常规液相色谱柱测定早熟素Ⅱ的方法探讨

合集下载

【论文】高效液相色谱法检测植物激素方法的建立

【论文】高效液相色谱法检测植物激素方法的建立

摘要植物激素是植物体内合成的对植物生长发育有显著作用的几类微量有机物质。

也被称为植物天然激素或植物内源激素。

它们在细胞分裂与伸长、组织与器官分化、开花与结实、成熟与衰老、休眠与萌发以及离体组织培养等方面,分别或相互协调地调控植物的生长、发育与分化。

由于它在植物体内含量甚微,一般水平为1000 ng/g鲜重,建立一种有效,简便的检测方法对于研究植物激素具有指导性意义。

目前植物激素的定性和定量分析主要以理化方法为主,理化测试法包括气相色谱法、液相色谱法、气象-质谱联用等。

本次研究是利用高效液相色谱法来检测植物体内的酸性激素,即吲哚乙酸IAA,吲哚三丁酸IBA,赤霉素GA3,以及脱落酸ABA。

以HPLC进行分析测试,非常适合用于分析那些不能汽化或者在易于裂解不稳定的物质,用HPLC分析植物激素(IAA、IBA、GA3、ABA),采用二极管阵列检测器检测,本次研究的前处理方法为固相萃取法。

通过本次实验,得到了一种简便易操作的前处理方法,找到了液相色谱的最佳工作条件,并通过检测实际样品,证明了该方法是一种有效可行的植物酸性激素的定性定量分析方法。

关键字:植物激素,提取,高效液相色谱。

AbstractPlant hormone is several kinds of trace of organic matter that synthesized in the plant,and it have significant effect on plant growth. They separately or coordinatively regulate of plant growth, development and differentiation. Because it is a trace contect in plants and general level, 1000 ng / g in fresh weight. Therefore, the establishment of an effective and simple detection method for the study of plant hormones is very significant.Present plant hormones qualitative and quantitative analysis mainly based on physical and chemical methods, physical and chemical testing methods including GC, HPLC, GC-MS.with high performance liquid chromatography, the acidic hormones of IAA, indole-3 butyric IBA, gibberellic acid GA3, and ABA in plants are detected. It is suitable for the analysis of those which do not vaporize easily at high temperatures by HPLC. Analysis of plant hormones (IAA, IBA, GA3, ABA), usually use UV monitor testing, and this study of pre-treatment method for solid phase extraction.A simple and easy pre-treatment methods was established, and found the best conditions for liquid chromatography.With detecting the actual samples, Iit shows that it is the feasible and effective method of the acidic hormones analysis .Key words: plant hormones, extraction, detection, HPLC.目 录第一章 前 言 (1)1.1 植物激素的研究背景与意义 (1)1.2 植物激素的种类及性质 (1)1.2.1植物激素概述 (1)1.2.2植物激素——生长素 (2)1.2.3植物素——赤霉素 (3)1.2.4植物激素——细胞分裂素 (4)1.2.5植物激素——脱落酸 (4)1.2.6植物激素——乙烯 (4)1.3液相色谱法的研究 (5)1.3.1液相色谱仪 (5)1.3.2 液相色谱法的主要类型 (8)第二章 实验材料与方法 (11)2.1仪器与试剂 (11)2.2 实验方法 (11)2.2.1 芽样品激素含量的测定 (12)2.2.2种子样品激素含量的测定 (12)2.2.3 C18柱系统的处理及使用(需临时处理) (12)2.2.4 高效液相色谱分析 (12)2.2.5溶液的配制 (13)2.2.6 标准曲线的测定 (14)2.2.7 稳定性实验 (15)2.2.8回收率的测定 (16)2.2.9 检出限的测定 (16)第三章 实验结果与讨 (17)3.1标准曲线的绘制 (17)3.1.1 IAA标准曲线的绘制 (17)3.1.2 IBA标准曲线的绘制 (17)3.1.3 ABA标准曲线的绘制 (18)3.1.4 GA3标准曲线的绘制 (19)3.2稳定性实验 (20)3.3 实际样品激素含量测定 (21)3.4回收率的测定 (22)3.4.1 GA3回收率谱图 (22)3.4.2 IAA回收率谱图 (23)3.4.3 ABA回收率谱图 (24)3.4.4 IBA回收率谱图 (24)3.5 检出限的测定 (25)第四章 结论 (27)参考文献 (28)致谢 (30)第一章前言1.1 植物激素的研究背景与意义植物激素是存在于植物体内的具有调节植物生长发育作用的微量元素。

气相液相色谱仪检定方法探讨

气相液相色谱仪检定方法探讨

气相液相色谱仪检定方法探讨化学分析仪器在进行检定与分析方面存在诸多问题,导致测量结果存在一定的误差。

文章以气相、液相色谱仪为例,对色谱仪工作原理进行分析,对色谱仪检定中存在的问题进行总结,对色谱仪检定方法及相关流程进行研究,并结合实际案例进行验证。

标签:气相;液相;色谱仪;检定方法1 色谱仪工作原理分析气相色谱仪的原理是以分离相关技术为基础,对气相进行检测,被检测气体有可能是各种混合物,其成分比较复杂,检测过程中必须要先分离才可以执行其他操作。

气混合物分离是根据各组成物的性质区别进行操作,GC是通过物质沸点、极性以及吸附性质等方面存在的差别完成混合物分离。

等待分析样品是于汽化室进行汽化,之后与惰性气体一起进入色谱柱,色谱柱中包括液体、固体固定相,因为样品中各组分的性质有区别,组分会有差异的在流动相和固定相之间形成再分配过程或者是直接吸附平衡。

因为测试过程中气体不断流动,而且平衡是一种相对平衡,运动过程中会出现反复吸附及解附。

在这种情况下,气相色谱仪对样品中某种物质存在情况进行探测,并且将其转变成电信号,放大信号进行记录,以此反映样品组成比例关系。

液相色谱仪是利用液体混合物在流动相与固定相中的分配比例存在一定的区别,以此实现对混合物进行分离与检测。

一般而言,液相色谱仪包括输液系统、进样系统、检测系统以及分离系统等部分,其流程是先流动液相物质经过高压泵后注入到检测系统中,依次注入待检测混合物。

按照混合样品中各物质组分在流动相与固定相中产生的吸附与分配之间的比例区别,出现了二者在运动速度方面的区别,完成了吸附与解析,之后缓慢分离,利用流动相把待检测物质输入到检测器中,最后是把检测结果转换成电信号,并且放大后转至记录仪中,输出色谱图,进行定量分析。

2 色谱仪检定中存在的问题气相、液相色谱仪会由于特性区别,导致实际检测过程中存在各种问题,对色谱仪检定中存在的问题进行总结,能为化学分析仪器检定及使用之间的效率关联分析提供一定的理论支持。

