第七章实验动物的基本技术和方法
生理学实验指导第七章循环实验
第七章 循环实验实验十三 蛙心起搏点观察一、目的和原理哺乳动物心脏的特殊传导系统除结节区外，均具有自动节律性，但各部分的自律性高低不同，以窦房结的自律性最高，正常的心脏搏动每次都有窦房结发生，依次传到心房、心室引起收缩，故窦房结被称为哺乳动物的心起博点。
两栖类动物的心起博点是静脉窦。
本实验的目的是用局部加温和结扎的方法观察蛙心起博点及蛙心脏不同部位自律性的高低。
二、实验对象蟾蜍或蛙。
三、实验器材和药品蛙类手术器械、蛙心夹、滴管、线、小试管、任氏液。
四、实验步骤和观察项目（一） 取蟾蜍一只，用探针破坏蟾蜍的脑和脊髓后，将其仰卧位固定在蛙板上，用剪刀剪开胸骨表面皮肤并沿正中线剪开胸骨，可见心脏包在心包中，仔细剪开心包，充分暴露出心脏。
（二） 参照图7-1，观察心脏的解剖，在胸面可以看到 一个心室，其上方有两个心房。
心室右上角连着一个动脉干，动脉干根部膨大部分称动脉球。
动脉向上分左右两支。
用玻璃分针从动脉干背面穿过，借以将心脏翻向头侧。
于心脏背面两房下端可看到颜色较紫篮的膨大部分为静脉窦。
静脉窦与下腔静脉相连。
静脉窦与心房的交界处称窦房沟，而心房与心室的交界处称房室沟。
认准心脏各部分位置后，注意观察静脉窦、心房和心室的跳动程度并计数它们在单位时间内的跳动次数。
（三） 盛有35～40℃热水的小试管（或稍烧热的探针）分别靠近心室、心房、静脉窦，观察和记录心脏跳动次数有何变化。
（四） 用镊子在主动脉干下穿一线备用。
用玻璃分针穿过主动脉干下面，将心尖翻向头端，暴露心脏背面，在静脉窦和心房交界的半月形白线（窦房沟）处用线结扎阻断静脉窦和心房之间的传导，观察心房、静脉窦的跳动频率有何变化。
（五） 待心房、心室的跳动恢复后，分别计数静脉窦和心房、心室的跳动频率，并比较其频率差别。
然后再取一线在房室沟处作一结扎（斯氏第二结扎），阻断房室之间的传导，观察心房和心室的跳动情况。
分别计数每分钟跳动次数。
将实验结果填入下列表格。
动物喂养实验
第七章动物喂养实验近年来，由于存在严重的在畜禽日粮中大量不规范使用抗菌促生长药物的现象，致使畜禽产品中有不同程度的药残，从而严重影响到人们的身体健康。
随着我国加入WTO，畜产品的无害化将更迫切，特别是利用中草药、益生素等绿色添加剂来代替或减少畜禽日粮中常规使用的各种抗生素与促生长添加剂已成为饲料业的研究热点。
因此，能够替代抗生素、抗菌药物而又无毒副作用无残留的微生态制剂目前已被广泛应用。
在养猪生产中，断奶仔猪发生腹泻是影响其生产的一大难题。
断奶仔猪由于其消化系统、免疫功能不够完善，抵抗细菌的能力较差，易被病原微生物侵袭而造成消化不良、下痢、体弱、生长缓慢，饲料报酬低等[1]。
病原性细菌如大肠杆菌 K88、猪霍乱沙门氏菌和鼠伤寒沙门氏菌是引起仔猪发生腹泻的主要病原菌，常给养猪生产带来极大的损失。
雏鸡白痢是由鸡白痢沙门氏杆菌引起的严重危害雏鸡及育成鸡的一种细菌性传染病[2]，给养鸡业带来极大的经济损失。
但随着临诊上抗菌药物的得不断增多，以及滥用抗生素造成的禽肉和禽蛋产品中药物残留队人类健康地影响，促使人们探讨应用生物防治方法开控制雏鸡白痢。
因此，研究微生态制剂防治仔猪肠道肠道传染病和雏鸡白痢，对于促进仔猪和雏鸡健康成长，提高生产性能具有现实的和重要的意义，并且为益生素制剂的研制开发提供了必要的理论与实践依据。
