常见实验动物的捉持和给药方法

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常用动物实验操作指南

常用动物实验操作指南

常用动物实验操作指南一、实验动物的抓取与固定。

(一)小鼠。

1. 抓取。

- 用右手拇指和食指抓住小鼠尾巴中部,将小鼠提起,放在鼠笼盖上或其他粗糙表面。

- 当小鼠试图抓住粗糙表面时,迅速用左手拇指和食指捏住小鼠双耳及颈部皮肤,无名指、小指和手掌心夹住小鼠背部皮肤及尾部,将小鼠固定成头部向上的直立位。

- 原因:抓住尾巴提起小鼠是为了能够将其从饲养环境中移出,而后续的固定方式可以限制小鼠的活动,避免被咬伤,同时方便进行各种操作,如注射等。

这种固定方式能够稳定地控制小鼠的身体,保证操作的准确性。

2. 固定。

- 如需进行尾静脉注射等操作,可将小鼠放入专门的小鼠固定器中,固定器可调节大小以适应不同体型的小鼠,固定器上有开口以便露出尾巴等部位进行操作。

- 对于一些简单操作如灌胃,也可以由一人用上述抓取方法固定小鼠,另一人进行操作。

(二)大鼠。

1. 抓取。

- 先用右手抓住大鼠尾巴中部,将大鼠提起,放在较粗糙的平面上。

- 然后用左手戴防护手套(大鼠体型较大且可能会用力挣扎和咬伤实验者),从大鼠背部抓住其肩部和颈部皮肤,将大鼠固定。

- 原因:大鼠力量较大,戴手套是为了保护实验者。

先抓尾巴提起是为了便于后续的抓取固定操作,从背部抓住肩部和颈部皮肤可以有效限制大鼠的活动,使其头部和身体得到控制,便于进行实验操作。

2. 固定。

- 对于需要长时间操作的情况,可将大鼠放入大鼠固定架中,固定架可以固定大鼠的四肢,使大鼠呈仰卧或俯卧位,根据实验需求调整。

- 在进行一些短期操作如皮下注射时,可由实验者用上述抓取方法固定大鼠,助手协助进行操作。

二、实验动物的给药操作。

(一)口服给药。

1. 小鼠灌胃。

- 准备合适的灌胃针(一般为1 - 2ml注射器连接特制的灌胃针头)。

- 将小鼠固定如前所述,使小鼠头部向上。

- 灌胃针从小鼠嘴角插入口腔,沿上腭后壁轻轻推进食管,插入深度约为3 - 4cm(根据小鼠大小调整)。

- 缓慢推动注射器活塞,将药物注入食管,然后缓慢拔出灌胃针。

药理学动物实验基本方法

药理学动物实验基本方法

右手拿注射器, 针尖的斜面朝 上,将针 头从远心端插 入血管
回抽有血即可
注射,拔针后 用棉球止血
豚鼠可用足 背静脉注射
实验动物的 给药.MPG
二、实验动物的采血
1 尾尖采血
眼眶静脉丛采血
2
断头采血 腹主动腹脉主动采脉血采血 心脏采血 静脉采血
3 4 5 6
1
尾尖采血
方法:固定动物并露出鼠尾,将尾部在45℃的温水中 浸泡数分钟(或以二甲苯棉球涂擦),使尾部血管扩 张。将鼠尾擦干,用锐器切去尾尖0.3~0.5cm,让血 液滴入盛器或直接以血红蛋白吸管吸取。 对象:大、小鼠 特点:小量采血,可以多次采血。
药理学动物实验基本方法
药学院药理学科组
Contents
1 实验动物的捉持与给药 2 实验动物的采血 3 实验动物的编号和分组 4 实验动物的麻醉
一、捉持与给 药
小鼠 大鼠 豚鼠 家兔 犬
•小鼠的捉持
1、用右手拇指 和食指捏住小鼠 尾巴中部将小鼠 提起,放在饲养 合的面罩上。
用左手拇指和 食指迅速、准 确地捏住小鼠 的两耳后及颈 背部的皮肤, 将小鼠提起。
笼或大小鼠固定 器的孔拉出鼠尾 巴
用左手捏住鼠 尾巴中下部, 用75%
酒精棉球反 复擦拭尾部
大鼠亦可用 舌下静脉注

