(精品)怎样确定小鼠灌胃剂量 中药粗提取物
小鼠抗应激实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本研究旨在探讨不同应激处理对小鼠抗应激能力的影响，并评估一些已知具有抗应激作用的中药提取物（如黄芪、党参等）对小鼠抗应激能力的调节作用。
二、实验材料与设备1. 实验动物：健康昆明种小鼠，体重18-22g，雌雄各半。
2. 实验材料：黄芪、党参提取物，褪黑素，生理盐水等。
3. 实验设备：动物行为学实验箱，电子天平，水浴锅，显微镜等。
三、实验方法1. 实验分组：将小鼠随机分为以下五组：- 正常对照组（NC）- 应激组（S）- 黄芪组（HS）- 党参组（HS）- 褪黑素组（MT）2. 应激处理：对S组、HS组、HS组和MT组小鼠进行束缚性应激处理，每日束缚1小时，连续7天。
3. 药物处理：HS组小鼠灌胃给予黄芪提取物，HS组小鼠灌胃给予党参提取物，MT 组小鼠灌胃给予褪黑素，剂量均为20mg/kg体重，连续7天。
4. 抗应激能力评估：- 抗缺氧能力：将小鼠放入含有1%NaOH的缺氧瓶中，记录小鼠存活时间。
- 抗热应激能力：将小鼠放入40℃的热水中，记录小鼠游泳时间。
- 抗痛应激能力：采用热板法，记录小鼠舔舐热板的时间。
四、实验结果1. 抗缺氧能力：与NC组相比，S组小鼠存活时间明显缩短（P<0.05），HS组和HS组小鼠存活时间有所延长，但与NC组相比差异不显著（P>0.05）。
MT组小鼠存活时间与NC组无显著差异（P>0.05）。
2. 抗热应激能力：与NC组相比，S组小鼠游泳时间明显缩短（P<0.05），HS组和HS组小鼠游泳时间有所延长，但与NC组相比差异不显著（P>0.05）。
MT组小鼠游泳时间与NC组无显著差异（P>0.05）。
3. 抗痛应激能力：与NC组相比，S组小鼠舔舐热板的时间明显缩短（P<0.05），HS组和HS组小鼠舔舐热板的时间有所延长，但与NC组相比差异不显著（P>0.05）。
MT组小鼠舔舐热板的时间与NC组无显著差异（P>0.05）。
药理学小鼠灌胃实验报告
药理学小鼠灌胃实验报告药理学小鼠灌胃实验报告摘要：药理学研究是为了解药物在生物体内的吸收、分布、代谢和排泄等过程，为药物的合理应用提供依据。
小鼠灌胃实验是一种常用的药效学研究方法，通过给小鼠经口给药，观察药物的生物利用度、毒副作用等指标，可以评价药物的药理学特性。
本文将从深度和广度两个方面对药理学小鼠灌胃实验进行全面评估。
一、实验原理及操作步骤1. 实验原理药物的药理学特性可以通过小鼠灌胃实验来评价。
该实验方法主要通过给小鼠灌胃给药，观察药物在小鼠体内的吸收、分布、代谢和排泄等过程，从而了解药物的药效学特性。
2. 操作步骤（1）实验前准备：选择雄性小鼠作为实验对象，确保小鼠的健康状态和芳龄相近。
准备好药物溶液，根据实验需要确定适当的剂量。
（2）给药：使用专用的灌胃针，将药物溶液缓慢灌入小鼠的胃部。
注意控制给药速度，避免因过快引起窒息或误灌导致不准确的实验结果。
（3）观察与记录：给药后，观察小鼠的行为变化和可能的毒副反应，记录实验数据。
（4）实验结束：根据实验设计的要求，观察一定的时间后，将小鼠处死，采集相应的样本进行分析，如血液、脏器等。
二、实验结果与讨论1. 药物的生物利用度药物的生物利用度是指药物经口给药后进入循环系统的百分比，是评价药物口服给药效果的重要指标。
