第十组青蛙骨骼标本的制作实验论文

青蛙骨骼标本的制作实验论文

小组成员:2009301060059邵明2009301060060夏显

2009301060061陈探2009310160063任意

单位:生命科学学院生物学基地2班

摘要:通过一系列的处理,除去动物的皮肤肌肉与内脏,保留骨骼,并经脱脂、漂白,使骨骼洁白美观,然后把骨骼支架成它原站立的姿势,通过对骨骼的观察可以了解骨骼的结构其对环境的适应性及不适应性。

关键词:牛蛙;骨骼;煮。

前言:生物教学中为了加深对蛙类骨骼的认识,及其对环境的适应性,不少高校都选择了“青蛙骨骼标本制作”试验,并普遍采用青蛙(或牛蛙)作为实验材料。因此,该实验成为两栖类学习中的一个十分重要的试验。但是,由于青蛙骨骼较小易丢失,且易碎,就不容易得到完整的骨骼标本,所以需要在试验过程小心谨慎。

在本次试验中,通过对骨骼的制作了解学习了青蛙骨骼的结构及其对环境的适应性,但是由于粗心大意丢失了少数细小骨骼,但骨骼大体保持了其完整性。

材料与方法:

材料:青蛙一只(或牛蛙)、解剖盘两个、解剖器具一套、锅炉一套、铜丝(14号与16号)若干、老虎钳、牙刷、洗衣粉、乙醚、502胶水

方法:1.1用乙醚将青蛙麻醉致死

1.2剥去青蛙的全身皮肤

1.3剖开腹壁,除去内脏。此时宜小心不要损坏胸骨和肋骨

1.4去肌肉:先把脊椎背面及腹部的肌肉粗略除去,再去掉大腿上的大块肌肉

1.5将洗衣粉放入煮开的水中,将牛蛙放入锅中,煮至肉可以轻易刷下为止

1.6把漂白好的骨块用502粘好,放正姿势然。后用适当大小的铜丝把

骨骼连接,支架起来,使现出原来的姿势,并固定在台板上,或放置在标本盒中。结果与讨论:

2.1中轴骨骼

(1)脊柱

脊柱位于躯干背部的体壁中,共由十块椎骨连接而成,内藏脊柱。最末一块椎骨于前九块相比,外形差异很大,呈细棒状,特称尾杆骨。脊柱两旁、两椎骨之间有椎间孔,是脊神经穿出的地方。椎骨从前至后分为1块颈椎、3块胸椎、4块腰椎、1块荐椎和1块尾杆骨。

分析:①鱼类脊椎仅有去干椎和尾椎,而两栖类脊柱更加分化。出现了一块颈椎,使头部可以上下运动,适应于陆地上多变的环境;出现了一块荐椎,与腰带相连,使后肢获得较稳定的支持,得以支撑体重。

②脊椎骨由鱼类的双凹型演化而成前凹型,使椎体间的关节更灵活。

③尾椎愈合形成棒状的尾杆骨。

(2)头骨

头骨分为颅骨和咽骨。颅骨有外枕骨、蝶筛骨、额顶骨、副蝶骨、前耳骨、鼻骨、梨骨等构成;咽骨由颌弓和舌器组成。

分析:头骨以脱离了肩带的束缚,有了灵活运动的可能性,骨片较鱼类趋于减少和愈合,从而更牢固,骨骼重量减轻,这都对陆地上运动是必要的。

2.2附肢骨骼

(1)肩带

肩带位于颅骨后方,为左右对称的弧形骨带,其两端各具有韧带和肌肉,附于脊柱上;两腹端则与胸骨相连。每个弧形后缘的中部各有一个肩臼,是连接前肢的肩关节。肩带分为肩胛区和喙区。肩胛区有上肩胛骨和肩胛骨;喙区有锁骨、前喙骨和喙状骨。胸骨则有前胸骨、上喙骨、中胸骨和后胸骨组成。

(2)腰带

腰带由髂骨、坐骨和耻骨组成。

⒈髂骨:为1对长形硬骨,上端与荐椎的横突相连,下端与其他两对骨互相愈合,形成与后肢相关节的左右关节窝,称为髋臼。

⒉坐骨:位于髋臼背面的一块合并骨,联合处称为坐骨联合。

⒊耻骨:位于髋臼腹面,略呈三角形的一对合并骨,腹缘称耻骨联合。

(3)四肢骨

前肢骨骼有肱骨、桡尺骨、腕骨、掌骨和指骨。肱骨端大而圆,称肱骨头,此端陷入肩臼形成肩关节。后肢骨有股骨、胫腓骨、跗骨、骨和趾骨。股骨两端膨大,一端陷入髋臼形成

髋关节,另一端略扁圆形,关节胫部骨骼。

分析:①肩带不再与头骨愈合,不仅使头部灵活运动,而且使前肢骨骼多样性称为可能。

②腰带部形成髋臼,与股骨形成髋关节,并与脊柱荐椎相关节,以支撑体重,并可以在陆地上运动。

③出现了典型五指型附肢,可形成多支点的杠杆,使身体在陆地上运动。

④两栖类为减轻体重以适应运动,四肢中桡骨与尺骨愈合为桡尺骨,胫骨与腓骨愈合成为胫腓骨。

2.3两栖类骨骼的不完善性

(1)四肢骨骼不够强大,且四肢位于躯干侧面,不能将身体完全抬离地面,因而运动速度很缓慢。

(2)两栖类出现了胸骨,但无肋骨,因而没有胸廓,使呼吸系统没有足够动力,而是以口咽式呼吸,不能完全适应陆地生活。

总结:以上分析可知两栖类动物的骨骼系统经演化已初步适应陆地上支撑体重和运动的功能,但其不完善性又使其不完全适应陆地生活,因而两栖类动物是一个由水生到陆生的过渡类群。

致谢:感谢黄老师及杜老师的耐心指导以及朱老师和高老师给我们提供了试验的平台和技术上的诸多支持

体会和感受:1,原本以为这是一次非常简单的试验,但通过了亲自的动手实践之后才发现在生物试验中每一个看似简单的步骤都需要自己的认真与耐心。比如,在剔除骨骼上的肌肉时要十分的小心,否则就容易将软骨剔下,破坏了骨骼的完整性,也会给后续过程中带来不必要的麻烦。从这次试验中我也感受到了团队合作的重要性,从一开始材料的收集,骨骼标本制作的每一个过程到最后论文的完成,团队的分工合作不仅提高了试验的效率,也教会了我们如何与他人合作。

2, 这次开放实验,我收获良多。有对青蛙骨骼结构的深刻认识,对团队协作重要性的理解,最重要的是,我找到了实验的乐趣。

这个青蛙骨骼标本的制作,总共花了我们4个人一整天的时间,近8个小时连续操作,中间轮流休息半个小时吃饭。如此长时间集中精力作实验,是我第一次。我的第一次,劳累是必然的,更多的带给的我惊喜。看着细小零碎的骨骼在手中逐渐成型,我突然觉得自己做的不是标本,是小时候未完成的某件模型,一件被丢在角落现在又无意找到的模型,那是儿时的乐趣。

不知科学家在做实验时是否带着乐趣,不管他人怎样,如果儿时的乐趣常伴于我,那将来做科研更让人期待。

参考文献:1黄诗笺.动物生物学实验指导.北京:高等教育出版社,2006.

2许崇仁,程红.动物生物学.北京:高等教育出版社,2008.

