植物样品处理方法
样品的预处理方法
样品的预处理方法1.样品粉碎：对于固体样品，如矿石、植物组织等，通常需要将其粉碎成适当的粒度。
粉碎过程可以使用机械研磨仪、球磨机等设备完成。
2.样品溶解：对于固体样品中需要分析的化学物质，通常需要将其溶解到适当的溶剂中。
溶解可以通过加热、超声波处理或者搅拌等方法完成。
3.样品提取：对于复杂的样品矩阵中的目标分析物，需要进行提取操作，将目标分析物从样品中分离出来。
提取方法包括固相萃取、液液萃取、气相萃取等。
4.样品过滤：对于含有悬浮物、杂质或固体颗粒的液体样品，通常需要进行过滤操作以去除杂质。
常用的过滤方法包括滤纸过滤、膜过滤、离心沉淀等。
5.样品浓缩：对于分析物含量较低的样品，需要进行浓缩操作以增加其浓度。
常用的浓缩方法包括蒸发浓缩、萃取浓缩、固相萃取浓缩等。
6.样品洗涤：对于一些有机化合物或被污染的样品，需要进行洗涤操作以去除杂质。
洗涤方法可以使用溶剂洗涤、溶液洗涤或者水洗等。
7.样品净化：对于一些复杂样品中存在的干扰物，需要进行净化操作以去除干扰。
常用的净化方法包括固相萃取、离子交换、色谱净化等。
8.样品稀释：对于浓度过高的样品，需要进行稀释操作以得到适合分析的浓度范围。
稀释方法可以使用稀释液稀释、溶剂稀释等。
9.样品pH调节：对于需要在特定pH条件下进行分析的样品，需要进行pH调节操作。
pH调节可以使用酸碱溶液、缓冲溶液等。
10.样品保存：对于需要长时间保存的样品，需要进行适当的保存操作以保持其原样。
保存方法可以是冷藏、冷冻、干燥等。
以上是一些常见的样品预处理方法，具体的选择应根据实际情况进行。
同时，不同的分析方法所要求的样品预处理方法也有所差异。
因此，在进行样品预处理时，应根据具体分析要求并结合样品的性质选择合适的方法。
植物消解赶酸技巧
植物消解赶酸技巧摘要：一、引言二、植物消解技巧1.选择适当的植物材料2.植物样品处理3.消解方法4.赶酸操作三、注意事项1.实验安全2.仪器设备维护3.环境污染控制四、结论与展望正文：一、引言植物消解赶酸技巧是实验室分析工作中不可或缺的一环，尤其在环境监测、农业科学、食品检测等领域。
通过对植物样品的消解和赶酸，可以有效提取植物中的元素成分，为后续的分析和测定提供基础。
本文将详细介绍植物消解赶酸技巧，以提高实验室工作效率和准确性。
二、植物消解技巧1.选择适当的植物材料在进行植物消解前，首先要选择合适的植物材料。
通常选择生长旺盛、未施用化肥和农药的植物样品。
采样时要确保样品具有代表性，避免受到外部污染。
2.植物样品处理将采集的植物样品洗净，去除泥土、杂草和残留物。
然后将植物样品晾干，剪碎并研磨，以便于后续的消解。
3.消解方法植物样品的消解方法主要有湿式消解法和干式消解法。
湿式消解法采用硝酸、氢氟酸等酸性溶液，对植物样品进行加热消化；干式消解法采用氧气或氯气等氧化剂，对植物样品进行燃烧消化。
根据实验需求和设备条件选择合适的消解方法。
4.赶酸操作赶酸操作主要是将消解液中的酸度降低，以便于后续的测定。
常用的赶酸方法有中和法、蒸馏法和离子交换法。
中和法是用碱性溶液与酸性消解液中和至中性；蒸馏法是通过加热蒸馏，将酸性气体蒸发掉；离子交换法是用离子交换剂交换酸性溶液中的氢离子。
三、注意事项1.实验安全在进行植物消解赶酸过程中，要严格遵守实验室安全规程，佩戴防护用品，避免酸碱等化学品触及皮肤和眼睛。
2.仪器设备维护定期检查和保养消解、赶酸仪器，确保设备运行正常。
同时，要定期校准仪器，保证测量结果的准确性。
3.环境污染控制在进行植物消解赶酸过程中，要严格控制废气、废水等污染物的排放，防止对环境和实验室造成污染。
四、结论与展望植物消解赶酸技巧在实验室分析工作中具有重要意义。
