. lmg)。盐酸吗啡可降低屮枢神经系统兴奋性,提高痛阈,还可节省乙醯用量及避免乙醸麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醸刺激呼吸道分泌粘液的作用,可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞,或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中,需要继续给予吸入乙醯,以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程屮, 仍用麻醉口罩给药,而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程屮,要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失,瞳孔 突然放大,应立即停止麻醉。万一呼吸停止,必须立即施行人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2. 苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便,在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能 无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法为:狗腹腔注射80-100mg/kg体重,静脉注射70-120mg/kg体重(一般每公斤体重给70-80mg即可麻醉,但有的动物要100-120mg才能麻醉,具体用量可根据各个动物的敏感性而定)。兔腹腔注射150-200mg/kg体重。 3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长,一次给药的有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般使 用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用,药品价格也很便宜。用时配成1-3% 生理盐水溶液,必要时可加温溶解,配好的药液在常温下放置1~2月不失药效。静脉或腹腔注 射后很快就进入麻醉期,使用剂量及方法为:狗、猫、兔静脉注射30-35mg/kg体重,腹腔注射 40 ^45mg/kg 体重。 4. 硫喷妥钠为黄色粉末,有硫臭,易吸水。其水溶液不稳定,故必须现用现配,常用浓度为 5%o此药作静脉注射时,由于药液迅速进入脑组织,故诱导快,动物很快被麻醉。但苏醒也很快, 一次给药的麻醉时效仅维持半至一小时。在时间较长的实验过程中,可重复注射,以维持一定的麻醉深度。

动物麻醉剂及麻醉剂量

一、动物麻醉的目的 1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态,但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制,使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。甚至引起动物死亡或休克。 2.防止动物伤害实验操作者。 3.基于人道主义的考虑,麻醉是动物保护所必需采取的措施。 二、麻醉的类型和方法 1.全身麻醉的方法: 吸入麻醉:吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等,其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点,使用最为广泛。 1)大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉:将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中,将动物放入,封口。动物先兴奋后抑制,自行倒下。当动物角膜反应迟钝,肌肉紧张度降低时,即可取出动物。如果动物逐渐恢复肌肉紧张(挣扎),可重复麻醉一次,待平静后即可开始试验。如果试验时间较长,可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布,并在实验中注意动物的反应,适时追加乙醚的吸入量,以维持麻醉的深度和实践。 2)猫、兔的乙醚麻醉:将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中,封口。经过1~2min,从动物后腿依次出现麻痹现象,而后失去运动能力,表明动物进入麻醉状态。4~6min后可以将动物麻醉,如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时,说明动物已经深度麻醉,立即取出动物,这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低,角膜反射迟钝,皮肤痛觉消失,可进行试验。3)犬的乙醚麻醉:首先将犬用绳子绑定,根据犬的大小选择适合的麻醉口罩,将纱布/棉花放到口罩内,加入乙醚。一人固定犬的前后肢,另一人用膝盖顶住犬的胸颈处,一手捏住头颈(注意力量,防止窒息),将口罩套在犬嘴上。开始乙醚用量可大一些,之后逐渐减少。犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象,而后呼吸逐渐平稳,肌肉紧张度逐渐消失,角膜反射迟钝,对皮肤刺激无反应,此时可开始试验。 乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚,等呼吸恢复后在继续吸入。随着吸入乙醚麻醉的加深,犬的呼吸加深,肌肉紧张度增加,可能会出现窒息。预防的办法是:在犬每吸入数次乙醚后,取下口罩,让其呼吸一次新鲜空气。 非吸入麻醉:该方法是一种简单方便能够让动物很快进入麻醉期,而且没有明显的兴奋期麻醉方法。一般采用注射的方法,有静脉注射、肌肉注射、腹腔注射等。 静脉注射、肌肉注射主要用于较大的动物的麻醉,如兔、猫、猪、犬等;腹腔注射多用于较小动物的麻醉,如小鼠、大鼠、沙鼠、豚鼠等。

