大白菜YUCCA基因家族的鉴定与生物信息学分析
愚见解读文稿Front.Genet.大白菜富甘氨酸蛋白基因家族分析

愚见解读文稿Front.Genet.大白菜富甘氨酸蛋白基因家族分析写在前面Emmmm,慢慢地发现越来越多TBtools 用户朋友发表的论文。
农学的,医学的,大田的,分子的,湿实验的,数据分析的.... 我可能跟大家有所不同,看到有朋友文章发表并引用了TBtools 时,我常常会关心的是:1.用了啥功能?2.用的如何?(比如可视化是否好看)3.是否有出乎我意外的使用方式(相对常见)现在几乎每天,我都会收到 Google Scholar 的邮件,大体提醒我,今天哪些(对哪些,一般都是两三篇)文稿发表并引用了TBtools。
我有时间就会看看。
看多了,自然会发现一些我个人觉得还不错的TBtools 应用结果(亦即,用户常常用得比我还好)。
于是,我决定在《生信札记》上,开一个板块《TBtools-用户文章解读》。
主要目的:1.我可以了解下用户都拿 TBtools 干啥了2.给其他用户做参考,如 TBtools 还能这么用3.....文稿发现不少TBtools 用户本身也是我的微信朋友。
早上在朋友圈看到了截图。
看来是老铁,直接把TBtools 写到摘要里面去了.....这估摸着是第一次看好。
哈哈。
既然如此,那就选这篇文章来解读。
文稿解读文稿发表在Frontiers in Genetics,查了下JCR Q2。
之前我也有多少看到过这个杂志,应还是不错。
基于题目和摘要,我们很清楚,作者主要工作是鉴定了大白菜的富甘氨酸蛋白基因家族,并分析其在胁迫条件下的表达模式,为后续进一步工作开展提供基础。
先看看结果部分的主标题:1.Identification and Characterization of BrGRP Genes in Chinese Cabbage 即家族成员鉴定2.Sequences Analysis of BrGRP Genes and Phylogenetic Relationship 即序列分析与进化分析3.Chromosome Localization and Orthologous Gene Analysis of BrGRPs in Chinese Cabbage 即基因的染色体定位与同源基因分析(结合拟南芥)4.Expression Profiling of BrGRPs in Chinese Cabbage 即成员的表达分析(包括不同组织,温度胁迫,干旱胁迫,软腐病菌侵染- 基于公开已发表转录组)5.Analysis of Cis-Acting Elements in the Promoter Region of BrGRPs 即顺式作用元件分析6.Two BrGRP Genes Participated in NaCl Stress 即基于前述鉴定与表达分析,确定两个进一步分析的成员,开展实验验证整体脉络简单且清晰,应属于相对中规中矩的文稿,完善了大白菜富甘氨酸蛋白基因家族的各项信息。
大白菜CHS_基因鉴定及其在高氮水平下转录表达分析雷娟

1102㊀㊀2024年第65卷第5期收稿日期:2023-09-19基金项目:浙江省自然科学基金(LY19C150009);浙江省农业新品种选育重大科技专项(2021C02065)作者简介:雷娟利(1971 ),女,陕西西安人,副研究员,博士,研究方向为大白菜甘蓝抗病育种,E-mail:juanlil@㊂通信作者:李必元(1976 ),男,湖北仙桃人,副研究员,从事大白菜甘蓝育种研究工作,E-mail:16061944@㊂文献著录格式:雷娟利,赵彦婷,岳智臣,等.大白菜CHS 基因鉴定及其在高氮水平下转录表达分析[J].浙江农业科学,2024,65(5):1102-1107.DOI:10.16178/j.issn.0528-9017.20230943大白菜CHS 基因鉴定及其在高氮水平下转录表达分析雷娟利,赵彦婷,岳智臣,陶鹏,胡齐赞,李必元∗(浙江省农业科学院蔬菜研究所,浙江杭州㊀310021)㊀㊀摘㊀要:为了探究高氮水平引起大白菜叶柄黑点症加剧的机制,通过对抗㊁感叶柄黑点症大白菜品系进行正常氮和高氮水平处理,处理前和处理后不同时间对叶柄取样并进行转录组测序,然后再对大白菜查尔酮合酶(chalcone synthetase,CHS)基因进行鉴定并分析不同的大白菜CHS 基因在正常氮水平和高氮水平㊁抗性品系和感性品系之间的差异表达,结果表明,共鉴定到7个大白菜CHS 基因,其中有3个(BrCHS 1㊁BrCHS 3及BrCHS 4)在高氮水平下表达量比正常氮水平下高,且在高氮水平下感性品系表达量高于抗性品系㊂因此推测这3个大白菜CHS 基因可能与大白菜叶柄黑点症的形成有关㊂研究结果为揭示大白菜叶柄黑点症发生机制奠定了基础㊂关键词:大白菜;叶柄黑点症;查尔酮合酶;高氮;表达分析中图分类号:S634.1㊀㊀㊀文献标志码:A㊀㊀㊀文章编号:0528-9017(2024)05-1102-06Identification of CHS gene in Chinese cabbage and transcriptionalexpression analysis under high nitrogen levelsLEI Juanli,ZHAO Yanting,YUE Zhichen,TAO Peng,HU Qizan,LI Biyuan ∗(Institute of Vegetables,Zhejiang Academy of Agricultural Sciences,Hangzhou 310021,Zhejiang)㊀㊀Abstract :In order to investigate the mechanism of exacerbation of Chinese cabbage petiole black spot disease causedby high