通过选择合适的植物材料、处理样品、选择合适的消解和赶酸方法，可以有效提取植物中的元素成分。
植物样品消化实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解植物样品消化的原理和方法。
2. 掌握植物样品在消化过程中的变化。
3. 熟悉实验操作步骤，提高实验技能。
二、实验原理植物样品消化实验是通过将植物样品与消化酶混合，使样品中的纤维素、半纤维素等大分子物质分解为小分子物质，便于后续分析。
实验中常用的消化酶有纤维素酶、半纤维素酶、果胶酶等。
三、实验材料与仪器1. 材料：- 新鲜植物样品（如玉米秸秆、稻草等）- 消化酶（纤维素酶、半纤维素酶、果胶酶）- 磷酸氢二钠、磷酸二氢钠（缓冲液）- 蒸馏水- 试管、烧杯、移液器、玻璃棒、显微镜等2. 仪器：- 高速组织捣碎机- 恒温水浴锅- 显微镜四、实验步骤1. 样品制备：- 将新鲜植物样品洗净、晾干，剪成约1cm长的段。
- 用高速组织捣碎机将样品捣碎，制成匀浆。
2. 消化：- 取适量匀浆放入试管中，加入一定量的消化酶，使其浓度适宜。
- 加入适量的缓冲液，调节pH值至最适范围。
- 将试管放入恒温水浴锅中，在一定温度下消化一定时间。
3. 停止消化：- 取出试管，用玻璃棒搅拌，使消化酶充分混合。
- 加入适量的蒸馏水，终止消化反应。
4. 分析：- 将消化后的样品用显微镜观察，观察样品的消化程度。
- 记录观察结果，分析消化效果。
五、实验结果与分析1. 观察结果：- 消化后的样品在显微镜下可见，纤维素、半纤维素等大分子物质被分解为小分子物质，如葡萄糖、木糖等。
- 消化效果较好的样品，其大分子物质含量明显降低，小分子物质含量增加。
2. 分析：- 消化酶的种类、浓度、消化时间等因素对消化效果有显著影响。
- 通过调整实验条件，可以提高植物样品的消化效果。
六、实验讨论1. 消化酶的种类、浓度、消化时间等因素对消化效果的影响。
2. 植物样品消化过程中的化学反应。
3. 植物样品消化在农业、环保等领域的应用。
七、实验结论通过本次实验，我们了解了植物样品消化的原理和方法，掌握了植物样品在消化过程中的变化。
实验结果表明，消化酶的种类、浓度、消化时间等因素对消化效果有显著影响。
植物样品的采集制备和保存
1、植物组织样品的采集植物组织样品多用于诊断分析，采集植物组织样品首先要选定植株。
样株必须有充分的代表性，通常也象采集土样一样按照一定路线多点采集，组成平均样品。
组成每一平均样品的样株数目视作物种类、种植密度、株型大小、株龄或生育期以及要求的准确度而定。
从大田或试验区选择样株要注意群体密度，植株长相、植株长势、生育期的一致，过大或过小，遭受病虫害或机械损伤以及由于边际效应长势过强的植株都不应采用。
如果为了某一特定目的，例如缺素诊断而采样时，则应注意植株的典型性，并要同时在附近地块另行选取有对比意义的正常典型植株，使分析的结果能在相互比较的情况下，说明问题。
植株选定后还要决定取样的部位和组织器官，重要的原则是所选部位的组织器官要具有最大的指示意义，也就是说，植株在该生育期对该养分的丰欠最敏感的组织器官。
大田作物在生殖生长开始时期常采取主茎或主枝顶部新成熟的健壮叶或功能叶；幼嫩组织的养分组成变化很快，一般不宜采样。
苗期诊断则多采集整个地上部分。
大田作物开始结实后，营养体中的养分转化很快，不宜再做叶分析，故一般谷类作物在授粉后即不再采诊断用的样品。
如果为了研究施肥等措施对产品品质的影响，则当然要在成熟期采取茎秆、籽粒、果实、块茎、块根等样品，果树和林木多年生植物的营养诊断通常采用“叶分析”或不带叶柄的“叶片分析”，个别果树如葡萄、棉花则常做“叶柄分析”。
植物体内各种物质，特别是活动性成分如硝态氮、氨基态氮，还原糖等都处于不断的代谢变化之中，不仅在不同生育期的含量有很大的差别，并且在一日之间也有显著的周期性变化。
