超速离心机
超速离心机的操作方法 离心机操作规程
超速离心机的操作方法离心机操作规程超速离心机是利用离心力，分别液体与固体颗粒或液体与液体的混合物中各组分的机械，紧要用于将悬浮液中的固体颗粒与液体分开；或将乳浊液中两种密度不同，又互不相超速离心机是利用离心力，分别液体与固体颗粒或液体与液体的混合物中各组分的机械，紧要用于将悬浮液中的固体颗粒与液体分开；或将乳浊液中两种密度不同，又互不相溶的液体分开，也可用于排出湿固体中的液体，例如用洗衣机甩干湿衣裳；特别的超速管式分别机还可分别不同密度的气体混合物；利用不同密度或粒度的固体颗粒在液体中沉降速度不同的特点，有的沉降离心机还可对固体颗粒按密度或粒度进行分级。
超速离心机的操作方法:1、使用各种超速离心机时，必需事先在天平上精密地平衡离心管和其内容物，平衡时重量之差不得超过各个离心机说明书上所规定的范围，每个超速离心机不同的转头有各自的允许差值，转头中确定不能装载单数的管子，当转头只是部分装载时，管子必需相互对称地放在转头中，以便使负载均匀地分布在转头的四周。
2、若要在低于室温的温度下离心时。
转头在使用前应放置在冰箱或置于超速离心机的转头室内预冷。
3、离心过程中不得任意离开，应随时察看超速离心机上的仪表是否正常工作，如有异常的声音应立刻停机检查，适时排出故障。
4、每个转头各有其最高允许转速和使用累积限时，使用转头时要查阅说明书，不得过速使用。
每一转头都要有一份使用档案，记录累积的使用时间，若超过了该转头的最高使用限时，则须按规定降速使用。
5、装载溶液时，要依据超速离心机的实在操作说明进行，依据待离心液体的性质及体积选用适合的离心管，有的离心管无盖，液体不得装得过多，以防离心时甩出，造成转头不平衡、生锈或被腐蚀，而制备性超速离心机的离心管，则常常要求必需将液体装满，以免离心时塑料离心管的上部凹陷变形。
每次超速离心机使用后，必需认真检查转头，适时清洗、擦干，转头是离心机中须重点保护的部件，搬动时要当心，不能碰撞，避开造成伤痕，转头长时间不用时，要涂上一层上光腊保护，严禁使用显着变形、损伤或老化的离心管。
如何选用超速离心机和离心管
如何选用超速离心机转子和离心管
选择合适的超速离心机主要依据以下条件：
1.离心样品的体积；
2.离心样品的要求，是否要求离心管灭菌，选择合适材料的离心管；PC、UC、
PE管为透明、不耐高温高压、酸碱、有机，但PC硬度较好；PP、PA为半透明、耐高温高压和一定酸碱。
若要看离心的条带，PC、UC和PE较好。
3.离心转速或者离心力的要求；离心速度在20,000rpm以下者请在高速离心机
上离心；
4.离心方法。
附：
1.离心管的清洗，用pH5~9的洗液清洗，水温不超过50℃，注意不要将管内壁
拉毛，否则影响离心效果。
最好采取风机风干。
2.离心管的灭菌。
最简单的是用10%的过氧化氢浸泡，福尔马林也适合所有的
离心管但不太安全。
70%的乙醇适用于PA和PP和PET管，水沸灭菌适合PA和PP管。
环氧乙烷适合PC管。
高温高压灭菌法，115℃、30min适合PA、PP和PC材料的离心管，但是PC材料的使用寿命将受限制；121℃、20min 适合PA和PP管，126℃、15min均不适合任何离心管。
此外，离心管在紫外下无法灭菌。
超速离心机
超速离心机一、工作要求1.1 电源要求：220V±10%交流，50/60Hz;输电线能承受25A或更高的电流；接地良好。
配备交流单相220V、容量25A、带有过载保护的空气开关的独立线路1.2 温度：2-40℃1.3 相对湿度：45-85%二、技术参数*2.1、最高转速≥100,000rpm，最大离心力≥803,000g,2.2、转速精密度：≤±2rpm，2.3、真正的样品目视平衡，最大不平衡量为±5mm。
2.4、真空密封变频电机驱动系统，直接驱动，无需更换碳刷。
*2.5、驱动部（电机和轴）十年免费保用2.6、空气冷却马达，无需使用CFC或其它化学冷却液2.7、离心腔采取半导体制冷，无需压缩机。
2.8、温度设定范围：0-+40℃，1℃步进。
2.9、转头温度控制精度：±0.5℃，利用红外检测器监测温度2.10、制冷设计：6个半导体制冷模块采用串并联设计2.11、自动干燥系统，可使离心室在每次离心后保持干燥*2.12、真空度最小可达：≤0.13Pa。