动物常用麻醉药及应用

动物常用麻醉药及应用 舒泰麻醉剂使用说明书简要说明: 舒泰是一种新型分离麻醉剂,它含镇静剂替来他明和肌松剂唑拉西泮。在全身麻醉时,舒泰能够保证诱导时间短、极小的副作用和最大的安全性。在经肌肉盒静脉途径注射时,舒泰具有良好的局部受耐性。舒泰是一种非常安全的麻醉剂。适用范围 用于犬、猫和野生动物的保定及全身麻醉。应用剂量麻醉前给药 注射舒泰前15分钟按以下剂量给予硫酸阿托品犬:0.1mg/kg ,皮下注射猫:0.05mg/kg ,皮下注射诱导麻醉剂剂量 犬:7—25mg/kg ,肌肉注射5—10mg/kg ,静脉注射 犬:10—15mg/kg ,肌肉注射5—7.5mg/kg ,静脉注射 麻醉维持时间:根据剂量不同,从20到60分钟不等。维持麻醉剂量 建议给予初始剂量的1/3—1/2 ,静脉注射。野生动物:使用详细说明 灵长类动物(平均值)肌肉注射..........................4—6mg/kg 。猫科动物(平均值)肌肉注射..........................4—7.5mg/kg 。犬科动物(平均值)肌肉注射..........................5—11mg/kg 。熊科动物(平均值)肌肉注射..........................3.5—8mg/kg 。牛科动物(平均值)肌肉注

射..........................3.5—33mg/kg 。灵猫科动物(平均值)肌肉注射..........................2.5—6mg/kg 。小鼠(平均值)肌肉注射..........................50—75mg/kg 。大鼠(平均值)肌肉注射..........................50—75mg/kg 。豚鼠(平均值)肌肉注射..........................20mg/kg 。仓鼠(平均值)肌肉注射..........................50mg/kg 。应用指南 为了获得需要的麻醉药浓度,可将含有效成分的冻干粉与总量无菌溶液混合(舒泰20:20mg/ml ;舒泰50:50mg/ml ;舒泰100:100mg/ml )。野生动物需要投掷注射时,可将减少加入溶剂,从而使舒泰浓度提高到400mg/ml 。应用禁忌 用有机磷盒氨基酸酯进行系统治疗的动物。严重的心机能和呼吸机能不全。胰脏功能不全。患严重高血压。 注意事项 舒泰只能用于动物。 建议麻醉前12小时禁食。 动物处于麻醉恢复期时应保证环境黑暗和安静。注意麻醉动物的保暖,防止热量过度散失。与其他药物的配伍禁忌 不要与以下药物一起联合应用: *吩噻嗪类药物(乙酰丙嗪、氯丙嗪等),一起应用抑制心肺功能和引起体温降低。 *氯霉素,一起应用引起麻醉药物的清除率。贮存 舒泰冻干粉在至少2年内是稳定的。