通过小鼠灌胃实验可以评价药物的生物利用度，并为进一步研究药物的药代动力学提供参考。
2. 药物的毒副作用在药理学研究中，了解药物的毒副作用是至关重要的。
小鼠灌胃实验可以观察药物给予后小鼠的行为变化、脏器损害等，从而评估药物的安全性和毒副作用。
3. 药物的代谢和排泄小鼠灌胃实验还可以通过观察药物在小鼠体内的代谢和排泄情况，了解药物在体内的代谢途径和动力学特性。
这对于评价药物的合理用药和药物的代谢途径研究具有重要意义。
三、个人观点和理解药理学小鼠灌胃实验是一种常见的评价药物药理学特性的方法。
通过灌胃给药，可以模拟人体的口服给药情况，更加贴近临床的实际应用情况。
胃肠动力测试实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本研究旨在通过胃肠动力测试，探讨大黄对小鼠胃肠推进作用的影响，为中药大黄在胃肠疾病治疗中的应用提供科学依据。
二、实验材料1. 实验动物：清洁级雄性昆明小鼠，体重（20±2）g，共40只。
2. 实验药物：大黄提取物（以干重计）。
3. 实验试剂：生理盐水、肝素钠、生理盐水溶液。
4. 实验仪器：胃肠动力测试仪、电子天平、手术显微镜、剪刀、镊子、注射器等。
三、实验方法1. 动物分组：将40只小鼠随机分为4组，每组10只，分别为正常对照组、大黄低剂量组、大黄中剂量组和大黄高剂量组。
2. 给药方法：大黄低剂量组给予大黄提取物100mg/kg，大黄中剂量组给予大黄提取物200mg/kg，大黄高剂量组给予大黄提取物400mg/kg，正常对照组给予等体积的生理盐水。
各组小鼠均通过灌胃方式给药，连续给药7天。
3. 胃肠动力测试：在实验结束后，采用胃肠动力测试仪对各组小鼠进行胃肠动力测试。
具体操作如下：a. 将小鼠麻醉后，固定于手术显微镜下。
b. 用手术剪刀在腹部进行开腹手术，暴露出小肠。
c. 将肝素钠溶液注入小肠，以防止血液凝固。
d. 将小肠插入胃肠动力测试仪，记录胃肠蠕动情况。
e. 测试结束后，将小鼠恢复麻醉状态，并进行缝合。
4. 数据分析：采用SPSS 22.0软件对实验数据进行统计分析，比较各组小鼠的胃肠蠕动速度、蠕动频率等指标。
四、实验结果1. 各组小鼠的胃肠蠕动速度：大黄低剂量组、大黄中剂量组和大黄高剂量组的胃肠蠕动速度均显著高于正常对照组（P<0.05）。
2. 各组小鼠的胃肠蠕动频率：大黄低剂量组、大黄中剂量组和大黄高剂量组的胃肠蠕动频率均显著高于正常对照组（P<0.05）。
五、讨论本研究结果表明，大黄对小鼠胃肠推进作用具有显著促进作用。
大黄中的有效成分可能通过调节胃肠神经递质、平滑肌收缩等功能，促进胃肠蠕动，从而改善胃肠动力障碍。
六、结论大黄具有促进胃肠蠕动的作用，可为中药大黄在胃肠疾病治疗中的应用提供科学依据。
大小鼠灌胃
大、小鼠灌胃给药标准操作规程【操作规范】1.抓取实验动物，在手中要稳，使鼠不可随意挣扎。
2.保持鼠头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入口腔。
3.灌胃针头从动物嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进，进入食管后会有一个刺空感。
4.将灌胃针沿咽后壁慢慢插入食道，回抽注射器无空气逆流方可注入药液。
5.灌胃针进入不宜过深，一般灌胃针插入深度为：小鼠2-3cm，大鼠4-6cm。
6.常用一次灌胃量：小鼠0.2 mL/10g（体重×20），大鼠1-2 mL/100g。