2.13、面板上显示高、中、低真空度2.14、内设脱湿装置，3小时内排出50ml水2.15、LED显示器：面板前部具有一个47cm长的LED显示器，可呈现不同的颜色，发光模式，亮度，以显示不同的操作状态2.16、LCD彩色触摸屏：6.5英寸，触摸式操作，具备离心力，离心时间的适时设定功能。
触摸屏显示语言有11种可选（中文，英语，日语，法语，德语，意大利语，韩语，荷兰语，葡萄牙语，俄语，西班牙语）2.17、提前预设需要延时启动的离心时间和结束时间，具备仪器预冷功能。
2.18、具有RTC（实际时间控制功能），可设置离心的起始时间和结束时间，及运行参数2.19、加减速模式：10级加速，10级减速（包括自由滑行）。
2.20、程序化操作：可存储≥1000个程序（30个步骤的）。
2.21、标准接口：USB (x2), LAN (x1)。
贝克曼库尔特超速离心机
Allegra 64R台式高速冷冻离心机
• Allegra 64R 30,000 rpm; 64,400 x g • • Allegra 64R是台式机的超水准设计，高达 64,400 x g的离心加速度，可将以往需要落地式 高速离心机的应用，转移到台式机 • 上，是常规 实验室的最佳选择。灵活性高，备 有多种定角、水平转头，可使用250 uL至85 mL 离心管。备有密封水平转头防 • 止工作人员受样品污染。可用于细菌、蛋白、 核酸沉淀和细胞、细胞膜、亚细胞组份的分离。
Optima L & L-XP制备型超速离心机
• 无论是对于蛋白组学、基因组学还是细胞 组学的研究，贝克曼库尔特Optima L & LXP超速离心机都可配合不同的转头使 • 用，从而完成各种核酸、蛋白、细胞的 分离工作。专利设计的软件可模拟不同的 分离实验，节省摸索条件的时间及宝贵的 样品。
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贝克曼库尔特超速离心机
Microfuge 22R台式微量冷冻离心机
• Microfuge 22R 14,000 rpm; 21,920 x g • • - 采用无碳刷变频马达驱动 ·高效冷却系 统采用环保冷冻剂，符合环保要求 • - 备有密封定角转头F241.5P防止工作人 员受样品污染，所有转头都可高温消毒 • - 多种转头可选择，其中包括特为PCR 实验而设计的F40.25转头和用于DNA沉淀 及免疫实验的S241.5转头
Allegra 64R台式高速冷冻离心机
ห้องสมุดไป่ตู้
21920高效冷却系统采用环保冷冻剂符合环保要求备有密封定角转头f2415p防止工作人员受样品污染所有转头都可高温消毒多种转头可选择其中包括特为pcr实验而设计的f4025转头和用于dna沉淀及免疫实验的s2415转头optima无论是对于蛋白组学基因组学还是细胞组学的研究贝克曼库尔特optima用从而完成各种核酸蛋白细胞的分离工作
智能化超速离心机安全操作及保养规程
智能化超速离心机安全操作及保养规程超速离心机作为一种重要的实验设备，在科研和生产实践中广泛应用。
尤其是在制药、化学、环保等领域中，离心机的应用更是不可替代的。
本文将从操作安全和设备保养两个方面，介绍超速离心机的安全操作和保养规程。
一、操作安全规程1.1 设备安装（1）离心机应安装在平稳的地面上，四周无障碍物。
离心机应水平放置，底座平稳，不允许歪斜。
（2）离心机的电气设备应由专业电工安装，并经过必要的测试和检查。
（3）设备安装完毕后，应确保所有安装部件固定牢固，不松动，电气连接可靠。
1.2 操作前的准备（1）操作人员应在严格遵守相关规程和操作程序前接受专业培训，并取得操作培训合格证书。
（2）操作人员应理解离心机的工作原理、与其他仪器连接的方法、离心机的使用方法以及安全操作规程等方面的知识。
（3）离心机应在操作前进行电气和机械测试。
1.3 操作（1）操作人员应在离心机启动前检查离心管、转盘等部件是否固定并牢靠。
（2）若发现离心板上或转轴上的气粘性薄膜不均匀，应将其平衡调整好。
（3）离心机应按照使用说明进行操作，禁止超负荷操作，严格禁止操纵开关、电缆和供电设备等部件。
（4）禁止在高速旋转时打开离心盖，进样或取样等操作。
（5）当离心机出现异常，并出现明显的振荡或噪音时，应立即停机检查，排除故障。