动物骨骼标本制作

动物骨骼标本制作 骨骼是指支持动物和人的体形,保护内部器官,供肌肉附着,作为肌肉运动杠杆的支架。骨骼标本是供研究骨骼系统用的。一般将骨骼经过剔肉、脱脂、漂白,并按照动物的自然状态、位置串连安装成整体的骨骼标本。 (一)准备工作 1.使用工具解剖刀:用来剥皮和剔肉。剪刀:用来剪除肌肉和软组织。镊子:用来夹取细骨和串装骨骼。钢丝钳、钻子:用来串装骨骼。漂骨骼缸:用来浸泡骨骼。小型动物的骨骼可用标本瓶或广口瓶替代。镀铬的夹钳:用来捞取骨骼。尼龙线:串装时用来缚扎骨骼。骨骼玻璃盒:用来盛放骨骼。 2.化工用品氢氧化钠(烧碱):有强腐蚀性,用作腐蚀附在骨骼上的肌肉。氢氧化钠有强腐蚀性,处理时要特别小心。过氧化氢(双氧水)或漂白粉:作为漂白剂。汽油:用作脱脂剂。乳胶:用来粘连骨骼。(二)制做制做骨骼标本前,应先熟悉此种动物的骨骼位置和形态,以免在制做时造成不必要的损失。此处,我们以家猫为例介绍制做方法。 1.处死制做骨骼标本,要挑选口齿完整、新鲜的成猫。猫性较凶猛,不容易接近,可以将盛猫的捕笼放入密闭容器内,用乙醚或氯仿麻醉致死。也可将猫用水淹死。 2.剥皮将刚杀死约5分钟左右的猫,切断颈动脉放血,然后用水冲洗身上的污物和血渍,再进行剥皮。从胸部中线剖开皮,直剖到肛门前为止,再切开口腔上下颌粘膜。剥时,先从腹剖渐向背部剥离,剥到后肢,切断股关节,在尾骨处切断尾部。剥到前肢切断肩关节。剥皮后,再沿腹部正中线剪开体壁,挖去全部内脏,然后用水冲洗干净。 3.剔肉天热时如果剔肉工作当天不能完成,需要冷藏。如果没有冷藏设备,最好在上午就开始剔肉,先剔去骨骼上大块肌肉,然后浸入配好的0.4~0.8%氢氧化钠溶液内过夜。第二天洗去烧碱残液后再剔碎肉。先剔躯干肉。用解剖刀尖先从背部脊椎开始,顺着从颈椎到尾椎,将背部肌肉翻起,露出脊椎骨,然后用左手拉着背部翻起的肌肉,右手握解剖刀,刀口贴着脊椎骨将肌肉和骨骼分离。以连着整块肌肉从背面向着腹面割离比较顺利,而且留附在骨骼上的碎肉也少。剔出连着的大部分脊柱上的肌肉后,再剔肋骨,顺着一排的肋骨向胸部剔离肌肉,剔到肋软骨时,小心不要割断软骨,并且要注意最末一对肋骨,猫是十三对剔到胸骨时要注意胸骨最末一节的剑状软骨。然后剔除肋骨和肋骨之间的肌肉,再除掉腰带上的肌肉。 其次剔前肢骨肌肉。先在肩胛骨的肩峰突和胸骨柄处取下锁骨,剔去锁骨上的肌肉,放入盛有0.4~0.6%过氧化钠溶液的小瓶内,浸到骨上的碎腐肉透明时即可剔除腐肉,将锁骨晒干。剔去肩胛骨、肱骨、桡骨、尺骨、腕骨和掌骨上的肌肉。剔时将前肢平放在台板上,用解剖刀割离前肢肌肉,割到骨骼时用刀尖贴着骨骼割离。剔到腕掌骨处,用锋利剪刀剪净腕骨、掌骨和指骨上的肌肉。剔净的肩胛骨、肱骨、桡骨、腕骨和掌骨都有关节韧带连着,注意不要剔除关节韧带。再剔后肢骨肌肉。将后肢平放在台板上,用解剖刀顺着大腿,经膝盖,直到小腿下部,剖开后肢的肌肉,露出骨骼,将解剖刀尖贴着骨骼,割离整段后肢肌肉,取下膝盖骨,放入浸有锁骨的瓶内和锁骨一起浸漂。剔净的后肢骨骼只有关节韧带连着。然后剔除头骨肌肉。小心切开舌根和咽部的肌肉,取出舌骨,在舌骨上剔净肌肉,也放入浸锁骨的瓶内,挖掉眼球,剔净头骨上的肌肉,卸下下颌骨,用白线将下颌骨缚在颧骨上,以防下颌骨散落。用水冲掉颅腔内的脑。最后将尾椎骨上的肌肉剔 1.插入的搓筋 2.钻到骨髓腔 3.用尼龙线将上肱骨和尺骨的鹰嘴凹面扎牢 4.去骨髓 四肢骨的骨髓藏在密封的骨髓腔内。要清除骨髓,必须在骨上钻洞(用简单实用的自制骨钻钻洞)。要用较粗的钻头钻洞,这些钻穿的洞还可认作为骨骼串装时穿入搓筋用,但不能钻穿,只要钻到骨髓腔就成。将注射器针头分别插入钻好的洞内,开启水龙头冲掉骨髓腔内的骨髓,再冲掉脊柱椎管内的脊髓。 5.腐蚀腐蚀时用0.4~0.8%的氢氧化钾或氢氧化钠溶液,将骨骼全部浸没在溶液里,调换三次浸液,第一次浸24小时左右,第二次浸48小时左右,最后一次浸7天左右。每次调换新液时必须倒掉残液,并剔除附在骨骼上的透明碎肉。最后取出骨骼,用清水冲洗,并剔去还未除净的细腐肉。倒掉残液,用清水将盛器冲洗干净。

动物骨骼标本制作

动物骨骼标本制作 骨骼标本制作过程一般分为剔肉、脱脂、漂白,并按照动物的自然状态,位置串连。拼装成整体的骨骼标本。 标本制作过程中使用的工具、试剂药品: 工具: 解剖刀、解剖剪刀、镊子、漂骨骼缸、电炉、烧杯、天平、钢丝钳、铁丝、牙刷 试剂药品:NaOH、H2O2、乳胶(通常直接从商店买101或502胶水粘骨头效果不错)、汽油(有条件购买些作脱脂剂) 制作过程: 1、处死: 对于不同动物选用不同方法,尽量放干净动物的血液,防止血 在骨骼中积累不好处理。 2、剥皮:尤其小心各种动物爪子,剥爪子上皮不要用力过猛,扯断趾骨 而丢失。 3、剔肉:先剔骨骼上大块肉,尽量多花些时间剔肉,剔的越干净越好, 剔肉之前和之中不断动物照相,对后面拼装有帮助。剔肉的过程中特 别要注意,软骨和趾骨的处理,软骨上的肉我们通常用0.8%——2% 的 NaOH溶液浸泡处理,时间控制在两天,捞取观察软骨上肌肉是否 变得透明。用软毛牙刷刷,看能否刷掉。如果不行,在配制,再配制 2%NaOH溶液浸泡1——2天,知道用牙刷刷干净为止。处理趾骨可 将动物四支腿上趾骨分别放在四个培养皿中标号前后肢,在加入 2%NaOH或者浓度更高,趾骨固化程度高,短时间趾骨不会被腐蚀变 软,过程中要注意不要遗失任何一块骨头,包括一些与掌骨相联接处 的小碎骨头。对于一些大的躯干骨头,可放入漂骨骼缸中加入1%NaOH

