小鼠常用采血方法
小鼠采血及给药方法
小鼠采血及给药方法
小鼠采血方法:
1. 选择小鼠的尾部静脉为采血点。
2.事先将小鼠置于温暖的环境中，保持鼠体温度较高，有助于
血流畅通。
3.用70%乙醇消毒小鼠尾部，待干后将尾部静脉突出。
4.使用一段带有注射器的采血针，将针尖插入静脉内，逐渐将
血吸入注射器中。
5.采取适当的采血量，通常不超过小鼠总体重的1%。
6.采血完毕后，将小鼠放回舒适的环境，并检查是否有出血或
感染。
小鼠给药方法:
1. 可以考虑口服给药：将给药物质制成溶液或混悬液，使用小鼠专用的给药针或胃管轻轻将药物注入小鼠口中。
2. 可以考虑皮下注射给药：使用一次性注射器和细针，轻轻将药物注射到小鼠的颈部、背部或腹部皮下。
3. 可以考虑静脉注射给药：将小鼠固定在注射台上，通过尾静脉或静脉突出的其他部位进行注射，使用适当大小的注射器和针头。
4. 可以考虑腹腔注射给药：将小鼠固定在注射台上，轻轻将药物注射到小鼠的腹腔内，使用适当大小的注射器和针头。
5. 必要时，可以使用气管插管或静脉插管等专业仪器辅助给药。
值得注意的是，在进行任何操作之前，应该对小鼠的器官位置、给药剂量和频率等进行仔细研究和规划，并严格遵守动物实验
伦理的相关规定。
在操作过程中要注意对小鼠的痛苦程度进行评估，并在必要时使用麻醉药物减轻疼痛。
大鼠和小鼠的采血方法
大鼠和小鼠的采血方法1.麻醉方法：在采血前，先给大鼠或小鼠进行麻醉，以减少它们的疼痛感受。
常用的麻醉方法有以下几种：-静脉麻醉：将合适剂量的麻醉剂通过尾静脉或背静脉注射给大鼠或小鼠，使其进入麻醉状态。
-吸入麻醉：将麻醉气体或气溶胶通过麻醉箱或麻醉罩给大鼠或小鼠吸入，达到麻醉效果。
-局部麻醉：将麻醉剂涂抹在采血部位的皮肤上，使局部麻木，减少疼痛感。
2.采血部位：常用的大鼠采血部位有尾静脉、颈静脉、眼眶突静脉等，而小鼠采血部位则有尾静脉、颈静脉、眼眶突静脉、前肢静脉等。
3.采血工具和器材：-采血针：选择合适大小的采血针，不同大小的动物需要选择不同规格的针头。
-注射器：用于抽取和储存血液样本的容器。
常用的有离心管、毛细管等。
-注射器插管：将采集到的血液导入注射器中储存。
4.采血方法：-尾静脉采血：将大鼠或小鼠的尾巴用温水浸泡，使其尾部静脉扩张。
然后用酒精消毒尾巴，用手指轻轻压住尾部静脉靠近尾根的部位，使尾尖鼓胀，再用采血针针尖刺破尾尖的皮肤，顺着静脉方向将血吸入注射器中。
-颈静脉采血：将大鼠或小鼠定位于侧卧位，用酒精消毒颈部的皮肤。
手指轻轻压住颈侧的静脉，使其充血，然后用采血针针尖针插入触及到静脉，将血液吸入注射器中。
-眼眶突静脉采血：先给大鼠或小鼠进行眼眶突的局部麻醉，随后用消毒酒精将眼眶突部分消毒。
再用适当大小的针头插入眼眶突静脉，将血液抽取到注射器中。
5.采血后的处理：-停血：采血后需用无菌棉球或无菌纱布轻轻按住针刺处，让血液凝结停止流血。
-保存：将采集到的血液样本转入离心管中，用离心机离心，分离血浆和血细胞。
将血浆或血细胞储存在冷冻管中，冷冻保存。
以上就是大鼠和小鼠采血的最全方法。
在进行采血操作时，需要注意动物的麻醉和疼痛管理，操作要轻柔、快速、准确，以减少动物的痛苦和疼痛。
另外，为了确保采血的科学性和准确性，还需要遵守实验室的相关规范和伦理要求，确保实验与动物实验道德的合理性。
常见实验小鼠采血方法
常见实验小鼠采血方法小鼠是科研实验中常用的实验动物，但由于其体积小，血管细，采血难度大，进而影响采血的质量，小编简要总结了常见的小鼠采血方法，仅供参考：一只成年小鼠的循环血量大约是1.5~2.5ml，大约体重的6~8%。