nitrogen levels,the resistant and suscetible Chinese cabbage were treated with normal and high nitrogen levels,andsampled petioles were sampled at different time before and after treatment for transcriptome sequencing.The Chinese cabbage chalcone synthase (CHS)gene was identified and analyzed for different Chinese cabbage CHS genes at normal andhigh nitrogen levels.The differential expression between resistant and susceptible Chinese cabbage showed that a total of 7CHS genes were identified,of which 3genes (BrCHS 1,BrCHS 3,and BrCHS 4)had higher expression levels under highnitrogen levels than the normal nitrogen levels,and the expression level of susceptible Chinese cabbage was higher than that of resistant Chinese cabbage under high nitrogen levels.Therefore,it is speculated that these three Chinese cabbage CHSgenes may be related to the formation of Chinese cabbage petiole black spot disease.This study lays the foundation for revealing the mechanism of black spot disease on the petiole of Chinese cabbage.Keywords :Chinesecabbage;petioleblackspotdisease;chalconesynthetase;highnitrogenlevel;expression analysis㊀㊀植物查尔酮合酶(chalcone synthetase,CHS)是生物化学与分子生物学领域中的一种酶,属于植物聚酮合成酶超家族,催化3分子丙二酰辅酶A与1分子香豆酰辅酶A 经脱羧缩合成查耳酮,而查尔酮是类黄酮物质合成途径中的第一个化合物[1]㊂黄酮类物质在植物中具有许多重要的生物功能,它们参与植物的生长发育[2]㊁花色形成[3]㊁防UV损伤[4]㊁抗病和抗氧化等过程[5]㊂因此,查尔酮合酶对于植物的适应性和产量都有重要影响㊂大白菜叶柄黑点症是由多方面因素共同作用引起的一种生理性病害,对大白菜的商品性造成严重影响㊂不同的大白菜品种对黑点症的感病程度不同,研究人员通过对多份大白菜自交系㊁组合及国内外大白菜品种叶柄黑点症的发生情况调查,发现大白菜叶柄黑点症的发生存在明显的品种间差异,表明叶柄黑点症的发生与基因型有关㊂氮肥过盛是引起叶柄黑点症的重要因素,施用高水平的氮肥量可使叶柄黑点症加剧,即单位面积上的小黑点数量增加[6-8],且氮素营养形态对大白菜叶柄黑点症的发生也会产生影响,研究表明,铵态氮促进大白菜叶柄黑点症发生的作用高于硝态氮和酰胺态氮[9-10]㊂研究结果表明,在高氮处理下,叶柄黑点症感病品系的细胞膜透性㊁SOD活性都显著高于抗病品系,说明ROS诱导细胞死亡直接导致叶柄黑点症的发生[11-12]㊂由于大白菜叶柄黑点症形成机制方面的研究几乎没有,因此,目前为止引起大白菜叶柄黑点症发生的机制完全不清楚㊂在本研究中,以抗㊁感大白菜叶柄黑点症品系为材料,通过正常氮和高氮水平水培处理,处理前和处理后不同时间取样进行转录组分析,鉴定大白菜CHS基因家族成员,并通过对各成员相对表达水平的比较分析,以期阐明高氮水平下大白菜叶柄黑点症发生与CHS表达的关系,为进一步揭示大白菜叶柄黑点症发生机制奠定基础㊂1㊀材料与方法1.1㊀试验设计㊀㊀试验于2018年秋季在浙江省农业科学院试验基地桑园温室中进行㊂试验材料为抗㊁感叶柄黑点症大白菜品系韩春娃C8-1(A)和韩春娃-4-2-3-4 (B),采用水培方法进行培养,当幼苗长至四叶一心时进行正常氮水平和高氮水平处理,对照正常氮水平为1ˑ的菜心营养液,处理高氮水平为1ˑ的菜心营养液+10mol㊃L-1NH4NO3[13]㊂处理前和处理后7d及14d分别取样,取样部位为叶柄,每样3次重复㊂取样后液氮迅速冷冻,置于-80ħ冰箱备用㊂1.2㊀转录组测序㊀㊀所有30个样品由北京百迈客生物科技有限公司完成转录组测序㊂转录组测序实验流程为RNA 样品检测㊁文库构建(包括mRNA富集㊁反转录㊁末端修复㊁3ᶄ加A及PCR富集)㊁文库质量控制和上机测序㊂不同文库按照目标下机数据量进行pooling,用Illumina平台进行测序㊂将测序数据进行质量评估,去除接头和低质量数据,然后已完成测序的白菜(Brassicarapa)[14]基因组作为参考基因组进行比对,检测SNP㊁InDel等变异㊂1.3㊀大白菜CHS基因鉴定㊀㊀在TAIR()网站查找拟南芥CHS基因及其序列,根据拟南芥CHS基因及其序列在BRAD()网站查找大白菜PAL基因及其序列(参考数据库BRAD