溶液。浸泡一周左右期间要换液2——3次,如果你取得动物骨骼年龄不大,骨化程度不高,则用0.8%NaOH溶液浸泡,根据观察相应缩短 浸泡时间,一般不用7天时间 。 4、除骨髓:经过剔肉完成的骨架,一些大骨头中存在骨髓,可用解剖针在骨头上穿洞,这样在漂白过程中可以除去骨髓。让骨骼变得更白。 5、脱脂 :我们未用到此步,用汽油能对骨骼进行脱脂,那么有利于后面的漂白。如果脂未脱干净。漂白时那些油脂漂浮在漂白液上最后粘在 骨头上,骨头变得发黄,不能达到完全变白~ 6、漂白:将散落的骨骼放到漂骨骼缸中,加入双氧水进行漂白。通常从实验室拿来的双氧水浓度30%,氧化性太强,虽然用30%浓度可以缩 短漂白时间,但对骨骼的伤害很大,容易让骨骼变粉,如果时间控制 不好,会导致整个实验失败。经过多次尝试选用10%浓度的双氧水浸 泡2——3天,效果比较好。对于一些较大骨骼可以适当提高双氧水的浓度和浸泡时间。整个漂白过程要灵活操作,只要骨骼变白就可以取出。 7、拼装:此过程根据前面对剔肉过程中所拍骨骼结构的照片和从网上下载的骨骼示意图对各部分骨骼拼装。最后将各部分拼装的骨骼摆出造型。有条件从学校标本室拿教学用的骨骼标本,这样拼装过程可以更 好进行。拼装过程有此骨头必须要用铁丝串联起来。一般颈椎和脊椎 要串起来,再用胶水粘成型。铁丝选择那些软的这样容易摆出造型。8、装盒:装盒前要在骨骼上对每块骨头进行编号处理,说清每块骨头名称。

动物骨骼标本的制作

动物骨骼标本的制作 前言:动物的骨骼标本具有极高的科学价值、研究价值,对于一些专业教学和科研工作具有极为重要的意义。动物骨骼标本能够清晰地展示动物身体内部的骨骼构造,给人以直观印象。对于教学和科研工作来说,是良好的辅助用具;对于科普宣传来说,能够激发博物馆参观人员的兴趣,提高人们对野生动物身体构造的认知程度。掌握动物骨骼标本的制作技术,对于博物馆来说是至关重要的。另外,除了动物骨骼标本的制作,博物馆还要掌握动物骨骼标本的保护技术和封存技术,以便动物骨骼标本能够长期使用。 一、动物骨骼标本的制作概述动物的骨骼标本分为两种类型:整体骨骼标本和散装骨骼标本[1] 。整体骨骼标本就是还原动物各部位骨骼原本的位置,将动物全身的骨骼作为一个整体做成标本,让人们对动物的整体骨骼结构具有直观了解;而散装标本就是将动物的单个部分的骨骼单独制作为标本,散装的骨骼标本主要用于对某一具体部位的学习和研究。动物骨骼标本的主要方法有化学法和生物法,主要流程有处死、剥皮、剔肉、脱脂、漂白、串装与固定等。将动物的骨骼分离出来一般有三种方法:第一种是利用氢氧化钠溶液或者氢氧化钙溶液进行浸泡,然后剔去骨骼上的肌肉或者附着的软组织;第二种是将剔除肉之后的骨骼煮熟,放置于室外,让黄粉虫或者微生物把骨骼中残留的骨油和蛋白质吞噬掉,然后再用石炭酸浸泡消毒,最后经过清水清洗,用双氧水或次氯酸进行漂洗;第三种是利用虫蚀法或者菌蚀法来讲骨骼与皮肉、内脏分离开来。动物的骨骼

标本一般选取羊、马、牛、兔、鸡等动物骨骼。下面将以兔骨骼为例介绍动物骨骼标本的详细制作流程[2] 。 二、动物骨骼标本的制作流程 1. 制作材料及器材制作骨骼标本运用的器材主要有:注射器、解剖用具、电饭锅、水缸、各型号标本瓶、家用清洁球等。运用的主要材料有甲醛、氢氧化钠、碳酸钠、汽油、二甲苯、次氯酸钠、石炭酸、454 胶、50%浓度的硫酸、过氧化氢和体型较好的的成年兔若干只[3] 。 2. 处死成年兔 为了保证骨骼的完整性,可以用向耳部静脉注射空气的方法来处死成年兔。首先,用湿润的卫生棉球涂抹兔子的耳部轮廓。然后用左手捏住兔子耳朵的静脉根部,让耳部的血管鼓胀起来。为了血管鼓胀的效果更明显,可以用手轻轻拍打几下。最后将 5 毫升的空气注入兔子耳部的静脉,在几秒钟之后成年兔就会死亡。 3. 剥皮 将死去的兔子平放在解剖台上,让腹部朝上。利用手术剪在兔子后腿的跗部关节向内的一侧剪开缺口,然后沿着后腿方向一路剪开,直到腹部皮肤完全被剪开。然后一人抓住兔子两条后腿,另一人将兔子的皮肤从头向后脱开。最后要把兔子耳部的耳廓软骨剪断,注意眼睛、嘴巴等部位的处理,将整个皮肤完整剥离开来。 4.解剖 这一环节主要是要将兔子身体内部的肉、器官与骨骼分离开来。将兔子的韧带、关节囊或者椎间盘等结构切开,能够将动物的头部、颈部、

骨骼标本的制作

青蛙骨骼标本制作的基本步骤,分析在制作过程中应注意哪些问题(1)基本步骤:①处死:选择体形大而完整的青蛙(或蟾蜍),放入标本缸中用乙醚或三氯甲烷深度麻醉至死。②剥皮、去内脏:用剪刀剪开腹部皮肤,注意不要剪坏剑胸软骨。然后向两侧剪开,分别向前后四肢各方向拉下皮肤,要小心不要拉断指、趾骨。剪开体壁,取出全部内脏。③剔除肌肉:将体壁及附着在骨骼上的肌肉按顺序逐步剔除。④腐蚀及脱脂:把骨骼浸泡在0.5%~0.8%氢氧化钠溶液中1~3天,去除一些难以除去的肌肉,脱去骨骼中的油脂。在浸泡过程中应经常检查,以防骨骼脱散。后取出在清水中漂洗干净。⑤漂白:用0.5%~1%的过氧化氢漂白30min,或用1%~3%的漂白粉水溶液浸泡1~3天。浸泡时间应灵活掌握,主要看骨骼是否已变白,变白后马上捞出,否则,骨面会被腐蚀而变得粗糙,失去骨骼的光泽。捞出的骨骼用清水冲洗干净并晾干。⑥整形和装架:取一块泡沫塑料板,将骨骼放在上面。整形时,把躯体和四肢的姿态整理好并按骨骼相应的位置用大头针固定,以免在干燥过程中变形。离散的骨骼可用乳胶将其粘联起来。两块上肩胛骨应附着在第二、三椎骨横突的两侧,头部略抬起呈倾斜状,前肢的腕骨和后肢的趾骨可用乳胶粘在泡沫板上。骨骼标本制成后,最好装入标本盒中保存。(2)注意问题:①剥皮、去内脏时要小心不要拉断指、趾骨。②剔除肌肉时要注意:●不要将各关节间相连的韧带破坏掉。●两侧前肢带骨与脊柱间无韧带相连,可把左、右上肩胛骨的肌肉从第2、3脊椎骨横突上剥离,左右前肢与肩

带之间不要分开,仍借助韧带保持相连。●应保留四肢指趾骨关节的完整性。●剔除荐椎椎骨横突与髂骨相关节处肌肉时应保留些肌肉和韧带,避免中轴骨与腰带的脱离。③漂白时要注意控制浸泡时间,骨骼变白后马上捞出,否则,骨面会被腐蚀而变得粗糙,失去骨骼的光泽工具与材料:青蛙(或牛蛙)、解剖盘、解剖器、锅、炉、铅丝、老虎钳、台板、锯条、注射器、针头、牙刷、氢氧化钠、双氧水、四氯化碳、50%-70%酒精、乙醚。制作原理所谓骨骼标本的制作,就是通过一系列的处理,除去动物的皮肤、肌肉与内脏,保留骨骼,并经脱脂、漂白,使骨骼洁白美观,然后把骨骼支架成它原站立的姿势,供教学、研究或展览之用。制作步骤1.杀死和去皮肉等。①用乙醚将青蛙麻醉致死。②剥去青蛙的全身皮肤。③剖开腹壁,除去内脏。此时宜小心不要损坏胸骨和肋骨。④去肌肉:先把脊椎背面及腹部的肌肉粗略除去后,用水浸泡两天,可放置锅内煮熟或成半熟,但不可煮得过度。2.把附有残肉的骨骼放在6%-10%的氢氧化钠溶液中浸2-6小时(视肌肉变透明,用牙刷能除去为止),使肌肉腐败,并能溶去脂肪及措出。一但是对于附有韧带的骨骼,浸渍不宜过度,否则会导致韧带腐败。所以在浸渍时,应时观察。浸渍后用水清洗,洗去氢氧化钠,最后清除脑及脊髓。3.固定。经过浸渍的标本,放在50%-70%的酒精中固定(1一7天),使韧带固定硬化。4.脱脂。将韧带已固定硬化的标本浸入四氯化碳中,6-8小时,取出来再用热水(正沸的开水更好)冲洗(骨骼全部浸入开水中),骨骼里的脂肪即可除去。5.漂白。将标本浸入10%-15%双