（6）操作人员应时刻关注离心机的运行状态，确保离心管中的样本不会碰到离心机。
1.4 关机（1）将离心机速度逐渐减小，直至无法观察到转盘上的移动轨迹。
（2）将离心机切换到停机状态，并等待转盘完全停止后方可关闭电源开关。
（3）禁止在离心机内残留样品时进行机器的翻转或移动，应先将样品取出。
二、设备保养规程2.1 日常保养（1）每次使用后，应将离心管和离心盘彻底清洗干净，并擦拭离心机的内外表面。
（2）检查离心机的运行状态和机器稳定性。
（3）定期对离心机的电器元件进行检查和清洁。
（4）离心机的泡沫塑料垫片和运转部件的清洁与维护。
超速离心机蛋白质
超速离心机蛋白质超速离心机蛋白质是一种在超速离心机中制备的蛋白质样品。
超速离心机是一种常用的实验室设备，通过高速旋转离心力，将混合物分离成不同密度的组分。
在生物科学研究中，超速离心机广泛应用于细胞和分子生物学领域，用于分离和纯化蛋白质、细胞器、核酸等生物大分子。
超速离心机蛋白质的制备过程涉及多个步骤。
首先，需要将待离心的样品溶液加入离心管中。
溶液中的蛋白质会受到离心力的作用，向离心管底部沉积。
随着离心时间的增加，蛋白质会逐渐被分离出来，形成一个蛋白质沉淀。
然后，将上清液与沉淀分离，并取出蛋白质沉淀进行后续实验或分析。
超速离心机蛋白质的制备具有以下优点。
首先，由于超速离心机的高速旋转，离心力较大，可以快速分离和纯化蛋白质。
其次，超速离心机蛋白质的纯度较高，可以避免大多数杂质的干扰。
此外，超速离心机蛋白质制备过程简单、快速，适用于大规模样品制备。
超速离心机蛋白质的应用非常广泛。
在生物医学研究中，蛋白质的分离和纯化是研究蛋白质结构和功能的重要步骤。
超速离心机蛋白质可以用于分离和纯化特定的蛋白质，从而进行进一步的鉴定和功能研究。
此外，超速离心机蛋白质还可以用于生物药物的研发和生产过程中，用于蛋白质的纯化和质量控制。
然而，超速离心机蛋白质制备也存在一些注意事项。
首先，超速离心机操作时需要注意安全，避免因离心管破裂或离心机失衡而导致的意外。
其次，选择合适的离心参数，包括离心力、离心时间和温度，以确保蛋白质的最佳分离效果。
此外，根据不同蛋白质的特性，可以选择不同的离心管和离心机转头，以满足实验需求。
总结而言，超速离心机蛋白质是一种通过超速离心机制备的蛋白质样品。
它具有快速、高效、纯度高等优点，广泛应用于生物科学研究中的蛋白质分离和纯化。
在使用超速离心机进行蛋白质制备时，需要注意安全操作和选择合适的离心参数。
超速离心机蛋白质在生物医学研究和生物药物开发中具有重要的应用价值。
利用超速离心机对细胞进行分离的原理
利用超速离心机对细胞进行分离的原理超速离心机是一种利用离心力对混合物中的不同成分进行分离的设备。
在细胞分离中，超速离心机被广泛应用于细胞的分离和纯化。
下面将详细介绍利用超速离心机对细胞进行分离的原理。
超速离心机的原理基于沉降速度的大小和离心力的大小。
离心力被定义为物体在离心机转速下受到的离心力的大小，它的大小与物体的质量、转速和离心半径有关。
普通离心机的离心力一般在几千倍重力加速度（g）左右，而超速离心机的离心力可以达到几万至几十万倍重力加速度，因此可以更好地分离细胞。
细胞的分离通常是利用细胞的大小、形状、密度和离心力的关系来实现的。
在超速离心机中，细胞悬浮在溶液中，根据细胞的密度和大小，当离心力增大时，较重的细胞会向外部离心管壁沉降，而较轻的细胞则会停留在上层。
具体而言，超速离心机分离细胞的过程可以分为以下几个步骤：1.配置离心管：首先，需要准备好离心管，并将混合物样品装入离心管中。
2.设定离心机的转速和离心半径：根据实验的需要，设定好离心机的转速和离心半径，这将直接影响到离心力的大小。
3.启动离心机：启动离心机后，离心机开始旋转，产生离心力。
4.离心分离：细胞在离心力的作用下，根据其密度和大小进行分离。
较重的细胞会向外部离心管壁沉降形成沉淀，而较轻的细胞则会停留在上层形成上清液。
5.收集分离的细胞：离心机停止后，将离心管取出，并将上清液或沉淀液中的细胞转移到其他容器中，即可得到纯化的细胞。
需要注意的是，超速离心机分离细胞的效果受到多种因素的影响，例如离心力、离心时间、离心温度等。
合适的离心力和离心时间能够更好地将细胞沉降至底部或上层，并减少混杂物的存在。
此外，为了保持细胞的活力，最好在低温条件下进行离心实验。