V3.0),然后在BRAD网站进行注释查找基于拟南芥对应基因比较㊂1.4㊀大白菜CHS基因系统树构建㊀㊀从TAIR和BRAD网站分别下载拟南芥和大白菜CHS基因序列,从NCBI分别下载油菜㊁甘蓝㊁芥菜及萝卜的各一个CHS基因序列,然后用MEGA7.0进行系统树构建㊂首先用ClustalW对拟南芥和大白菜PAL蛋白的氨基酸序列进行比对分析,手动调整使比对结果整齐,采用邻接法(Neighbor-Joining)进行系统发育树构建[15]㊂1.5㊀大白菜PAL基因结构分析㊀㊀从BRAD网站分别下载大白菜PAL基因的核苷酸序列和CDS序列,然后利用在线软件Gene Structure Display Server(GSDS2.0)绘制基因结构图[16]㊂1.6㊀大白菜PAL基因的染色体定位分析㊀㊀从BRAD网站分别获取大白菜PAL基因所在染色体及起始和终止位置信息,然后利用在线软件MG2C(http://mg2c.iask.in/mg2c_v2.1/)绘制基因在染色体上的定位分布图[17]㊂1.7㊀数据分析与处理㊀㊀大白菜叶柄CHS基因的相对表达数据在百迈客提供的所有基因的表达量(fpkm)矩阵文件(All.DEG.final.xls)中查找㊂每个样品3次重复取平均值,所有数据分析与处理均采用Excel计算和作图㊂2㊀研究结果2.1㊀大白菜CHS基因鉴定结果㊀㊀通过在TAIR网站查找,共找到1个拟南芥CHS基因,为AT5G13930㊂在BRAD网站中共查1104㊀㊀2024年第65卷第5期找到7个大白菜CHS基因(表1)㊂大白菜7个CHS基因碱基数数最少的仅为277个,最多的为1698个,分别为BrCHS6和BrCHS4;氨基酸数最少也是BrCHS6,仅有68个,最多的是BrCHS7,有395个氨基酸㊂与拟南芥CHS基因比较,同源性范围是72.500%~95.707%㊂表1㊀㊀大白菜与拟南芥中查尔酮合酶基因比较Table1㊀Comparison of chalcone synthase genes in Chinese cabbage and Arabidopsis序号大白菜基因名称基因号碱基数氨基酸数同源性/%e值0AtCHS AT5G139301577395 1BrCHS1BraA02g005190.3C145239495.4550 2BrCHS2BraA02g039760.3C126939488.1310 3BrCHS3BraA03g005990.3C145839695.2140 4BrCHS4BraA06g019160.3C169835072.500 6.12ˑ10-89 5BrCHS5BraA09g002250.3C96632189.7520 6BrCHS6BraA09g002260.3C2776888.710 3.76ˑ10-35 7BrCHS7BraA10g024990.3C126339595.7070㊀㊀注: 表示无此栏㊂㊀㊀从百迈客提供的所有基因的表达量(fpkm)矩阵文件(All.DEG.final.xls)中查找,共找到3个相对表达量有差异的大白菜CHS基因,分别为BraA02g005190.3C(BrCHS1)㊁BraA03g005990.3C (BrCHS3)和BraA06g019160.3C(BrCHS4)㊂在后续的内容中会详细分析这3个基因在抗㊁感品系及不同氮素水平下的相对表达情况㊂2.2㊀大白菜CHS基因进化分析㊀㊀大白菜CHS基因的进化分析,从TAIR和BRAD分别下载了拟南芥和大白菜CHS基因序列,并从NCBI分别下载了油菜(KP301153.1)㊁甘蓝(KP301161.1)㊁芥菜(KP301187.1)和萝卜(KP301239.1)的各一个CHS基因序列,运用MEGA7.0软件[15],采用邻接法构建了CHS基因的系统发育进化树(图1)㊂BrCHS2和BrCHS6分别与其他基因关系较远,尤其是BrCHS6基因与其他基因的关系最远㊂其余基因则基本与拟南芥CHS 基因归在一起(图1)㊂图1㊀大白菜和拟南芥CHS基因的系统发育树Fig.1㊀Phylogenetic tree of CHS genes in Chinese cabbage and Arabidopsis2.3㊀大白菜CHS基因结构分析㊀㊀从BRAD网站获得大白菜CHS基因的核苷酸序列和CDS序列,利用在线软件Gene Structure Display Server(GSDS2.0,http://gsds.gao-lab. org/)[16]绘制大白菜CHS基因结构图(图2)㊂结果显示,大白菜CHS基因一般包含1~5个外显子㊂其中,BrCHS4包含的外显子最多,有5个, BrCHS5包含的外显子数最少,仅有1个,其他5个CHS基因均包含有2个外显子㊂2.4㊀大白菜CHS基因的染色体定位分析图2㊀大白菜CHS基因结构Fig.2㊀CHS gene structure in Chinese cabbage㊀㊀从BRAD网站分别获取大白菜CHS基因所在染色体及起始和终止位置信息,利用在线软件MG2C(http://mg2c.iask.in/mg2c_v2.1/)[17]绘制出大白菜CHS基因在染色体上的定位分布图(图3)㊂结果显示,大白菜CHS基因主要分布在5个染色体上,其中2号染色体和9号染色体上分别分布2个CHS基因,另外3号㊁6号和10号染色体各分布有1个CHS基因㊂图3㊀大白菜CHS基因染色体定位Fig.3㊀Chromosomal localization of CHS gene in Chinese cabbage2.5㊀高氮水平下抗性品系CHS基因相对表达量分析㊀㊀对抗性品系在高氮水平及正常氮水平下,不同处理时间CHS基因表达水平分析发现3个差异表达的CHS基因,分别是BrCHS1㊁BrCHS3和BrCHS4㊂这3个CHS基因在高氮水平处理下变化趋势一致,即在高氮处理7d时基因相对表达量与对照相比显著增加,而在处理14d时基因相对表达量又恢复到跟正常氮一样水平(图4)㊂2.6㊀高氮水平下感性品系CHS基因相对表达量分析对感性品系在高氮水平及正常氮水平下,不同处理时间CHS基因表达水平分析发现了与抗性品系相同的3个差异表达CHS基因,同样分别是BrCHS1㊁BrCHS3和BrCHS4㊂且这3个CHS基因在高氮水平处理下变化趋势一致,即在高氮处理7 