青蛙和雏鸡透明骨骼标本的制作

青蛙和雏鸡透明骨骼标本的制作 透明骨骼标本因其清晰美观,立体感非常强,骨骼的原位观察效果非常好,可显现一般解剖方法难以观察清楚的结构,可广泛用于生物教学中。本实验采用茜素红对小型脊椎动物青蛙、雏鸡硬骨染色[1],在经甘油透明,使青蛙和雏鸡全部骨骼在不受任何损伤的情况下清楚的展示出来,并通过对透明骨骼标本制作工艺的改进,使制作时间缩短,标本质量得到改善。现将有关情况报告如下: 1. 材料和方法 1.1 实验材料 透明骨骼标本材料要求为活体或刚死不久的动物[2],体型要完整而小,这样其体壁就相对薄,染色透明效果就好。另外,动物的体色要较纯白的,减少体色对透明的影响[3]。为达到 这些要求本实验选用青蛙以及刚孵化不久的雏鸡为实验材料。 1.2 制作方法 1.2.1 材料前处理 1.2.1.1 剥皮:雏鸡去毛和皮,青蛙去皮。目的就是提高药物对材料的透性效果。注意不要伤及骨骼和肌肉,以免影响观察效果。 1.2.1.2 去内脏:在雏鸡和青蛙的肛门口向上开一小口,用镊子取出内脏,要取干净,增强透明度[4]。同时要注意体形 的完整,最后分别放用清水慢慢冲洗干净。

1.2.2 固定 用95%的乙醇固定,使材料硬化以及起到脱脂的作用。具体过程如下:把处理好的标本绑在厚约0.5 cm 的玻璃板上,整理好姿势浸在95%乙醇中。时间要根据动物的体形大小,一般4〜6 天,其中可更换1〜2次新液。固定后的材料用清水缓慢冲洗一天或浸在水中一天,去除残留的乙醇。 1.2.3 透明 用1%K0透明,此步骤的目的是使动物肌肉呈半透明状,另外KOH还起到脱脂的作用,从而可隐约看到里面的骨骼。具体过程是:将固定好的标本浸入1%K0溶液中,在透明过程中要注意观察,浸制的时间不要太长,否则会因为肌肉腐蚀过度导致骨骼离散,所以只要隐约看见软组织下的骨骼就停止。一般透明时间是2〜4 天,但要注意随时观察。特别是在夏天,温度高,透明时间要特别注意。 1.2.4 茜素乙醇染色液染色把标本再放入茜素红乙醇染色液中进行骨骼染色。茜素红乙醇染色液配方是:先将茜素红染料溶于95% 的乙醇中制成饱和溶液,然后用一份配好的此饱和溶液和九份70%的乙醇混合配制 成适于骨骼染色的染色剂。标本浸制在染色液中的时间是12〜36 小时,但还得按实验效果为标准即骨骼染上橙黄色为止。 1.2.5 褪色 用梯度脱色液进行褪色,梯度酒精为(25%,50%,100%),

第十组青蛙骨骼标本的制作实验论文

青蛙骨骼标本的制作实验论文 小组成员:2009301060059邵明2009301060060夏显 2009301060061陈探2009310160063任意 单位:生命科学学院生物学基地2班 摘要:通过一系列的处理,除去动物的皮肤肌肉与内脏,保留骨骼,并经脱脂、漂白,使骨骼洁白美观,然后把骨骼支架成它原站立的姿势,通过对骨骼的观察可以了解骨骼的结构其对环境的适应性及不适应性。 关键词:牛蛙;骨骼;煮。 前言:生物教学中为了加深对蛙类骨骼的认识,及其对环境的适应性,不少高校都选择了“青蛙骨骼标本制作”试验,并普遍采用青蛙(或牛蛙)作为实验材料。因此,该实验成为两栖类学习中的一个十分重要的试验。但是,由于青蛙骨骼较小易丢失,且易碎,就不容易得到完整的骨骼标本,所以需要在试验过程小心谨慎。 在本次试验中,通过对骨骼的制作了解学习了青蛙骨骼的结构及其对环境的适应性,但是由于粗心大意丢失了少数细小骨骼,但骨骼大体保持了其完整性。 材料与方法: 材料:青蛙一只(或牛蛙)、解剖盘两个、解剖器具一套、锅炉一套、铜丝(14号与16号)若干、老虎钳、牙刷、洗衣粉、乙醚、502胶水 方法:1.1用乙醚将青蛙麻醉致死 1.2剥去青蛙的全身皮肤 1.3剖开腹壁,除去内脏。此时宜小心不要损坏胸骨和肋骨 1.4去肌肉:先把脊椎背面及腹部的肌肉粗略除去,再去掉大腿上的大块肌肉 1.5将洗衣粉放入煮开的水中,将牛蛙放入锅中,煮至肉可以轻易刷下为止 1.6把漂白好的骨块用502粘好,放正姿势然。后用适当大小的铜丝把 骨骼连接,支架起来,使现出原来的姿势,并固定在台板上,或放置在标本盒中。结果与讨论:

解剖实验报告

解剖实验报告 青蛙坐骨神经-腓肠肌标本的制备及不同频率刺激对肌肉收缩的影响。 一、目的要求。 1.掌握青蛙双浆破坏的试验方法; 2.掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法; 3.观察不同刺激频率对骨骼肌收缩模式的影响。 二.基本原则。 青蛙的一些基本活动,如神经生物电和肌肉收缩,与哺乳动物相似。体外生活条件简单,易于控制和掌握,动物来源丰富。因此,在生理实验中常采用青蛙的坐骨神经-腓肠肌标本和坐骨神经标本来观察组织的兴奋性、刺激和反应的规律性以及骨骼肌收缩的特点。阈上刺激引起的肌肉收缩是单次收缩,其过程可分为潜伏期、缩短和放松三个阶段。当肌肉持续受到阈值以上的刺激时,如果刺激间隔小于单次收缩的过程,相邻两次单次收缩就会合并,呈现强直收缩的现象。如果每次收缩的开始都发生在最后一次收缩的缩短期,则称为完全强直收缩;如果每次收缩的开始发生在最后一次收缩的舒张期,则称为不完全强直收缩。利用生物信号采集和处理系统,可以观察到腓肠肌的收缩。 三.实验材料 实验动物:健康的青蛙; 实验设备和药品:一套青蛙手术器械(一把粗剪刀、一把组织剪刀、一把眼科剪刀、一把镊子、一个探针、两只玻璃分针、四个青蛙指甲、一个培养皿、一个青蛙板、一个滴管和几根棉线)、张力传感器、肌槽、刺激电极、铁架、生物信号采集处理系统、微型计算机和石人。 四.实验步骤。 消灭蟾蜍脑脊髓炎:取一只蟾蜍,用自来水冲洗。左手握住青蛙,食指按头部前部,拇指按背部,使头部前倾。用中指和无名指夹住前肢,用无名指和小指夹住后肢,使整个躯干最大限度地弯曲。将探头从枕骨孔垂直穿入椎管,即改变探头方向,穿入颅腔,持续向各侧搅动,彻底破坏脑组织;