因此在分期采样时，取样时间应规定一致，通常以上午8—10时为宜，因为这时植物的生理活动已趋活跃，地下部分的根系吸收速率与地上部正趋于上升的光合作用强度接近动态平衡。
此时植物组织中的养料贮量最能反映根系养料吸收与植物同化需要的相对关系，因此最具有营养诊断的意义。
诊断作物氮、磷、钾、钙、镁的营养成分状况的采样还应考虑各元素在植物营养中的特殊性。
植物代谢样品制备与分析技术的研究及其应用
植物代谢样品制备与分析技术的研究及其应用植物代谢是指植物体内各种代谢产物的合成、分解及其代谢过程。
研究植物代谢样品制备与分析技术，有助于我们更深入地探求植物内部代谢产物及其作用，进而更好地探究和利用植物资源。
一、植物代谢样品制备技术1. 植物样品的采集对于植物样品的采集，需要注意以下几点：（1）采集样品应避免使用化学残留，如杀虫剂、化肥等。
（2）样品应在开花前采集。
（3）在采集过程中，应尽量避免植物组织受到损伤，避免对样品造成影响。
2. 植物样品处理对于采集到的植物样品，应按照以下步骤进行处理：（1）表面清洗：对于有土壤、泥沙等附着物的植物样品，应先进行表面清洗，以保证后续实验的准确性。
（2）分离：将植物样品分成运用化学物质分解的鲜样品和直接进行测定的干样品。
（3）破碎：使用高速制备机、超声波等设备将样品细胞破碎，以便于样品的抽提和分析。
（4）抽提：将破碎后的植物样品分别用不同的溶剂抽提。
3. 植物代谢样品清洁在样品制备过程中，必须对样品进行清洗以确保结果的准确性。
植物代谢样品的清洁方法主要有三种：（1）气相色谱法：将样品分解成有机物和水，再经高真空蒸馏净化即可。
（2）液相色谱法：将样品中的杂质去除后，通过隔离和富集的方法来清洁样品。
（3）高效液相色谱法：通过选择性吸附某些化合物，去除样品中的杂质物。
二、植物代谢样品分析技术1. 气相色谱-质谱联用技术气相色谱-质谱联用技术（GC-MS）是一种常用的分析技术，可用于分析许多代谢产物，如脂类、糖类、有机酸等。
该技术通过对样品的分子质量、碎片谱的分析等方式来确定分子结构和组分。
2. 液相色谱-质谱联用技术液相色谱-质谱联用技术（LC-MS）也是一种常用的分析技术，主要用于分析小分子代谢产物。
与GC-MS相比，LC-MS对于高极性的化合物有更好的反应选择性，同时也更适用于大分子代谢产物（如蛋白质）的分析。
3. 核磁共振技术核磁共振技术（NMR）是另一种常用的分析技术，它可以直接观察样品的分子结构和组分。
样品预处理的常用方法
样品预处理的常用方法样品预处理是指在实验分析前对样品进行一系列处理操作的过程，目的是为了准确、可靠地得到分析所需的指标。
样品预处理的常用方法有以下几种：1. 样品采集与保存：在采集样品时，要注意选择代表性样品，并避免与外界环境的污染，以免干扰结果。
为了保持样品的原始性和完整性，可以采用冷藏、冷冻、真空封存等方法进行保存。
2. 样品粉碎与研磨：对于固体样品，如植物、土壤等，通常需要将其进行粉碎与研磨处理，以增加其表面积，方便后续的提取操作。
可以采用机械方法（如研磨仪、切割机等）或化学方法进行样品粉碎和研磨。
3. 样品振荡与混合：对于液体样品，如水、血清等，常常需要进行振荡和混合以保证样品的均匀性。
可以使用振荡器、旋转摇床等设备进行样品的振荡与混合。
4. 样品溶解与提取：对于固体样品，通常需要进行溶解和提取操作，以将所需的成分转移到溶液中进行分析。
常用的提取方法包括浸提、超声波提取、微波提取、溶剂萃取等。
5. 样品过滤与离心：在进行分析前，还需要对样品进行过滤和离心操作，以去除悬浮物和杂质，得到清洁的溶液或悬浮液。
过滤可以使用滤纸、膜过滤器等，离心则可以使用离心机进行。
