菊花的组织培养 (修改版) (2)

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实验二菊花组织培养

实验二菊花组织培养

实验二菊花的组织培养
一、实验目的
1.熟悉植物组织培养的基本过程;
2.掌握菊花外植体的消毒、接种、无菌操作等基本操作技术。

二、实验原理
植物细胞具有全能性,可以进行组织培养。

三、实验仪器
超净工作台、70%酒精、0.1%升汞、无菌水、剪刀、镊子、解剖刀、培养基、培养皿、无菌滤纸、三角瓶、打火机、酒精灯、75%酒精、封口膜。

四、实验材料
从市场上买来的新鲜菊花
五、实验步骤
1.超净工作台消毒。

把用到的实验器材都放到超净工作台里,用紫外光照射30min。

2.超净工作台消毒结束后打开风机,关闭紫外灯,用75%酒精擦洗手和超净工作台,点
燃酒精灯,开始操作。

3.外植体的消毒。

用剪刀取幼嫩的菊花茎部,剪去枝和叶多余部分,用自来水冲洗30min,
并用刷子刷洗。

将清洗干净的菊花茎部放在烧杯中转入超净工作台里,先放入70%酒精中浸泡5-30s,用无菌水冲洗3次,用无菌滤纸吸干水分,再放入0.1%升汞中浸泡3-8min,然后放入无菌水中浸泡2min,其间不断摇动,取出菊花茎部再用无菌水冲洗3次,用无菌滤纸吸干水分,用解剖刀把茎部切成0.5-1cm大小的茎段,最后把茎段放到有培养基的平板中,用封口膜封好。

4.实验分为五组,每组找一个人来操作,每人操作四个外植体,每个外植体放入一个培
养皿里,其外植体消毒过程如下:
1.要有无菌意识
2.操作要规范
3.外植体消毒时间要把握好。

专题四菊花的组织培养

专题四菊花的组织培养

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MS培养基主要成分包括:
大量元素,微量元素,有机物,植物激素;
A、大量元素: N、P、K、Ca、Mg、S等
①氮:常用的是硝态氮(如硝酸钾)和铵态氮
(如硫酸铵),MS培养基即含硝态氮又含铵态 氮
植物组织从培养基中吸收NO3-或NH4+后,经 过一系列的反应转化成氨基酸,进而合成蛋白
质,成为植物体的主要组成部分
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②磷:常由磷酸盐提供,是植物必需元素之一。
磷参与植物生命过程中的核酸合成、蛋白质合成、 光合作用、细胞呼吸以及能量的储存、转化与释 放等重要生化过程,因此,植物组织培养中需要 大量的磷
③钾:影响植物组织培养中酶的活性和方向,决
定新陈代谢的方向,对分化有一定的促进作用
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B、微量元素:B、Mn、Cu、Zn、Fe、Mo、I、Co等
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外植体的年龄:幼嫩的植物组织 外植体的大小:大小适中 外植体所在的部位:茎尖,根尖等 外植体的外观形态:表面相对光滑,容易 消毒;
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2.离体的植物组织和细胞,对营养、环境等条件的要求 相对特殊,需要配制适宜的培养基。常用的一种培养
基是MS培养基。 MS固体培养基成分及比例
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必要条件:
①细胞离 体 ②一定的营养物质、激素和其他外
界条件
原理: 细胞的全能性 ①定义: 即已分化的细胞,仍具有发育形成
完整个体的潜能。
②原理:生物体的每一个细胞都包含有该物种所 特有的全套遗传物质,都有发育成为完 整个体所必需的全部基因
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③实例 已分化的植物细胞,仍具有全能性
高度特化的动物细胞,从整个细胞来说,全能 性受到限制。但它的细胞核仍然保持着全能性, 这是因为细胞核内含有该物种遗传性所需要的 遗传物质 ④全能性的比较:

菊花的组织培养_2

菊花的组织培养_2

植物组织培养的过程
离体的植 脱分化 物组织或 细胞
愈伤组织
再分化
根和芽
完整的植 物体
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4、植物组织培养的应用:
(1)、培育无病毒植株
(2)、 培养紫草愈伤组织,提取紫草素(治疗 烫伤和割伤的药物以及染料和化妆品的原料)
(3)、诱导离体的植物组织形成具有生根发芽能 力的胚状结构,包裹上人造种皮,制成人工种 子,可以解决有些作物品种繁殖能力差,结子 困难或发芽率低等问题.
2、无菌操作要求
操作要在酒精灯火焰旁完成,每次使用器械后, 都需要用火焰灼烧灭菌,接种后立即盖好瓶盖。
3、材料的切取和接种
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4、接种注意事项
①每接种一块外植体前,镊子需放入体积分 数为75%的酒精溶液中消毒一次,然后在酒 精灯火焰上烧一遍,冷却后再接种.
②外植体在培养基中要分布均匀,放置外植体 数量根据锥形瓶的大小确定,一般胡萝卜3-4 块,菊的茎或叶6-8块,也不要太少,以充分 利用培养基中的营养成分和光照条件.
先使用细胞分裂素后使 用生长素
同时使用
实验结果 有利于细胞分裂,但不 利分化 细胞既分裂也分化
分化频率高
③生长素和细胞分裂素同时使用,用量的比例对 植物细胞发育方向的影响 生长素 > 细胞分裂素:有利于根的分化
生长素 < 细胞分裂素: 有利于芽的分化,抑 制根的分化
生长素 = 细胞分裂素: 促进愈伤组织生长
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二、实验操作 (一)制备MS固体培养基
MS培养基包括20多种营养成分,实验室一般 使用4。C保存配制好的培养基母液来制备. 1、配置各种母液
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菊花的组织培养实验设计