d时基因相对表达量与对照相比显著增加,而在处理14d时基因相对表达量又恢复到跟正常氮一样水平(图5)㊂2.7㊀抗、感性品系CHS基因在不同氮水平下相对表达量比较分析㊀㊀对抗㊁感性品系在高氮水平及正常氮水平下,1106㊀㊀2024年第65卷第5期㊀㊀图4㊀抗性品系CHS基因在高氮水平下相对表达量Fig.4㊀Relative expression levels of CHS genes in resistant line under high nitrogen levels图5㊀感性品系CHS基因在高氮水平下相对表达量Fig.5㊀Relative expression levels of CHS genes in susceptible line under high nitrogen levels不同处理时间下3个差异表达CHS基因,即BrCHS1㊁BrCHS3和BrCHS4的表达水平进行综合分析发现,3个CHS基因在正常氮水平下抗㊁感品系间相对表达量无显著差异,而在高氮水平处理7d 时感性品系基因相对表达量与抗性品系比较显著增加,处理14d时又都恢复到相同水平(图6)㊂CK 表示正常水平; HN 表示高氮水平图6㊀抗、感性品系CHS基因在不同氮水平下相对表达量Fig.6㊀Relative expression levels of CHS genes in resistant and susceptible strains at different nitrogen levels3 结论与讨论查尔酮合酶(CHS)是黄酮类生物合成途径的起始和关键酶㊂黄酮类化合物在植物中扮演着多种重要角色,对植物的生长㊁发育和防御都有重要意义㊂首先,它们是植物次生代谢产物,广泛存在于蔬菜㊁水果和药用植物中,对植物的生长发育㊁开花结果以及抵御异体生物入侵起着重要作用;其次,黄酮类化合物是植物资源中一种典型的活性功能成分,具有重要的生理功能㊂许多黄酮类成分具有止咳㊁祛痰㊁平喘及抗菌活性,同时具有护肝㊁解肝毒㊁抗真菌㊁治疗急㊁慢性肝炎㊁肝硬化及抗自由基和抗氧化作用[18];此外,黄酮类化合物也是植物化学防御的关键物质之一,它们可以作为抗菌剂和抗氧化剂等防御物质来保护植物免受病虫害的侵袭[19]㊂在本研究结果中,以拟南芥CHS基因序列为参考,在大白菜基因组中共注释到7个CHS基因,分别为BrCHS1(BraA02g005190.3C)㊁BrCHS2 (BraA02g039760.3C)㊁BrCHS3(BraA03g005990.3C)㊁BrCHS4(BraA06g019160.3C)㊁BrCHS5 (BraA09g002250.3C)㊁BrCHS6(BraA09g002260.3C)和BrCHS7(BraA10g024990.3C)(表1)㊂研究发现有3个大白菜CHS基因响应高氮胁迫,且抗㊁感品系在高氮水平下的表达水平有差异㊂虽然抗㊁感品系CHS基因的表达水平在高氮处理7d时与对照相比均达到最高,但感性品系CHS表达水平要显著高于抗性品系㊂抗㊁感品系在高氮处理14d 后,CHS的表达水平回落至正常,此时抗㊁感品系在正常氮水平及高氮处理下均没有显著差异㊂这与苯丙氨酸解氨酶(PAL)基因在高氮水平下转录水平表现完全一致㊂这3个CHS基因分别为BrCHS1㊁BrCHS3及BrCHS4,可能与大白菜叶柄黑点症发生有关㊂虽然国内外研究人员对大白菜叶柄黑点症发生的影响因素进行了广泛的探究,但是目前为止引起大白菜叶柄黑点症发生的具体机制尚不清楚㊂本研究发现的3个可能与大白菜叶柄黑点症发生有关的CHS基因,BrCHS1㊁BrCHS3和BrCHS4,为进一步从分子水平揭示大白菜叶柄黑点症发生的分子机制及大白菜叶柄黑点症抗病育种工作及防治工作提供理论基础与技术支撑㊂参考文献:[1]㊀王小菁.植物生理学[M].8版.北京:高等教育出版社,2019.[2]㊀张必弦,朱延明,来永才,等.植物查尔酮合酶(CHS)及其基因的研究进展[J].安徽农业科学,2012,40(20):10376-10379.[3]㊀OHNO S,HORI W,HOSOKAWA M,et al.Post-transcriptional silencing of chalcone synthase is involved inphenotypic lability in petals and leaves of bicolor Dahlia(Dahlia variabilis) Yuino [J].Planta,2018,247(2):413-428.[4]㊀LI J,OU-LEE T M,RABA R,et al.Arabidopsis flavonoidmutants are hypersensitive to UV-B irradiation[J].The PlantCell,1993,5(2):171-179.[5]㊀郭泽西,孙大运,曲俊杰,等.查尔酮合成酶基因在葡萄抗灰霉病和霜霉病中的作用[J].中国农业科学,2022,55(6):1139-1148.[6]㊀WARNER J,CERKAUSKAS R,ZHANG T Q,et al.Responseof Chinese cabbage cultivars to petiole spotting and bacterial softrot[J].HortTechnology,2003,13(1):190-195. [7]㊀杨晓云,张淑霞,张清霞,等.基因型对大白菜小黑点病发生的影响及抗病品种筛选[J].北方园艺,2006(6):25-26.[8]㊀雷娟利,钟新民,李必元,等.有机肥对大白菜叶柄黑点症及叶缘黑点症的影响[J].浙江农业科学,2015,56(10):1593-1597.[9]㊀郭莹,杨晓云,司朝光,等.不同形态氮素营养对大白菜芝麻状斑点病发生的影响[J].