青蛙解剖实验报告

2012级应心班《人体解剖生理学》实验容 一、人体基本组织的观察 (一)实验目的 观察并掌握人体四大基本组织的结构特点及功能。 (二)实验材料 四大基本组织的永久装片;显微镜 (三)实验要求 正确使用显微镜,观察各种组织的基本特征。 注:实验前请复习四大基本组织的结构特点和功能。 二、人神经系统的形态观察 (一)实验目的 1.观察脊髓的形态结,了解脊神经的组成。 2.观察脑干的的形态结构和脑神经进出脑干的部位,了解脑干中的主要神经核团和纤维束的位置。 3.观察间脑、小脑和大脑的形态结构,辨认大脑半球的主要沟、回和分叶。 (二)实验材料 脊髓模型;脑干模型;人脑模型;脊髓横切片;显微镜 (三)实验要求 观察各模型加深对神经系统的认识;正确使用显微镜,观察脊髓横切片。 注:实验前请复习神经系统的结构组成和功能。 三、反射弧的分析和脊髓反射的观察 (一)实验目的 1.通过用脊蛙(去除脑保留脊髓的蛙,成为脊蛙)分析屈肌反射的反射弧的组成部分,探讨反射弧的完整性与反射活动的关系。 2.观察脊髓的反射活动并研究脊髓反射中枢活动的若干特征。 (二)实验原理 (三)材料与方法 1 材料 1.1 实验动物青蛙 1.2 器材蛙类手术器械1套,铁支架,电刺激器,刺激电极,秒表,棉球,纱布,培养皿2个,烧杯 1.3 药品 0.5%硫酸,1%硫酸 2 试验方法与步骤 2.1 制备脊髓动物:取青蛙一只,用剪刀横向插入口腔,从鼓膜后缘处剪去颅脑部,保留下颌部分。以棉球压迫创口止血,然后用止血钳夹住下颌,悬挂在铁支架上。 2.2 正常脊髓反射的观察 2.3 搔扒反射:将浸以0.5%硫酸的小滤纸片一块,贴在青蛙腹部下段的皮肤上,可见四肢向此处搔扒,直到去掉滤纸片为止,之后用清水冲洗皮肤。 2.4 反射时的测定:用培养皿分别盛0.5%和1%硫酸溶液,将青蛙左后肢的脚趾尖浸于硫酸溶液中,同时用秒表记录从浸入时起到发生屈腿发射所需的时间,即反射时。观察后立即将该足趾浸入清水中浸洗几次,然后用纱布拭干。按上法重复三次,求其平均值,此值即为反射时。 2.5 将两对电极连接到刺激器 2.6 反射弧的分析 2.6.1 剥去左肢皮肤:在左侧后肢趾关节上方,将皮肤作一环状切口,将足部皮肤剥掉。 2.6.2 1%硫酸刺激左趾尖,观察腿部活动情况。 2.6.3 1%硫酸刺激右趾尖,观察腿部活动情况。 2.6.4 1%硫酸滤纸片贴在左小腿切口上面的皮肤上,观察活动情况。 2.6.5 分离右侧大腿背侧坐骨神经干,两侧结扎,中间剪断,1%硫酸刺激右趾尖,观察

蛙的坐骨神经—腓肠肌的标本制作及神经干的性质实验

中央民族大学生命与环境科学学院 实验报告 生理学实验报告 蛙的坐骨神经—腓肠肌的标本制作及神经干的性质实验 姓名:唐胜华学号:0941063 学院:生环学院班级:09生科 指导老师:覃筱燕完成时间:2011.10.17 组别:十一、十二组成员:韩旭思关晴月唐胜华

一、实验目的 1、学习蛙类动物单毁髓和双挥髓的处死办法。 2、学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本以及腓肠肌标本制备的方法。 3、学习电刺激方法及肌肉收缩的记录方法。 4、观察刺激强度与肌肉收缩反应的关系。 5、观察肌肉收缩的总和以及强直收缩现象。 6、观察蛙坐骨神经干复合动作电位的基本波形,并了解其产生的原理。 7学习蛙和蟾蜍离体神经干上神经冲动传导速度的方法和原理。 二、实验原理 腓肠肌由许多的纤维组成,刺激腓肠肌时,不同的刺激强度会引起肌肉的不同反应,。当刺激强度过小时,不应期肌肉发生收缩反应,此时的刺激为阈下刺激。而能引起肌肉发生收缩的最小刺激强度,为域刺激,但全部肌纤维同时收缩时,则出现最大的收缩反应。这时,即使再加大刺激强度,肌肉的收缩强度也不会随之而增大。可以引起肌肉发生最大收缩反应的最小刺激强度为最适刺激。 肌肉组织对于一个域上强度的刺激,发生一次迅速地收缩反应,即单收缩。单收缩的过程分为三个时期,潜伏期、收缩期、舒张期。 两个同等强度的域上刺激,相继作用与神经-腓肠肌标本,如果刺激间隔大于单个收缩的时程,肌肉则出现两个单独的单收缩;如果刺激间隔小于单收缩的过程而大于不应期,则出现两个收缩反应的重叠,及收缩的总和。如果第二次刺激在第一个收缩反映的不应期内,则第二次刺激不产生收缩反应。 但同等强度的连续域上刺激作用于标本时,则出现多个反应的叠加,及强直收缩。但第一手所发生在第一收缩的舒张期,即发生不完全强直收;后一收缩发生在第一次收缩的收缩期时,各自的收缩完全融合,肌肉出现持续的收缩状态,即发生完全的强直收缩。 神经干在收到有效刺激以后可以产生复合动作电位,标志着神经发生兴奋。如果在离体神经干的一端施加刺激,从另一端引导传来的兴奋冲动,可以记录出双向动作电位,假如在引导的两个电极之间将神经干麻醉或损坏,阻断其兴奋传导能力,这时候记录出的动作电位就成为单相动作电位。神经细胞的动作电位是

青蛙骨髓细胞染色体标本的制备及染色体的核型分析

青蛙骨髓细胞染色体标本的制备及染色体的核型分析 陈钧瑜 (中山大学生命科学学院08级生物技术广州510275) 摘要:染色体组型具有物种的特异性,它们在遗传过程中是相对稳定的,因此可以作为物种分类的基本依据之一。本实验以青蛙的骨髓为材料,制备了青蛙骨髓细胞染色体标本,选择形态完好的中期分裂相进行拍照放大,用常规统计方法测量染色体的相对长度、臂比和着丝粒指数等。结果表明青蛙骨髓细胞二倍染色体数目为26,可配成13对同源染色体,其中有5对大型染色体(相对长度>9%)和8对小型染色体(相对长度<7%);8对为中部着丝粒染色体,其余5对为亚中部着丝粒染色体。青蛙骨髓细胞染色体核型公式为K(2n)=26 =13n=16m+10sm。 关键词:青蛙;骨髓细胞;染色体;核型 1、引言 核型一词首先由前苏联学者TA 列维茨基等在上世纪20 年代提出,它是指每种生物染色体的数目、大小和形态等特征的总和。染色体核型或组型分析(Chromosome karyotype analysis) 是染色体研究中的一个基本方法。染色体组型是细胞分类学的重要数据,也是从细胞遗传学角度了解物种间亲缘关系的有效途径,对染色体核型分析,不仅有助于了解生物的遗传组成、遗传变异规律和发育机制,而且对预测鉴定种间杂交和多倍体育种的结果、了解性别遗传机理以及基因组数、物种起源、进化和种族关系的鉴定都具有重要的参考价值[1]。 骨髓细胞具有丰富的细胞质和高度分裂能力,因此不必经体外培养,也不需要植物血球凝集素(PHA)的刺激,可直接观察到分裂的细胞。经秋水仙素处理后,分裂的骨髓细胞被阻断在有丝分裂中期,再经离心、低渗、固定、滴片等步骤,便可制作出理想的染色体标本,是研究动物细胞遗传学的好材料。用Giemsa染色法制备骨髓细胞染色体标本,所得标本清晰无缺失与重叠[2],用显微拍摄技术采集染色体的电子图片信息,后期用Adobe公司的Photoshop软件优化处理照片[3]],获得完整、清晰的染色体核型,并采用Levan[4]的方法进行核型分析。 2 材料与方法 2.1 材料 青蛙 2.2 方法 2.2.1 实验方法[2] (1)秋水仙素处理:实验前3~4小时,按动物每克体重2~4μg的剂量,腹腔注射秋水仙素。 (2)取股骨:处死动物后,立即取出股骨,用刀片剔掉肌肉。 (3)收集骨髓细胞:用刀片剪开股骨的两端,用盛有生理盐水的注射器插入股骨的上端,冲出骨髓细胞至离心管中,。将收集的骨髓细胞平衡后放入离心机,以1000r/min 离心10min。 (4)低渗处理:弃上清液,加入6ml蒸馏水,用吸管轻轻吹打成细胞悬浮液,置37℃温箱中低渗20min。 (5)预固定:加入5滴新配的固定液,立即打匀,并以1000r/min 离心10min后,弃上清液。 (6)固定:沿管壁慢慢加入6ml固定液,立即用吸管吹打成细胞悬液,室温下固定20min。1000r/min 离心10min后弃上清液。 (7)重复步骤6的操作。 (8)沉淀物中加入0.3~0.5ml固定液,用吸管吹打成细胞悬液。 (9)滴片:用镊子去预先冰冻的干净载玻片,迅速滴上2~3滴细胞悬浮液,立即用嘴向同一方