注射时,以左 手拇指和中指 捏住鼠尾两侧, 用食指从下面 托起尾,
右手持4号针 头的注射器, 使针头与
静脉平行 (小于30度角)
•静脉注射给药——犬
前肢皮下头静脉 或后肢小隐静脉 注射 。
用右手食指将 针栓慢慢往下 压,将注射器 中的药液灌入 动物的胃中。
•灌胃给药——兔
将兔放进固 定架
内,灌胃者用左 手拇指和中指挤 压兔两颊,将下 颌挤开使兔被动 张口。

动物实验操作基本方法

动物实验操作基本方法
4.分别在C2~C11、C12~C21 和C22~C31 单元格中,依次键入“1”、“2”、“3”;用鼠标同时 选中A、B、C 列,单击菜单栏“数据”→“排序”命令,在弹出的“排序”对话框中,选择以“编号” 为排序的“主要关键字”,这样就可以得到各个实验对象的分组编号。(见表1)
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随机区组分组
实验动物的捉 拿.MPG
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•灌胃给药——大小鼠
剂量:小鼠约0.1-0.5ml/10g体重。最大体积为1.0ml/只 大鼠约1-2 ml/100g体重,最大体积为1.0ml/只
1、将灌胃针连 接在注射器上, 吸入一定量的 药液。
左手捉持动物, 使头部向上。
右手持针,把 灌胃针头的前 端放进动物的 口腔,顺着上 腭部插入咽部, 顺咽后壁轻轻 往下推。
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(二)分组的方法
完全随机分组 完全随机分组时将试验对象完全按随机原则分组。它的设计、
分组、和统计处理都比较简单,但试验效率较低。 例:将30只SD 大鼠随机分配到甲、乙、丙3组。 使用excel对试验对象完全随机分组的操作步骤如下:
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1.在单元格A1、B1、C1中分别键入编号、随机号、分组号, 随后在A2、A3中分别键入1、2,然后拖动鼠标利用excel 的自动填充功能完成1~30的编号。
•兔的捉持
用右手抓住兔 颈部的被毛和 皮肤,轻轻把 兔提起。
用左手托住兔 的臀部
家兔的固定方 式有腹卧式和 仰卧式两种
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•犬的捉持
实验者先抚摩, 逐步接近,勿 使其惊恐或将 其激怒。
用粗棉绳兜住 狗的下颌,并 在上颌打结 (勿太紧)。

动物实验的基本操作

动物实验的基本操作

动物实验的基本操作(动物的捉拿与给药方法)小鼠捉拿法有二种:一种是用右手提起尾部,放在鼠笼盖或其他粗糙面上,向后上方轻拉,此时小鼠前肢紧紧抓住粗糙面,迅速用左手拇指和食指捏住小鼠颈背部皮肤并用小指和手掌尺侧夹持其尾根部固定手中;另一种抓法是只用左手,先用拇指和食指抓住小鼠尾部,再用手掌尺侧及小指夹住尾根,然后用拇指及食指捏住其颈部皮肤。

大鼠捉拿时,右手抓住鼠尾基部,将大鼠放在粗糙面上,左手戴上防护手套或用厚布盖住大鼠,抓住其整个身体并固定其头部以防咬伤。

捉拿时勿用力过猛,勿捏其颈部,以免引起窒息。

家兔捉拿时一手抓住其颈背部皮肤。

轻轻将兔提起,另一手托住其臀部。

猫捉拿时先轻声呼唤,再慢慢将手伸入猫笼中,轻抚猫的头、颈及背部,抓住其颈背部皮肤并以另一手抓其背部。

如遇凶暴的猫,不让接触或捉拿时,可用套网捉拿,必要时可用固定袋将猫固定。

实验动物的给药方法1.灌胃法小鼠灌胃法将小鼠放在粗糙面上,左手拇指和食指捏住小鼠颈背部皮肤,无名指或小指将尾部紧压在手掌上,使小鼠腹部朝上,注意使口腔和食管成一直线。