实验动物麻醉

实验动物麻醉 所有可能引起实验动物疼痛或不适的实验方案都必须使用合适的麻醉剂、止痛剂和镇静剂。如麻醉剂、止痛剂或镇静剂可能影响实验数据,该实验方案可不使用麻醉剂、止痛剂或镇静剂,但必须在实验方案中予以详细说明,并在实验动物管理委员会批准后方可开展相关实验。 包括动物品系、使用途径、体重、性别、动物健康状况、温度、其它同时使用的药物在内的多种因素影响麻醉剂、止痛剂或镇静剂的使用剂量和有效时间。因此,在使用麻醉剂时必须时刻监测实验动物的麻醉深度,以防止过度麻醉导致动物死亡或麻醉不足无法缓解动物的疼痛。足底反射、角膜反射、肌肉紧张和对皮肤夹捏的反应是检测动物麻醉深度的有用指标,在条件许可时,推荐测量动物心率、血压、呼吸频率及体温作为检测动物麻醉深度更为精确的指标。 使用麻醉剂时,一定要注意方法的可靠性,根据不同的动物选择合适的方法。1.麻醉剂的用量,除参照一般标准外,还应考虑个体对药物的耐受性不同。一般说,衰弱和过胖的动物,其单位体重所需剂量较小。在使用麻醉剂过程中,特别是使用巴比妥类药物时,一般应首先使用较小剂量,随时检查动物的反应情况,并逐步提高剂量。 2.动物在麻醉期体温容易下降,要采取保温措施。相比清醒的动物,麻醉后的动物反应相对迟钝。因此,推荐使用循环水浴保温垫,不推荐使用照明灯、电加热器等不易控制温度的设备,以免灼伤实验动物。 3.静脉注射麻醉剂发挥作用速度快,静脉注射必须缓慢,同时观察肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时,应立即停止注射。配制的药液浓度要适中,不可过高,以免麻醉过急;但也不能过低,以减少注入溶液的体积。实验操作涉及腹腔注射时,不应使用腹腔注射麻醉剂。 4.气温较低时,麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。 5.注射麻醉剂前12小时实验动物应禁食,以防止食物回流。注射前3小时应限制饮水。 6.如需使用抗生素以防止术后感染,手术前1小时应肌肉注射抗生素,并于手术过程中静脉注射抗生素。 7.手术过程中如实验动物大量失血,应补充大约3倍失血体积的0.9%生理盐水。 肌肉舒张剂 肌肉舒张剂必须与全身麻醉同时使用。如需使用肌肉舒张剂,必须在实验动物研究方案中予以详细说明,并得到实验动物管理委员会的批准。 止痛剂 不同动物疼痛持续时间不同,因此应密切观察实验动物的行为等指标。对创口较大的手术,至少在术后48小时内应给予实验动物适当的止痛剂,对较小的手术,至少在术后24小时内应给予实验动物适当的止痛剂。如24小时或48小时后实验动物表现出明显的疼痛,应持续给药,并应与兽医讨论实验动物是否存在其它的健康问题。通常同时给予两种以上不同的止痛剂有更好的效果,如鸦片类止痛剂与非类固醇类消炎药共同使用。在手术前提前使用止痛剂也有助于帮助实验动物减轻疼痛感,并可减小麻醉剂和止痛剂的使用剂量。

动物实验给药剂量换算

动物实验给药剂量换算 医学 2009-02-19 14:24 阅读672 评论2 字号:大中小 关于不同实验动物之间或者实验动物与人之间的剂量如何作“等效”换算的 问题。分以下几点来探讨这个问题。 第一、等效剂量系数折算法换算 第二、体表面积法换算 第三、系数折算法与体表面积法的比较 第四、系数折算法的相对误差 第五、小孩与成人的剂量换算 第六、少常用实验动物剂量间的换算 第七、不同给药途径间的剂量换算 第八、LD50与药效学剂量间的换算 我们在实验中估算一种药物或化合物的使用剂量的时候,差不多是来源于 两条途径: 一是查文献,参考别人使用的剂量。有时有现成的,可直接用。有时没有我们所用动物的剂量,但有其它实验动物的。也有的是有临床用量的,但没有实验动物的。这样,我们就得进行换算。这是我们今天要谈的这种方法。 另一种方法就是根据自己或文献上有关急性毒性的数据来进行估算,以期采用合适的剂量。一般参考数据是LD50。至于该选择LD50的多少分之一来作为参考剂量,众说纷纭。这个我们再另题讨论。 下面我来说一说用第一种方法进行如何换算。

目前我们大多数人用的方法,是参考徐叔云教授主编的《药理实验方法学》。在其附录中有一个表,列出了人和动物间按体表面积折算的等效剂量比值。这个表,几乎被药理专业的人们奉为经典,一直在科研中沿用。 表如下所示: screen.width-333)this.width=screen.width-333" align=absMiddle border=0> 请注意最后一行,这个就是我们通常用到的。把人的临床剂量转换为实验 动物的剂量。 试着换算一个。 如:人的临床剂量为X mg/kg ,换算成大鼠的剂量: 大鼠的剂量=X mg/kg×70kg×0.018/200g=X mg/kg×70kg×0.018/0.2kg =6.3 X mg/kg. 这也就是说,按单位体重的剂量来算,大鼠的等效剂量相当于人的6.3倍。 在这里,我们要看到每种动物的体重(包括人),在上表中以蓝色显示的。还要注意到折算系数,也就是表中以红色所示的。将人的剂量转换成哪种动物的,就在相应的动物那一列下找到与人的相交的地方的折算系数,将剂量乘以折算系数,再乘上人的体重与那种动物体重的比值。注意体重的单位要化成一致。这个折算系数是以上表中蓝色所示的标准体重计算得来的。 依此类推,我们可以算出小鼠、豚鼠等其它动物剂量与人的比值。 小鼠的剂量=X mg/kg×70kg×0.0026/20g=X mg/kg×70kg×0.0026/0.02 kg=9.1 X mg/kg. 豚鼠的剂量=X mg/kg×70kg×0.031/400g=X mg/kg×70kg×0.031/0.4kg =5.42 X mg/kg. 兔的剂量=X mg/kg×70kg×0.07/1.5kg =3.27 X mg/kg.