7.1实验材料和方法7.1.1 微生态制剂本试验室研制，以粗酶制剂吸附芽孢杆菌制成复合微生态制剂，内含腊样芽孢杆菌B02，有效活菌数在2.5×1012个·kg-1以上；纤维素酶、蛋白酶等复合酶制剂。
7.1.2 试验动物健康长白断乳小猪60头，45日龄，体重15-20 kg，未经猪沙门氏菌菌苗免疫，购自杨凌示范区五泉猪场。
一日龄公雏鸡200只，体重38-40 g，未经鸡白痢沙门氏杆菌菌苗免疫，购自西北农历科技大学农学院种鸡场。
7.1.3 基础日粮[3]仔猪基础日粮配方见表7-1。
动物实验设计
5、分组的随机化
随机（random）化原则是提高组间的均衡性的 一个重要手段；也是资料统计分析时，进行统计 推断的前提。随机化抽样的目的就是要使总体中 每一个研究对象都有同等机会被抽取分配到实验 组或对照组。 • 完全随机化设计(完全随机分配) • —在动物数量少的情况下不适用 • 随机化模块设计( 分层随机分配 )—性别模块 体 重模块 • 其他设计—
分危险的。
动物实验记录的规范要求
• 一、记录的一般性要求 • （一）实验记录的主要内容 • （二）实验记录的书写和保存 • 二、实验记录 • （一）实验准备过程的记录 • （二）动物设施和实验室运转的记录 • （三）实验操作的记录 • （四）仪器操作的记录 • 三、记录的归档及实验结果的处理 • （一）实验记录的归档 • （二）实验结果的处理
一、动物实验设计的要素
二、动物实验设计的原则
第二节 动物实验设计的内容和步骤
一、动物实验设计的步骤
二、动物实验设计方案的内容
1、实验动物的选择
1 选用与人的机能、代谢、结构及疾病特点相似的 实验 动物
2 选用遗传背景明确，具有已知菌丛和模型性状显著且 稳定的动物
3 选用解剖、生理特点符合实验目的要求的动 4 选择不同种系实验动物存在的某些特殊反应 5 选用人畜共患疾病的实验动物和传统应用的实验动物
验，以便实验结束后数据的分析和统计，有利于 得出科学客观的实验结论。 • 5﹒研究方法 • 根据实验设计确定本次实验的方法，详细记录本 次实验所要采取的具体实验设计、技术路线、实 验方法详细叙述每个实验步骤
动物实验技术 动物实验的基本操作
5 4
6
2、家兔：
方法：首先固定家兔，再将扩口器放入口中，置于上，下门齿 之后，将14号导尿管从扩口器中央的小孔通过，沿咽后壁插 入食道。插入后，应检查导尿管是否确实插入食道，可将导尿 管外端的口入一只盛满水的烧杯中，如无气泡产生，表明导尿 管被正确插入胃中，再将导管与注射器相连，注入药液。
Oral feed
第 二 节 实验动物的选择原则
选择什么样的实验动物是医学科学研究工作 中一个重要环节，因为在不适当的动物进行实验， 常可导致实验结果的不可靠，甚至使整个实验徒 劳无功，直接关系到科学研究的成败和质量。
一、查阅文献，加强交流： 通过充分地查阅文献，可了解本领域、本 项目以往使用的实验动物情况及其研究结果， 有利于充分利用前人的研究成果、研究思想， 避免重复研究。 传统应用的实验动物是科技工作者长期以来 实践经验的积累，各个专业、各个课题都有自 己常用的动物品和品系。
Blood Collection From Cardiac Puncture in Mouse
（二）家兔的采血： 1、耳缘静脉采血 2、心脏取血 3、颈动脉
Small blood samples can be collected from a lateral ear vein.