在对营养状况良好的小鼠进行采血时，单次采血量最多可以到达循环血量的10%，（例：若20克小鼠，它的总血量约占1.2-1.4毫升，即每次取120ul-140ul血液不会对小鼠有太大的影响）。
采血之后应该给予温热的等渗溶液补充，可以在2~3个星期内恢复原有的水平。
两周采血量小于血液循环的10%，单周小于7.5%，小鼠血液循环72ml/kg实验室常用抗凝剂：乙二胺四乙酸（EDTA）盐、枸橼酸盐、草酸盐、肝素实验室常用采血管：（采血后立即颠倒混匀8次）1.黑色：枸橼酸钠；血沉2.浅蓝色：枸橼酸钠；血凝试验（如PT、APTT）3.深蓝色：肝素钠或EDTA-Na2；血液微量元素4.紫色：EDTA-K2；血常规（血液细胞分析）5.绿色：肝素锂；大部分生化、血氨6.灰色：血糖降解抑制剂和EDTA-Na2；血糖7.棕色：肝素钠或EDTA-K2；血铅8.浅黄色ACD管：葡萄糖、抗凝剂；血库试验9.浅黄色SPS管：SPS液、氯化钠溶液；血液培养、微生物培养尾尖采血麻醉小鼠后，用温水（但水温不要过高）擦拭尾巴，引起轻微的血管扩张。
用无菌手术刀、刀片或锋利的剪刀，快速截断小鼠尾尖0.5-1cm。
如果需要多次采血，之后每次仅需截除2-3mm。
可以从尾部向尾尖方向按摩，以增加血流（但是，这会降低血样的质量，增加溶血的风险）。
可以用毛细采血管收集血液，或直接滴入收集管中。
采血结束后，按压伤口或使用止血剂（如硝酸银，6%液体火棉胶）来止血。
每次采血量大约可达0.1ml。
眼眶静脉丛采血优点：眼眶后静脉丛采血法方法简单，便于掌握。
血流较快，采血量多，能在较短时间内采约0.5mL血。
伤口较小，愈合较快。
成功率高，死亡率低。
小鼠眼球取血技巧 根据需要捻动拇指与食指的方向,使血液从眼眶内以不同速度垂直流
小鼠眼球取血技巧小鼠摘除眼球采血及分离血清一．器材离心管，弯头镊子，离心机，移液器二．步骤1. 摘除眼球采血（1）左手拇、食指抓取小鼠双耳及颈后皮肤，小指固定尾部；（2）中指将小鼠左侧前肢轻压在胸骨心脏部位，无名指按在腹部，捻动拇指，轻压取血侧眼部皮肤，使眼球充血突出；（3）用弯头镊夹取眼球；（4）根据需要捻动拇指与食指的方向，使血液从眼眶内以不同速度垂直流入离心管；（5）同时用左手中指轻按小鼠心脏部位，以加快心脏泵血速度；（6）当血液流尽时，用脱臼法处死小鼠。
2. 分离血清（1）将离心管中的血置37℃温箱或水浴1小时，也可室温2小时；（2）再置4℃冰箱内3～4小时或过夜；（3）待血液凝固血块收缩后，4000rpm离心10分钟；（4）取上清于干净的离心管中，保存于-20℃，或加入防腐剂(0.01％硫柳汞或0.02％叠氮钠)，置4℃冰箱中保存备用。
三．注意：1. 采血前，可给小鼠喂点水；2. 摘眼球采血取血量能达0.8～1.2ml，但老年和疾病小鼠血量会降低；3. 采血场所有充足的光线；室温夏季保持在25～28℃，冬季，15～20℃为宜；4. 防止血液浸入眼部周围毛发，否则会造成污染和溶血；5. 按压心脏时，用力一定要适度，若用力过度，一是会造成动物采血中途死亡，使采血不完全，二是有可能引起溶血现象发生，影响实验结果；6. 采血用的器材和试管必须保持清洁干燥；7. 采血时要防止小鼠挣扎，否则会损失比较多的血样；8. 血液凝固后不宜在4℃放置过久，否则会溶血。
另附其他几种采血方法1）尾尖取血：当所需血量很少时采用本法。
固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用二甲苯等化学药物涂擦，使局新血管扩张。