植物激素的高效液相色谱

植物激素的高效液相色谱

植物激素的高效液相色谱高效液相色谱法,基本原理为影响柱效的主要因素是涡流扩散和传质阻抗。

分为液固吸附色谱法,流动相为液体,固定相是固体吸附剂;液分配色谱法,固定相几乎全是化学键合硅胶,又称化学键合相色谱法等。

(二)塔板理论:塔板理论方程式(高斯方程式):理论塔板式数:理论塔板高度:(三)速率理论: h=a+b/u+cu影响塔板高度的因素:1、涡流扩散 2、纵向扩散 3、传质阻抗二、气相色谱仪:(1)色谱柱:固定相与柱管组成。

填充柱、毛细管柱;分配柱、吸附柱(2)紧固液:低沸点的液体,操作方式下为液态。

甲基硅油、聚乙二醇等选择原则:按相似性、按主要差别、按麦氏差别选择。

(3)载体:化学惰性的多孔性微粒(4)毛细管色谱柱:开管型、填充型(5)检测器:1、浓度型检测器:热导检测器和电子捕捉检测器2、质量型检测器:氢焰离子化检测器中国药典对气相色谱规定:除检测器种类、紧固液品种及特定选定的色谱柱材料严禁任一修改外,其他均可适度发生改变,色谱图于30min内记录完。

第四节高效液相色谱法1、基本原理:影响柱效的主要因素就是涡流蔓延和传质电阻。

分类:1、液固吸附色谱法:流动相为液体,固定相是固体吸附剂。

2、液——液分配色谱法:紧固二者几乎全系列就是化学键再分硅胶,又称化学键再分相色谱法。

按固定相和流动相的极性2又分:正相色谱法和反相色谱法正相色谱法:流动二者极性大于紧固二者极性的色谱法。

用作拆分溶有机溶剂的极性及中等极性的分子型物质,用作所含相同官能团物质的拆分。

极性强组分先流入反相色谱法:……………大于……………………… 用于分离非极性至中等极性的分子型化合物2、高效率液相色谱仪:1、高压输液泵2、色谱柱3、进样阀4、检测器:紫外稀释检测器、荧光检测器、热法折光检测器、电化学检测中国药典对高效液相色谱法规定:除固定相种类、流动相组分、检测器类型不得任意更改外,其余均可适当改变,色谱图于20min内记录完毕。

_高效液相色谱测定多种植物内源激素方法研究

_高效液相色谱测定多种植物内源激素方法研究

四川农业大学学报 1997年 15 (3):297—299J .Sichuan Agric.Univ. 1997-01-24收稿。

高效液相色谱测定多种植物内源激素方法研究 谢 君 (四川农业大学分析测试中心/雅安市625014)摘 要 研究高效液相色谱法测定赤霉素(GA 3)、3-吲哚乙酸(IAA )、脱落酸(ABA )、玉米素(ZT )和激动素(KT )等五种植物激素的条件;采用Spherso rbC 18柱,乙腈-甲醇-0.6%乙酸流动相,检测波长254nm;建立了一种从植物中提取五种激素的样品处理方法,实际分析了植物样。

关 键 词 植物激素[45N D,49LD] 高效液相色谱中图分类号 O657.72;Q946.885引 言 植物内源激素的研究是植物生理学领域中的重要内容之一,植物的内源激素与植物生长发育的基本规律和代谢过程的调节控制都密切相关。

因此植物内源激素的准确测定,对植物生命活动和作物遗传育种栽培领域的研究具有重要的意义。

高效液相色谱(HPLC)是较理想的植物内源激素分析方法,由于在联合测定植物组织抽提液中的多种内源激素时,经常见到分离差、峰型不良及严重拖尾现象,因此选择合适的内源激素提取方法和色谱条件较为重要。

本研究采用反相HPLC 法探讨了GA 3、IAA 、ZT 和K T 等五种植物内源激素联合测定的色谱分析条件,并获得满意的分离结果。

有关HPLC 分析植物内源激素,多见于GA 3、IAA 、ABA 的联合测定[1-4],而五种激素的联合分析尚未见报道。

1实验部分1.1仪器与试剂 日本岛津LC -6A HPLC 系统,包括LC-6A 高压溶剂输送泵;SPD-6AV 紫外可见检测器;LC-6A 系统控制器;C-R3A 色谱处理器;C TO-6A 柱温箱;旋转蒸发器;0.3μm 超微滤膜;萃取装置;直型层析柱等。

GA 3、IAA 、ABA 标准品均由FLUK A 公司提供;ZT 、K T 由中国科学院上海生物化学研究所提供;石油醚(30-60℃)、Ca-CO 3为优级纯;其它试剂均为分析纯;乙腈为色谱纯,甲醇为AR 重蒸;实验用水均为二次蒸馏水。