右手持灌胃针管从小鼠口角插入口腔内,经舌面紧贴上腭进入食管,进针2~3cm 后,如此时动物安静并无呼吸异常,即可将药注入。

如遇阻力或动物憋气时则应抽出重插,不能强插以免刺破食管或误入气管使动物死亡。

兔灌胃法用兔固定箱,可一人操作。

右手将开口器固定于兔口中,舌压在开口器下面,左手将导管经开口器中央小孔插入。

如无兔固定箱,则需两人协作进行,一人就坐,腿上垫好围裙,将兔的躯体夹于两腿间,左手紧握双耳,固定其前身,右手抓住其两前肢。

另一人将开口器横放于兔上下颌之间,固定在舌面上,将导管自开口器中央的小孔插入,慢慢沿兔口腔上腭壁插入食道约15~18cm。

插管完毕将胃管的外口端放入水杯中,切忌伸入水过深。

如有气泡从胃管逸出,说明不在食道内而是在气管内,应拔出来重插。

如无气泡逸出,则可将药推入,并以少量清水冲洗导尿管保证管内药液全部进入胃内。

实验1实验动物的捉持法和给药法

实验1实验动物的捉持法和给药法

实验1 实验动物的捉持法和给药法一、常用实验动物的捉持法1.蛙和蟾蜍通常以左手握持,用食指和中指夹住左前肢,拇指压住右前肢,右手将下肢拉直,左手用无名指及小指夹住(图1)。

图1 蟾蜍捉持法2.小鼠(1)双手法:右手提鼠尾,放在鼠笼盖或其他粗糙面上,向后方轻拉鼠尾,使小鼠前肢固定在粗糙面上。

迅速用左手拇指和食指捏其双耳间颈背部皮肤,无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部,便可将小鼠牢固捉持(图2)。

图2 小鼠双手捉持法(2)单手法:小鼠置于笼盖上,先用左手食指和拇指抓住鼠尾,后手掌尺侧和小指夹住鼠尾,然后左手拇指与食指捏住颈部皮肤(图3)。

图3 小鼠单手捉持法3. 大鼠大鼠容易激怒咬人,捉持时应戴防护手套。

先用右手抓住鼠尾,再用左手拇指和食指握住头部,其余手指与掌部握住背部和腹部。

注意不要捏其颈部,以防用力过大、过久,窒息死亡。

4.家兔一只手抓住兔颈背部皮肤,将兔轻轻提起,另一只手托住臀部,使兔呈蹲坐姿势(图4)。

切不可用手握持双耳提起兔子。

图4 家兔捉持法5.豚鼠豚鼠性情温和,不咬人,用手轻轻握住身体即可抓起。

6. 猫应戴好防护手套。

轻声呼唤,慢慢将手伸入猫笼,轻抚猫头、颈和背部,一只手抓住颈背部皮肤,另一只手抓住腰背部。

性情凶暴的猫可用布袋或网套捉持,操作中应防其利爪和牙齿伤人。

7. 狗驯服的狗可戴上特制嘴套,用绳带固定于耳后颈部;凶暴的狗可用长柄捕狗夹钳住狗的颈部,然后套上嘴套。

狗嘴也可用绳带固定,操作时先将绳带绕过狗嘴的下颌打结,再绕到颈后部打结,以防绳带滑落。

狗麻醉后四肢固定于手术台上,取下嘴套或绳带,将一金属棒经两侧嘴角,穿过口腔压于舌上,再用绳带绕过金属棒绑缚狗嘴,并固定于手术台上。

应将狗舌拉出口腔,以防窒息。

二、常用实验动物给药法1. 经口给药法此法有口服与灌胃两种方法。

适用于小鼠、大鼠、豚鼠、兔、犬等动物。

口服法可将药物放入饲料或溶于饮水中令动物自由摄取。

若为保证剂量准确,可应用灌胃法。

实验动物的捉拿和给药方法

实验动物的捉拿和给药方法

实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。

【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1.捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起.置于鼠笼上面或其他粗糙面上,向后拉轻鼠尾,迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤,翻转鼠体,使腹部朝上,然后以无名指及小指压往鼠尾,使小鼠完全固定(实验图1).实验图1 小白鼠的捉拿法2.给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后,使口部向上,将颈部拉直,右手持灌胃器自口角插入口腔,沿上颚轻轻进入食管,如动物安静,呼吸元异常、口唇无紫绀现象,即可注入药液(实验图2).灌胃器0.1一O.25ml/10g。