实验动物的麻醉

八、实验动物的麻醉 在一些动物实验,特别是手术等实验,为减少动物的挣扎和保持其安静,并便于操作,常对动物采用必要的麻醉。由于动物种属间的差异等情况,所采用的麻醉方法和选用的麻醉剂亦有不同。 (一)常用的麻醉剂 动物实验中常用的麻醉剂分为三类,即挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂和中药麻醉剂。 1.挥发性麻醉剂这类麻药包括乙醚、氯仿等。乙醚吸入麻醉适用于各种动物,其麻醉量和致死量差距大,所发安全度亦大,动物麻醉深度容易掌握,而且麻后苏醒较快。其缺点是对局部刺激作用大,可引起上呼吸道粘膜液体分泌增多,再通过神经反射可影响呼吸、血压和心跳活动,并且容易引起窒息,故在乙醚吸入麻醚时必需有人照看,以防麻醉过深而出现上情况。 2.非挥发性麻醉剂这类麻醉剂种类较多,包括苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠等巴比妥类的衍生物,氨基甲酸乙脂和水合氯醛。这些麻醉剂使用方便,一次给药可维持较长的麻醉时间,麻醉过程较平衡,动物无明显挣扎现象。但缺点是苏醒较慢。 3.中药麻醉剂动物实验时有时也用到象洋金花和氢溴酸东莨菪碱等中药麻醉剂,但由于其作用不够稳定,而且常需加佐剂麻醉效果才能理想,故在使用过程中不能得到普及,因而,多数实验室不选用这类麻醉剂进行麻醉。 (二)动物的麻醉方法 1.全身麻醉 (1)吸入法用一块圆玻璃板和一个钟罩或一个密闭的玻璃箱作为挥发性麻醉剂的容器,多选用乙醚作麻药。麻醉时用几个棉球,将乙醚倒可其中,迅速转入钟罩或箱内,让其挥发,然后把待麻醉动物投入,约隔4-6分钟即可麻醉,麻醉后应立即取出,并准备一个蘸有乙醚的棉球小烧杯,在动物麻醚变浅时给套在鼻上使其补吸麻药。本法最适于大、小鼠的短期操作性实验的麻醉,当然也可用于较大的动物只是要求有麻醉口罩或较大的玻璃箱罢了。由于乙醚燃点很低,遇火极易燃烧,所以在使用时,一定要远离炎源。 (2)腹腔和静脉给药麻醉法 非挥发性和中药麻醉剂均可用作腹腔和静脉注射麻醉,操作简便,是实验室最常采用的方法之一。腹腔给药麻醉多用于大小鼠和豚鼠,较大的动物如兔、狗等则多用静脉给药进行麻醉。由于各麻醉剂的作用长短以及毒性的差别。所以在腹腔和静脉麻醉时,一定控制药物的浓度和注射量(见表11-6)。