动物激素 液相色谱法

动物激素 液相色谱法

液相色谱法是一种分离和分析技术,可用于检测动物源性食品中的激素残留。

以下是液相色谱法在动物激素残留检测中的应用:
1. 分离:液相色谱法可用于分离动物源性食品中的激素残留。

在液相色谱中,不同成分在流动相和固定相之间的分配平衡不同,因此可以通过调整流动相和固定相的组成和比例,以及色谱柱的类型和温度等参数,实现不同成分的分离。

2. 检测:液相色谱法可用于检测动物源性食品中的激素残留。

在液相色谱中,不同成分在色谱柱上的保留时间不同,因此可以通过检测各成分的保留时间和峰面积等参数,确定各成分的含量。

需要注意的是,液相色谱法在动物激素残留检测中可能受到多种因素的影响,如样品处理、色谱柱的选择、流动相的组成和比例等。

因此,在进行动物激素残留检测时,需要选择合适的液相色谱条件和方法,并进行严格的实验设计和数据分析。

高效液相色谱法测定小儿早熟抗胶囊中栀子苷含量

高效液相色谱法测定小儿早熟抗胶囊中栀子苷含量

高效液相色谱法测定小儿早熟抗胶囊中栀子苷含量郑国平;李彬【期刊名称】《中国药业》【年(卷),期】2011(20)8【摘要】目的建立测定小儿早熟抗胶囊中栀子苷含量的高效液相色谱(HPLC)法.方法采用Eclipse-C18色谱柱(250mm×4.6mm,5 μm),以乙腈-水(12:88)为流动相,流速为1.0mL/min,检测波长为238nm.结果栀子苷质量浓度在3.625~580.0μg/mL(r=1.0000,n=7)范围内与峰面积线性关系良好;平均回收率为97.91%,RSD=1.33%(n=9).结论所建立的HPLC法操作简便、准确,重复性好,可用于小儿早熟抗胶囊的质量控制.%Objective To develop a HPLC method for the determination of geniposide in Xiso'er Zaoshoukang Capsule. Methods The Eclipse-C18 column(250 mm ×4.6 mm, 5 μm) was used with the mobile phase of acetonitrile-water(12: 88), the flow rate of 1.0 mL/min and the detection wavelength of 238 nm. Results The good linear relationship for geniposide was in the ranges of 3.625-580.0 μg/mL( r = 1. 000 0, n =7). The average recovery rate was 97.91%, RSD = 1.33% ( n =9). Conclusion This HPLC method is simple, quick,rapids and accurate, which can be used for the quality control of xiao'er zaoshukang capsule.【总页数】2页(P34-35)【作者】郑国平;李彬【作者单位】浙江省舟山市食品药品检验所,浙江,舟山,316000;浙江省舟山市食品药品检验所,浙江,舟山,316000【正文语种】中文【中图分类】R284.1;R286.0【相关文献】1.反相高效液相色谱法测定茵山莲软胶囊中栀子苷含量 [J], 赵明明;宋伶俐;马楠;王东泽;王舒航;陈宇婷;金向群;路海滨2.高效液相色谱法测定翁沥通胶囊中栀子苷的含量 [J], 杨慈海;刘玲3.高效液相色谱法测定筋骨痛宁胶囊中栀子苷的含量 [J], 逯小萌;赵群涛4.高效液相色谱法测定连栀胶囊中连翘苷和栀子苷含量 [J], 许红辉;张永锋;赵韶华;柏艳柳;李晓燕5.高效液相色谱法测定复方丹栀胶囊中栀子苷含量 [J], 许风顺;俞新君;陈进;聂丽云因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