实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后,右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。

针头刺入不宜太深或太近上腹部,以免刺伤内脏,注射量一般为0.1~O.2 ml/10g 。

(3)皮下注射捉鼠方法同前,右手持注射器,将计头刺人背部皮下注人药液。

注射量一般不超过0.25 ml/10g。

(4)肌内注射由两人合作,一人固定小白鼠后,另一入持注射器,将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液,注射量为每腿不超过0.lml。

(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1.捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢,无名指和小指夹住蛙的两下肢,将蛙固定于手中。

2.给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。

多采用腹囊给药。

由于蛙的皮肤弹性差,被针头刺破后,针眼不易闭合会便药波外溢,故注射针头必须通过一层隔膜,再进人皮下淋巴囊。

如腹囊绐药时,针头应自大腿上端刺人,经过大腿肌层入腹壁肌层.再浅出进人腹壁皮下入腹囊。

注射量每只可达0.25—1.Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1.捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起,以右手托住其臀部,使兔呈坐位姿势。

2.给药方法(1)灌胃两人合作,由一人固定兔身,另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开,并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。

实验动物的捉拿和给药方法

实验动物的捉拿和给药方法

实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。

【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1.捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起.置于鼠笼上面或其他粗糙面上,向后拉轻鼠尾,迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤,翻转鼠体,使腹部朝上,然后以无名指及小指压往鼠尾,使小鼠完全固定(实验图1).实验图1 小白鼠的捉拿法2.给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后,使口部向上,将颈部拉直,右手持灌胃器自口角插入口腔,沿上颚轻轻进入食管,如动物安静,呼吸元异常、口唇无紫绀现象,即可注入药液(实验图2).灌胃器0.1一O.25ml/10g。

实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后,右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。

针头刺入不宜太深或太近上腹部,以免刺伤内脏,注射量一般为0.1~O.2 ml/10g 。

(3)皮下注射捉鼠方法同前,右手持注射器,将计头刺人背部皮下注人药液。

注射量一般不超过0.25 ml/10g。

(4)肌内注射由两人合作,一人固定小白鼠后,另一入持注射器,将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液,注射量为每腿不超过0.lml。

(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1.捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢,无名指和小指夹住蛙的两下肢,将蛙固定于手中。

2.给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。

多采用腹囊给药。

由于蛙的皮肤弹性差,被针头刺破后,针眼不易闭合会便药波外溢,故注射针头必须通过一层隔膜,再进人皮下淋巴囊。

如腹囊绐药时,针头应自大腿上端刺人,经过大腿肌层入腹壁肌层.再浅出进人腹壁皮下入腹囊。

注射量每只可达0.25—1.Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1.捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起,以右手托住其臀部,使兔呈坐位姿势。

2.给药方法(1)灌胃两人合作,由一人固定兔身,另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开,并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。

常见实验动物的捉持和给药方法

常见实验动物的捉持和给药方法

常见实验动物的捉持和给药⽅法常见实验动物的捉持和给药⽅法⼀、⼩⽩⿏的捉持和给药⽅法1、捉持⽅法右⼿提起⿏尾,放在粗糙物(如⿏笼)上⾯,轻向后拉其尾;此时⼩⿏前肢抓住粗糙⾯不动;⽤左⼿拇指和⾷指捏住双⽿及头部⽪肤,⽆名指、⼩指和掌⼼夹其背部⽪肤及尾部,便可将⼩⿏完全固定。