园艺学报,2011,38(8):1489-1497.[10]㊀于业志,陈振德,李德全.氮素形态对抗大白菜小黑点病品种生理代谢的影响[J].山东农业科学,2007,39(3):79-82.[11]㊀雷娟利,李必元,岳智臣,等.氮素水平对大白菜叶柄黑点症发生的影响[J].浙江农业科学,2017,58(11):2010-2012.[12]㊀雷娟利,李必元,王五宏,等.大白菜叶柄黑点症细胞显微结构观察[J].浙江农业科学,2017,58(4):688-690,694.[13]㊀雷娟利,钟新民,岳智臣,等.大白菜叶柄黑点症抗性苗期水培鉴定方法[J].浙江农业科学,2019,60(3):430-431.[14]㊀WANG X W,WANG H Z,WANG J,et al.The genome of themesopolyploid crop species Brassica rapa[J].NatureGenetics,2011,43:1035-1039.[15]㊀KUMAR S,STECHER G,TAMURA K.MEGA7:molecularevolutionary genetics analysis version7.0for bigger datasets[J].Molecular Biology and Evolution,2016,33(7):1870-1874.[16]㊀HU B,JIN J P,GUO A Y,et al.GSDS2.0:an upgradedgene feature visualization server[J].Bioinformatics,2015,31(8):1296-1297.[17]㊀CHAO J T,LI Z Y,SUN Y H,et al.MG2C:a user-friendlyonline tool for drawing genetic maps[J].MolecularHorticulture,2021,1(1):16.[18]㊀BARTLEY G E,SCOLNIK P A.Plant carotenoids:pigmentsfor photoprotection,visual attraction,and human health[J].The Plant Cell,1995,7(7):1027-1038.[19]㊀廖靖军,安成才,吴思,等.查尔酮合酶基因在植物防御反应中的调控作用[J].北京大学学报(自然科学版),2000,36(4):566-575.(责任编辑:董宇飞)。
白菜DBB基因家族的鉴定与表达分析

山东农业大学学报(自然科学版),2021,52(2):174-181VOL.52NO.22021 Journal of Shandong Agricultural University(Natural Science Edition)doi:10.3969/j.issn.1000-2324.2021.02.003白菜DBB基因家族的鉴定与表达分析陈雨,邓九州*,吴晓宇,赵玉梅,王洁,段巧红,黄家保**山东农业大学园艺科学与工程学院/作物生物学国家重点实验室,山东泰安271018摘要:DBB基因在开花调控、根系生长、光形态建成、种子萌发、果实发育、逆境胁迫等生物学过程中发挥重要作用,但在白菜中还未有关于DBB基因的报道。
本研究通过生物信息学方法鉴定到18个白菜DBB基因,其蛋白分子量为11285.63~35796.93D,理论等电点介于4.66~9.35之间,外显子数量为2~5个;大多数成员N端都含有保守结构域B-box1和B-box2,精氨酸和亮氨酸是在所有成员中都保守的氨基酸残基;该家族基因不均匀分布于白菜10条染色体上,多数基因出现基因复制,产生2个以上同源基因;多数基因与拟南芥DBB基因具有线性对应关系。
顺式作用元件分析表明白菜DBB基因启动子上含有大量的光、厌氧、激素、低温等响应元件。
组织特异性表达分析发现多数基因在不同组织中的表达水平与根类似;Bra032441在花中的表达水平显著高于其它成员。
此外,绝大多数白菜DBB基因对盐胁迫有不同程度的响应。
这些结果为后续解析DBB基因在白菜中的生物学功能奠定了基础。
关键词:白菜;DBB;生物信息学分析中图法分类号:S634.3文献标识码:A文章编号:1000-2324(2021)02-0174-08 Identification and Expression Analysis of DBB Family Genes in Brassica rapaCHEN Yu,DENG Jiu-zhou*,WU Xiao-yu,ZHAO Yu-mei,WANG Jie, DUAN Qiao-hong,HUANG Jia-bao**College of Horticulture science and engineering/State Key Laboratory of Crop Biology,Shandong Agricultural University, Tai’an271018,ChinaAbstract:DBBs play an important role in plant flowering regulation,root growth,photomorphogenesis,seed germination, fruit development and abiotic stress response.However,DBB gene family has not been identified in Brassica rapa.In this study,18DBB genes were identified by bioinformatics method.The molecular weight was11285.63~35796.93D,the theoretical isoelectric point ranged