实验动物的麻醉方法知识

实验动物的麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所致的疼痛和不适感觉,保障实验动物的安全,使动物在实验中服从操作,确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 (一)常用局部麻醉剂:普鲁卡因,此药毒性小,见效快,常用于局部浸润麻醉,用时配成 0.5%~1%;利多卡因,此药见效快,组织穿透性好,常用1%~2%溶液作为大动物 神经干阻滞麻醉,也可用0.25%~0.5%溶液作局部浸润麻醉。 (二)常用全身麻醉剂: 1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动,并且容易引起窒息,在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多,如麻醉深度易于掌握,比较安全,而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉,在麻醉初期出现强烈的兴奋现象,对呼吸道又有较强的刺激作用。因此,需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉),通常在麻醉前20-30分钟,皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重1~2mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。 盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性,提高痛阈,还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用,可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞,或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中,需要继续给予吸入乙醚,以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程中,仍用麻醉口罩给药,而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中,要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失,瞳孔突然放大,应立即停止麻醉。并施行必要的人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2. 苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便,在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法:大鼠腹腔注射40-50mg/kg体重。 3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长,一次给药的有效时间可延续2-4小时,所以十分适合一般使用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用,药品价格也很便宜。用时配成1~3%生理盐水溶液,必要时可加温溶解,配好的药液在常温下放置1~2月不失药效。静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期,使用剂量及方法为:狗、猫、兔静脉注射30~35mg/kg体重,腹腔注射40~45mg/kg体重,大鼠腹腔注射40-50mg/kg体重。但动物个体间差异颇大。用于兔、鼠死亡率较高;用于大等较大动物,亦需要辅助呼吸和其他复苏措施,且完全苏醒需要6~8小时。镇痛效果差,恢复时间长,尤其是为延长麻醉额外加量后更易发生。近来使用日趋减少。

动物麻醉剂及麻醉剂量

动物麻醉剂及麻醉剂量 Document serial number【NL89WT-NY98YT-NC8CB-NNUUT-NUT108】

动物麻醉方法及给药剂量 一、动物麻醉的目的 1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态,但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制,使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。甚至引起动物死亡或休克。 2.防止动物伤害实验操作者。 3.基于人道主义的考虑,麻醉是动物保护所必需采取的措施。 二、麻醉的类型和方法 1.全身麻醉的方法: 吸入麻醉:吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等,其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点,使用最为广泛。 1)大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉:将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中,将动物放入,封口。动物先兴奋后抑制,自行倒下。当动物角膜反应迟钝,肌肉紧张度降低时,即可取出动物。如果动物逐渐恢复肌肉紧张(挣扎),可重复麻醉一次,待平静后即可开始试验。如果试验时间较长,可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布,并在实验中注意动物的反应,适时追加乙醚的吸入量,以维持麻醉的深度和实践。 2)猫、兔的乙醚麻醉:将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中,封口。经过1~2min,从动物后腿依次出现麻痹现象,而后失去运动能力,表明动物进入麻醉状态。4~6min后可以将动物麻醉,如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时,说明动物已经深度麻醉,立即取出动物,这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低,角膜反射迟钝,皮肤痛觉消失,可进行试验。 3)犬的乙醚麻醉:首先将犬用绳子绑定,根据犬的大小选择适合的麻醉口罩,将纱布/棉花放到口罩内,加入乙醚。一人固定犬的前后肢,另一人用膝盖顶住犬的胸颈处,一手捏住头颈(注意力量,防止窒息),将口罩套在犬嘴上。开始乙醚用量可大一些,之后逐渐减少。犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象,而后呼吸逐渐平稳,肌肉紧张度逐渐消失,角膜反射迟钝,对皮肤刺激无反应,此时可开始试验。

2008 实验动物常用镇静、麻醉、止痛药剂参考剂量表

實驗動物常用鎮靜、麻醉、止痛藥劑參考劑量表 -2008 周京玉 使用說明: 1.以下內容為國內常用實驗動物之鎮靜、麻醉、止痛藥劑參考劑量表。 2.本表內容僅供研究人員參考用, 實際劑量視實驗動物品種、品系、性別、年齡、生理狀況、 飼養條件、實驗需求而調整之。 3.由於多數藥劑屬管制藥品, 研究人員需先取得相關證照後使用。人員不得為了迴避管制藥品 相關法令而選擇使用非管制類藥劑, 除非該藥劑有科學研究之需求、並能提供充分的的實驗依據供動物實驗管理小組審核。 4.關於藥物的選擇、投藥方式等, 建議與獸醫師商討。如需進行外科手術, 動物必須進入手術 期麻醉之深度, 研究人員需確認動物已進入適當的麻醉深度(眼瞼反射、喉頭反射、腳趾反射), 再進行手術。 5.CO2+ 10-50%O2 混合氣體其作用時間較短,且因兩種氣體密度不同,易造成O2在鋼瓶上 層、CO2在底部,導致氣體混合不均,需注意。 6.AVERTIN需經動物實驗管理委員會審查同意,確定有其科學研究之需求與依據、並且無其 他替代藥物可使用時,才得以使用本藥劑。如製作及保存得宜,於4℃避光冷藏可保存4個月,但是如果製作或儲藏時未適當地避光,將使動物致命,因此建議新鮮泡製使用,並於每次使用前確認其pH值>5。本藥劑由於對腹腔刺激性強,不得重複注射於同一隻動物。 7.有些藥物如Pentobarbital、ketamine等,當靜脈注射藥劑不慎漏出血管外時,建議以生理 食鹽水稀釋5﹪lidocaine後注射至藥劑洩漏周圍組織,以減低動物的疼痛並降低組織潰爛或壞死的後遺症。 8.非類固醇類止痛藥(NSAID)對狗和貓的副作用大,建議使用前與獸醫師商討。 9.由於非人類靈長類(NHP)品種差異性大, 本劑量表以Rhesus monkey (M.Mulatta) 為對 象撰寫。 10.參考資料: 1)Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals. Dennis F. Kohn.et.al., 1997.Academic Press. 2)Lab Animals. (2003) 37 (Suppl.1) BVAAWF/FRAME/RSPCA/UFAW Joint Working Group on Refinement. 3)NIH Anesthesia and Analgesia Fornulary. 2005.