7.小鼠＜30g，建议用8、9号；30g以上可选择12号灌胃针（配1ml注射器）。
其中9号针头直径小于常规的大头，特别适用幼鼠。
大鼠多用16号，20号，并根据注射药物的量配套2或5ml的注射器。
【灌胃针选择】【循环途径】食管→胃→小肠→小肠毛细血管（吸收入血）→空回肠静脉→肠系膜上静脉→肝门静脉→肝→肝静脉→下腔静脉→右心房→右心室的吸收进入血液循环。
【主要特点】●安全性高：各种给药方式中，口服给药是最安全的；●可选的剂型比较多：只要保证药物是均匀且稳定即可；●生物利用度低：药物经胃肠道吸收，并存在胃肠道首过代谢和肝脏首过代谢，生物利用率相对较低，仅为静脉的25-30%；对于部分化合物吸收不恒定，误差较大。
【常见问题】1.灌胃后，为何小鼠死亡？A.因为小鼠的气管靠近食管，若灌胃针误入气管，药物会进入气管导致小鼠当场窒息死亡；B.刺伤食道：若入针不当，损伤或穿破食管，会导致小鼠逐渐消瘦并死亡。
2.灌胃时为了避免小鼠死亡，最应该注意？一定要主要正确抓取和插入。
抓取时：小鼠体位一定要保持，头、颈部及身体一条线，尽量保证插入的是食管而不是气管。
插入时：嘴角进针，然后竖直向下，先试探性的稍微用力，慢慢向下，一旦感觉有阻碍就得停止，针无阻力才可注射。
3.大鼠灌胃和小鼠区别主要在于哪里？大鼠操作步骤与小鼠基本一样，但因大鼠个体很大，易挣扎，所以难度更大，所以一定要准确抓取；另外灌胃针型号不一样，多用16号，20号适合更大型大鼠，并根据注射药物的量配套2或5ml的注射器。
中药材提取物功能研究
中药材提取物功能研究1材料1.1饲养动物选取体重在18~22g的雄性小鼠，小鼠及鼠粮购于兰州大学医学校区。
本实验室饲养条件：饲养房温度控制在37℃，小鼠在专用鼠笼中进行饲养，每天更换水瓶，每天添加鼠粮，垫料每两天更换一次。
1.2 实验器材毛巾、鱼网、卫生纸、医疗胶布、铅皮、回形针、塑料桶、小太阳、热得快、小注射器、灌喂针、鼠笼、水瓶、计时器、锡纸、称量纸、滤纸、50mL冻存管管、5mL冻存管、冰盒、标记笔、Eppendorf管、酶标板、一次性试管、10mL玻璃试管、试管架、棕色试剂瓶、量筒、移液器及枪头、密封瓶、保鲜膜、液氮罐。
1.3实验仪器表1-1实验主要仪器名称型号产地水迷宫电子天平CP214 中国上海恒温水浴锅B-260 中国上海紫外分光光度计754N 中国上海荧光酶标仪1.4 实验溶液及试剂生理盐水、4%多聚甲醛固定液、液氮、冰醋酸、浓硫酸。
（1）4%多聚甲醛固定液配制：NaH2PO4·2H2O 2.964 gNa2HPO4·12H2O 29.010 g多聚甲醛40 gdH2O 1000 mL总量 1 L（2）A药配制：将A原液稀释一倍为I液A中浓度：取I液50mL，定容至200mL(按照需要剂量同比例缩小！下同)；A高浓度：取II液150mL，定容至200mL。
（3）B药配制：将B原液稀释一倍为II液B中浓度：取II液60mL，定容至200mL；B高浓度：即II液。
注意：每次灌喂之前需要摇匀；剂量：0.2毫升/10克体重1.5实验所需试剂盒总抗氧化能力（T－AOC）测试盒、丙二醛（MDA）测试盒、超氧化物歧化酶（SOD）测试盒、肝/肌糖原测试盒、活性氧（ROS）检测试剂盒及BCA蛋白定量试剂盒均购于南京建成生物工程研究所。