柱前荧光标记结合高效液相色谱_质谱联用技术分析花粉中饱和及不饱和脂肪酸

柱前荧光标记结合高效液相色谱_质谱联用技术分析花粉中饱和及不饱和脂肪酸

柱前荧光标记结合高效液相色谱—质谱联用技术分析花粉中饱和及不饱和脂肪酸*高永平①,付艳艳①,孙志伟②,康丽②,纪仲胤①,赵富华①,张琳①,尤进茂①②(①曲阜师范大学化学与化工学院,273165,山东省曲阜市;②中国科学院西北高原生物研究所,810001,青海省西宁市)摘要:以荧光试剂苯并[b]吖啶酮-5-乙基对甲苯磺酸酯(BAETS)作为柱前衍生化试剂,对27种饱和脂肪酸和7种不饱和脂肪酸进行了优化衍生.在Hypersil BDS C8色谱柱(4.6ˑ200mm i.d,5μm)上,采用梯度洗脱对34种混合脂肪酸(FFA)衍生物进行了分离及定性定量分析.荧光检测激发和发射波长分别为λex= 273nm,λem=503nm.多数脂肪酸的线性回归系数大于0.9995,检测限在11.70-68.25fmol.采用大气压化学电离源(APCI)的正离子模式,实现了花粉中FFA组分的质谱鉴定.建立的方法具有良好的重现性,对实际样品测定结果满意.关键词:高效液相色谱—质谱;荧光检测;柱前衍生;脂肪酸中图分类号:O657.63文献标识码:A文章编号:1001-5337(2011)02-0063-061引言脂肪酸在自然界中分布极为广泛,是生物体进行新陈代谢不可或缺的一类重要物质.对调节生物体内各项生理和生物功能起着重要作用.由于这类化合物在紫外—可见光区吸收较弱,光度法难以准确测定[1].高效液相色谱荧光检测法采用柱前衍生化法进行荧光检测,因其具有高选择性,高灵敏性而成为一种行之有效的手段,常用的重氮甲烷类试剂[2],其缺陷是该类化合物对潮气、水不稳定,溴甲基类化合物[3]的不足之处是衍生过程需在冠醚相转移催化剂的存在下于苯或甲苯溶剂中完成,分离前需预处理,既费时又费力[4].本文采用高灵敏的荧光试剂BAETS作为柱前衍生化试剂,在N,N-二甲基甲酰胺(DMF)溶剂中,95ħ下以K2CO3作催化剂可获得稳定的荧光产物.衍生产率高、条件温和、操作简便,衍生溶液不必预处理可直接进样分析.本实验采用三元梯度洗脱,实现了饱和脂肪酸和不饱和脂肪酸衍生物的同时分离,对花粉低含量的脂肪酸实现了灵敏、准确的测定.2实验部分2.1仪器与试剂Agilent1100离子阱液相色谱—质谱联用仪(美国Agilent公司),配备四元梯度泵、在线真空脱气机、荧光检测器和自动进样器;大气压化学电离源(APCI Source).27种饱和脂肪酸和7种不饱和脂肪酸标准样品(美国,Sigma公司),具体是:C4(正丁酸,butyric acid);C5(戊酸,valeric acid);C6(己酸,hexanoic acid);C7(庚酸,heptoic acid);C8(辛酸,octoic acid);C9(壬酸,pelargoic acid);C10(癸酸,decoic acid);C11(十一酸,undecanoic acid);C12(十二酸,dodecanoic acid);C20:5(5,8,11,14,17-二十碳五烯酸,5,8,11,14,17-eicosapentaenoic acid);C13 (十三酸,tridecanoic acid);C18:3(8,11,14-十八碳三烯酸,8,11,14-octadecatrienoic acid);C22:6(2,5,8,11,14,17-二十二碳八烯酸,2,5,8,11,14,17-do-cosahexenoic acid);C14(十四酸,tetradecanoic acid);C20:4(6,9,12,15-二十碳四烯酸,6,9,12,15-arachidonic acid);C18:2(9,12-十八碳二烯酸,9,12-第37卷第2期2011年4月曲阜师范大学学报Journal of Qufu Normal UniversityVol.37No.2Apr.2011*收稿日期:2010-09-01基金项目:国家自然科学基金(批准号:20075016),中国科学院“百人计划”项目(No.328)资助.作者简介:高永平,男,1982-,硕士生;研究方向:荧光分子探针开发及色谱分析;E-mail:gaoyongping616@126.com;尤进茂,男,1963-,博士,教授,硕士生导师;研究方向:新型荧光发光材料的开发;E-mail:jmyou6304@163.com.octadecadienoic acid);C15(十五酸,pentadecanoic acid);C16(十六酸,hexadecanoic acid);C18:1(12-十八碳烯酸,12-octadecenoic acid);C17(十七酸,heptadecanoic acid);C18(十八酸,octadecanoic acid);C20:1(11-二十碳烯酸,11-eicosenoic acid); C19(十九酸,nonadecanoic acid);C20(二十酸,ei-cosoic acid);C21(二十一酸,heneicosoic acid);C22 (二十二酸,docosanoic acid);C23(二十三酸,trico-sanoic acid);C24(二十四酸,tetracosanoic acid);C25 (二十五酸,pentacosanoic acid);C26(二十六酸,hexacosanoic acid);C27(二十七酸,heptacosanoic acid);C28(二十八酸,octacosanoic acid);C29(二十九酸,nonacosanoic acid);C30(三十酸,dotriacon-tanoic acid).乙腈(色谱纯,中国,禹王试剂公司),DMF、碳酸钾、柠檬酸钾、酒石酸钠、乙酸钠、草酸钾等其他试剂均为分析纯,纯水由Milli-Q超纯水系统制备.BAETS(本实验室自制)[5]2.2标准溶液的配制取脂肪酸标品,用色谱纯乙腈配制成浓度为2ˑ10-2mol/L标液,相应低浓度脂肪酸标品(2.0ˑ10-4mol/L)用乙腈稀释而成.准确称取BAETS 2.215mg用色谱纯DMF定容至500μL,浓度为1.0ˑ10-2mol/L.相应低浓度的衍生试剂(2.0ˑ10-3mol/L)用DMF稀释而成.2.3色谱及质谱条件色谱柱:Hypersil BDS-C8(200ˑ4.6mm i.d,5μm).流动相A:10%乙腈水溶液(含30mM HCOONH4),流动相B:50%乙腈+50%DMF(V/V =1ʒ1),流动相C:100%乙腈.梯度洗脱程序如表1所示:流速为1.0mL/min,进样量10μL,柱温30ħ.最大激发发射波长为λex /λem=273/503nm.质谱条件:大气压化学电离源(APCI source),正离子模式,喷雾压力413kPa,干燥气流量为5L/min,干燥气温度350ħ,气化温度450ħ,毛细管电压3500V,电晕电流4000nA(Pos).表1梯度洗脱程序时间t(min)流动相A(%)流动相B(%)流动相C(%) 0402040252030504510355550535606055907005952.4标准品衍生化向装有10mg碳酸钾的安瓿瓶中依次加入180μL DMF,50μL脂肪酸混合标品,180μL BAETS,密封后于95ħ水浴中振荡反应30min,完毕后取100μL衍生液,加入300μL乙腈稀释进样10μL(50pmol).脂肪酸的羰基碳进攻衍生试剂的羟基氧生成相应的羧酸酯,从而完成衍生化反应.2.5花粉中游离脂肪酸的提取将样品置于50ħ烘箱中烘干后称取玫瑰花粉0.1595g,益母草花粉0.1493g,山渣花粉0.2903g,茶花花粉0.1655g.分别放入10mL容量瓶中,用10mL氯仿浸泡,超声振荡数次放置过夜后过滤,再加入2mL氯仿润洗,合并滤液加1.5mL吡啶超声振荡20s,使其转变成相应脂肪酸的有机盐,溶剂经N2吹干分别用500μL DMF定容备用.3结果与讨论3.1衍生条件的优化BAETS与脂肪酸的衍生化产率,随试剂倍数(衍生试剂量与标准品量的比值)、催化剂、衍生时间、衍生温度的不同有显著的差异.实验中分别选取不同的试剂倍数对衍生产率进行了考察(2倍,4倍,6倍,8倍,10倍,12倍),以C12C22ʒ6C20ʒ4C18ʒ2C16进行对比研究,结果表明,试剂倍数为6倍的时候衍生化产率最高,随着试剂倍数的增大衍生化产率没有明显增加.选取柠檬酸钾,碳酸钾,乙酸钠,草酸钾,酒石酸钾作为碱性催化剂,考察不同的碱性催化剂对衍生化产率影响,结果表明:碳酸钾的衍生化产率最高.尽管衍生化产率随K2CO3用量的增加而提高,但过高的用量会导致试剂的严重分解.实验中通过优化K2CO3用量发现,选取K2CO3的量为10 mg时最优.对温度和时间的考察表明:衍生温度为95ħ,衍生时间30min时具有最高的衍生产率.3.2标准品的色谱分离及质谱鉴定按前述优化条件,34种混合脂肪酸衍生后的色图1标准脂肪酸的色谱分离图(50pmol)谱分离见图1,大多数衍生物可获得较好的基线分46曲阜师范大学学报(自然科学版)2011年离.采用大气压化学电离源进行在线柱后质谱鉴定,质谱数据见表2,C16酸衍生物为例的一级质谱,二级质谱见图2,谱数据解析如下:准分子离子峰[M +H]+的m/z为528.4.级质谱中离子峰m/z254.6归属于C16去掉一个H;m/z272.5归属于CH2CH2-O键断裂后形成的5-乙基苯并吖啶酮;m/z283.6归属于C16酸与苯并吖啶酮上乙基结合的产物;m/ z290.6归属于[M1+H]+,该碎片离子应归属于O-CO键断裂后形成的苯并吖啶酮-5-乙醇(M1:代表苯并吖啶酮-5-乙醇的分子量).表2游离脂肪酸衍生物的线性回归方程、相关系数、检测限和质谱数据及保留时间和峰面积的重现性FAAY=AX+BX:Injected amount(pmol)Y:Peak areaR2Detection limits(fmol)质谱[M+1]+Retention time/%Peak area/%C4Y=41.48X+11.320.999229.78359.90.0670.32 C5Y=53.43X+13.830.999632.76373.80.0430.41 C6Y=43.15X+10.850.999836.00387.80.0170.33 C7Y=49.85X+10.060.999930.06401.90.0150.39 C8Y=42.00X+12.500.999640.95415.80.0150.25 C9Y=39.94X+5.870.999940.95429.90.0100.28 C10Y=44.60X+12.260.999838.09443.90.0120.35 C11Y=39.71X+7.810.999968.25457.90.0180.22 C12Y=43.43X+16.200.999540.96471.90.0230.19 C20:5Y=34.37X+9.070.999840.95574.40.0310.25 C13Y=44.10X+15.240.999336.40486.00.0290.21 C18:3Y=61.86X+24.060.999718.20552.20.0350.24 C22:6Y=37.62X+6.540.999940.97600.40.0240.19 C14Y=34.53X+5.400.999954.61500.00.0260.25 C20:4Y=54.04X+12.590.999854.62576.40.0420.31 C18:2Y=48.73X+35.830.991632.76554.30.0510.22 C15Y=29.33X+8.310.999754.60514.00.0320.28 C16Y=54.03X+41.470.991511.70528.40.0320.23 C18:1Y=90.23X+18.750.999925.20555.50.0350.31 C17Y=46.29X+9.220.999940.94542.10.0430.26 C18Y=41.84X+9.060.999938.09556.40.0420.16 C20:1Y=51.36X+12.110.999936.41582.50.0290.19 C19Y=47.78X+9.090.999936.43570.10.0540.13 C20Y=33.57X+1.690.999836.42584.00.0410.37 C21Y=59.64X+15.820.999727.33598.10.0600.31 C22Y=113.89X+25.540.999823.43613.50.0370.43 C23Y=57.78X+13.110.999825.21626.70.0390.29 C24Y=62.44X+12.960.999932.76640.40.0430.31 C25Y=57.55X+9.360.999940.94654.30.0380.27 C26Y=54.75X+13.040.999936.41669.50.0290.15 C27Y=56.90X-2.740.999740.95683.00.0610.27 C28Y=56.17X+14.600.999836.42697.10.0340.22 C29Y=48.38X+12.010.999836.40711.70.0350.29 C30Y=37.93X+12.930.999646.80724.60.0440.2156第2期高永平,等:柱前荧光标记结合高效液相色谱—质谱联用技术分析花粉中饱和及不饱和脂肪酸图2C16脂肪酸衍生物的一级(上)、二级(下)质谱图3.3线性回归方程,检出限和重现性进样量在50-0.0975pmol范围内,依据峰面积和实际进样量进行线性回归,所得各脂肪酸衍生物的回归方程、相关系数和检出限见表2,各脂肪酸衍生物的线性相关系数在0.9915-0.9999之间,检出限在11.70-68.25fmol之间(信噪比按S/N=3ʒ1计算).在相同洗脱条件下,对50pmol脂肪酸衍生物进行平行6次分析,保留时间和峰面积重现性见表2,保留时间的相对标准偏差小于0.4476%,峰面积的相对标准偏差小于2.235%.3.4本实验与已报道相关衍生化方法的比较就衍生化的反应条件、检测波长和检测限等方面,将BAETS与已报道的其他衍生试剂相比较(见表3).