菊花的组织培养实验设计

菊花的组织培养实验设计一、引言菊花(Chrysanthemum)是一种常见的花卉植物,具有丰富的观赏价值和经济价值。

为了提高菊花的繁殖效率和质量,培养菊花的组织培养技术变得越来越重要。

本实验旨在设计一种有效的菊花组织培养实验,以探究不同培养条件对菊花生长和发育的影响。

二、材料与方法1. 材料准备- 菊花组织样本:从健康的菊花植株上取得茎尖、叶片等组织样本。

- 培养基:选择适合菊花组织培养的基本培养基,如MS培养基。

- 植物生长调节剂:如激素(如IAA、BA等)和抗生素(如抗生素、青霉素等)。

- 培养器具:培养皿、试管、无菌操作器具等。

2. 实验设计- 步骤一:消毒处理将培养器具进行消毒处理,以保证实验的无菌条件。

- 步骤二:组织样本处理1) 将菊花茎尖或叶片样本进行清洗,去除外部杂质。

2) 将样本切割成适当大小的组织块,避免过大或过小。

3) 将组织块放入含有培养基和适当浓度植物生长调节剂的培养皿或试管中。

- 步骤三:培养条件设置1) 光照条件:根据菊花的光照需求,设置适当的光照强度和光照周期。

2) 温度条件:根据菊花的生长习性,设置适宜的培养温度。

3) 湿度条件:保持培养环境的适宜湿度,以促进组织生长。

- 步骤四:观察与记录1) 定期观察培养皿或试管中的组织生长情况,记录生长速度、组织形态等数据。

2) 观察菊花组织的发育情况,如根系的形成、茎的伸长等。

- 步骤五:统计与分析1) 对不同处理组的数据进行统计和分析,比较不同培养条件对菊花组织生长的影响。

2) 利用统计学方法,如方差分析等,评估不同处理组之间的显著性差异。

三、预期结果与讨论通过本实验设计的菊花组织培养实验,我们预期可以得到以下结果:1. 不同培养基和植物生长调节剂对菊花组织生长的影响。

2. 不同光照、温度和湿度条件对菊花组织生长的影响。

3. 菊花组织的生长速度、形态和发育情况。

根据实验结果,我们可以得出一些结论和讨论:1. 哪种培养基和植物生长调节剂对菊花组织生长效果最好。

菊花植物组织培养的实验步骤

菊花植物组织培养的实验步骤

菊花植物组织培养的实验步骤菊花植物组织培养是一种常用的无菌培养技术,用于研究植物的生长和发育过程,以及繁殖和遗传改良。

本文将详细介绍菊花植物组织培养的实验步骤,以帮助读者了解该技术的原理和操作过程。

1. 实验材料准备准备所需的实验材料,包括菊花的种子、培养基、无菌器皿、无菌器具等。

确保所有材料都是无菌的,以避免外源性污染对实验结果的影响。

2. 种子消毒将菊花种子浸泡在含有消毒剂的溶液中,如75%酒精或10%次氯酸钠溶液中,进行消毒处理。

消毒时间一般为5-10分钟,然后用无菌的蒸馏水冲洗3-5次,以去除残留的消毒剂。

3. 种子发芽将消毒后的种子均匀地分布在含有适宜培养基的培养皿上,然后密封培养皿,放置在恒温培养箱中进行发芽。

培养温度一般为25-28摄氏度,光照强度为1500-2000勒克斯。

4. 菊花愈伤组织诱导当种子发芽后,将发芽的胚乳离体培养,即将胚乳切割成小块,然后放置在含有适宜激素的培养基中进行培养。

常用的激素包括激素类似物2,4-D、NAA、BA等。

培养基的配方和激素浓度根据具体需求进行调整。

5. 菊花愈伤组织增殖愈伤组织在培养基中生长和分裂,形成愈伤组织的增殖体。

为了促进增殖体的生长,可以适当调整培养基的营养成分和激素浓度。

同时,还要注意定期更换培养基,以保持培养环境的稳定。

6. 菊花愈伤组织分化当愈伤组织增殖体生长到一定程度后,可以调整培养基的激素浓度,促使其分化为植株的各个组织。

例如,降低激素浓度可促进根系的形成,增加激素浓度可促进茎的生长。

7. 植株移栽当菊花愈伤组织分化为植株后,可以将其移栽到含有适宜培养基的培养皿中进行继续培养。

同时,注意给予足够的光照和适宜的温度,以促进植株的生长和发育。

通过以上步骤,我们可以成功地进行菊花植物组织培养实验。

该技术可以用于菊花的无性繁殖、基因转化等研究,为菊花的育种和遗传改良提供了有效的手段。

此外,菊花植物组织培养技术还可以应用于其他植物的研究和开发中,具有广泛的应用前景。

菊花的组织培养(实验报告)

菊花的组织培养(实验报告)

菊花的组织培养实验报告单班级:____________ 实验日期:______________指导教师:___________ 学生姓名:_____________ 小组成员有:_____________实验原理1.植物细胞表现出全能性需要经历脱分化和再分化过程。

2.细胞分裂素和生长素是启动细胞分裂、影响脱分化和再分化的关键激素,激素浓度和比例会影响植物细胞发育的方向。

目的要求1.了解植物组织培养的基本原理。

2.了解生长素和细胞分裂素的浓度、用量的比例对菊花愈伤组织形成和分化的影响。

3.尝试进行植物组织培养。

材料用具1.材料:幼嫩的菊花茎段、培养基、体积分数为70%的酒精、质量分数为5%左右的次氯酸钠溶液和无菌水等。

各种培养基的配制参见本书附录1。

2.用具:50mL锥形瓶(或植物组织培养瓶)、烧杯、酒精灯、超净工作台(或接种箱)、高压蒸汽灭菌锅、培养箱、封口膜、滤纸、标签、消毒用酒精棉球、培养皿、解剖刀和镊子等。