总之，利用超速离心机对细胞进行分离是一种高效的方法。
它利用沉降速度的差异和离心力的大小来实现细胞的分离和纯化，可广泛应用于生物医学研究、生物制药、临床诊断等领域。
超速离心auc数据
超速离心auc数据
超速离心是指在离心机操作过程中转速超过设定数值的现象。
超速离心可能会导致离心机的损坏，同时也会对样品造成不可逆的影响。
AUC是全息分析离心技术（Analytical Ultracentrifugation）的缩写，它是一种用于分析溶液中生物大分子（如蛋白质、DNA、RNA等）的浓度、分子量、形状和相互作用的技术。
超速离心对AUC数据可能会产生一系列影响。
首先，超速离心可能会导致AUC实验结果的不准确性。
在AUC 实验中，离心机的转速是根据样品的性质和实验设计精确设定的，超速离心会导致实验条件偏离预期，从而影响数据的准确性和可靠性。
其次，超速离心可能会对样品造成结构或性质的不可逆改变。
生物大分子在高速离心过程中可能会受到较大的离心力，导致构象的改变或聚集现象的发生，从而影响AUC实验的结果解释和分析。
此外，超速离心还可能会对离心机设备造成损坏。
离心机在设计时考虑了最大转速和离心力的限制，超速离心会超出设备的承受范围，可能导致离心机零部件的损坏，甚至影响设备的安全性能。
因此，在进行AUC实验时，严格控制离心机的转速是非常重要的。
在实验前应该仔细阅读离心机的操作手册，了解离心机的性能参数和限制，合理设置离心参数，以确保实验的准确性和安全性。
同时，对离心机进行定期维护和保养，确保其在正常工作范围内运行，有助于保障实验数据的可靠性和离心机的长期稳定运行。
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1.3 超速离心机
转速范围:70,000-150,000rpm 离心力范围:505,000-1,050,000xg
样品颗粒范围 : ≧0.002μm 样品: Plasmid DNA, Chromosome DNA, RNA, Virus, Protein, Membrane, Ribosome, 机型 : 制备型超速,微量超速
200，000g×3小时
核膜 （Nuclear membrane） 线粒体 （Mitochondria）
3~12
1500g×15分
1.18~1.22
100，000g×2小时
（低速、高速）
0.5~2 （直径） 大颗粒 10，000g×25分 （高速、超速） 2，000g×20分 （低速、高速） 150，000g×20分 （超速） 10，000g×25分 （高速、超速） 0.5~0.8 10，000g×25分 （高速、超速） 1.18~1.23 150，000g×3小时 1.19~1.22 130，000g×2小时 1.12~1.16 300，000g×2小时 1.17~1.21（内膜） 1.12~1.14（外膜） 1.12~1.16 150，000g×1.5小时 120，000g×2小时
超速离心机
•
超速离心是生物化学和分子生物学不可缺少的 技术手段。广泛应用于大分子、细胞、细胞器等 的分离、纯化。通过离心分离或离心分析有的可 直接获得有关细胞、细胞器、病毒和生物大分子 的信息,有的为进一步作化学分析、生物学功能测 定以及形态学上观察超微结构提供了基础。
1.离心机分类
1.1.低速离心机
P40ST
连续离心转头
4.Tubes 离心管
4.1 管子组成材料
PA：Polyallomer 聚异质 PP：Polypropylene 聚丙烯 PE：Polyethylene 聚乙烯 PC：Polycarbonate 聚碳酸酯 PET：Polyethyleneterephtalate 对苯二甲 SS：Stainless steel 不锈钢 Glass: Corex, Pyrex 玻璃
高尔基体 （Golgi apparatus）
~1 小颗粒 （0.05-0.5）
溶酶体 （Lysosomes） 微体（过氧化酶体） （Peroxisomes）
0.5~0.8
内质网
0.05~0.30
150，000g×40分
1.06~1.23(滑面）
150，000g×2小时
Pellet (核糖体)
Supernatant (生物大分子类)
2.2 速率区带离心