表3BAETS与其他衍生试剂的比较衍生试剂衍生条件检测波长(nm)检测限文献BMC以18-冠醚-6为催化剂,37ħ密闭条件下水浴反应30minλex=330λem=4001.2-2.5μmol/L.[8]2,4'-二溴苯乙酮以18-冠醚-6为催化剂,80ħ密闭条件下水浴反应40minλex=290λem=3309.7-960.0ng[9]DBD-ED在三苯基磷和DPDS作用下,室温反应至少24hλex=450λem=5600.5-25.0pmol[10]APF EDC为缩合剂,60ħ密闭反应1hλex=467λem=5120.1-6.4nmol/L.[11]DTAD在亚硫酸钠和磷酸二氢钠存在下,于37ħ下反应60minλex=335λem=4308.0-12.0fmol.[12]ADAM室温下(25ħ)反应3h以上λex=365λem=4125.0-10.0fmol.[13]TSEPIP以K2CO3为催化剂,密封后于90ħ恒温水浴中振荡反应30minλex=260λem=38026.2-76.7fmol[14]BDETS以K2CO3为催化剂,密封后于90ħ恒温水浴中振荡反应30minλex=333λem=39024.8-80.4fmol.[15]BAETS以K2CO3为催化剂,密封后于95ħ恒温水浴中振荡反应30minλex=273λem=50311.7-68.3fmol本工作4-溴甲基-7-甲氧基香豆素(BMC)[6]、2,4'-二溴苯乙酮[7]等溴甲基类化学物衍生脂肪酸时需要18-冠醚-6作为催化剂,与K2CO3相比其价值昂贵;4-N,N-dimethylaminosulfonyl-7-N-(2-aminoethyl)amino-2,1,3-benzox-adiazole(DBD-ED)[8]、6-oxy-(acetyl pi-perazine)fluorescein(APF)[9]、2,2’-dithiobis(l-ami-no-4,5-dimethoxybenzene)(DTAD)[10]等以胺基为活性反应基团的衍生试剂,在缩合剂存在下需要较长的反应时间,方能实现脂肪酸的衍生化.9-蒽重氮烷(ADAM)[11]等重氮甲烷类试剂极不稳定,对潮气、水不稳定,使用前必须纯化或现用现制.本实验室合成的磺酸酯类衍生试剂,可以在固态和溶液中稳定纯在,在DMF溶剂中95ħ下以K2CO3作催化剂可获得稳定的荧光产物.衍生产率高、条件温和、操作简便,衍生溶液不必预处理可直接进样分析,方便快捷.BAETS以四环并联的苯并吖啶酮为荧光母体,较之已报道的1-[2-(对甲苯磺酸酯)乙基]-2-苯基咪唑[4,5-f]9,10-菲(TSEPIP)[12],1,2苯并-3,4-二氢咔唑-9-乙基对甲苯磺酸酯(BDETS)[13]等磺酸酯类化合物,具有更长的荧光发射波长,衍生物可有效地避免背景干扰,有利于实现更高的检测灵敏度.3.5回收率和样品的测定在花粉样品中加入10μL浓度为1.0ˑ10-4 mol/L脂肪酸标准品后,按照上述提取方法提取后进行衍生,所得各脂肪酸的回收率在97.92%-101.3%之间.植物花粉中脂肪酸衍生物的色谱分离和质谱条件与实验方法部分所述相同,玫瑰花粉、益母草花粉、山楂花粉、茶花花粉的色谱分离图谱如图3中a,b,c,d.各脂肪酸的测定结果见表4.图3花粉样品中脂肪酸色谱分离图(a:玫瑰花粉b:益母草花粉c:山楂花粉d:茶花花粉)66曲阜师范大学学报(自然科学版)2011年表4实际样品中脂肪酸的测定结果(n=3)FAA 玫瑰花粉(μg/g)益母草(μg/g)山楂花粉(μg/g)茶花花粉(μg/g)C4*20.2174529.90026*C5**3.306964*C6480.278844.6463532.2461875.84149 C715.23584.9176783.129637*C8394.7945*19.0030452.53089 C912.6496414.028277.6244096.15543 C1097.9606512.645132.959007*C1116.6892*7.767735*C1288.9391115.6394.02151613.25758 C20:5*23.52731**C13*17.00775**C18:3952.94923371.543110.07061143.281 C22:6****C14213.0553.242237.56345128.75189 C20:4147.03245.36234**C18:2759.67891074.031560.0423307.6215 C15****C161099.2631821.409157.1907714.7019 C18:1140.4125496.121441.4342181.4945 C1719.5886110.71902**C18293.5783100.318633.300315.492231 C20:1*125.607510.97356*C19**37.3297665.92879 C20450.803550.1191545.59628*C2122.3197425.11399*78.29946 C22185.275272.537568.086768*C2348.02992*2.369536*C2488.6371135.059662.64866*C25***40.8157 C2695.2971624.87891**C27****C28**5.8558916.18954 C29****C30*****表示未测出4结论实验结果表明,利用BAETS作为柱前衍生化试剂,通过对衍生化和色谱分离条件的优化,建立了饱和、不饱和混合脂肪酸的测定方法,此方法灵敏度高,重现性好.对花粉样品测定结果表明,植物花粉中含有大量的饱和及不饱和脂肪酸,其中不饱和脂肪酸:C18ʒ3,C20ʒ4,C18ʒ2和C18ʒ1的含量较高.因此,含有丰富脂肪酸的植物花粉具有很高的开发利用价值.参考文献:[1]Ingalls S T,Minkler P E,Hoppel C L.High-performance liquid chromatographic separation of acylcarnitines follow-ing derivatization with4'-bromophenacyl trifluromethane-sulfonate[J].Journal of Chromatography A,1984,299(5):365-376.[2]Yoshida T,Uetake A,Yamaguchi H,et al.New prepara-tion method for9-anthryldiazomethane(ADAM)as a fluo-rescent labeling reagent for fatty acids and derivatives[J].Journal of Anal Biochem,1988,173(3):70-74.[3]Akira T,Toshinobu M,Chiyomi M,et al.Structural fea-tures for fluorescing present in methoxycoumarin derivatives[J].J Chem Pharm Bull,2000,48(2):256-260.[4]Chi-Yu Lu,Hsin-Lung Wu,Su-wei Chen,et al.A fluori-metric liquid chromatography for highly sensitive analysis ofvery long chain fatty acids as naphthoxyethyl derivatives[J].Chromatographia,2000,51(5/6):315-321.[5]付艳艳,宋翠华,秦雪芹,等.胆汁酸的双敏感探针苯并[b]吖啶酮-5-乙基对甲苯磺酸酯:荧光检测和APCI-MS鉴定[J].化学学报,2010,68(7):653-660.[6]王猛,张晓清,丁敏.反相高效液相色谱法测定鼠胆汁中游离与结合型胆汁酸[J].分析测试技术与仪器,2007,13(1):1-4.[7]丁怡,唐星.柱前衍生化HPLC法测定百多宁注射液中的脂肪酸含量[J].沈阳医科大学学报,2005,22(1):29-32.[8]Prados P,Fukushima T,Santa T,et al.fluorescence labeling reagents[J].Analytica Chimica Acta,1997,334(3):227-232.[9]Du Xiao-lan,Zhang Hua-shan,Guo Xiao-feng,et al.6-Oxy-(acetyl piperazine)fluorescein as a new fluorescent labelingreagent for free fatty acids in serum using high-performanceliquid chromatography[J].Journal of Chromatography A,2007,1169(1/2):77-85.76第2期高永平,等:柱前荧光标记结合高效液相色谱—质谱联用技术分析花粉中饱和及不饱和脂肪酸[10]Shuuji Hara,Masaru Nakamura,Fumie Sakai,et al.2,2'-Dithiobis(1-amino-4,5-dimethoxybenzene)as a highly sensitive,se-lective and stable fluorescence derivatization reagent for aromatic aldehydes in liquid chromatography[J].Analytica Chimica Ac-ta,1994,291(1/2):189-195.[11]Yoshiharu S,Satoru S,Tadanobu T,et al.Quantitative determination of the fatty acid composition of human serum lipids by high-performance liquid chromatography[J].Journal of Chromatography A,1986,383(2):9-17.[12]赵先恩,索有瑞,丁晨旭,等.荧光衍生试剂1-[2-(对甲苯磺酸酯)乙基]-2-苯基咪唑[4,5-f]9,10-菲的合成及其在长链脂肪酸分析中的应用[J].色谱,2006,24(5):456-461.[13]石运伟,明永飞,赵先恩,等.土壤和苔藓植物中游离脂肪酸的高效液相色谱荧光测定及质谱鉴定[J].曲阜师范大学学报(自然科学版),2005,31(1):73-78.Determination of Saturated and Unsaturated Fatty Acids in Pollen by HPLC-FLD-MS with Fluorescent pre-column DerivatizationGAO Yong-ping①,FU Yan-yan①,SUN Zhi-wei②,KANG Li②,JI Zhong-yin①,ZHAO Hu-hua①,ZHANG Lin①,YOU Jin-mao①②(①School of Chemistry and Chemical Engineering,Qufu Normal University,273165,Qufu,Shandong;②Northwest Plateau Institute of Biology,Chinese Academy of Sciences,810001,Xining,Qinghai,PRC)Abstract:A simple and sensitive method for the determination of free fatty acids has been developed by HPLC with fluorescence detection and mass spectrometric identification using a new reagent synthesized in our laboratory named2-(12-oxobenzo[b]acridin-5(12H)-yl)ethyl4-toluenesulfonate(BAETS)as pre-column labelling reagent.On a reversed-phased Hypersil BDS C8column,34fatty acid derivatives were separated and analyzed quantifica-tionally.Fluorescent detection excitation and emission wavelengths were set atλex 273nm andλem503nm,respec-tively.Correlation coefficients for fatty acid derivatives were more than>0.9995,and detection limits(at signal-to-noise of3:1)were in the range of11.70to68.25fmol.Free fatty acids from pollen samples were identified by the on line MS equipped with an atmospheric pressure chemical ionization source.When applying to the determination of free fatty acids from real samples,this developed method exhibited excellent sensitivity and reproducibility.Key words:HPLC/MS;fluorescence detection;derivatization;fatty acids86曲阜师范大学学报(自然科学版)2011年。