1.6实验经费表1-2实验经费表名称单价数量总价实验小鼠 5.00 140 700.00鼠粮1袋毛巾卫生纸医用胶布铅皮塑料桶电暖气热得快生理盐水锡纸液氮酶标板（96孔）一次性试管量筒冰醋酸（500mL）浓硫酸（500mL）移液器（0~5000mL）保鲜膜T-AOC测试盒MDA测试盒SOD测试盒肝/肌糖原测试盒ROS检测试剂盒BCA蛋白定量试剂盒1.005.0050.0010.0030.003.00150.00250.00500.00160.00680.002条1袋3条4个1台2个4瓶1卷10 L2板5包1瓶1瓶1卷2盒2盒2盒2盒2盒2盒3.0020.0050.00100.0060.00300.00500.001000.00320.001360.002方法2.1小鼠体重进行称量先将购买的实验小鼠适应性喂养1d，然后将小鼠随机分为6组：A药高浓度组、A药中浓度组、B药高浓度组、B药中浓度组、正常对照组及训练对照组。
小鼠灌胃的操作和注意事项
小鼠灌胃的操作和注意事项
答案：
在动物实验中，灌胃给药是一种常用的给药方式，尤其在生理、药理、免疫等多个学科的研究中。
本文将详细介绍小鼠灌胃给药的过程和注意事项。
灌胃给药方法适用于小鼠和大鼠等多种实验动物，操作简便，用药剂量准确。
在给药过程中，需要严格控制给药的量和次数，以确保实验结果的准确性。
首先，我们需要根据小鼠的体重和药浓度来确定给药的量。
一般来说，20g左右的小鼠可以给0.2毫升药物。
在给药过程中，我们要保持小鼠的头部和颈部成一条直线，避免药物流入口腔。
在给药时，我们用左手抓住小鼠的颈部，向下压，收紧，提起。
同时，要用右手拿着灌胃针，压着小鼠的舌头，从上颚轻轻向内进入。
在这个过程中，我们要密切关注小鼠是否有吞咽的动作。
如果遇到阻碍，我们可以轻轻晃动灌胃针，直到遇到刺空感为止。
对于大鼠的灌胃给药，我们首先要将大鼠头部固定好，使其不能随意摆动，使大鼠身体成一条直线。
然后，我们从大鼠一侧口角入针，沿上颚，咽后壁，顺着大鼠的吞咽动作将其引入胃内。
在此过程中，我们要密切关注大鼠的反应，避免其出现明显的挣扎和呛咳现象。
紫茎泽兰乙醇提取物小鼠灌胃给药 LD50测定
紫茎泽兰乙醇提取物小鼠灌胃给药 Ｌ Ｄ 测定
杨红芹 张旭强 董寿堂 龚晓敏 （ 保山中医药高等专科学校 ， 云南 保山 ６ ７ ８ ０ ０ ０ ）
摘要 ： 目的 测定紫茎泽兰乙醇提取物的半数致死量 。 方法 取昆明种小 鼠灌胃给药 ， 首先通过预实验 ， 找出紫茎泽兰
乙醇提取物的 ０ ％和 １ ０ ０ ％致死剂量（ Ｄ —Ｄ 一） ， 以此作为依据 ， 计算正式实验分组的组距 ； 再通过正式实验观察并详
Ａｄｍ ｉ ｎｉ ｓ ｔ ｒ ａｔ ｉ ｏｎ ｉ ｎ Ｍｉ ｃ ｅ
ＹＡＮ Ｇ Ｈｏ ｎ ｇ — ｑ ｉ ｎ ＺＨ ＡＮ Ｇ Ｘ ｕ— — ｑ ｉ ａ ｎｇ Ｄ Ｏ Ｎ Ｇ Ｓ ｈｏ ｕ— — ｔ ａ ｎ ｇ ＧＯ Ｎ Ｇ Ｘｉ ａ ｏ— — ｍｉ ｎ Ｂａ ｏ ｓ ｈａ ｎ Ｃｏ ￣ ｅ ｇ ｅ ｏ ｆ Ｔｒ ａ ｄ ｉ ｔ ｉ ｏ ｎａ ｌ
Ｓ ｐ ｒ ｅ ｎ ｇ ， ａ ｓ ａ ｂ ａ ｓ ｉ ｓ ｆ ｏ ｒ ｔ ｈ ｅ ｏｒ ｆ ｍａ ｌ ｔ ｅ ｓ ｔ ，ｔ Ｏ ｃ ａ ｌ ｃ ｕ ｌ ａ ｔ ｅ ｔ ｈｅ ｇ ｒ ｏ ｕ ｐ ｄ ｉ ｓ ｔ ａ ｎ ｃ ｅ ｏ ｆ ｅ ｘ ｐ ｅ ｉｍ ｅ ｒ ｎｔ ｌ ａ ｇ ｒ ｏ ｕ ｐ ．Ｔｈｅ ｄ ｅ ｔ ａ ｉ ｌ ｅ ｄ ｒ ｅ ａ ｃ ｔ ｉ ｏ ｎ ｓ ａ ｎ ｄ ｄ ｅ ａ ｔ ｈ ｒ ｅ ｓ ｕ ｌ ｔ ｓ ｏ ｆ ｉ ｃ ｍ ｅ ｗｅ ｒ ｅ ｏ ｂ ｓ ｅ ｒ ｖ ｅ ｄ ａ ｎ ｄ ｒ ｅ ｃ ｏｒ ｄ ｅ ｄ ｔ ｈ ｒ ｏ ｕ ｇ ｈ ｔ ｈｅ ｏｒ ｆ ｍ ａ ｌ ｔ ｅ ｓ ｔ ，Ｌ Ｄ５ ０ ｗａ ｓ ｃ ｌｃ ａ ｕ ｌ ａ ｔ ｅ ｄ ｗｉ ｔ ｈ ｐ ｒ ｏ ｂ ｉ ｔ ｗｅ ｉ ｇ ｈ ｔ ｅ ｄ