主要是利用生物大分子或亚细胞颗粒不同的沉降常数，在离心后分布在不同的预 先铺制好的介质密度区，从而达到分离、纯化的目的。离心密度介质主要用蔗糖 也可用甘露糖、甘油、多聚糖类、中性硅胶油等。这类离心技术广泛用于亚细胞 颗粒，如叶绿体、线粒体、微粒体、细胞膜以及蛋白、酶、RNA等的研究。
4.2 形状
厚壁管
密封管
薄壁管
超速锁管
5.亚细胞构造的差分分离及密度梯度分离
差分离心，沉淀细 颗粒尺寸 名称 （µ m) 胞器所需的RCF及 时间， 在蔗糖中浮密度 克/毫升 蔗糖密度梯度离心 用蔗糖作等密度离心的 离心参数（甩平转头 10%~40% 或20%~55% 蔗糖梯度）
核 （Nuclei）
3~12
600g×15分 （低速、高速）
>1.30
40，000g×1小时 （穿透高密度蔗糖层沉降）
大片3~20 质膜 （Plasma membrane） 小片0.05~3
1500g×15分 （低速、高速） 100，000g×60分 （超速）
1.13~1.18
100，000g×1.5小时
1.12~1.14
低密度 样品１(低密度) 样品２(高密度) 等密度液 高密度
离心前样品
离心后样品,依据 密度不同而得到分 离(density)
利用CsCl 密度液为介质进行分离
3.转子应用选择
转头类别 使用的离心 机 发明时间、发明者或推广商
P100AT2
固定角式转头
甩平转头 垂直管转头 区带转头 近垂直管转头
低、高、超 速
转速范围:4,000-8,000rpm 离心力范围.:Up to 10,000xg 样品颗粒范围 : 大于 1μm 样品 : , Bacteria, Cells 机型 : 小型机, 台式机,大容量机
1.2.高速离心机
转速范围:13,000-22,000rpm 离心力范围:≦ 50,000xg 样品颗粒范围 : more than 0.1μm 样品: Mitochondria, Ethanol
样品１
5% 蔗糖液
样品２ 样品３
样品.1
Sample
20% 蔗糖液
样品.2
样品.3
连续密度剃度
离心前加样
离心后,根据样品沉淀系数 而分离获得
利用蔗糖密度液为介质进行分离(常规蔗糖浓度: 5-20%(w/w))
2.3 等密度梯度离心
主要是利用离心管某些适当的低分子盐(如氯化艳，硫酸艳等)的水溶液，在离心过程中由 离心力和溶质分子扩散力达成平衡后形成溶质分子的密度梯度。如果在溶液中有不同的生物 大分子，则这些大分子按其固有的密度(浮标密度)分布在相应的密度区，从而达到分离目的。 这类离心目前广泛用于DNA、RNA、核糖体等的分离，可以说是分子遗传研究领域中必不可少 的实验手段。
低、高、超 速 高、超速 低、高、超 速 超速 低、高、超 速
1943年，（英） Pickels
1951年，（德） Kahler 1974~1975年，（美）Dupont公司 1964~1965年（英） Anderson 1989年，（日） Hitachi Koki（美） Beckman公司 1965年，（英） MSE公司
2.离心方法
2.1差分离心 最常规的离心机方法,主要分离细胞器,线粒体,核糖体
Tissue 组织 Homogenized 均样 Homogenate 组织匀浆 经过纱布等过滤,离心: 700xg, 10min. Pellet (沉淀粗颗粒) Pellet (线粒体) Supernatant 上浮液 离心: 7,000xg, 10min. Supernatant上浮液 离心: 105,000xg, 1hr
1.3.1（美）Beckman-Coulter • Optima XL-A，XL-I 分析超速机型 • Optima XL 系列，Nmax=10 万rpm，RCFmax>800,000×g • Optima-MAX(台式) Nmax=1.3×105rpm, RCFmax=1019,000×g • Optima-L-XP 系列 Nmax=10 万rpm, RCFmax>800,000×g 1.3.2（日）Hitachi Koki • CP-100WX，Nmax=10 万rpm, RCFmax>800,000×g（有与计算机联 用的模拟软件，在转头上自动记录离心数据，转头寿命自动管理） • CS-150GX，150GXL，Nmax=15 万rpm （小型机，目前世界上转速最 高，离心力最大RCFmax=1050,000×g）