6. 样品净化与富集：某些样品中可能存在着干扰物质，为了降低干扰，可以采用净化和富集方法。
净化常常使用固相萃取、液-液萃取等技术；富集则可以采用蒸发、浓缩等方法。
7. 样品补偿与修正：对于某些特殊的样品，有时需要进行补偿和修正操作，以排除干扰和提高检测的准确性。
常见的方法包括稀释、配伍掩蔽剂、内标法等。
8. 样品热处理与冷却：在某些分析中，需要对样品进行热处理或冷却操作。
热处理可以加速反应速率，加快分析过程；冷却则可以降低反应速率，避免反应的干扰。
总之，样品预处理是一项非常重要的分析前准备工作，它能够在一定程度上消除干扰，提高分析的灵敏度和准确性。
在进行样品预处理时，应根据实际需要选择适当的处理方法，确保得到符合分析需求的样品。
植物样品前处理方法
植物样品前处理方法1、试剂和耗材所有试剂，除特别申明外，均为分析纯，水为去离子水。
甲醛：浓度不小于37.0%-40%（m/m）冰醋酸：浓度不小于99.5%（m/m）无水乙醇：浓度不小于99.5%（m/m）丙三醇：浓度不小于99%（m/m）叔丁醇：浓度不小于99%（m/m）量筒、西林瓶、塑料吸管、样品槽、导电胶、样品台图1植物样品前处理用器具，依次为：西林瓶、塑料吸管、样品槽、烧杯、量筒FAA固定液配制：甲醛(37%—40%)5ml；冰醋酸5ml；50%或70%酒精90ml；丙三醇5ml。
超声混匀。
注：（1）幼嫩的组织用50%乙醇配制的FAA固定液固定，防止乙醇浓度太高，组织一放进固定液就会脱水变形。
（2）丙三醇比较粘稠，不一定非要准确加入5ml，大概即可。
2、植物样品扫描电镜样品前处理步骤：取材→固定→脱水→干燥→粘托→镀膜→观测2.1取材确定观察目标，快速裁剪，数量不要太多，大小8×8×5mm最好，确保不超出样品台的大小。
如果样品比较脏，可在裁剪之前清洗，或将剪下的部分进行清洗。
一般可选择等渗生理盐水货缓冲液等对样品进行清洗。
裁剪之前的样品可用二次水冲洗。
2.2固定剪裁下的组织最快速度投入固定液中，过夜。
最好置于4℃冰箱中过夜固定，如果没有条件在室温下固定也可。
2.3脱水一般用乙醇梯度脱水。
FAA固定液用的多大浓度的乙醇就从多大浓度开始拖起。
如FAA固定液中用50%的乙醇配制，那么就从50%乙醇开始脱水。
50%乙醇（15min，1次）→60%乙醇（15min，1次）→70%乙醇（15min，1次）→75%乙醇（15min，1次）→85%乙醇（15min，1次）→95%乙醇（15min，1次）→100%乙醇（15min，2次）之后，将叶片放至样品槽，加入叔丁醇，放至4℃冰箱冷冻，30min观察叔丁醇是否结冰，若为液体需要更换样品槽内叔丁醇。
2.4冷冻干燥法干燥将样品槽放至冻干机，立式冻干机冷肼温度－84℃，冻干12小时后，样品取出，保存至密封的样品管中（2ml以上EP管亦可）。
植物样品消化
植物样品消化(一)(H2S04—H202法)一、方法原理先用浓H2S04消煮植物样品，然后加入H2q加速氧化过程，使有机态氮转化为NH4+—N，各种形态的磷、钾也释放出来，制得的待测液,可供N、P、K等元素的测定。
一、试剂：1．浓H2S042．H202(30％)三、主要仪器：电炉、开氏瓶四、操作步骤：1．用1／万天平称取植物干样0.3~0.4g，小心倒入开氏瓶底部，勿使沾在颈部。
2，加入浓H2S04 5ml轻摇开氏瓶，使植物样全部为H2S04浸润(可放置过夜)。
3，在电炉上加热，至冒白烟(通风橱中加热，约15~20分钟)。
4．取下开氏瓶置于开氏瓶架上，稍冷却，然后边摇边滴加H202 10滴。
5．置于电炉上加热，至冒白烟(2~5分钟)。
6．再取下开氏瓶，稍冷却，加H202 6~8滴，摇动，置电炉上加热，如此进行几次，每次随消化溶液颜色变浅而渐渐少加H202，直至消化液五色透明后，再微沸5分钟，去尽CO2。