腾出右⼿,可以给药。

此外,也可单⼿捉持,难度较⼤,但速度快。

先⽤拇指和⾷指抓住⼩⿏尾巴,⽤⼩指、⽆名指和⼿掌压住尾根部,再⽤腾出的拇指、⾷指及中指抓住⿏双⽿及头部⽪肤⽽固定。

2、给药⽅法a.灌胃法⼩⿏固定后,使腹部朝上,颈部拉直,右⼿⽤带灌胃针头的注射器吸取药液(或事先将药液吸好),将针头从⼝交插⼊⼝腔,再从⾆背进沿上腭进⼊⾷道。

若遇阻⼒,应退出后再插,切不可⽤⼒过猛,防⽌损伤或误⼊⽓管导致动物死亡。

灌胃量⼀般不超过0.25ml/10g。

b.腹腔注射法抓⿏⽅法同上,右⼿持注射器(5~6号针头),从耻⾻联合上⼀侧向头端以30度⾓刺⼊腹腔(应避开膀胱)。

可先刺⼊⽪下2~3mm,再刺⼊腹腔,以防药液外漏。

针头刺⼊部位不宜太⾼太深,以免刺破内脏。

注射量⼀般为0.1~0.25ml/10g。

c.⽪下注射法⼀般两⼈合作。

⼀⼈左⼿抓住⼩⿏头部⽪肤,右⼿拉住⿏尾;另⼀⼈左⼿提⾼背部⽪肤,右⼿持住注射器(针头号同上),将针头刺⼊提起的⽪下。

若⼀⼈操作,左⼿⼩指和⼿掌夹住⿏尾,拇指和⾷指提起背部⽪肤,右⼿持注射器给药。

⼀般⽤量为0.05~0.25ml/10g。

d.肌⾁注射法两⼈合作时,⼀⼈抓⿏⽅法同上,另⼀⼈左⼿拉直⼀侧后肢,右⼿持注射器,注射部位多选后腿上部外侧(针头号同上)。

如⼀⼈操作,抓⿏⽅法类似腹腔注射,只是药液注射在肌⾁内。

每腿的注射量不宜超过0.1ml。

e.尾静脉注射法将⼩⿏置于待置的固定筒内,使⿏尾外露,并⽤酒精或⼆甲苯棉球涂擦,或插⼊40℃~50℃温⽔中浸泡⽚刻,使尾部⾎管扩张。

左⼿拉尾,选择扩张最明显的⾎管;右⼿持注射器(4~5号针头),将针头刺⼊⾎管,缓慢给药。

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常见实验动物的捉持和给药方法
一、小白鼠的捉持和给药方法
1、捉持方法
右手提起鼠尾,放在粗糙物(如鼠笼)上面,轻向后拉其尾;此时小鼠前肢抓住粗糙面不动;用左手拇指和食指捏住双耳及头部皮肤,无名指、小指和掌心夹其背部皮肤及尾部,便可将小鼠完全固定。

腾出右手,可以给药。

此外,也可单手捉持,难度较大,但速度快。

先用拇指和食指抓住小鼠尾巴,用小指、无名指和手掌压住尾根部,再用腾出的拇指、食指及中指抓住鼠双耳及头部皮肤而固定。

2、给药方法
a.灌胃法
小鼠固定后,使腹部朝上,颈部拉直,右手用带灌胃针头的注射器吸取药液(或事先将药液吸好),将针头从口交插入口腔,再从舌背进沿上腭进入食道。