Slide 30.
兔耳缘静脉注射，取血时，可在其耳内面 局部拔毛。
（三）脱毛法：用于手术前动物皮肤局部脱毛。 方法： 首先剪短动物被毛。然后涂脱毛剂，2-3分钟后用温 水清洗干净，最后涂上一层油脂。 脱毛剂的配制： 下列3种方法适用于小鼠，小鼠和家兔。 1、硫化纳3克+肥皂粉1克+淀粉7克+水适量，调成糊状。 2、硫化纳8克+淀粉7克+糖4克+甘油5克+硼砂1克+水 75毫升 3、硫化纳8克+水100毫升
实验动物学 第七章 动物实验质量监控
3、1954—1956年：法国的有机锡 胶囊引起207人视力障碍和102人 死亡。
4、1966—1972年，日本的氯碘喹 啉造成上千人失明或下肢瘫痪。
5、1959—1962年，西德的沙利度胺（反应 停）引起万余名婴儿畸形。
目前对新药的要求— “安全、可控、有效”。
动物毒性实验会出现4种结果： *、真阴性—没有毒性（正常结果）。 *、真阳性—有毒性（正常结果）。 *、假阴性—药物毒性不被察觉，用到
人身上后直接危及人类的健康与生命。 *、假阳性—使一个很有前途的新药被
淘汰。
（一）药害事件：
1、1935—1937年： 美国用二硝基 酚减肥，引起白内障及骨髓抑制， 死亡177人。
未成年实验动物体重——小鼠15-18g、 大鼠80-100g 、豚鼠150-200g 、 兔1.5-1.8kg 、猫1.0-1.5kg 、犬 6-8kg（成年）。
（二）性别：一般宜选用雌雄各半。 （三）生理状态与健康情况：
健康，无怀孕、哺乳等。 （四）品系、等级：
白化、SPF级动物运输途中被 污染等。
该药品生产和出厂前未做动物实 验，导致其毒性未被发现，由此可见， 动物实验质量是关乎人命的大事。
（2） 1937年：美国田纳西州的马先 吉尔药厂推出了“磺胺酏—马先吉 尔”，一种专给小孩服用的又香又 甜的消炎药水，使用二甘醇做溶剂， 导致358名儿童肾功能衰竭，107人 死亡。
（3）1990年：孟加拉国使用二甘醇 代替丙二醇生产一种“退热净”酏 剂，导致339名儿童肾衰竭，80多 人死亡。
在设计动物实验，选择实验动 物和评价实验结果时，都要对上述 内容进行监控，才能确保动物实验 获得成功。
实验动物学——第七章动物模型
4．生物医学动物模型（Biomedical Animal Model） 生物医学动物模型是指利 用健康动物生物学特征来提供人类疾病相似表现的疾病模型。兔甲状旁腺分布比 较分散，位置不固定，有的附着在主动脉弓附近，摘除甲状腺不影响甲状旁腺功 能，是摘除甲状腺实验较理想的动物模型；如沙鼠缺乏完整的基底动脉环，左右 大脑供血相对独立，是研究中风的理想动物模型；鹿的正常红细胞是镰刀形的， 多年来被供作镰刀形红细胞贫血研究；兔胸腔的特殊结构用于胸外手术研究比较 方便。但这类动物模型与人类疾病存在着一定的差异，研究人员应加以分析比较。
诱发性动物模型的特点在于制作方法简便，实验条件容易控制，复制的模型 符合研究目的，短时间内可以复制大量的动物模型，特别适用于药物筛选。但其 不足之处是诱发性动物模型与自然疾病存在着某些不同，例如诱发性肿瘤与自发 性肿瘤对抗癌药物的敏感性不同。而且有些人类疾病不能用人工方法诱发成功。
2．自发性动物模型（Spontaneous Animal Model） 自发性动物模型是指实验 动物未经任何人工处置，动物自然发生的疾病，或由于基因突变，通过遗传育种 保留下来的动物模型。主要包括突变系的遗传疾病模型和近交系的肿瘤疾病模 型。
（1）遗传疾病动物模型。 突变系的遗传疾病很多，可分为代谢性疾病、分子 性疾病、特种蛋白合成异常性疾病等，如裸鼠、肥胖小鼠、高血压小鼠等。
（2）肿瘤疾病动物模型。 近交系肿瘤动物模型随实验动物种属、品种不同， 肿瘤的发生类型和发病率有很大差异。
动物实验基本操作技术
动物实验基本操作技术动物实验作为一种科学研究手段，常用于医学、生物学等领域的实验研究。
为了确保实验的可靠性和安全性，研究人员需要正确掌握基本的动物实验操作技术。