方法步骤1.外植体消毒酒精擦拭双手和超净工作台台面。

将流水充分冲洗后的外植体用酒精消毒30 s,然后立即用无菌水清洗2~3次;再用次氯酸钠溶液处理30 min后,立即用无菌水清洗2~3次。

2.外植体的接种将消过毒的外植体置于无菌的培养皿中,用无菌滤纸吸去表面水分。

用解剖刀将外植体切成0.5~1cm长的小段。

在酒精灯火焰旁,将外植体的1/3~1/2插入诱导愈伤组织的培养基中。

用封口膜或瓶盖封盖瓶口,并做好标记。

3.愈伤组织培养将接种外植体的锥形瓶或植物组织培养瓶置于18~22℃的培养箱中培养。

培养过程中,定期观察和记录愈伤组织的生长情况。

4.生芽、生根培养培养15~20d后,将生长良好的愈伤组织转接到诱导生芽的培养基上。

长出芽后,再将其转移到诱导生根的培养基上,进一步诱导形成试管苗。

5.炼苗、移栽移栽前先打开封口膜或瓶盖,让试管苗在培养箱内生长几日。

用流水清洗掉根部的培养基后,将幼苗移植到消过毒的蛭石或珍珠岩等环境中,待其长大后再移栽入土。

菊花的组织培养实验设计

菊花的组织培养实验设计

菊花的组织培养实验设计引言概述:菊花的组织培养是一种常见的实验方法,它可以用来研究菊花的生长发育、遗传变异以及植物组织的再生能力等。

本文将介绍一种菊花的组织培养实验设计,包括实验材料的准备、实验步骤的安排以及实验结果的分析等。

一、实验材料的准备1.1 菊花的种子:选择健康、无病虫害的菊花种子作为实验材料。

1.2 培养基:准备含有适当濃度的植物激素的培养基,如MS培养基。

1.3 高温消毒器具:为了防止细菌和真菌的污染,需要准备高温消毒的器具,如高温培养箱。

二、实验步骤的安排2.1 种子表面消毒:将菊花的种子表面进行消毒处理,以杀灭种子表面的细菌和真菌。

2.2 菊花的离体培养:将消毒后的种子放置在含有培养基的培养皿中,进行离体培养。

2.3 培养条件的调节:调节培养皿中的温度、光照和湿度等条件,以促进菊花的生长和发育。

三、实验结果的分析3.1 菊花的生长情况:观察菊花在培养基上的生长情况,包括根系的形成、茎的生长以及叶片的展开等。

3.2 菊花的再生能力:观察菊花在培养基上的再生能力,包括新芽的形成、花蕾的发育以及花朵的开放等。

3.3 菊花的遗传变异:通过观察不同菊花品种在培养基上的生长情况和形态变化,分析菊花的遗传变异情况。

四、实验注意事项4.1 实验环境的准备:实验室应保持整洁,避免细菌和真菌的污染。

4.2 实验操作的规范:实验操作要严格按照实验步骤进行,避免误操作导致实验结果的偏差。

4.3 实验结果的记录:实验过程中要及时记录实验结果,以便后续的数据分析和讨论。

综上所述,本文介绍了一种菊花的组织培养实验设计,包括实验材料的准备、实验步骤的安排以及实验结果的分析等。

通过这种实验方法,可以深入研究菊花的生长发育、遗传变异以及植物组织的再生能力等方面的问题。

希望本文能为菊花的组织培养实验提供一定的参考和指导。

菊花的组织培养实验设计

菊花的组织培养实验设计

菊花的组织培养实验设计一、引言菊花(学名:Chrysanthemum)是一种常见的花卉植物,具有丰富的观赏价值和经济价值。

为了提高菊花的繁殖效率和质量,组织培养技术被广泛应用于菊花的繁育和改良工作中。

本实验旨在设计一套有效的菊花组织培养实验方案,以促进菊花的生长和发育。

二、实验目的1. 建立菊花的组织培养体系,包括菊花愈伤组织的诱导和培养;2. 优化菊花组织培养条件,提高愈伤组织的生长速度和发育质量;3. 探究不同激素对菊花愈伤组织的影响,寻找最适合菊花生长的激素组合。

三、实验材料和方法1. 实验材料- 菊花种子- MS培养基- 植物生长调节剂(如IAA、BA、KT等)- 愈伤组织诱导剂(如2,4-D、NAA等)- 培养器具(培养瓶、离心管、显微镜等)2. 实验方法步骤一:菊花种子的消毒和萌发1. 将菊花种子放入含有0.1%次氯酸钠溶液中浸泡10分钟,然后用蒸馏水洗涤3次,以去除种子表面的细菌和杂质。