实验动物的麻醉方法

实验动物的麻醉方法 This model paper was revised by the Standardization Office on December 10, 2020

实验动物麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉,保障实验动物的安全,使动物在实验中服从操作,确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 (一)常用局部麻醉剂:普鲁卡因,此药毒性小,见效快,常用于局部浸润麻醉,用时配成 0.5%~1%;利多卡因,此药见效快,组织穿透性好,常用1%~2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉,也可用0.25%~0.5%溶液作局部浸润麻醉。 (二)常用全身麻醉剂: 1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动,并且容易引起窒息,在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多,如麻醉深度易于掌握,比较安全,而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉,在麻醉初期出现强烈的兴奋现象,对呼吸道又有较强的刺激作用,因此,需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉),通常在麻醉前20-30分钟,皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5~10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性,提高痛阈,还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用,可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞,或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中,需要继续给予吸入乙醚,以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程中,仍用麻醉口罩给药,而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中,要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失,瞳孔突然放大,应立即停止麻醉。万一呼吸停止,必须立即施行人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2.苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便,在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法为:狗腹腔注射80~100mg/kg体重,静脉注射70~120mg/kg体重(一般每公斤体重给70~80mg即可麻醉,但有的动物要100~120mg才能麻醉,具体用量可根据各个动物的敏感性而定)。兔腹腔注射150~200mg/kg体重。 3.戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长,一次给药的有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般使用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显着抑制作用,药品价格也很便宜。用时配成1~3%生理盐水溶液,必要时可加温溶解,配好的药液在常温下放置1~2月不失药效。静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期,使用剂量及方法为:狗、猫、兔静脉注射30~35mg/kg体重,腹腔注射40~45mg/kg体重。 4.硫喷妥钠为黄色粉末,有硫臭,易吸水。其水溶液不稳定,故必须现用现配,常用浓度为1~5%。此药作静脉注射时,由于药液迅速进入脑组织,故诱导快,动物很快被麻醉。但苏醒也很快,一次给药的麻醉时效仅维持半至一小时。在时间较长的实验过程中,可重复注射,以维持一定的麻醉深度。此药对胃肠道无副作用,但对呼吸有一定抑制作用,由于其抑制交感神经较副交感神经为强,常有喉头痉挛,因此注射时速度必须缓慢。实验剂量和方法:狗静脉注射20~ 25mg/kg体重;兔静脉注射7~10mg/kg体重。静脉注射速度以15秒钟注射2ml左右进行。小鼠1%溶液腹腔注射0.1~0.3ml/只;大鼠0.6~0.8ml/只。 5.巴比妥钠使用剂量及方法:狗静脉注射225mg/kg体重;兔腹腔注射200mg/kg体重;鼠皮下注射200mg/kg体重。 6.氨基甲酸乙酯此药是比较温和的麻醉药,安全度大。多数实验动物都可使用,更适合于小动物。一般用作基础麻醉,如使用全部过程都用此麻醉时,动物保温尤为重要。使用时常配成20~25%水溶液,狗、兔静脉、腹腔注射0.75~1g/kg体重。但在作静脉注射时必须溶在生理盐水中,配成5%或10%溶液,及每公斤体重注射10~20ml。鼠1.5~2g/kg体重,由腹腔注射。以上麻醉药种类虽较多,但各种动物使用的种类多有所侧重。如做慢性实验的动物常用乙醚吸入麻醉(用吗啡和阿托品作基础麻醉);急性动物实验对狗、猫和大鼠常用戊巴比妥钠麻醉;对家兔