下面将介绍一些常用的动物实验基本操作技术。
首先，动物实验前，需要对动物进行适当的饲养管理，确保其健康状态。
这包括提供适宜的饲料和饮水，保持合适的环境温度和湿度，以及定期清洁和消毒动物饲养环境。
此外，研究人员还需对动物进行身体检查，以排除可能影响实验结果的健康问题。
其次，对于需要进行手术的实验，研究人员需要具备相关的手术技术。
例如，动物麻醉技术是必不可少的，可以采用静脉注射麻药、局部麻醉或气管插管麻醉等方法。
在动物手术过程中，需要准确切割皮肤或组织，处理血管、神经和器官，以及进行缝合和止血等操作。
因此，研究人员需要熟练掌握相关手术技术，确保手术过程的顺利进行。
此外，动物实验中还常使用动物注射技术。
注射技术包括口服给药、皮下注射、肌肉注射和静脉注射等。
研究人员需要准确计量给药剂量，选择合适的注射部位和注射器具，并注意注射速度和注射途径的选择。
在实验中，研究人员还需要掌握注射后的观察和记录技巧，及时发现和处理可能的不良反应。
另外，动物实验还涉及到采集和处理生物样本的技术。
例如，研究人员需要采集血液、组织或其他体液样本，以进行生化分析、细胞培养或组织学检查等。
采样时需要注意卫生与无菌操作，避免交叉污染。
采样后，研究人员需要合理保存和处理样本，以保证实验结果的可靠性。
此外，动物实验中的数据记录与分析也是十分重要的。
研究人员需要仔细记录实验过程的各种参数，包括实验开始时间、操作步骤、药物剂量、实验结果等。
此外，研究人员还需要进行数据分析，以得出科学合理的结论。
在数据分析过程中，研究人员可以使用统计学方法，如平均值、标准差、方差分析等。
最后，动物实验的伦理与法规也是非常重要的。
研究人员需要遵守相关的伦理规范和动物保护法律法规，保证动物实验的道德性和合法性。
小鼠实验的基本技术和方法ppt课件
小鼠皮下注射
小鼠尾静脉注射
• （4）腹腔注射给药法：小鼠的注射量为 0.1-0.2毫升/10克 。
• （5）肌肉注射给药法： • （6）脑内注射给药法：
小鼠腹腔注射
• （四）麻醉法 • 1、吸入麻醉法：常用麻醉剂为乙醚。 • 2、腹腔麻醉法：常用麻醉剂是戊巴比妥钠，
用生理盐水配成浓度为2%的溶液，用量为 0.023毫升/10克体重。
• （五）采血法 • 1、剪尾尖法： • 2、切割尾静脉采血法：
小鼠剪尾采血
• 3、眼部采血： • （1）眼眶后静脉窦采血 • （2）摘除眼球采血法：
小鼠内眦采血
• 4、心脏采血法 • （1）穿刺法：每次采血量为0.5-0.6ml。 • （2）开胸法 ： • 5、断头采血法 ：可采血0.8-1ml。
• 三、实验材料及标本 18-22克小鼠（每人一只）。
• 四、实验内容及方法 • （一）小鼠抓取固定方法
பைடு நூலகம்
小鼠保定技术
• （二）标记法 • 1、永久标记法： • 2、短期标记法：也称染色标记法 。
• （三）给药法 • （1）口服法： • （2）强制灌胃法：
小鼠灌胃
• 2、注射给药法 • （1）皮下注射给药法： • （2）皮内注射给药法： • （3）静脉注射给药法：剂量为0.05-0.1mg/10g体
• 一、实验目的 • （一）掌握小鼠抓、取、固定的基本方法。 • （二）熟悉鼠类的染色、标记的基本方法。 • （三）掌握鼠类的给药、麻醉的基本操作技术和
方法。 • （四）熟练掌握小鼠基本采血技术和方法。
• 二、实验用品 • 1ml注射器、5毫升注射器、针头、500毫升
烧杯、手术剪、镊子、止血钳、灌胃针头、 棉球、生理盐水、75%酒精等。
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( 一)
常用动物外科手术器械
（二）手术器械的消毒
手术器械常用的消毒方法有： 手术器械常用的消毒方法有 ： 煮沸灭菌法 高压蒸气灭菌法和化学药品灭菌法。 、高压蒸气灭菌法和化学药品灭菌法。 敷料、手术巾、手术衣、 （三）敷料、手术巾、手术衣、帽、口罩的消 毒.