实验动物用药量的确定及计算方法
实验动物用药量的确定及计算方法（一）动物给药量的确定在观察一药物的作用时，应该给动物多在的剂量是实验开始时应确定的一个重要问题。
剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死，可以按下述方法确定剂量：1．先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干分之一为应用剂量，一般可取1/10-1/5。
2．植物药粗制剂的剂量多按生药折算。
3．化学药品可参考化学结构相似的已知药物，特别是化学结构和作用都相似的药物的剂量。
4．确定剂量后，如第一次实验的作用不明显，动物也没有中毒的表现（体重下降、精神不振、活动减少或其他症状），可以加大剂量再次实验。
如出现中毒现象，作用也明显，则应降低剂量再次实验。
在一般情况下，在适宜的剂量范围内，药物的作用常随剂量的加大而增强。
所以有条件时，最好同时用几个剂量作实验，以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。
如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时，则应慎重分析。
5．用大动物进行实验时，开始的剂量可采用给鼠类剂量的十五分之一～二分之一，以后可根据动物的反应调整剂量。
6．确定动物给药剂量时，要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱。
一般说确定的给药剂量是指成年动物的，如是幼小动物，剂量应减少。
如以狗为例：6个月以上的狗给药量为1份时，3-6个月的给1/2份，45-89日1/4份，20-44日的给1/8份，10-19日的给1/16份。
7．确定动物给药剂量时，要考虑因给药途径不同，所用剂量也不同，以口服量为100时，灌肠量应为100-200，皮下注射量30-50，肌肉注射量为25-30，静脉注射量为25。
（二）实验动物用药量的计算方法动物实验所用的药物剂量，一般按mg/kg体重或g/kg体重计算，应用时须从已知药液的浓度换算出相当于每kg体重应注射的药液量（ml数），以便给药。
例1：计算给体重1.8kg的家兔，静脉注射20%氨基甲酸乙酯溶液麻醉，按每kg体重1 g的剂量注射，应注射多少ml？计算方法：兔每kg体重需注射1g，注射液为20％，则氨基甲酸乙酯溶液的注射量应为5ml/kg体重，现在兔体重为1.8kg，应注射20%氨基甲酸乙酯溶液用量=5×1.8=9ml。
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2.1 人与动物及不同种属动物之间的剂量换算方法
2.1.1 体表面积换算法
按体表面积换算给药剂量的基本公式为：DB=DA×K1 （公式一）
（注：DA、DB均为标准体重动物给药剂量，K为人和动物间按体表面积换算的等效剂量比值，见表1 。
）