坐骨神经-腓肠肌标本实验报告

华南师范大学实验报告 一、实验题目:坐骨神经-腓肠肌标本制备、 骨骼肌单收缩及其总和以及Powerlab实验系统的使用 二、实验目的: 1. 学习蛙类动物单毁髓与双毁髓方法,并掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。 2. 了解电刺激的极性法则和方法,学习肌肉收缩的记录方法。 3. 观察刺激强度与肌肉收缩反应的关系、骨骼肌的单收缩过程和肌肉收缩的总和以及强直收缩现象, 了解肌肉收缩过程的时相变化以及刺激频率对骨骼肌收缩形式的影响。 三、实验原理: 腓肠肌由许多肌纤维组成,刺激腓肠肌时,不同的刺激强度会引起肌肉的不同反应。当刺激强度过小时,不引起肌肉发生收缩反应,此时的刺激为阈下刺激。而能引起肌肉发生收缩反应的最小刺激强度,为阈刺激。当全部肌纤维同时收缩时,则出现最大的收缩反应。这时,即使再增大刺激强度,肌肉收缩的力量也不再随之加大,该刺激强度为最适刺激强度。 肌肉组织对于一个阈上强度的刺激,发生一次迅速的收缩反应,称为单收缩。单收缩一般要经历潜伏期、收缩期和舒张期三个过程。 当同等强度的连续阈上刺激作用于标本时,则出现多个收缩反应的叠加,叫做强直收缩。当后一收缩发生在前一收缩的舒张期,即发生不完全强直收缩;当后一收缩发生在前一收缩的收缩期,各自的收缩则完全融合,肌肉出现持续的收缩状态,即产生完全强直收缩。 四、实验材料:青蛙 五、实验步骤: 1. 制备坐骨神经-腓肠肌标本: 1)洗干净实验动物 2)双毁髓,剥制后肢,分离两后肢 3)分离坐骨神经 4)游离腓肠肌 5)分离股骨头 6)标本检验 7)电刺激极性法则的验证 2. 连接实验装置:

将换能器的输出线接至RM6240生理记录装置的2通道,电刺激信号接至肌槽的电极上。然后把制备好的坐骨神经-腓肠肌标本股骨固定在肌槽上。将固定肌肉的棉线另一端接在张力换能器上,保持适度松紧,将坐骨神经搭在肌槽的电极上。 3. 设置通道放大器和刺激器: 1)打开PowerLab电源,检查USB线连接 2)打开Chart5中文版 3)设置通道数为2 4)设置通道2-桥式放大器:量程5mV,低通10Hz,调零 5)设置刺激器:刺激方式选脉冲,脉冲数1,手动方式,量程10V,振幅100mV,标记通 道1,频率1Hz,持续时间1mS, 4. 开始测试: 1)打开刺激器面板和点右下角”开始“按钮 2)点右上角调节采样速度(“走纸速度”) 3)菜单打开设置刺激器的脉冲数2个或5个,重新打开刺激器面板 4)调节走纸速度为400 六、实验结果: (一)坐骨神经-腓肠肌标本制备 股骨 脊柱骨 坐骨神经 腓肠肌 图1. 蛙坐骨神经—腓肠肌标本图 (二)坐骨神经-腓肠肌标本在Powerlab实验系统中所记录下的数据 1.通过不断调整刺激强度,使肌肉收缩的幅度适中,记录单收缩的曲线(图2-1 )。当肌肉受到一个单电震刺激时,产生一次收缩,称为单收缩。在经过测量从刺激开始到收缩开始这一段无明显外部表现的时间,称为潜伏期。自肌肉开始收缩至收缩达到高峰,是长度缩短或张力增高的时间,称为缩短期。曲线较缓慢地下降至基线,为长度或张力恢复过程的时

蛙类染色透明标本制作及其骨骼系统研究

蛙类染色透明标本制作及其骨骼系统研究 田嘉诚;高乐乐;杜书范;陈鹏;费宜玲 【摘要】Batrachia are animal species which characteristically represent amphibians, being the transitional form from aquatic to terrestrial. This article analyzes and studies the features of the skeletal system of Batrachia with the method of making dyeing transparent specimen to find the influence that the skeletal system has on the evolution of amphibians.%蛙类是由水生向陆生过渡的具有代表性的一类两栖动物。文章通过制作蛙类染色透明标本对其骨骼系统进行观察,以研究骨骼系统对两栖动物进化产生的影响。 【期刊名称】《江苏科技信息》 【年(卷),期】2016(000)002 【总页数】2页(P76-77) 【关键词】蛙类;骨骼系统;染色透明标本 【作者】田嘉诚;高乐乐;杜书范;陈鹏;费宜玲 【作者单位】南京森林警察学院,江苏南京 210023;南京森林警察学院,江苏南京 210023;南京森林警察学院,江苏南京 210023;南京森林警察学院,江苏南京210023;南京森林警察学院,江苏南京 210023 【正文语种】中文 蛙类作为两栖动物的代表,经过独特的变态发育后可以离开水生活。它经历了由腮呼吸到肺呼吸的转变,也标志着其由水生向陆生过渡的进化历程。通过对蛙类骨骼

最新生理学实验报告2蛙腓肠肌与刺激频率、强度的关系.

生理学实验报告2蛙腓肠肌与刺激频率、强度的关系.