四. 手术人员的准备 为了保证无菌手术的进行, 为了保证无菌手术的进行,手术人员应作一系 列的无菌的准备。 列的无菌的准备 。虽然实验动物有不同的微生物 控制等级， 控制等级 ，但手术人员不管做什么等级动物的手 都应该遵循无菌手术的基本原则。 术 ，都应该遵循无菌手术的基本原则 。因此手术 人员在术前应作下列准备 。 （一）手术所需人数 （二） 更衣 （三） 手、臂的清洁和消毒
(三）SPF级以上动物实验观察室环境设施 SPF级以上动物实验观察室环境设施 条件要求
SPF级以上的动物观察饲养在屏障系统或隔离系统 1.SPF级以上的动物观察饲养在屏障系统或隔离系统 中 其特点是： 其特点是 空气、饲料、 垫料和实验器具均应无菌. ①空气、饲料、水、垫料和实验器具均应无菌. 实验人员要严格按隔离系统操作规程操作。 ② 实验人员要严格按隔离系统操作规程操作。 2．隔离环境观察室内的基本设备 必需设备： 必需设备：超净工作台
第二节实验动物的分组和标记
在实验前对动物进行随机分组和编号标记。 在实验前对动物进行随机分组和编号标记。
分 组 方 法 随机化分组方法 单纯随机抽样 均衡随机抽样 随机化方法 抽签法：用带数字的卡片（如纸牌）随机抽取。 抽签法：用带数字的卡片（如纸牌）随机抽取。 若分两组，可用奇偶数为代表；若分四组，可用4 若分两组，可用奇偶数为代表；若分四组，可用4 种花色为代表随机分组
动物的标记
良好的标记方法应保证号码清楚，简便易认、耐久适用， 良好的标记方法应保证号码清楚，简便易认、耐久适用，对 动物无毒性，操作简便且长时间能够识别。 动物无毒性，操作简便且长时间能够识别。 染色法： 小鼠、豚鼠常用3.5 3.5苦味酸溶液涂成黄色； 染色法：大、小鼠、豚鼠常用3.5-5％苦味酸溶液涂成黄色； 犬用2 硝酸银溶液涂成咖啡色。 兔、猫、犬用2％硝酸银溶液涂成咖啡色。 烙印法： 烙印法：大、中型动物 针刺法： 针刺法：兔 号牌法： 号牌法：犬、猴、猫等大动物 穿耳孔法（耳缘剪孔）：小鼠 穿耳孔法（耳缘剪孔）：小鼠 ）： 断趾编号： 断趾编号：小鼠 剪尾编号： 小鼠， 剪尾编号：大、小鼠，仅限与两组动物区分 被毛剪号： 被毛剪号：大动物 笼子标号： 笼子标号：
第七章 动物实验基本技术 及方法
• 第一节 动物实验前的准备 • 第二节实验动物的分组和标记 • 第三节 实验动物的抓取与固定 • 第四节 实验动物麻醉方法
• 第五节 实验动物的给药、采血方法 实验动物的给药、
第一节 动物实验前的准备
动物实验前要进行一系列的准备工作， 动物实验前要进行一系列的准备工作，包括理论准 条件准备、预备实验。 备、条件准备、预备实验。 理论准备主要指了解动物实验的基础理论知识， 理论准备主要指了解动物实验的基础理论知识，选 题立项和设定假设、研究计划和方案的制定、 题立项和设定假设、研究计划和方案的制定、实验 方法及实验动物的选择、参考文献的查阅等。 方法及实验动物的选择、参考文献的查阅等。 条件准备指仪器设备的备置和校准、药品的配制、 条件准备指仪器设备的备置和校准、药品的配制、 器械的准备、实验动物的购入、 器械的准备、实验动物的购入、实验场所消毒与器 具配套等。 具配套等。 预备实验是正式实验的预演。 预备实验是正式实验的预演。