from4.66to9.35,and the number of exons ranged from2to5;The N-terminus of most members contained the conserved domains B-box1and B-box2,and the arginine and leucine were found as the most conserved amino acid in all DBBs.The DBBs were distributed unevenly on10chromosomes,and most of the genes were duplicated,producing more than2homologous genes.Most of the genes had linear correspondence with Arabidopsis DBB genes.The cis-element analysis showed that the DBB gene promoter contained a large number of light,anaerobic,hormonal and low temperature response elements.Tissue expression analysis showed that the expression level of most genes in different tissues was similar to that in the roots,interestingly,the level of Bra032441in flowers was remarkably higher than that in other members.In addition,most of the DBBs in Brassica rapa respond to salt stress.These results laid a foundation for further analysis of the biological functions of DBB genes in B.rapa.Keywords:Brassica rapa;DBB;bioinformatic analysis锌指蛋白是真核生物中的一类具有锌指结构域的转录因子家族[1],其中含有B-box基序的蛋白称为BBX,在拟南芥中有32个成员,其C端通常含有CCT结构域[2]。
大白菜转录因子MYB基因家族在花粉形成过程的基因表达分析

大白菜转录因子MYB基因家族在花粉形成过程的研究进展摘要:大白菜(Brassica rapa L. ssp pekinesis)是中国最重要的蔬菜作物之一,存在明显杂种优势,利用自交不亲和系和雄性不育系制种是目前最常用的杂交制种技术。
雄性不育系,雌雄同株植物中,雄蕊发育不正常,不能产生有功能的花粉,但它的雌蕊发育正常,能接受正常花粉而受精结实,并能将雄性不育遗传给后代的植物品系。
Myb(v-myb avian myeloblastosis viral oncogene homolog)转录因子是最大的植物转录因子家族成员之一,参与了细胞分化、细胞周期的调节,激素和环境因子应答,并对植物次生代谢以及叶片等器官形态建成具有重要的调节作用。
植物MYB转录因子以台有保守的MYB 结构域为共同特征,广泛参与植物发育和代谢的调节单一MYB结构域的MYB转录因子在保持染色体结构和转录调节上发挥着重要作用,是MYB转录因子家族中较为特殊的一类。
Myb类转录因子参与了植物花色素形成过程的调控,对果皮、果肉,甚至叶片的着色都起到了重要作用。
MYB,控制大白菜籽粒α淀粉酶的诱导表达,同时控制大白菜花器官,尤其是花粉的发育。
关键词:大白菜;雄性不育;Myb转录因子;花药绒毡层;花粉高等植物花药形态发育完成后, 小孢子母细胞被四层二倍体的壁细胞, 即表皮层、内皮层、中层和绒毡层所围绕。
作为花药壁的最内层, 绒毡层直接与发育中的配子体相互作用。
本文通过绒毡层发育的各时期的形态结构改变及物质的变化来阐述绒毡层对花粉发育的影响, 同时通过阐述绒毡层发育相关的特异表达基因, 进一步认识了绒毡层的功能及其与花药发育的相互关系。
高等植物的配子需要单倍体的配子体细胞和二倍体的孢子体细胞的共同参与而产生。
当高等植物花药形态发生完成后, 小孢子母细胞被四层二倍体的壁细胞所围绕。
这四层细胞从外向内依次是: 表皮层、内皮层、中层和绒毡层。
绒毡层作为花药壁的最内层直接与发育中的配子体相互作用。
大白菜—结球甘蓝1号染色体异附加系衍生后代外源染色体的遗传分析

大白菜—结球甘蓝1号染色体异附加系衍生后代外源染色体的遗传分析异附加系是创造异代换系和异源易位系的重要桥梁材料,在理论研究和育种实践中具有十分重要的价值。
在异附加系的有效利用中,对外源染色体的精确鉴定以及遗传分析非常重要。
在各种鉴定方法中,基于基因组重测序开发的多态性In Del标记为异附加系的鉴定提供了技术保证。
异附加系外源染色体的遗传分析包括外源染色体传递给子代频率和染色体片段大小,它决定着异附加系衍生后代染色体的数目和组成。
为了创新大白菜(Brassica rapa L.ssp.pekinensis,AA)遗传种质,丰富其遗传背景,近年来,本课题组开展了将结球甘蓝优良基因导入大白菜进行种质创新研究,获得了整套大白菜—结球甘蓝单体异附加系和部分二体异附加系等珍贵材料。
但关于外源染色体在异附加系衍生后代中的遗传情况尚需系统的研究。
本研究利用In Del标记和细胞学方法,对大白菜—结球甘蓝1号染色体二体异附加系(AC1D)自交后代及小孢子再生植株、大白菜—结球甘蓝1号染色体单体异附加系(AC1M)辐射诱变后代的染色体组成及数目进行了鉴定,对获得的2个携带甘蓝易位片段材料的特征特性进行了研究。