若遇阻力,应退出后再插,切不可用力过猛,防止损伤或误入气管导致动物死亡。

灌胃量一般不超过0.25ml/10g。

b.腹腔注射法
抓鼠方法同上,右手持注射器(5~6号针头),从耻骨联合上一侧向头端以30度角刺入腹腔(应避开膀胱)。

可先刺入皮下2~3mm,再刺入腹腔,以防药液外漏。

针头刺入部位不宜太高太深,以免刺破内脏。

注射量一般为0.1~0.25ml/10g。

c.皮下注射法
一般两人合作。

一人左手抓住小鼠头部皮肤,右手拉住鼠尾;另一人左手提高背部皮肤,右手持住注射器(针头号同上),将针头刺入提起的皮下。

若一人操作,左手小指和手掌夹住鼠尾,拇指和食指提起背部皮肤,右手持注射器给药。

一般用量为0.05~0.25ml/10g。

d.肌肉注射法
两人合作时,一人抓鼠方法同上,另一人左手拉直一侧后肢,右手持注射器,注射部位多选后腿上部外
侧(针头号同上)。

如一人操作,抓鼠方法类似腹腔注射,只是药液注射在肌肉内。

每腿的注射量不宜超过0.1ml。

e.尾静脉注射法
将小鼠置于待置的固定筒内,使鼠尾外露,并用酒精或二甲苯棉球涂擦,或插入40℃~50℃温水中浸泡片刻,使尾部血管扩张。

左手拉尾,选择扩张最明显的血管;右手持注射器(4~5号针头),将针头刺入血管,缓慢给药。

如推注有阻力而且局部变白,说明针头不在血管内,应重新插入。

穿刺时宜从近为尖部1/3处静脉开始,以便重复向上移位注射。

一般用药量为0.1~0.2ml/10g,不宜超过0.5ml/10g。

二、家兔的捉持和给药方法
1、捉持方法
一般左手抓住兔颈背部皮肤,将其提起,右手托住臀部称坐位姿态。

不要抓两耳,以防兔挣扎。

2、给药方法
a.耳缘静脉注射法
一人操作时,将兔放入固定箱或试验台上,选好耳缘静脉(在耳背的下缘),拔除局部的毛,用酒精棉球涂擦,并用食指轻弹耳壳,使血管扩张。

用左手的食指和中指夹住耳根部,拇指和无名指夹住耳尖部拉直;右手将抽好药液的注射器(6~7号针头)刺入血管,用拇指和食指使针头和兔耳固定,将药液推入。

如针头在血管内,推注轻松,并可见血液被药液冲走;如不在血管内,则推注有阻力,耳局部变白或肿胀,应立即拔除重新注射。

注射完毕,则用手指或棉球压在针眼上,再拔出针头,并继续按压片刻,防止出血。

如两人操作,一人夹住兔子,右手暴露血管,压住耳根部使血管充盈,另一人注射给药。

两人合作,一人坐下,两腿夹住兔身,左手固定兔耳,右手抓住前肢;另一人将开口器从嘴角插入口腔,压在舌上,并向后翻转几下,使兔舍伸直。

取8号导尿管由开口器中部的小孔插入食道约15cm。

如插入气管,兔子则剧烈挣扎、呼吸困难。

也可将导尿管外端浸入水中,不见气泡则表示插在胃中。

插好后,把注射器接在导尿管上,将药液推入。

再注入少量空气,使导尿管中所有药液进入胃内。

灌完药液后,先慢慢抽出导尿管,再取出开口器。

一般用药量为5~20ml/┧。

c.腹腔、肌肉、皮下注射法
基本同小白鼠,唯针头可稍大(6~7号),给药量可稍多,一般腹腔为1.0~5.0ml/┧,肌肉、皮下为0.5~1.0ml/┧。

d.眼结合膜内给药法
将兔固定在兔箱内或夹在腋下,左手拇指和食指拉开兔下眼睑成杯状,中指压住眼内眦,以防药液由鼻泪管流入鼻腔内而被吸收。

滴入药液1~2滴,将下眼睑向上合拢,使眼球充分接触药液。

约1min后将手放开,让药液自然流出。

e.家兔眼睑滴加药液方法。

三、大白鼠的捉持和给药方法
1、捉持方法
大白鼠比小白鼠攻击性强,不要突然袭击去抓它,以免被咬伤。

捉持前先戴上手套,右手夹住尾巴,放在粗糙面上;左手拇指和食指捏住颈及前颈部,其余三指握住整个身体。

有力适当,过松容易挣脱而被咬伤,但用力过大会使其窒息死亡。

类似于小白鼠,只是工具和用药量大点,静脉给药除尾静脉注射外还可舌下静脉给药。

四、豚鼠的捉持和给药方法
1、捉持方法
豚鼠性情温和,可直接用左手抓住身体即可,或以左手抓住其头颈部,右手抓住两后肢。

2、给药方法
皮下、肌肉及腹腔注射方法与小白鼠类似,只是用药量稍大。

灌胃方法与兔类似。

静脉注射方法与兔相似,可选后脚掌外侧静脉、外颈部静脉、或作股静脉切开注射。

作后脚掌外侧静脉注射时,有一人捉豚鼠并固定一条后腿,另一人剪去注射部位的毛,用酒精棉球涂擦后脚掌外侧的皮肤,使血管显露。

再将连在注射器上的小儿头皮静脉输液针头刺入血管。

作外颈静脉注射时需先剪去一点皮肤,使血管暴露,然后将针头刺入。

豚鼠的静脉灌壁比较脆弱,操作时需特别小心。

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