环境激素物质监测分析方法的应用与研究

环境激素物质监测分析方法的应用与研究

多氯二苯并呋喃 P D s 、 C F 类 双酚 A、 二丁基酞酸、 苯 乙烯 、 丁基苯甲基酞酸等 。 农药类包括杀虫剂、 除草剂 、 杀菌剂和植物激素
共数 十种 , D ( D D、 D 氯丹 、 氏剂 、 氏 如 B 、 D D E、 P、 艾 狄
神经系统 , 也可能导致生物基 因ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ变等踟。环境激 素类物质对人类生殖健康 的影响给人类健康构成严 重威胁 , 必须迅速采取 防范措施 , 加强对人工合成化
要进一步证实是否具有激素作用的化学物质如二苯
甲酮 、 丁基 苯等 [ 。 正 4 ]
1 环境激素物质 的种类
目前 已知的环境激素约有 7 种 , O 广泛存在于大
气、 、 水 土壤等环境介质 中。几乎所有 的环境激素都
2 环境激素物质的毒性及危害
环境激素可模 拟体 内的天然荷尔蒙 , 与荷尔蒙 的受体结合 , 影响本来身体内荷尔蒙的量 , 以及使身 体产生对体内荷尔蒙的过度作用 , 或直接刺激 , 或抑 制 内分泌系统 , 内分泌系统失调 , 使 进而阻碍生殖 、
随着 工业 化程 度 E益 增 强 , 量 有 机 和无 机 的 l 大
化学物质在我们生活 中的广泛应用 , 极大地丰富了 我们的物质生活 , 同时也带来 了大量 的环境激素物
进行了监测和调查 , 其中有八类物质包括 : 邻苯二甲
酸类、 己二 酸一一 2乙基 己烷 、 类 、 乙 烯 二 聚体 、 酚 苯 苯
病 因 学 调 查 显 示 , 0 以 上 的 妇 女 由 于 血 液 中 2
G- ( CMS 气相色谱一 质谱 ) 联用仪是联用仪器 中
发 展最 快 、 用 最 广 的一 个 , 其 是 在 环 境 监 测 领 应 尤 域 , 以环境 激素 类 污染 物 为 主 的有 机 污 染 物 的监 对
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