2. 将消毒后的种子均匀分布在含有MS培养基的培养瓶中,每瓶放入10颗种子。

3. 将培养瓶密封后,放入恒温培养箱中,温度设置为25摄氏度,光照强度为3000勒克斯,光周期为16小时光照/8小时黑暗。

4. 观察种子的萌发情况,记录发芽率和发芽时间。

步骤二:菊花愈伤组织的诱导和培养1. 从萌发的菊花种子中选择健康的幼苗,将其茎段切取成0.5-1.0厘米长的小段。

2. 在无菌条件下,将茎段放入含有诱导剂(如2,4-D)的MS培养基中,培养基中的激素浓度为2.0 mg/L。

3. 将培养瓶密封后,放入恒温培养箱中,温度设置为25摄氏度,光照强度为3000勒克斯,光周期为16小时光照/8小时黑暗。

4. 观察愈伤组织的形成情况,记录愈伤组织的生长速度和发育质量。

步骤三:菊花愈伤组织的激素处理1. 将培养好的愈伤组织切取成相同大小的小块,每块约重0.1克。

2. 将愈伤组织块分别放入含有不同激素(如IAA、BA、KT等)的MS培养基中,激素浓度分别为0.5 mg/L。

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②动物已分化的体细胞全能性受限制,但细 胞核仍具有全能性
植物细胞要表现全能性,步骤: 1.成熟细胞 → 分生细胞 → 胚状体 →完整植株 2.成熟细胞 → 愈伤组织 →出根出芽→完整植株

需要条件:
1.离体
2.一定的营养物质
3.植物激素:主要是生长素和细胞分裂素
4.适宜温度和pH 细胞全能性大小: 受精卵>生殖细胞>体细胞 植物细胞>动物细胞 分化程度低的细胞>分化程度高的细胞
MS培养基主要成分:
①大量元素: N、P、 K、 Ca、 S 、 Mg等 ②微量元素: B、Mn、Cu、Zn、 Fe、Mo、I、Co等 ③有机物:甘氨酸、烟酸、肌醇、 维生素、蔗糖等 ④植物激素:生长素、细胞分裂素、 赤霉素等
微生物培养基的配方和MS培养基的配 方相比,有哪些明显的不同?
微生物培养基以有机营养为主。 与微生物的培养不同,MS培养基则需提供 大量无机营养。
5.植物激素的影响:

常用的植物激素:
生长素、细胞分裂素和 赤霉素。

生长素、细胞分裂素是启动细胞分裂、脱分化和再分化的 关键性激素。

在生长素存在的情况下,细胞分裂素的作用呈加强的趋势。 激素的使用顺序、使用量及比例影响植物细胞的发育方向。
生长素类: 2,4-二氯苯氧乙酸(2,4-D)、 吲哚乙酸(IAA)、萘乙酸(NAA)、 吲哚丁酸(IBA)等。 作用:抑制幼芽的生长,诱导根的分化 2,4-D有利于愈伤组织的生长; IAA、NAA、IBA有利于器官分化。 细胞分裂素类: 激动素(KT)、6-苄基嘌呤 ( 6-BA)、玉米素(ZT)等。 作用:促进细胞的分裂与分化,其中KT能 明显促进芽的分化而抑制根的形成。 赤霉素类: 赤霉酸(GA3)等
主要是大量元素和微量元素的影响。
A.大量元素: N、P、 K、 Ca、Mg 、 S等;
B.微量元素:
B、Mn、Cu、Zn、 Fe、Mo、I、Co等
其中: N、P主要影响蛋白质、核酸的合成;
K、 Ca、Mg、S主要影响酶的活性。
3.有机营养的影响:
主要是甘氨酸、烟酸、肌醇、维生素、蔗糖的影响。 其中:
离体的植物组织或细胞,在培养了一段时 间后,会通过细胞分裂,形成愈伤组织。
方式:有丝分裂
脱分化就是有丝分裂的过程。
愈伤组织:由离体的植物器官、组织或细胞,通 过细胞分裂形成的细胞团,叫做愈伤 组织。 特点:细胞排列疏松而无规则,高度液泡化;呈 无定形状态的薄壁细胞。
再分化:由脱分化产生的愈伤组织重新 分化形成根或芽等器官的过程,叫做再分化。
课题1