将鼠尾擦干，剪去尾尖，血自尾尖流出，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取。
如需间隔一定时间，多次采取鼠尾尖部血液，每次采血时，将鼠尾剪去很小一段，取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。
实验小鼠给药与采血方法
实验小鼠给药与采血方法1.实验小鼠给药方法：a.静脉注射：i.静脉注射是一种常用的给药方法，适用于需要迅速将药物输送到循环系统中的实验。
ii. 首先，选择小鼠尾静脉作为给药途径。
悬空小鼠尾部并握紧尾根，使用角度较小的针头（例如26G针头）直接注射药物。
iii. 注射前，可以先用温水或者温湿纱布预热小鼠的尾部，以增强血管的扩张和血流。
iv. 确认成功注射药物后，将小鼠放回饲养笼中，并观察其行为和健康状况。
b.口服给药：i.口服给药是一种常用的给药方法，适用于需要药物通过消化系统进行吸收的实验。
ii. 在给药前，可以在小鼠笼子的饮水中添加药物溶液，或将药物悬浮液灌注到小鼠胃部。
iii. 同时，在给药过程中，需要将小鼠固定住，可以使用实验动物颈环进行固定。
iv. 给药后，观察小鼠的饮食情况和健康状况，并适当调整药物剂量和给药方式。
2.实验小鼠采血方法：a.尾静脉采血：i.尾静脉采血是一种常用的、非常便捷的小鼠采血方法。
ii. 首先，选择小鼠尾部静脉作为采血部位。
悬空小鼠尾部并使用温湿纱布加热，以增加血管扩张和血流。
iii. 使用角度较小的针头，例如26G针头，刺入尾静脉，然后将血收集到适当的试管中。
iv. 在采血过程中，保持顺利的血流，可以使用温湿纱布加热尾部以保持血管扩张。
v.采集到所需血液样本后，用棉球或止血带对采血部位施加轻压，以避免出血和感染。
vi. 采血结束后，观察小鼠的健康状况，并给予适当的处理和护理。
b.眼窝静脉注射采血：i.眼窝静脉采血是一种比较特殊的小鼠采血方法，适用于需要大量血液样本的实验。
ii. 在采血前，可以使用温湿纱布加热小鼠眼部，以增加血管扩张和血流。
iii. 使用角度较小的针头，例如26G针头，插入眼窝静脉并拔回，将血液从针头收集到适当的试管中。
iv. 在采血过程中，保持稳定的手部和注射器位置，以避免对小鼠造成伤害。
v.采集到所需血液样本后，用棉球或止血带对采血部位施加轻压，并进行适当的处理和护理，以减少对小鼠的不适和伤害。
小鼠采血及给药方法
小鼠采血及给药方法一、小鼠采血方法1.静脉采血法：(1)静脉穿刺法：将小鼠固定在实验台上，清洁采血部位（常常是尾静脉），用适当的方法固定小鼠尾部，例如用取血夹固定。
用消毒棉球涂抹于采血部位，利用一只针筒或采集针对静脉进行穿刺。
(2) 尾静脉切割法：先用消毒棉球涂抹于小鼠尾部静脉附近，接着使用锋利的剪刀剪切尾部皮肤，直到出现静脉。
使用脱针管（micro-hematocrit tube）将血液抽吸出来。
采血结束后，可用消毒剂处理采血点，以防止感染。
2.额高度法：采用颅内针，固定小鼠在颅骨穿刺装置上，选用滑动固定针。
先用洗净针按住头部，再通过颅针插入到穿刺装置中。
同时使用抽吸器抽取出血液。
3.围尾车压法：将小鼠固定在一块平板上，用三个围绳将其尾部固定，留一个关节使小鼠尾部随意摆动。
在上方围绳旁边的固定处架设一只容器，用于收集滴下的尾血。
二、小鼠给药方法1.口服给药：该方法较简单，将药物以适当的剂量溶解于注射用水或生理盐水中，用灌胃针或注射器将药液直接灌入小鼠口腔中。
要确保给药的准确剂量和流量，避免嗓子喉咙堵塞。