生理学实验报告 实验内容: 一、蛙的坐骨神经-腓肠肌标本的制备 二、骨骼肌收缩的实验 课程名称:动物生理学实验 指导老师: 实验人: 院系专业: 学号: 2010年10月20日 实验内容一蛙的坐骨神经-腓肠肌标本的制备(4-1)【实验目的】 1、学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。 2、学习并掌握蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。 【实验原理】 蛙类的一些基本生命活动和生理功能与恒温动物相似,而其离体组织所需的生活条件比较简单,易于控制和掌握。因此在实验中常用蟾蜍或青蛙的坐骨神经-腓肠肌标本来观察兴奋与兴奋性、刺激与肌肉收缩等基本生理现象和过程。制备坐骨神经-腓肠肌标本室生理学实验中必须掌握的一项基本技能。 【实验器材】

常用手术器械(包括粗剪刀、手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、金属探针、玻璃分针)、固定针、锌铜弓、蜡盘、培养皿、废物缸、棉线、纱布、滴管、任氏液。 【实验对象】 蛙 【实验步骤】 1、毁脑和脊髓 取青蛙一只,用纱布包裹青蛙的四肢和躯干,露出头部。左手握住青蛙,并用食指按压头部前端,拇指按压背部使头部前俯;右手找到青蛙枕骨大孔所在位置。将探针由凹陷处垂直刺入,刺破皮肤即进入枕骨大孔,这时将探针由枕骨大孔转向头方,向前探入颅腔内,然后向各个方向搅动探针,以捣毁脑组织。如探针确实在颅腔内,可感觉出针在四面皆壁的腔内。脑组织捣毁后,将探针退出,在由枕骨大孔刺入并转向尾方,与脊髓平行刺捻入椎管,以破坏脊髓。椎管较细,故若已刺入椎管针则不能摆动。脊髓被破坏时蛙腿后瞪挺直。要确定脑和脊髓是否完全被破坏可检查蛙四肢肌肉紧张性是否完全消失。 2、剥制后肢标本 自青蛙两侧腋部以下完全剥离皮肤(注意:可事先剪去尾椎末端及泄殖腔附近的皮肤,使剥离更容易)。而后倒提蛙腿,使其头部向下,用手术间横向剪开腹部肌肉,看清脊神经后,用粗剪刀剪断脊柱(注意勿损伤坐骨神经)。把标本浸泡于盛有任氏液的培养皿中。将手及用过的剪刀、镊子等全部手术器械洗净。

解剖实验报告

解剖实验报告 解剖实验报告1 实验题目:骨骼和骨骼肌的大体解剖结构观察。 实验日期:20xx年3月12日。 一、实验目的和要求。 二、实验材料和用具。 三、实验内容。 四、思考题。 实验纪律和要求: 一、 1.实验前预习,明确观察目的和内容; 2.进入实验室及时清点实验材料、图谱及用具。 二、实验过程中保持安静,穿实验服,带实验报告本、铅笔、尺子、填图纸、理论教材和实 验教材。 三、实验观察后,将请同学讲解模型和讨论相关实验内容。 四、 1.实验后进行显微镜使用登记和材料用具清查; 2.值日生认真做好实验室卫生,清点实验材料、图谱及用具。 解剖实验报告2 实验目的 麻醉小白鼠 实验方法以及操作 1.小白鼠取拿方法提尾

2.麻醉剂 1%戊巴比妥那(0.5ml/100g体重+0.5ml) 3.注射位置小白鼠腹中线与一侧后肢连线的1/3处进针 4.注射方法 45度角度进针,进针后回针筒以检验针头位置是否合适。如果感到会有阻力,且回抽出气泡为正确。 实验结果 小白鼠成功被麻醉 讨论分析 1、称出小白鼠的体重,按比例来抽取适量戊巴比妥钠溶液 2、由一人提起小白鼠的尾部,并控制住小白素另一个同学打针,回抽并注射溶液。若回抽阻力很大,且松手后,针筒会还原,则可能插入到肌肉中;若抽出血,则可能插入肝脏中。 3、成功麻醉后,由第三个同学做好标记。 4、洗手。 5观察小白鼠情况。 思考题:如何完成一个好的动物麻醉? 1、麻醉剂的取量要精确。 2、打针的位置要准确。 3、操作时要稳,且45度角注射。 解剖实验报告3 一、实验名称:鸡的解剖 二、试验时间:20xx年12月12日 三、实验地点:动医楼 四、使用器械:镊子(不带齿)、手术刀、手术剪 五、解剖程序:首先把鸡处死,方法是:在鸡的颈部靠近头处开口放血致死;然后解剖 六、观察内容 1. 嗉囊:食管的膨大部,位于叉骨之前,直接在皮下,偏右 2. 腺胃:纺锤形,在肝左右两叶之间的背侧

蛙坐骨神经干动作电位实验报告

蛙坐骨神经干动作电位实验报告----6492974a-6ebb-11ec-9bd0- 7cb59b590d7d 一、实验目的: 1.学习青蛙坐骨神经干标本的制备 2.观察坐骨神经干的双相动作电位波形,并测定最大刺激强度 3.测定坐骨神经干双相动作电位的传导速度 4.学习绝对不应期和相对不应期的测定方法 5.观察机械损伤或局麻药对神经兴奋和传导的影响 二、实验材料 1.实验对象:牛蛙 2.实验药物及设备:任氏溶液、2%普鲁卡因、各种USB接口或插头连接线、神经屏 蔽盒,蛙板,玻璃分针,粗剪刀,眼科剪,眼科镊,培养皿,烧杯,滴管,蛙毁髓探针,bl-420n系统 三、主要方法和步骤: 1.捣毁脑脊髓 2.分离坐骨神经 3.安放引导电极 4.安放刺激电极 5.启动试验系统 6.观察记录 7.保存 8.编辑输出 四、实验结果与讨论 1.观察神经干双相动作电位引导(单通道,单刺激) 如图所示,观察到双相动作电位波形。 2.神经干双相动作电位传导速度测定(双通道,单刺激) (1)选择“神经骨骼肌实验”-传导速度测量”(2)改变单一刺激的强度 (3)传导速度=传导距离(r1--r2-)/传导时间(t2-t1) 如图所示,两个峰值之间的传导时间△ t=(t2-t1)=0.66ms 实验中,我们设定在引导电极1和3之间的距离△r=(r1--r2-)=1cm故传导速度 v=△r/△t=1cm/0.66ms=15.2m/s 3.神经干双相动作电位不应期的观察

由上图可知,当刺激间隔时间为4.61ms时,两双相动作电位开始融合,此时为总不应期;当刺激间隔时间为1.05ms时,双相动作电位完全融合,此时为绝对不应期。故相对不应期=总不应期c绝对不应期=4.61msc1.05ms=3.56ms 4.普鲁卡因对神经冲动传导的阻断作用 如图所示,在两通道之间滴加普鲁卡因后,两双相电位间的波峰间隔时间为1.03ms,由引导电极之间的间隔距离1cm,得此时传导速度:v1=1cm/1.03ms=9.71m/s 5.机械损伤对坐骨神经干双向动作电位的影响 由图可知,当剪断两引导电极之间的神经干时,第二通道的双相动作电位消失。故机械损伤对神经动作电位传导的阻滞作用比局麻药强。 6.实验预防措施 a)牛蛙腓肠肌后的神经干分支较难找,可以适当剪开周围软组织辅助找到。b)每隔一段时间,记得给神经干(及未分离时的周围软组织)滴加任氏液以尽量 保持组织活动。 c)分离出的神经要尽量长,以保证实验数据的完整性。 d)当添加普鲁卡因时,液滴可能落在神经干上的两个引导电极之间,此时可以使用 滴管将其引流到神经干末端无引导电极的地方,滴到神经屏蔽盒底部。e)实验前先熟悉即将使用的机能学实验系统。

脊椎动物实习报告

脊椎动物实习报告 班级:姓名:学号: 一、地理环境概况 1、鸟类实习: ⑴近郊实习:西华师范大学新校区 ⑵峨眉山实习:峨眉山位于中国四川省西南边缘向青藏高原的过渡地带,地处北纬29度16'30"~29度43'42",东经103度10'30"~103度37’10",海拔3099 m,相对高差近2 600m,峨眉山终年常绿,动植物资源极为丰富,植被茂盛,植被随着地势高度而变化,据统计,植物多达3700余种,这些植物给各类动物创造了一个天然的乐园。峨眉山有2300多种野生动物,其中有珍稀的大熊猫、黑鹳、小熊猫、短尾猴、白鹇鸡、枯叶蝶、弹琴蛙、环毛大蚯蚓等。 2、鱼类实习:学校附近的西河 3、两栖类实习: ⑴学校实验室 ⑵峨眉山 4、哺乳类实习:峨眉山 二、实习情况: 1、鸟类实习 鸟类标本的假剥制 实验步骤:

1)测量记录:测量并记录小鸡的体重、体长、翅长、尾长、跗跖长、 性别等。 2)剥皮:使小鸡整个躯干与皮肤分离。 3)去除肌肉:翼剥至肱骨和尺骨,腿剥至胫骨,去除其上的肌肉, 去除头部肌肉时应特别注意,小心皮肤破裂,待全部剥完后,整个鸡皮已翻出,剔净残存的肌肉和脂肪,否则以后会渗出油脂。 4)防腐处理:用棉花蘸上防腐剂,涂抹于所有留下的骨骼及鸡皮的 内面。 5)填装:用棉花填充眼窝,四肢也用棉花缠于骨上并使其恢复原形。 并用长度合适的竹签和棉花固定头部,使鸡体的形状回复原有状态。 6)缝合及整形:用小针和棉线将切口处皮和缝合。再将羽整理干净, 并调顺,两脚交叉摆放平整。最后用一层薄棉将整个标本裹起来固定,待标本干后取下棉花。 7)挂标签:标本做好后,将注有鸟名、采集日期和地点、及测量数 据的标签挂唉后肢上。 观鸟 在老师的带领下,通过对近郊及峨眉山地区鸟类的观察,我学到了许多识别鸟类的方法及一些鸟类的主要特征,现将所观察到的鸟类整理如下: 噪娟、方尾翁、灰趾噪眉、小杜鹃、灰卷尾、黑卷尾、发冠卷尾、画眉、大山雀、灰胸竹鸡、松鸦、红嘴蓝雀、黑短脚鹎、棕头鸦雀、

青蛙(或蟾蜍)的外形和骨骼系统

实验18 青蛙(或蟾蜍)的外形和骨骼系统 一、目的与内容 (一)目的 通过对蛙(或蟾蜍)外形和骨骼系统的观察,了解两栖类的躯体结构及脊椎动物由水生到陆生的过渡中,两栖类在结构和功能上所表现出的初步适应陆生的特征。 (二)内容 蛙(或蟾蜍)的外形与骨骼系统的观察。 二、材料与用品 (一)材料 活蛙(或蟾蜍)或浸制标本,蛙(或蟾蜍)整体和散装的骨骼标本。 (二)用品 解剖盘、解剖器、显微镜、放大镜。 三、操作与观察 用双毁髓法处死活蛙(或蟾蜍),针尖刺入颅腔毁脑时,针的倾斜角度必须很小。实验材料若为蟾蜍,操作中应注意不宜近距离注视,不要挤压其耳后腺,防止耳后腺分泌物射入实验者眼内;如被射入,则立即用生理盐水冲洗眼睛。 (一)外形 将活蛙(或蟾蜍)静伏于解剖盘内,观察其身体,可分为头,躯干和四肢 3 部分。 1 .头部 蛙(或蟾蜍)头部扁平,略呈三角形,吻端稍尖。口宽大,横裂,由上下颌组成。上颌背侧前端有 1 对外鼻孔,外鼻孔外缘具鼻瓣,观察鼻瓣如何运动,思考鼻瓣的运动与口腔底部的动作有何关系。眼大而突出,生于头的左右两侧,具上、下眼睑;下眼睑内侧有一半透明的瞬膜。轻触眼睑,观察上、下眼睑和瞬膜是否活动,怎样活动?当眼睑闭合时,眼球位置有何变动?两眼后各有一圆形鼓膜(蟾蜍的鼓膜较小。在眼和鼓膜的后上方有 1 对椭圆形隆起称耳后腺,即毒腺)。雄蛙口角内后方各有一浅褐色膜襞为声囊,鸣叫时鼓成泡状(蟾蜍无此结构)。 2 .躯干部 鼓膜之后为躯干部。蛙的躯干部短而宽,躯干后端两腿之间,偏背侧有一小孔,为泄殖腔孔。 3 .四肢 前肢短小,由上臂、前臂、腕、掌、指 5 部组成。4 指,指间无蹼。生殖季节雄蛙(或雄蟾蜍)第一指基部内侧有一膨大突起,称婚瘤,为抱对之用。后肢长而发达,分为股、胫、跗、跖、趾 5 部。5 趾,

咖啡因对青蛙骨骼肌收缩的影响

咖啡因对青蛙骨骼肌收缩的影响 【立项依据及实验目的】 咖啡碱是茶叶、咖啡豆、可可、可拉果等植物中的主要生物碱,化学名为1, 3,7-三甲基黄嘌呤,分子式为C 8H 10 O 2 N 4 。咖啡碱是重要的医药原料,对人体机 体的作用非常复杂。咖啡碱能刺激神经系统,提高大脑记忆和识别能力,促进胰岛素分泌和降低Ⅱ型糖尿病风险,能刺激呼吸系统,可用于治疗早产婴儿呼吸暂停,具有抗癌效果,同时也会引起高血压和心率不齐导致钙流失和骨质疏松以及流产[1]等不良反应 翟心慧等[2]在实验中观察到一定浓度的咖啡碱引起蟾蜍坐骨神经干动作电位幅度明显升高,且动作电位传导速度有加快趋势,提示其能提高骨骼肌的收缩力和兴奋性。李淑翠等[3]报道咖啡因能提高小鼠运动耐力,使运动后小鼠肝糖原储备增加,血乳酸和血尿素氮水平降低,并抑制运动引起的脂质过氧化反应,表明咖啡因具有抗运动性疲劳作用;而运动依靠骨骼肌的收缩,肌肉收缩乏力时表现出运动疲劳。本次实验拟观察咖啡碱处理后,蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本在不同的刺激形式下,对肌肉收缩性的影响,进一步深入探讨咖啡因在缓解运动疲劳,提高运动耐受力作用的具体机制。 本实验的目的为探究咖啡因任氏液对青蛙骨骼肌收缩的影响。 【实验对象】:青蛙 【实验器材和药品】: 1、器械:手术器械一套(包括普通剪刀、小手术剪刀、镊子、铁支架、双凹活动架、探针、玻璃分针、蛙板、玻片、固定针等) 2、仪器:生物机能实验系统、张力换能器、刺激电极、肌动器等 3、药品:任氏液、咖啡因原液1支,100μg/ml咖啡因任氏液、1000μg/ml 咖啡因任氏液。 4、其他:烧杯、棉线、纱布、培养皿、吸管等。 【实验步骤和观察指标】: 1、手术操作:制备青蛙坐骨神经腓肠肌标本。 2、试剂配制:制备1000μg/ml咖啡因任氏液(取1ml咖啡因原液加入任 氏液中搅拌均匀至100ml);制备100μg/ml咖啡因任氏液(从1000μg/ml 咖啡任氏液中取1ml加入任氏液中搅拌均匀至100ml)。 3、实验准备:制备标本,先在任氏液中浸泡10分钟,然后再将实验组的 标本分别在1000μg/ml咖啡因任氏液与100μg/ml咖啡因任氏液中浸泡10分钟;对照组浸泡在任氏液中10分钟,进行两组对照实验。 4、仪器装置:准备好生物机能实验系统及张力换能器。 5、观察与记录:观察青蛙坐骨神经腓肠肌标本在不同浸泡环境下,其收缩 性的影响,记录并对比阈刺激与最大刺激收缩曲线的幅度的百分比。 (1)给肌肉的负荷增加2g后(方法:先将标本悬空,看基线的位置,然后将标本悬挂后将基线提高到2g的高度),测量肌肉收缩的阈刺激与最大刺激收缩曲线的收缩幅度,并计算它们增加的比例(计算方法见后)。 (2)再给肌肉不完全强直收缩(参数:刺激强度:1V,频率:30Hz,串刺激数量:10个),重复3次后,再次测量阈刺激与最大刺激收缩曲线收缩的幅度,并计算它们增加的比例(计算方法见后)。 【计算公式】以任氏液中标本的收缩幅度为1

相关文档
最新文档