菊花的组织培养






菊花是菊科菊属的多年生宿根草本 植物,是我国的传统名花和世界四大切花之 一。 长期以来菊花采用分株、扦插等无性 繁殖方法进行繁殖。但是传统的繁殖方法 易受环境影响 , 繁殖周期长 , 随着市场需求 的急剧增加,已经不能满足市场日益发展的 需要。
植物组织培养属于无性生殖中营养生 殖 营养生殖包括:
3.材料的切取和接种: 将消过毒的菊花茎段在无菌培养皿 中切成0.5~1cm的小段,用镊子夹取 菊花茎段接种。
(四)培养:


接种后的锥形瓶最好放在无菌箱中培养,培养 期间应定期消毒。培养温度控制在18~22℃。 每日用日光灯光照12h。
(五)移栽: 1.打开封口膜: 移栽生根的菊花试管苗之前,应先打 开培养瓶的封口膜,让试管苗在培养间生 长几日。一般放置在20~25℃的遮荫环境 中,适应5~7d。试管苗不萎蔫,有新生 长的趋势,便可移栽。
植物组织培养过程:
植物组织培养
离 体 细胞分裂 的 植 素>生长素 脱分化 愈 再分化 芽 物 器 (细胞分裂) 伤 (细胞分化) 官 组 根 组 织 细胞分裂 织 素<生长素 或 细 胞
植 物 体
不需要光
需要光
脱分化:由高度分化的植物器官、组 织或细胞产生愈伤组织的过程,称为 植物细胞的脱(去)分化 。
作用:促进不定芽和幼株伸长。
激素的使用顺序、使用量及比例影响植物细胞的发育方向:
使







先使用生长素,后使用细胞分裂素 有利于细胞分裂,但不利分化 先使用细胞分裂素,后使用生长素 细胞既分裂也分化 同时使用 使 用 比 例 分化频率提高 实 验 结 果
细胞分裂素
细胞分裂素
> <
生长素
有利于芽的分化,抑制根的形成
生长素
有利于根的分化,抑制芽的形成
促进愈伤组织的形成
细胞分裂素 = 生长素
实验流程图:
菊花的组织培养程序: 制备MS固体培养基
外植体消毒
栽培
移栽
培养
接种
课外拓展

MS培养基是Murashige和Skoog于1962年为烟草 细胞培养设计的,其特点是无机盐和离子浓度较 高,是较稳定的离子平衡溶液,它的硝酸盐含量 高,其养分的数量和比例合适,能满足植物细胞 的营养和生理需要,因而适用范围比较广,多数 植物组织培养快速繁殖用它作为培养基的基本培 养基。 基于此,这种培养基就用他们的名字来命 名了。
(二)影响植物组织培养的因素: 1.植物材料的影响:
(1)不同的植物,培养的难易程度差别很大:
①烟草和胡萝卜的组织培养较为容易; ②枸杞愈伤组织的芽诱导比较难; (2)同一种植物材料的年龄、保存时间的长 短等也会影响实验结果。
菊花的组织培养一般选择未开 花植株的茎上部新萌生的侧枝。
2.无机营养的影响:
3 严格无菌操作 ,无菌技术是植物组织培养获得成功关键。 1)无菌技术包括对培养基、器械、和植物材料的灭菌消 毒。对培养材料进行表面消毒时,一方面要考虑到要药剂消 毒效果,另方面要考虑到植物材料的耐受性。 2)妥善处理被污染培养物。 3)有毒物质要妥善处理,以免造成环境污染。 外植体可以用酒精消毒;操作前手需用酒精消毒;培养基 需 用 高 压 蒸 汽 灭 菌 。
再分化就是细胞分化过程。
细胞分化