2.腹腔注射法：将小鼠放在工作台上，用适当的方法固定小鼠身体，清洗注射部位。
用消毒棉球涂抹于腹部，使用22-25号注射针或微量注射器将药物缓慢注射入腹腔。
注射速度要控制得适当，避免损伤内脏器官。
3.尾静脉注射法：将小鼠固定在工作台上，清洁尾部毛发，用爪式血管夹固定尾部血管。
使用注射针插入尾静脉，并注意发现血斗标志。
缓慢将药物注射入尾静脉。
4.静脉注射法：将小鼠固定在工作台上，清洗注射部位。
用消毒棉球涂抹于注射部位（通常是尾静脉），固定小鼠尾部。
使用注射针或微量注射器将药物注射入静脉。
5.肌肉注射法：将小鼠放在工作台上，用适当的方法固定小鼠身体。
将药物以适当的剂量溶解后，使用注射针插入小鼠腹股沟或胫肌中缓慢注射。
以上是小鼠采血及给药的常用方法，注意采血和给药的操作应该规范、缓慢、准确，以避免对小鼠造成不必要的伤害。
小鼠采血方式实验报告
一、实验目的1. 掌握小鼠采血的基本操作方法。
2. 比较不同小鼠采血方式对小鼠的应激反应和血液质量的影响。
3. 为后续实验选择合适的采血方法提供依据。
二、实验材料1. 实验动物：昆明种小鼠，体重20-25g，雌雄各半。
2. 采血工具：眼眶后静脉丛采血器、剪尾采血器、注射器、酒精棉球、无菌手术刀、无菌棉球、消毒液等。
3. 实验试剂：抗凝剂、生理盐水、实验所需试剂等。
三、实验方法1. 将小鼠随机分为四组，每组5只，分别为A组（眼眶后静脉丛采血）、B组（剪尾采血）、C组（注射器采血）、D组（心脏采血）。
2. 对各组小鼠进行适应性饲养，观察其健康状况。
3. 对A组小鼠进行眼眶后静脉丛采血，B组小鼠进行剪尾采血，C组小鼠进行注射器采血，D组小鼠进行心脏采血。
4. 采集血液后，观察各组小鼠的应激反应，如呼吸、心率等。
5. 对采集的血液进行质量检测，包括血常规、凝血功能等。
6. 比较不同采血方式对小鼠的应激反应和血液质量的影响。
四、实验结果1. 各组小鼠的应激反应A组：眼眶后静脉丛采血过程中，小鼠出现轻微的挣扎，采血结束后迅速恢复。
B组：剪尾采血过程中，小鼠出现明显的挣扎，采血结束后出现短暂的不适。
C组：注射器采血过程中，小鼠出现轻微的挣扎，采血结束后迅速恢复。
D组：心脏采血过程中，小鼠出现剧烈的挣扎，采血结束后出现明显的不适。
2. 各组小鼠的血液质量A组：血液质量良好，各项指标正常。
B组：血液质量较差，部分指标异常。
C组：血液质量良好，各项指标正常。
D组：血液质量良好，各项指标正常。
五、实验结论1. 眼眶后静脉丛采血和注射器采血对小鼠的应激反应较小，血液质量良好，适合进行实验研究。
2. 剪尾采血对小鼠的应激反应较大，血液质量较差，不适合进行实验研究。
3. 心脏采血对小鼠的应激反应和伤害较大，不适合进行实验研究。
六、实验建议1. 在进行小鼠采血实验时，应根据实验目的和动物福利原则，选择合适的采血方法。
2. 采血过程中，应注意减轻小鼠的应激反应，尽量减少对动物的伤害。
小鼠取血方法范文
小鼠取血方法范文小鼠是常用的实验动物之一，常需要从小鼠身上进行取血以获取血液样本进行分析和研究。
小鼠取血方法有多种，包括尾静脉取血、眼眶窝静脉取血、颈静脉穿刺取血等。
下面将对这些方法逐一进行详细介绍。
1.尾静脉取血方法：尾静脉取血是最常用且最方便的小鼠取血方法之一、具体步骤如下：1)麻醉小鼠：使用合适的麻醉方法麻醉小鼠，常见的方法有气体麻醉和注射麻醉剂。
2)准备工具：准备好所需的器械，如注射器、针头、72%医用酒精等。
3)清洗尾部：将小鼠放置在无菌条件下，用温水和肥皂轻轻清洗尾部，并用酒精擦拭消毒。