主要研究结果如下:1.以大白菜‘85-1’、结球甘蓝‘11-1’为对照,利用均匀分布在甘蓝9条染色体上的6~8个In Del标记,对从大白菜—结球甘蓝AC1D自交后代中获得的21条和22条染色体的2个单株进行PCR扩增,确定了大白菜—结球甘蓝1号染色体异附加系附加了结球甘蓝的C03染色体,并渗入了C05和C07的染色体片段;进一步利用2个单株对甘蓝C03染色体沿全长分布的67个多态性In Del标记进行筛选,结果表明染色体数为21的单株携带了C03染色体的52个标记,染色体数为22的单株携带了C03染色体的40个标记,推断2个单株分别为大白菜—结球甘蓝单体异附加系和大白菜—结球甘蓝二体异附加系。
2.利用甘蓝C03染色体67个多态性In Del标记和细胞学方法对大白菜AC1D 自交后代46个单株进行鉴定分析,结果表明,其中3个单株为染色体数22条的大白菜—结球甘蓝二体异附加系,6个单株为染色体数21条的大白菜—结球甘蓝单体异附加系,1个单株为染色体数20条的大白菜双体代换系,29个单株为染色体数20条的附加了结球甘蓝染色体片段的大白菜易位系,还有3个单株染色体数为22条,2个单株染色体数为21条,推断其分别为易位了结球甘蓝染色体片段的大白菜双三体和三体。
大白菜GH3基因家族全基因组鉴定及表达分析

第45卷第4期2022年7月河北农业大学学报JOURNAL OF HEBEI AGRICULTURAL UNIVERSITY Vol.45 No.4 J ul.2022收稿日期:2022-03-10基金项目: 国家自然科学基金(32172589);河北省人力资源和社会保障厅项目(C20200329);河北省科学技术厅项目(216Z2904G);河北省教育厅项目(BJ2019020).第一作者:李敬蕊(1979-),女,河北衡水人,副教授,研究方向为蔬菜逆境生理及分子生物学.E-mail:***************.cn 通信作者: 赵建军(1971—),男,河北沧州人,研究员,研究方向为蔬菜分子染色体工程、蔬菜种质资源评价与利用创新.E-mail:******************本刊网址:文章编号:1000-1573(2022)04-0015-10DOI :10.13320/ki.jauh.2022.0055大白菜GH3基因家族全基因组鉴定及表达分析李敬蕊,解紫薇,卢 银,李 娜,刘紫俊,赵建军(河北农业大学 园艺学院/省部共建华北作物改良与调控国家重点实验室/河北省蔬菜种质创新与利用重点实验室/河北省蔬菜产业协同创新中心,河北 保定 071000)摘要:生长素酰胺合成酶(GH3)基因家族是生长素早期应答基因家族之一,在植物生长素信号转导过程中发挥重要作用。
基于大白菜全基因组数据对大白菜GH3家族进行全基因组鉴定及生物信息学分析,结果表明,在大白菜基因组中共鉴定到45个包含GH3结构域的BrGH3家族成员;BrGH3家族成员编码氨基酸数在286~826之间,分子量介于32.06~90.77 KD 之间;系统进化分析将BrGH3家族分为4类;基因结构分析发现该家族成员外显子数为2~10个;蛋白保守基序(motif )分析表明,除了BrGH3.2和BrGH3.18外,BrGH 3家族成员都含有10个Motif ;41个BrGH3成员在10条染色体上均有分布,4个基因未定位到染色体上;共线性分析发现29个基因参与片段复制事件,存在5个串联重复;启动子顺式作用元件分析表明,BrGH3成员含有大量光、激素、逆境和生长发育等响应元件。
大白菜YUCCA基因家族的鉴定与生物信息学分析

大白菜YUCCA基因家族的鉴定与生物信息学分析綦洋王柬钧桑园园沈玲玲申颖曹雪刘振宁摘要:生长素(IAA)是一种重要的植物内源激素,YUCCA基因作为IAA生物合成的限速酶编码基因,在植物生长发育过程中起着重要的调控作用。
为深入研究大白菜YUCCA基因家族的功能,利用生物信息学分析对大白菜中YUCCA基因家族成员进行全基因组水平鉴定,并对其基因组信息、蛋白质生理生化特征、基因结构、保守结构域、系统进化树等方面进行研究。
结果表明,在大白菜基因组中共鉴定出19个YUCCA基因,可以聚类到2个大的分支,Clade Ⅰ和Clade Ⅱ;YUCCA基因在大白菜10条染色体上呈不均匀分布,并有1对基因以串联重复现象在染色体上分布;基因结构分析表明大白菜YUCCA基因一般含有0~3个数量不等的内含子;对大白菜YUCCA蛋白质氨基酸序列多重比对的分析表明大白菜YUCCA蛋白质存在高度保守的FAD结合位点(一致序列为GAGPxG)和NADPH结合位点(一致序列为GxGNSG);通过MEME软件对大白菜YUCCA蛋白质模体(motif)的预测还发现12个比较保守的motif。
上述研究结果为大白菜YUCCA基因功能的研究奠定了一定的基础。
关键词:大白菜;YUCCA;基因家族;生物信息学分析S634.101 文献标志码: A :1002-1302(2019)03-0049-06生长素(IAA)作为一种重要的植物内源激素,在植物的生长发育过程中起着关键的调控作用[1]。
依赖色氨酸的IPA(吲哚丙酸)途径是生长素合成的主要途径,以色氨酸为前体合成的IPA在黄素单加氧酶(YUCCA)的催化下生成IAA,这一过程也是IAA生物合成的限速步骤[2-3]。
该途径产生的生长素是维管系统发生、花发育、胚胎和种子形成等生物学过程所必需的[4-5]。
YUCCA酶是含黄素的单氧化酶,黄素单加氧酶属于FMOs(flavin-containing monooxygenase)酶类,由YUCCA基因家族编码。
普通烟草YUCCA基因家族的生物信息学分析