生态环境学报 2009, 18(5): 1914-1916 Ecology and Environmental Sciences E-mail: editor@基金项目:国家自然科学基金项目(No.30860066);海南省自然科学基金项目(No.30612);中国热带农业科学院博士启动基金 作者简介:张桂花(1983年生),女(内蒙古兴安盟人),硕士研究生。

E-mail: zhangguihua123123@ *通讯作者,李勤奋,E-mail: qinfenli@ 收稿日期:2009-08-04常规液相色谱柱测定早熟素Ⅱ的方法探讨张桂花1, 2,李光义2,文少白1, 2,李勤奋2 *1. 海南大学环境与植物保护学院,海南 儋州 571737;2. 农业部热带农林有害生物入侵监测与控制重点开放实验室//中国热带农业科学院环境与植物保护研究所,海南 儋州571737摘要:通过使用市售的常规C18液相色谱柱(规格:150 m m×4.6 mm ,5 μm ),探讨了早熟素Ⅱ的分析方法并对其进行了可行性论证。

以V (甲醇)∶V (水)=80∶20为流动相,流量1 mL·min -1,检测波长为224 nm ,柱温35 ℃。

得出早熟素Ⅱ在8~108 μg·mL -1的范围内呈良好的线性关系(相关系数r 为0.99997),最低检出限为1.0379 μg·mL -1(信噪比为3),加标回收率为93.3%~104.98%,变异系数为0.12%~4.41%。

与使用非常规色谱柱分析早熟素Ⅱ的方法相比,该方法采用了市售常规柱,能够更大限度地满足实验条件,通用性更强。

关键词:早熟素Ⅱ;高效液相色谱法;常规柱中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1674-5906(2009)05-1914-03早熟素Ⅱ别名6,7-二甲氧基-2,2-二甲基-3-色烯,分子式如图1是一类抗保幼激素类似物[1]。

该物质首次于20世纪70年代由Bowers 等从观赏植物熊耳草(Ageratum houstorianum )中分离得到,与其同时发现的还有早熟素Ⅰ,由于这两种物质能够使某些半翅目若虫提前变态,故命名早熟素[2]。

早熟素Ⅱ是苯并吡喃类化合物,为浅黄色针状晶体或油状液体,易溶于石油醚、乙酸乙酯、丙酮等有机溶剂,难溶于水[3]。

早熟素Ⅱ除了可以使某些昆虫提前变态外,还被证明具有较强的化感作用[4]。

近年来利用高效液相色谱法测定早熟素Ⅱ的方法已有报道[5],但该方法中采用的液相色谱柱为市售非常规柱(规格:125 mm ×4.0 mm ,5 μm),因此其应用范围具有一定的局限性。

为寻找适用范围较广的检测早熟素Ⅱ含量的方法,本文探讨了利用市售常规液相色谱柱测定早熟素Ⅱ的方法,从而使该物质的分析测定更加简便。

1 仪器与材料Dionex 高效液相色谱仪:P680泵,Ultimate3000自动进样器,PDA-100光电二极管阵列检测器。

岛津AUY220电子天平,DL-360B 智能超声波清洗器,XW-80A 漩涡混合器,隔膜真空泵,BuchiR-215旋转蒸发仪。

试剂:甲醇(色谱纯),甲醇(分析纯),超纯水,石油醚(分析纯)。

标准品:早熟素Ⅱ标准品购于上海波以尔化工有限公司。

样品:按照胡飞等人的方法[6](略有改动)制备胜红蓟鲜样水提液,将浓缩后的水溶液多次用柱色谱分离(200~300 目硅胶,以石油醚为淋洗液),收集含早熟素Ⅱ的黄色溶液,将该溶液旋转蒸发浓缩,用甲醇(分析纯)溶解浓缩液后过自装层析柱,把过柱后的溶液再旋转蒸发,用甲醇(色谱纯)定容,即得供试用样品溶液。

自装层析柱(10 mm ×300 mm ):由下到上分别装入1 g 无水硫酸钠(650 ℃灼烧4 h ),1 g 柱层析硅胶(200~300 目,130 ℃活化8 h ),0.5 g 无水硫酸钠。

2 实验方法2.1 色谱条件色谱柱:Luna-C18柱(150 mm ×4.6 mm ,5 μm),柱温35 ℃,流量:1 mL·min -1,进样量:10 μL 。

2.1.1 检测波长的选择在190~380 nm 范围内对早熟素Ⅱ标准品的紫外吸收进行了波长扫描,早熟素Ⅱ的最大吸收波长为224 nm ,因此选择224 nm 作为早熟素Ⅱ的检测波长。

2.1.2 流动相的选择在波长224 nm 、流量1 mL·min -1、进样量10 μL 的条件下,选用了不同配比的甲醇/水为流动相进行图1 早熟素Ⅱ的分子结构图 Fig.1 Molecular structure of Precocene Ⅱ张桂花等:常规液相色谱柱测定早熟素Ⅱ的方法探讨 1915实验,结果表明,流动相V (甲醇)∶V (水)=80∶20时早熟素Ⅱ的保留时间为3.317 min ,峰形良好。

在此条件下,对含早熟素Ⅱ的供试样品进行分析表明,早熟素Ⅱ与其他组分分离良好。

因此,最终选定流动相为V (甲醇)∶V (水)=80∶20。

早熟素Ⅱ标准品与样品的色谱图见图2。

2.2 标准溶液的配制精密称取早熟素Ⅱ标准品5 mg 于50 mL 容量瓶中,以甲醇为溶剂定容至刻度,摇匀,配制成质量浓度为0.1 mg·mL -1的标准溶液。

3 结果与讨论3.1 线性关系考察分别精确吸取早熟素Ⅱ标准溶液0.5、1.5、2.5、3.5、4.5 mL 于5 mL 容量瓶中,以甲醇为溶剂定容摇匀。

按上述确定的色谱条件测定,以峰面积对早熟素Ⅱ的含量做线性回归。

回归方程为y =1.0548x +0.1357,相关系数r =0.99997,表明早熟素Ⅱ质量浓度的线性范围为8~108 μg·mL -1。

早熟素Ⅱ的标准曲线如图3所示。

3.2 精密度实验按1中的方法制备早熟素Ⅱ供试样品,将该样品精确等量吸取5份配制等体积的供试溶液,每份重复测定3次,取平均值。

在选定的色谱条件下操作,测定峰面积值,以峰面积计算RSD 。

结果见表1,求得早熟素Ⅱ样品溶液峰面积的RSD 为0.08%,表明该方法精密度良好。

3.3 稳定性实验精确吸取供试样品溶液10 μL ,每隔2 h 进样,每次重复进5针,测定峰面积值,结果见表2。

求得早熟素Ⅱ峰面积的RSD 为0.32%,表明供试样品至少在10 h 内稳定。

3.4 加标回收率实验在早熟素Ⅱ样品溶液中分别加入相当于0.06、0.3、0.6 mg 的早熟素Ⅱ标准品,每个浓度设置3个重复和空白对照,按上述方法步骤及选定的色谱条件分析测定并计算添加回收率。