IVC系统的操作规程 IVC系统的操作规程
IVC系统的安装和消毒 1、 IVC系统的安装和消毒 IVC系统上的动物饲养盒必须在超 2、IVC系统上的动物饲养盒必须在超 内打开， 净工作台 内打开，无菌 操 作。 实验完毕， 3、实验完毕，动物饲养盒必须在超净 工作台内盖 好上盖 后，方能离开超净工作台，放在IVC系统 方能离开超净工作台，放在IVC系统 IVC 上。 4、检查进气孔和排气孔是否成功对接
购入动物时应注意以下几个方面的问题: 购入动物时应注意以下几个方面的问题:
1.购买动物时应向供应部门索取动物的相关资料， 1.购买动物时应向供应部门索取动物的相关资料， 购买动物时应向供应部门索取动物的相关资料 如动物的遗传背景和微生物资料（ 如动物的遗传背景和微生物资料（动物质量合格 ），以及动物品系 年龄、体重、胎次等。 以及动物品系、 证），以及动物品系、年龄、体重、胎次等。 2.购买动物时应仔细观察动物的状态 购买动物时应仔细观察动物的状态， 2.购买动物时应仔细观察动物的状态，对动物进 行外观的健康检查：皮毛是否有光泽、 行外观的健康检查：皮毛是否有光泽、眼有没有眼 四肢有无肿胀溃烂、肛门周围有无脏物等。 屎、四肢有无肿胀溃烂、肛门周围有无脏物等。同 时要核对动物的数量等是否符合实验要求。 时要核对动物的数量等是否符合实验要求。 3.根据试验观察时间长短的需要 根据试验观察时间长短的需要， 3.根据试验观察时间长短的需要，同时购入或领取 相应数量的饲料和垫料。 相应数量的饲料和垫料。
空气层流架的操作规程
• 使用前， 清洁层流架的内环境，消毒，灭 使用前， 清洁层流架的内环境，消毒， 菌。 • 进入层流架的一切物品必须经过灭菌处理。 进入层流架的一切物品必须经过灭菌处理。 • 打开层流架门之前，应加大层流架内的送风 打开层流架门之前， 以避免架内环境污染。 量，以避免架内环境污染。 • 实验操作时，须在超净工作台内进行。 实验操作时，须在超净工作台内进行。
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
动物设施的防护水平： 动物设施的防护水平：实验操作和安全设备汇总 危险度等级 防护水平 实验操作和安全设备 ABSL限制出入， 1级 ABSL-1 限制出入，穿戴防护服和手套 2级 ABSLABSL-2 ABSL- 的操作加：危险警告标志。 ABSL-1的操作加：危险警告标志。 可产生气溶胶的操作应使用Ⅰ级或Ⅱ 可产生气溶胶的操作应使用Ⅰ级或Ⅱ BSC。 级BSC。废物和饲养笼舍在清洗前先 清除污染。 清除污染。 ABSL- 的操作加：准入控制。 ABSL-2的操作加：准入控制。所有 操作均在BSC内进行， BSC内进行 操作均在BSC内进行，并穿着特殊防 护服。 护服。 ABSL- 的操作加：严格限制出入。 ABSL-3的操作加：严格限制出入。进 入前更衣。配备Ⅲ BSC或正压服所 入前更衣。配备Ⅲ级BSC或正压服所 有废物在清除设施前需先清除污染。 有废物在清除设施前需先清除污染。