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yuc1、yuc2、yuc4、yuc6 4 突变体植株的表型更为严重。当 用 YUC 的启动子启动 iaaM 基因在拟南芥体内表达时则可以恢 复由 YUC 突变引起的表型,外源施加生长素却不能恢复这种 表型[4]。这些结果说明,由 YUC 参与的生长素合成途径对于 植物的生长发育是必需的。在单子叶植物水稻中克隆到了 7 个 YUCCA 基因家族成员,过表达 OsYUCCA1 的水稻表现出生 长素表型,而表达反义 OsYUCCA1 的水稻则表现出与水稻生 长素不敏感突变 体 相 似 的 缺 陷 表 型[10] 。 同 样 在 单 子 叶 植 物 中,玉米 YUCCA 基因对其花序发育极其重要,其突变体 spi1 表现为叶腋分生组织的发育缺陷[11]。
作为生长素生物合成的限速酶编码基因,YUCCA 基因得 到了较为深入的研究。其 中 对 拟 南 芥[4] 、水 稻[10] 、玉 米[11] 和 杨树[12]等为代表的模式植物中 YUCCA 基因家族进行了全基 因组水 平 上 的 鉴 定 和 分 析。 另 外,对 小 麦[13]、烟 草[14]、草 莓[9]和长春花[15]等物种中的 YUCCA 基因也进行了基因克隆 和功能研究。大白菜是我国北方乃至东南亚地区的重要蔬菜 作物,南北各地均有栽培,也是我国种植面积最大的蔬菜作 物。而目前未见关于大白菜 YUCCA 基因的研究报道。大白 菜( Chiifu - 401 - 42 ) 全基因组测序的完成使得对大白菜中 相关基因家族的鉴定和功能分析成为可能[16]。
关键词: 大白菜; YUCCA; 基因家族; 生物信息学分析 中图分类号: S634. 101 文献标志码: A 文章编号: 1002 - 1302( 2019) 03 - 0049 - 06
生长素( IAA) 作为一种重要的植物内源激素,在植物的 生长发育过程中起着关键的调控作用[1]。依赖色氨酸的 IPA ( 吲哚丙酸) 途径是生长素合成的主要途径,以色氨酸为前体 合成的 IPA 在黄素单加氧酶( YUCCA) 的催化下生成 IAA,这 一过程也是 IAA 生物合成的限速步骤[2 - 3]。该途径产生的生 长素是维管系统发生、花发育、胚胎和种子形成等生物学过程 所必需的[4 - 5]。
收稿日期: 2018 - 09 - 23 基金项目: 国家自然科学基金( 编号: 31700272 ) ; 大学生创新创业项
目 ( 编 号: 201710452037 ) ; 山 东 省 自 然 科 学 基 金 ( 编 号: ZR2017PC012、ZR2018PC023) 。 作者简介: 綦 洋( 1998—) ,女,山东潍坊人,研究方向为蔬菜分子生 物学。E - mail: qiyang@ lyu. edu. cn。 通信作者: 刘振宁,博士,教授,研究方向zhenning@ lyu. edu. cn。
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大白菜 YUCCA 基因家族的鉴定与生物信息学分析
綦 洋1 ,王柬钧1 ,桑园园1 ,沈玲玲1 ,申 颖1 ,曹 雪1 ,刘振宁1,2
( 1. 临沂大学农林科学学院,山东临沂 256000; 2. 浙江大学农业与生物技术学院,浙江杭州 310058)
摘要: 生长素( IAA) 是一种重要的植物内源激素,YUCCA 基因作为 IAA 生物合成的限速酶编码基因,在植物生长 发育过程中起着重要的调控作用。为深入研究大白菜 YUCCA 基因家族的功能,利用生物信息学分析对大白菜中 YUCCA 基因家族成员进行全基因组水平鉴定,并对其基因组信息、蛋白质生理生化特征、基因结构、保守结构域、系统 进化树等方面进行研究。结果表明,在大白菜基因组中共鉴定出 19 个 YUCCA 基因,可以聚类到 2 个大的分支,Clade Ⅰ和 Clade Ⅱ; YUCCA 基因在大白菜 10 条染色体上呈不均匀分布,并有 1 对基因以串联重复现象在染色体上分布; 基 因结构分析表明大白菜 YUCCA 基因一般含有 0 ~ 3 个数量不等的内含子; 对大白菜 YUCCA 蛋白质氨基酸序列多重比 对的分析表明大白菜 YUCCA 蛋白质存在高度保守的 FAD 结合位点( 一致序列为 GAGPxG) 和 NADPH 结合位点( 一 致序列为 GxGNSG) ; 通过 MEME 软件对大白菜 YUCCA 蛋白质模体( motif) 的预测还发现 12 个比较保守的 motif。上 述研究结果为大白菜 YUCCA 基因功能的研究奠定了一定的基础。
江苏农业科学 2019 年第 47 卷第 3 期
綦 洋,王柬钧,桑园园,等. 大白菜 YUCCA 基因家族的鉴定与生物信息学分析[J]. 江苏农业科学,2019,47( 3) : 49 - 54. doi: 10. 15889 / j. issn. 1002 - 1302. 2019. 03. 012
YUCCA 酶是 含 黄 素 的 单 氧 化 酶,黄 素 单 加 氧 酶 属 于 FMOs( flavin - containing monooxygenase) 酶类,由 YUCCA 基因 家族编码。植物中第一个功能被鉴定的 FMOs 就是 YUCCA 基因编码的蛋白质[6]。YUCCA 基因最初是从 IAA 含量降低 的拟南芥显性突变体中克隆鉴定的[6]。拟南芥 YUCCA 基因 家族有 11 个基因成员,在生长素生物合成和调控过程中起着 关键作用。35S 启 动子驱动 YUCCA1 基 因 在 拟 南 芥 中 过 表 达,转基因植株中生长素水平稍有提高,并伴随着下胚轴伸 长、子叶偏上 性 和 顶 端 优 势 增 强 等 表 型[6] 。 后 续 研 究 表 明, 在水稻、马铃薯和草莓等植物中过表达 YUCCA 基因也都可以 产生类似的生长素过量产生的表型[7 - 9]。对 yuc 基因功能缺 失突变体的研究则进一步证明了 YUC 基因家族在生长素合 成和植物生长发育过程中的重要作用。研究表明,拟南芥中 单个 YUC 基因失活并没有表现出明显的发育缺陷,而 yuc1、 yuc4 双突变体表现为维管组织减少,不能产生正常的花序,