动物麻醉剂及麻醉剂量之令狐文艳创作

动物麻醉方法及给药剂量 令狐文艳 一、动物麻醉的目的 1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态,但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制,使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。甚至引起动物死亡或休克。 2.防止动物伤害实验操作者。 3.基于人道主义的考虑,麻醉是动物保护所必需采取的措施。 二、麻醉的类型和方法 1.全身麻醉的方法: 吸入麻醉:吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等,其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点,使用最为广泛。 1)大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉:将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中,将动物放入,封口。动物先兴奋后抑制,自行倒下。当动物角膜反应迟钝,肌肉紧张度降低时,即可取出动物。如果动物逐渐恢复肌肉紧张(挣扎),可重复麻醉一次,待平静后即可开始试验。如果试验时间较长,可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布,并在实验中注意动物的反应,适时追加乙醚的吸入量,以维持麻醉的深度和实践。

2)猫、兔的乙醚麻醉:将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中,封口。经过1~2min,从动物后腿依次出现麻痹现象,而后失去运动能力,表明动物进入麻醉状态。4~6min 后可以将动物麻醉,如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时,说明动物已经深度麻醉,立即取出动物,这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低,角膜反射迟钝,皮肤痛觉消失,可进行试验。3)犬的乙醚麻醉:首先将犬用绳子绑定,根据犬的大小选择适合的麻醉口罩,将纱布/棉花放到口罩内,加入乙醚。一人固定犬的前后肢,另一人用膝盖顶住犬的胸颈处,一手捏住头颈(注意力量,防止窒息),将口罩套在犬嘴上。开始乙醚用量可大一些,之后逐渐减少。犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象,而后呼吸逐渐平稳,肌肉紧张度逐渐消失,角膜反射迟钝,对皮肤刺激无反应,此时可开始试验。 乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚,等呼吸恢复后在继续吸入。随着吸入乙醚麻醉的加深,犬的呼吸加深,肌肉紧张度增加,可能会出现窒息。预防的办法是:在犬每吸入数次乙醚后,取下口罩,让其呼吸一次新鲜空气。 非吸入麻醉:该方法是一种简单方便能够让动物很快进入麻醉期,而且没有明显的兴奋期麻醉方法。一般采用注射的方法,有静脉注射、肌肉注射、腹腔注射等。 静脉注射、肌肉注射主要用于较大的动物的麻醉,如兔、猫、猪、犬等;腹腔注射多用于较小动物的麻醉,如小鼠、大鼠、沙鼠、豚鼠等。