二.实验药品、试剂的准备 实验药品、 三.实验器械的准备 实验器械准备得充分、适当， 实验器械准备得充分、适当，有助于实验的顺 利完成。 利完成。 不同类型、部位的实验使用的实验器械种类、 不同类型、部位的实验使用的实验器械种类、数 量不尽一致。 量不尽一致。 实验器械包括完成实验所需要的检测仪器、 实验器械包括完成实验所需要的检测仪器、实验 时动物的固定器械、动物外科手术器械。 时动物的固定器械、动物外科手术器械。
3级
ABSLABSL-3
4级
ABSLABSL-4
ABSL：动物生物安全水平；BSC：生物安全柜。 ：动物生物安全水平； ：生物安全柜。
动物的引进
在动物实验的各项准备工作中， 在动物实验的各项准备工作中，动物的引进是一个 重要的环节。在引进动物前，应确定引进动物的种 重要的环节。 在引进动物前， 品系、规格、数量及动物微生物控制等级等。 类、品系、规格、数量及动物微生物控制等级等。 引进动物前，应检查各项准备工作是否就绪， 引进动物前，应检查各项准备工作是否就绪，如饲 养动物的器具、器材是否准备好， 养动物的器具、器材是否准备好，饲养室的卫生和 消毒情况；此外，还应检查动物的笼卡、 消毒情况；此外，还应检查动物的笼卡、实验记录 垫料、饲料、秤等实验必须品是否准备好。 本、垫料、饲料、秤等实验必须品是否准备好。
（一）普通动物实验观察室环境设施 条件要求
1． 环境特点 ①普通环境设施符合动物饲养的基本要求，不 普通环境设施符合动物饲养的基本要求， 能完全控制传染因子；②没有进行严格的环境 能完全控制传染因子； 控制和微生物控制， 控制和微生物控制，但也应达到普通动物环境 条件的基本要求； 条件的基本要求；③普通环境室内空气与外界 直接相通； 直接相通；④适用于普通动物实验的饲养观察 2．饲养观察室内需要的基本设备
动物实验室及相关设施
动物实验设施是指以研究、试验、教学、生物制品和药 动物实验设施是指以研究、试验、教学、 品生产等为目的，进行实验动物饲养、试验的建筑物、 品生产等为目的，进行实验动物饲养、试验的建筑物、设 备以及运营管理在内的总和，包括： 备以及运营管理在内的总和，包括：一般动物实验环境设 特殊动物实验设施、实验仪器设备。 施、特殊动物实验设施、实验仪器设备。 用于一般动物实验的环境根据对饲养动物的微生物控制程 度和空气净化程度，分为： 度和空气净化程度，分为： • 普通环境（Conventional condition）普通级动物实验 普通环境（ condition） • 屏障环境（Barrier Condition）SPF级动物实验 屏障环境（ Condition）SPF级动物实验 • 隔离环境（Isolation condition) 悉生和无菌动物实验 隔离环境（
抽卡片法随机分组
随机分组 15 抽卡数字 8 6 4 7 10 13 7 7 6 2 11 4 2 12 9 除以3 除以3的余数 2 0 1 1 1 2 1 1 0 2 2 1 2 0 0 初步分组 c a b b b c b b a c c b c a a 表中b组为6 组为4 需再调整。 表中 b 组为 6 只 ， a 组为 4 只 ， 需再调整 。 再重新抽一 卡片， 将其数字除以6 卡片 ， 将其数字除以 6 得余数为几即挑第几只放入第 三组。 三组。 随机数字表法： 随机数字表法：基本同上 动物编号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14