7．取下开氏瓶，冷却，小心加入10~20ml蒸馏水，冷却，转移人100ml容量瓶中。
8．用少量水洗开氏瓶3~4次，洗液均移入容量瓶中，冷却后，用水定容，澄清或过滤后供N、P、K测定用。
同时做空白，除不加植物样外，同样进行。
五、注意事项1．植物干样应磨细烘干。
植物干样容易吸湿，称量时难以稳定，称量操作要快，最好用称量瓶称或用称量纸包起来称。
如用鲜样分析，样品应剪碎，称取3~5g，称样也要迅速。
2．开氏瓶颈必须干燥无水，以免样品沾在瓶颈部。
样品倒入瓶内时，可将称量纸卷成筒状，伸人瓶内加样。
如有样品沾在瓶颈上端，必须用少量水或H2S04将其冲下，否则会造成损失。
3．加人浓H2S04的量，应视样品量多少而异，一般1g样加10ml浓H2S04。
4．为了使样品能与H2S04充分混匀，先将样品在瓶底散开，再加H2S04轻轻摇动，注意不要将样品摇动到颈部。
如样品不散开，加H2SO4后容易结块，内部不被H2S04浸润，会加长消煮时间。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
植物样品处理方法
从采集的植物样品中选取一部分b、用超纯水冲洗，去除表面的杂物c、通风厨内风干水分2．研磨a、称取植物样品
5g，倒入预先洗净的研钵中b、称取10g （根据样品湿度决定）处理后的无水硫酸钠，加入植物中混合均匀，以去除植物中的水分c、将研磨好的植物样品转移到预先清洗过的滤纸袋中。
3．索氏萃取a、准备好索氏提取器，用丙酮冲洗3次，吹干b、用经溶剂清洗过的镊子将滤纸袋放入索氏提取器中c、用微量进样器加入内标100uld、将120mL 正己烷/丙酮（1/1，V/V）混合液倒入250mL 平底烧瓶中e、索氏提取器安装在70℃水浴里，萃取24小时4．过滤a、索氏萃取结束后，将萃取液通过装有无水硫酸钠的砂芯漏斗除去水分，无水硫酸钠先用30ml二氯甲烷冲洗1遍，流入废液瓶b、将废液瓶换成250ml的平底烧瓶，烧瓶用丙酮冲洗3遍c、萃取液过滤完毕后，用30ml二氯甲烷再淋洗1遍砂芯漏斗中的无水硫酸钠5．旋蒸1a、用量筒取
10mL异辛烷加入萃取液中b、收集到的萃取液在32℃水浴中真空旋蒸至3mL（仅覆盖烧瓶底部）6．净化a、净化柱装上特氟龙塞后用丙酮冲洗3遍，竖直安装在铁甲台上，梨形瓶也用丙酮冲洗3遍，另准备一个废液瓶（平底烧瓶）b、先用量筒加二氯甲烷
10ml到净化柱中c、用干净的镊子放入一小团棉花，用长玻璃棒将棉花塞到净化柱的底部，排除棉花中的空气c、用药匙往净化
柱中加入1大勺烘干的无水硫酸钠d、用量筒继续加入二氯甲烷至液面达到净化柱球形瓶的下部1/4处（在细口部位以上）e、
用干净的小烧杯称取烘过的硅胶10g，倒入净化柱中f、待硅胶完全沉淀到净化柱下部以后，再用药匙往净化柱中加入1大勺烘干的无水硫酸钠g、放掉净化柱中的溶剂到废液瓶中，加入30mL 正己烷/二氯甲烷1:1的溶液冲洗硅胶h、待冲洗液液面即将到达无水硫酸钠上层时，加入萃取液，并用正己烷/二氯甲烷1:1的溶液冲洗烧瓶3次，冲洗液加入净化柱中i、待萃取液液面即将到达无水硫酸钠上层时，加入65mL正己烷/二氯甲烷1:1的溶液淋洗，净化后的萃取液用梨形瓶接收7．旋蒸2a、在接收液中加入5mL异辛烷b、接收液在32℃水浴中真空旋蒸至2-3mLc、浓缩液用胶头滴管转移至预先清洗过的10mL玻璃离心管中d、梨形瓶用异辛烷冲洗3次，冲洗液加入离心管中8．氮吹定容a、离心管内萃取液氮吹至0、9mL，转移到进样瓶中b、加入混合内标0、1mL，定容至1mL刻度线9．空白和Spikea、空白样品用10g 无水硫酸钠代替植物，不加任何标准品，其他步骤相同b、 Spike 用品用10g无水硫酸钠代替植物，加入目标物标准品，其他步骤相同。