细胞分化:在植物的个体发育过程中,细胞在形态、结构和生
理功能上发生稳定性差异的过程,叫做细胞分化。
细胞分化的特点:
①持久性 : 细胞分化贯穿于生物体整个生命进程中 , 在胚胎期达到最大限度 ②稳定性和不可逆性 : 一般来说 , 分化了的细胞将一 直保持分化后的状态,直到死亡 ③普遍性:生物界普遍存在,是生物个体发育的基础
(外植体:用于离体培养的植物器官或组织片段。) (二)外植体消毒:
1.选材:菊花茎段,取生长旺盛的嫩枝。 2.消毒: ① 流水冲洗: 菊花茎段用流水冲洗后可少许洗衣粉,用软 刷轻轻刷洗,刷洗后在流水下冲洗20min左右。 ② 酒精处理: 用无菌吸水纸吸干外植体表面的水分,放入 体积分数为70%的酒精中摇动2~3次,持续6~ 7s,立即将外植体取出,在无菌水中清洗。 ③ 消毒液处理:
(六)栽培: 将幼苗移栽后,每天观察记录幼苗生 长情况,适时浇水、施肥,直至开花。
植物组织培养的注意事项:
1 、培养基的配置。要根据不同的材料, 不同的物种,选择合适的培养基,最好有 一组实验取得。做培养基的过程中注意调 剂培养基的 PH 值,有些高温分解的激素 要过滤灭菌等。


2 、培养材料的选择,需要选择生长较好 材料
实验操作
(一)制备MS固体培养基: MS培养基包括20多种营养成分,实验室 一般使用4℃保存配制好的培养基母液来制备。 1.配制各种母液: ①无机物中大量元素浓缩10倍,微量元素浓缩 100倍,常温保存。
②激素类、维生素类以及用量较小的有机物一 般可按1mg/mL的质量浓度单独配制成母液。 ③用母液配制培养基时,需要根据各种母液的 浓缩倍数,计算用量。
取出后用无菌吸水纸吸干外植体表面的水分, 放入质量分数为0.1%的氯化汞溶液中1~2min, 取出后,在无菌水中至少清洗3次,漂净消毒液。
(三)接种: 1.接种室消毒:
接种前用体积分数为70%的酒精将工作台擦拭
一遍,然后点燃酒精灯。因为污染的主要来源是空
气中的细菌和孢子。
2.无菌操作要求:
所有的接种操作都必须在酒精灯火焰旁完成, 每次使用器械后,都需要用火焰灼烧灭菌。
2.清洗转移:
用流水清洗根部的培养基,将幼苗移植 到消过毒的蛭石或珍珠岩等环境下生活一段 时间。
3.移栽: 待幼苗长壮后再移栽到土壤中。
珍珠岩: 珍珠岩是一种火山喷发的 酸性熔岩,经急剧冷却而成的 玻璃质岩石,有弧形或圆形裂 隙,如珍珠的结构,所以被命 名为珍珠岩 。 蛭石: 是一种天然、无毒 的矿物质,在高温作用下 会膨胀的矿物。它是一种 比较少见的矿物,属于硅 酸盐。
扦插
嫁 接
压条
植物组织培养:
当植物细胞脱离了原来所在植物体的 器官或组织而处于离体状态时,在一定的 营养物质、激素(细胞分裂素、生长素)和其他外 界条件(温度、pH、光照、无菌等)的作用下,就 可能表现出全能性,发育成完整的植株, 这种培育新植株的 细胞分化的实质:
在个体发育过程中,不同细胞中遗传信息 的执行情况不同,即基因的选择性表达
细胞分化的结果:
在空间上细胞之间出现差异, 在时间上同一细胞和它以前的状 态有所不同。
最终形成新的个体
细胞分化的意义:
生物个体发育的基础;细胞分化使 多细胞生物体中的细胞趋向专门 化,有利于提高各种生理功能的 效率。
2.配制培养基:
① 配制培养液:配制1LMS培养基时,先将称好的琼 脂加入800mL蒸馏水,加热使琼脂熔化,然后加入 蔗糖30g,取配制好的大量元素、微量元素、有机 物和植物激素的母液,依次加入,加蒸馏水定容 至1000mL。
② 调pH:5.8左右 ③培养基的分装: 分装到锥形瓶中,每瓶分装50mL或100mL。 由于菊花的茎段的组织培养比较容易,因 此不必添加植物激素。 3.灭菌:将分装好的培养基连同其他 器械一起进行高压蒸汽灭菌。
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