结果表明,早熟素Ⅱ标准品在样品中的平均回收率在93.3%~104.98%之间,变异系数为0.12%~4.41%,详见表3。

(a)早熟素Ⅱ标准品色谱图(b)早熟素Ⅱ样品色谱图图2 早熟素Ⅱ标准品与样品的色谱图 Fig.2 HPLC chromatogram of Precocene standard Ⅱand Precocene Ⅱ sample表2 供试样品稳定性实验 Table 2 The stability test of sample 时间t /h平均峰面积积分值0 245.048 2 246.406 4 244.938 6 245.129 8 244.427 10 246.205 RSD/% 0.32102030405060708090100浓度/(ug•mL-1)m A U图3 早熟素Ⅱ的标准曲线Fig.3 The calibration curve of Precocene Ⅱ表1 方法精密度实验 Table 1 The precision test of method 试验号峰面积积分值1 27.9682 27.963 3 27.9534 27.965 27.912 RSD/% 0.08质量浓度/(μg·mL -1)1916 生态环境学报 第18卷第5期(2009年9月)4 结论通过实验建立了利用市售常规的液相色谱柱测定早熟素Ⅱ含量的方法。

结果表明该方法准确度好、精密度高、线性范围宽、回收率高,是一种实用、有效的检测方法,可用于早熟素Ⅱ的定量分析。

参考文献:[1] 李乾君, 管致和, 龚和. 早熟素Ⅱ对家蝇卵黄发生的影响[J]. 昆虫学报, 1993, 36(2): 129-137.LI Qianjun, GUAN Zhihe, GONG He. Effect of Precocene on vite Ⅱl-logenesis of housefly Musca domestica vicina [J]. Acta Entomologica Sinica, 1993, 36(2): 129-137.[2] 傅贻玲, 项秀芬, 关雪辰. 早熟素Ⅱ处理粘虫蛾对两性吸引的影响[J]. 昆虫学报, 1986, 29(1): 1-11.FU Yiling, XIANG Xiufen, GUAN Xuechen. Effect of PrecoceneⅡon sex attractancy in the moths of armyworm Mythimna sepa-rate (Walker)[J]. Acta Entomologica Sinica, 1986, 29(1): 1-11. [3] 韦琦, 曾任森, 孔垂华, 等. 胜红蓟地上部化感作用物的分离与鉴定[J]. 植物生态学报, 1997, 21(4): 360-366.WEI Qi, ZENG Rensen, KONG Chuihua, et al. The isolation and identification of allelochemicals from aerial parts of tropical Agera-tum [J]. Acta Phytoecologica Sinica, 1997, 21(4): 360-366.[4] 孔垂华, 徐涛, 胡飞. 胜红蓟化感作用研究Ⅱ主要化感物质的释放途径和活性[J]. 应用生态学报, 1998, 9(3): 257-260.KONG Chuihua, XU Tao, HU Fei. Allelopathy of Ageratum cony-zoides .Ⅱ Releasing mode and activity of main allelochemicals[J]. Chinese Journal of Applied Ecology, 1998, 9(3): 257-260.[5] 孔垂华, 徐效华, 陈建军, 等. 胜红蓟化感作用研究.Ⅸ主要化感物质在土壤中的转化[J]. 生态学报, 2002, 22(8): 1189-1195.KONG Chuihua, XU Xiaohua, CHEN Jianjun, et al. Allelopathy of Ageratum conyzoides .Transformation of Ⅸmain allelochemical in the Soil[J]. Acta Ecologica Sinica, 2002, 22(8): 1189-1195.[6] 胡飞, 孔垂华. 胜红蓟化感作用研究.Ⅰ水溶物的化感作用及其化感物质分离鉴定[J]. 应用生态学报, 1997, 8(3): 304-308.HU Fei, KONG Chuihua. Allelopathy of Ageratum conyzoides . A Ⅰl-lelopathy of Ageratum conyzoides aqueous extract and isolation and identification of its allelochemicals[J]. Chinese Journal of Applied Ecology, 1997, 8(3): 304-308.Method for determination of precocene Ⅱwith conventionalliquid chromatographic columnZHANG Guihua 1, 2, LI Guangyi 2, WEN Shaobai 1, 2,LI Qinfen 2*1. College of Environment and Plant Protection, Hainan University, Danzhou Hainan 571737, China;2. Key Laboratory of Monitoring and Control of Tropical Agricultural and Forest Invasive Alien Pests, Ministry of Agriculture//Environment and Plant Protection Institute, CATAS, Danzhou Hainan, 571737, ChinaAbstract: A method for determination of precocene was developed by HPLC with Ⅱconventional C18 column(150 mm ×4.6 mm, 5 um)and its feasibility assessment was made. The samples were analyzed on a Luna C18 column using methyl alcohol- ultrapure water (80∶20, V/V ) as the mobile phase at a flow rate of 1 mL·min -1. The detection wavelength was 224 nm and the column tem-perature was 35 . ℃Well linear relationship was showed at the range of 8~108 μg·mL -1 and correlation coefficient of the calibration curve was 0.99997. The detection limit was 1.0379 μg·mL -1 (S/N=3). The recovery of added sample ranged from 93.3% to 104.98% with the relative standard deviations of 0.12%~4.41%. Comparing with other measuring methods using unconventional column, bet-ter versatility was manifested by the method in which a conventional liquid chromatographic column which was easily available in the market was employed and expetimental conditions were met to a great extent. Key words: precocene Ⅱ; HPLC; conventional liquid chromatographic column表3 早熟素Ⅱ加标回收率实验 Table 3 The recovery test of Precocene Ⅱ添加量/mg平均回收量/mg回收率/%变异系数/%0.06 0.063 104.98 4.41 0.3 0.283 94.33 0.63 0.6 0.56 93.3 0.12。

相关文档
最新文档