4)取血操作：将小鼠的尾部放置于温暖的环境恢复血流，用酒精擦拭尾部的静脉，然后用一只手控制住小鼠的尾巴，用另一只手将注射器针头的一端插入小鼠尾部的静脉中，缓慢地抽取所需的血样。
5)处理伤口：取血完成后，用棉球轻轻地按压尾部，使创口停止出血，并用消毒棉球擦拭尾部的酒精，帮助伤口愈合。
2.眼眶窝静脉取血方法：眼眶窝静脉取血适用于需要大量血样的实验。
具体步骤如下：1)麻醉小鼠：使用合适的麻醉方法麻醉小鼠，常见的方法有气体麻醉和注射麻醉剂。
2)准备工具：准备好所需的器械，如注射器、针头、72%医用酒精等。
3)定位小鼠：将小鼠的头部固定于工作台上，使眼眶窝静脉暴露。
4)消毒处理：用酒精擦拭眼眶窝上方的毛发，然后用酒精将取血点消毒。
5)取血操作：用一只手控制住小鼠的头部，用另一只手将注射器针头的一端插入眼眶窝静脉中，缓慢地抽取所需的血样。
6)处理伤口：取血完成后，用消毒棉球轻轻按压取血点，使创口停止出血，并用消毒棉球擦拭取血点的酒精，帮助伤口愈合。
3.颈静脉穿刺取血方法：颈静脉穿刺取血方法适用于表层静脉无法清晰可见或不方便取血的情况。
具体步骤如下：1)麻醉小鼠：使用合适的麻醉方法麻醉小鼠，常见的方法有气体麻醉和注射麻醉剂。
2)准备工具：准备好所需的器械，如注射器、针头、72%医用酒精等。
3)小鼠体位：将小鼠放置于工作台上，头部略微向后仰。
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1 1.无菌的、单包装的、一次性采血针
2. 4.0mm的针头适合小鼠（2到6周大小的BALB/C和 C57Bl/6)。
3. 5.0mm的针头更适合2个月或者更大的成年鼠。
8
隐静脉采血
1
2
a
3
4
小量、反复小鼠采血的常用方法。特点是不用麻醉
9
尾部采血
心脏采血
a
12 34
心脏
11
小鼠采血量0.5-0.8ml，大鼠采血量1-1.5ml
a
14
a
THE END
15
大鼠采血量为0.4-0.6ml
4
5
a
眼眶静脉丛采血
6
a
颌下静脉采血
目前国际上一种最新的、最简单快捷的、最人 道的采血方法！
优点： 1.不会给大小鼠造成大的伤害 2.可反复采血，每次采血量醉 4.采血后动物恢复快 5.符合3R原则
7
颌下静脉采血
a
2
3
下腔静脉采血
小鼠采血量0.5-0.8ml
1
2
12
3
4
a
a
非抗凝血
血清
血清：离体的血液凝固之后，经血凝块聚缩释出的液体，即血清
抗凝血
血浆
血浆：离开血管的全血经抗凝处理后，通过离心沉淀，所获得的不 含细胞成分的液体，即血浆。
13
实验室常用抗凝剂
乙二胺四乙酸（EDTA）盐 枸橼酸盐 草酸盐 肝素
常用：（采血后立即颠倒混匀8次） 1.黑色：枸橼酸钠； 血沉 2.浅蓝色：枸橼酸钠； 血凝试验（如PT、APTT） 3.深蓝色：肝素钠或EDTA-Na2；血液微量元素 4.紫色：EDTA-K2； 血常规（血液细胞分析） 5.绿色：肝素锂； 大部分生化、血氨 6.灰色：血糖降解抑制剂和EDTA-Na2； 血糖 7.棕色：肝素钠或EDTA-K2； 血铅 8.浅黄色ACD管： 葡萄糖、抗凝剂；血库试验 9.浅黄色SPS管： SPS液、氯化钠溶液；血液培养、微生物培养
a
Blood samples collection
1
a
2
a
Sequential bleeds
眼眶静脉丛采血 颌下静脉采血 隐静脉采血 尾部采血
需要麻醉
Terminal bleeds
心脏采血 下腔静脉采血
需要麻醉
3
a
小鼠面颈部血管解剖示意图
4
眼眶静脉丛采血
a
1
2
3 小鼠采血量为0.2-0.3ml