表1 人和动物间按体表面积换算的等效剂量比值表[1]
K B
小鼠
（20g）大鼠
(200g) 豚鼠
(400g) 家兔
(1.5kg) 猫
(2kg) 犬
(12kg) 人
(70kg)
A 小鼠（20g） 1.0 7.0 12.25 27.8 29.7 124.0
387.9
大鼠（200g）0.14 1.0 1.74 3.9 4.2 17.8
56.0
豚鼠(400g) 0.08 0.57 1.0 2.25 2.4 9.2
31.5
家兔(1.5kg) 0.04 0.25 0.44 1.0 1.08 4.5
14.2
猫(2kg) 0.03 0.23 0.41 0.92 1.0 4.1 13.0
犬(12kg) 0.008 0.06 0.10 0.22 0.23 1.0 3.1
人（70kg）0.0025 0.018 0.031 0.07 0.078 0.32
1.0
（注：表中A为已知，B为未知）
具体计算方法举例如下：
例1：已知成人（标准体重70kg体重）给药剂量为500mg，实验中大鼠给药量应为多少？按公式一计算如下：D大鼠= D人×K= 500×0.018 = 9mg（为200g大鼠标准体重用量），如要换算成大鼠每公斤体重用药量则为：9×5=45mg/kg
例2：已知大鼠用药量为45mg/kg，实验中小鼠用药量为多少？
本例中给出的大鼠用量为每公斤体重用量，要代入公式计算需要进行转换。
第一步：计算标准体重大鼠（200g）用量为：45mg/5=9mg/200g体重
第二步：按公式一计算小鼠用量：D小鼠= D大鼠×K=9mg×0.14=1.26mg（20g 体重小鼠用量）,如要换算成每公斤体重小鼠用量则为1.26mg×50 = 63mg/kg
2.1.2 体型系数换算法
按体型系数换算给药剂量的基本公式为：DB=DA×（RB/RA）×（WA/WB）1/3 （公式二）（注：DA、DB是A、B两种动物每公斤体重剂量，RA、RB是A、B两种动物体型系数，见表2；WA、WB是标准动物体重。
）
表2 不同种属动物体型系数[2]
动物种类小鼠
（20g）大鼠
(200g) 豚鼠
(400g) 兔
(1.5kg) 猫
(2kg) 犬
(12kg) 人
(70kg)
体型系数R 59 90 99 93 82 104 100
具体计算方法举例如下：
例1：已知成人（体重70kg）临床给药量为500mg，大鼠给药量为多少？
第一步：先换算成每公斤体重用量：成人为500mg/70kg=7.14mg/kg
第二步：按公式二计算大鼠用量：
D大鼠= D人×（R大鼠/R人）×（W人/W大鼠）1/3
=7.14mg/kg×（90/100）×（70kg/0.2kg）1/3=45.3mg/kg
例2：已知大鼠给药量为45mg/kg，实验中小鼠给药量为多少？
小鼠给药量D小鼠= 45mg/kg×（59/90）×（0.2kg/0.02kg）1/3= 63.5mg/kg
2.1.3 动物公斤体重剂量换算系数换算法
按动物公斤体重剂量换算系数换算给药剂量的基本公式：DB=DA×K (公式三）（注：K为动物公斤体重剂量换算系数，见表3；DA、DB为动物kg体重用药量。
）表3 动物与人每公斤体重剂量换算系数表[3]
K B
小鼠
（20g）大鼠
(200g) 豚鼠
(400g) 家兔
(1.5kg) 猫
(2kg) 犬
(12kg) 人
(70kg)
A 小鼠（20g） 1.0 0.7 0.61 0.37 0.30 0.21。