动物实验的麻醉方法

(一)使用挥发性麻醉药 1.乙醚、吗啡合并麻醉方法乙醚麻醉的优点:深度易于掌握,比较安全,麻醉后恢复比较快。缺点:需要专人管理,麻醉初期出现强烈的兴奋现象,对呼吸道有较强的刺激性,需在麻醉前给一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)。通常在麻醉前20-30分钟,皮下注射盐酸吗啡或硫酸吗啡(每公斤体重5-10毫克)及阿托品(每公斤体重0.1 mg)2.氯仿、乙醚合并麻醉方法氯仿作吸入麻醉药,其麻醉作用比乙醚大,诱导期及兴奋期都极短,吸入气体中含1-2%容量的氯仿即能使动物麻醉,达到外科麻醉期容易,但也易转入延髓麻醉期而危及生命。其麻醉剂量及致死量较为接近,使用时应加以注意。一般与乙醚混合成1:1或1:2比例进行麻醉。麻醉方法基本同乙醚。 (二)使用非挥发性麻醉药 1.苯巴比妥钠:该药作用持久,应用方便,在普通麻醉用量下对动物呼吸、血压和其他功能无多大影响。通常在实验前0.5-1h用药。使用剂量和方法为狗、猫腹腔注射80-100mg/kg,静脉注射70-120mg/kg;家兔腹腔注射150-200mg/kg。 2.戊巴比妥钠:此药麻醉时间不很长,一次给药有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般实验要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用。用时配成1-3%生理盐水溶液,配好的药液的常温下放置1-2个月不失药效。静脉或腹腔注射后很快进入麻醉期。使用剂量为:狗、猫、兔静脉注射30-35mg/kg,腹腔注射40-45mg/kg,皮下注射40-50mg/kg。大小鼠静脉或腹腔注射35-50mg/kg. 3.氨基甲酸乙酯:此药是比较温和的麻醉药,安全程度大。多数动物都可以使用,更适合于小动物。一般作基础麻醉。使用时常配成20-25%水溶液。狗、猫、兔直肠灌注1.5g/kg,皮下、静脉、腹腔注射0.75-1g/kg。与水合氯醛按1:1合并麻醉效果更好。缺点是该药可致癌,大型动物应用后不可食用。 4.水合氯醛:此药有窜透性的臭气及腐蚀性苦味。其溶解度较小,常配成1%水溶液。使用前先在水浴锅中加热,促其溶解,但加热温度不宜过高,以免影响药效。使用剂量及方法:狗、猫静脉注射80-100mg/kg体重;腹腔注射100-150mg/kg;兔:直肠灌注180mg/kg;静脉注射50-75mg/kg。以上麻醉药种类虽较多,但各种动物作用的种类多有所侧重,如作慢性实验的动物常用乙醚吸入麻醉(用吗啡和阿托品作基础麻醉);包性动物实验对狗、猫和大鼠常用戊巴比妥钠麻醉;对家兔和蛙、蟾蜍常用氨基甲酸乙酯;对大鼠和小鼠常用硫喷妥钠或氨基甲酸乙酯麻醉。

实验动物麻醉药物使用指南

实验动物麻醉药物使用指南 第一部分不同类型麻醉药物的一般特性 一、镇静剂和安定剂 镇静剂使用前动物的生理状态能显著影响镇静的程度。给药前攻击性强的、不听话的、极其兴奋的动物会比较难处理,除非给予高剂量的呼吸抑制药物。 1.吩噻嗪类Phenothiazines ?常用制剂:乙酰丙嗪acepromazine,氯丙嗪chlorpromazine,丙嗪 promazine ?理想疗效 ●增强麻醉剂、安眠药和麻醉性镇痛药的效果(包括减少药物 剂量,延长作用时间和顺利地从麻醉中恢复) ●止吐作用 ●促进骨骼肌松弛 ●引起兔耳静脉血管扩张 ?不良反应 ●中度低血压 ●导致低体温症 ?潜在的、与研究相关的并发症 ●基底神经节多巴胺阻塞 ●降低自发肌动活动 ●阻塞儿茶酚胺的外周作用 ●下丘脑儿茶酚胺耗尽引起的低体温症

●高剂量阻碍FSH和LH的释放 ●提高鼠、绵羊和山羊的催乳素水平 ●发生肾上腺素通过肾上腺髓质释放引起的高血糖 ●应用于猫,小剂量可减小肾上腺素导致的血管加压作用,大 剂量可翻转血管加压作用 ●减少动物的血细胞比容 ●拮抗阿朴吗啡诱发的犬呕吐 ●可能引起犬心律不齐 ●高剂量的氯丙嗪使猫产生颤动和僵硬 ●可能导致胎鼠产生唇裂和腭裂 ●长时间使用可产生眼部病变 2.苯二氮平类药物Benzodiazepines ?常用制剂:地西泮diazepam,咪达唑仑midazolam ?理想疗效 ●镇静作用因物种而异(作用最小的是犬,最大的是兔子和鼠) ●增强大部分麻醉药和麻醉镇痛药的药效 ●良好的松弛骨骼肌作用 ?不良反应 ●正常剂量下无不良反应 ●管制药物 ?潜在的、与研究相关的并发症 ●主要通过作用脑干网状结构抑制中枢神经系统 ●阻断脊髓多突触反射作用 ●减少大鼠脑和纹状体边缘区多巴胺的合成

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