医学实验动物学实验一大、小鼠给药、采血、麻醉和解剖
动物实验报告【范本模板】
实验动物学实验报告学院：学号：姓名时间：实验一：小鼠实验一、实验目的1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法；2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法；3、掌握小鼠的标记方法;4、掌握小鼠的基本采血技术；5、掌握小鼠的常用给药方法;6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置;二、实验材料1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠；2、实验器械及试剂:鼠笼;小鼠固定器和小鼠固定板;眼科剪;眼科镊；解剖刀；1ml 注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料;葡萄糖液；2％水合氯醛；三、实验内容及方法1、小鼠的抓取和固定抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中,把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。
这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
2、小鼠的雌雄鉴别雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。
幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌,远者为雄。
另外,雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。
3、小鼠的标记方法1）耳孔法用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位.2）剪趾法适用于出生一周以内新生仔鼠；3）染色法用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位,注意逆着毛发生长方向刷。
4、小鼠的基本采血1）剪尾采血当所需血量很少时采用本法.固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。
将鼠尾擦干,再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。
取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。
也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割,并自尾尖向尾根方向切割,每次可取0.2～0.3ml血，切割后用棉球压迫止血.这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血,进行血常规检查.2)眼眶后静脉丛取血当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。
实验动物学实验报告大鼠,小鼠,小鼠的基本实验操作,大鼠的基本实验操作
实验一小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。
二、实验动物:昆明小鼠2只(1雌1雄)三、实验步骤1、抓取与固定,标记2、去毛3、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉6、处死:脊椎脱臼法7、解剖:雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明)雌性:双角子宫、卵巢肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺四、实验结果1、抓取与固定标记:抓取:抓小鼠的尾根部固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指与食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指与无名指将尾巴固定在手掌面。
并标记: 2、灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0、5ml3、注射给药:腹腔注射:从下腹部的两侧进针 ,进针时针与腹部成45°。
进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指与拇指将尾拉直,食指托住尾部,在尾动脉位置进针注射0、5ml生理盐水。
注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。
4、采血从眼角内侧0、5cm处进针眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。
5、麻醉:0、5%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重22g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功6、处死:脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死7、解剖:雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺雌性:双角子宫、卵巢 3、7、2 肾上腺:米粒大小胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状 3、7、4 ,胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,甲状腺:紧贴环状软骨 ,另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏。
小鼠的基本实验操作
口角进针，紧贴咽后壁进入消化道 进针2/3后灌生理盐水0.
• 尾-尾植皮法 生殖器与肛门之间距离长，毛发密
头部：开颅取脑。 生殖器与肛门之间距离长，毛发密 KM小鼠2只〔1雌1雄〕
近交系小鼠皮肤移植试验
• 三、步骤 • 1、异体尾-背植皮法 • 〔1〕麻醉 固定 • 〔2〕受体小鼠，背部剪毛
• 5、解剖
•
腹腔：肝脏、胃、肠道、胰腺、脾脏、
肾脏、肾上腺、输尿管、膀胱；卵巢、输卵管、
子宫；睾丸、附睾、输精管。
•
胸腔：肺、心脏。
•
颈部：甲状腺。
兔的一般实验操作
• 1、抓取和固定
• 2、性别鉴定
兔的一般实验操作
• 3、给药 • 〔1〕灌胃 • 〔2〕耳缘静脉注射
• 4、采血
• 〔1〕耳缘静脉采血
小鼠的根本实验操作
小鼠的根本实验操作
一、实验目的 通过实际操作，掌握小鼠的一般操作方
法，包括小鼠的抓取和固定、性别鉴定、 编号、去毛、给药、采血、麻醉、处死。
二、实验动物 KM小鼠4只〔2雌2雄〕
小鼠的根本实验操作
三、操作 口角进针，紧贴咽后壁进入消化道
5cm〕，酒精消毒，去皮〔0. 〔2〕在肾脏下方找到卵巢和子宫角，游离卵巢并摘除 近交系小鼠皮肤移植试验
小鼠卵巢摘除术
• 方法： • 〔1〕雌性小鼠〔已麻醉〕，右侧卧位，以
左腹外侧区〔左肋弓下缘〕为手术区，剪 毛，酒精消毒，沿腹中线平行切开1cm • 〔2〕在肾脏下方找到卵巢和子宫角，游离 卵巢并摘除 • 〔3〕消毒，缝合 • 〔4〕按上述方法摘除右侧卵巢
豚鼠和兔的一般实验操作
豚鼠的一般实验操作
实验动物学实验报告范文大鼠小鼠小鼠基本实验操作大鼠基本实验操作小鼠的给药方法
实验动物学实验报告范文大鼠小鼠小鼠基本实验操作大鼠基本实验操作小鼠的给药方法实验动物学实验报告大鼠,小鼠,小鼠的基本实验操作,大鼠的基本实验操作实验动物学实验报告大鼠,小鼠,小鼠的基本实验操作,大鼠的基本实验操作实验一小鼠的基本实验操作实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。
二、实验动物:昆明小鼠2只(1雌1雄)三、实验步骤1、抓取与固定,标记2、去毛3、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉6、处死:脊椎脱臼法7、解剖:雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明)雌性:双角子宫、卵巢肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺四、实验结果1、抓取与固定标记:抓取:抓小鼠的尾根部固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指与食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指与无名指将尾巴固定在手掌面。
并标记:2、灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0、5ml3、注射给药:腹腔注射:从下腹部的两侧进针,进针时针与腹部成45°。
进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指与拇指将尾拉直,食指托住尾部,在尾动脉位置进针注射0、5ml生理盐水。
注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。
4、采血从眼角内侧0、5cm处进针眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。
5、麻醉:0、5%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重22g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功6、处死:脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死7、解剖:雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺雌性:双角子宫、卵巢3、7、2肾上腺:米粒大小胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状3、7、4,胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,甲状腺:紧贴环状软骨,另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏。
实验动物学报告1
实验名称：小鼠的一般操作实验日期：姓名：学号：专业：一、实验目的和要求掌握小鼠实验的一般操作：动物的抓取和保定，性别鉴定，编号，给药，麻醉，采血，处死，解剖等。
二、实验准备1、动物：昆明小鼠，雌雄各2只2、器械：毛笔，解剖剪，解剖镊，眼科剪，眼科镊，解剖板，灌胃针，注射器，头皮针，干棉球及酒精棉球，20ul采血针。
3、药品：苦味酸，0.9%生理盐水及2%水合氯醛三、实验步骤1、抓取和保定右手将小鼠尾巴提起，置于粗糙的平面上，此时小鼠向前挣扎，用左手拇指和食指捏住小鼠颈背部皮肤，翻转小鼠，其背部置于掌心，小指压住小鼠尾巴2、性别鉴定小鼠抓取后翻转，观察肛门与生殖器之间的距离，距离远者为雄性，近者为雌性。
雄性小鼠睾丸降至阴囊内，生殖器有明显突起；雌性小鼠的肛门至会阴处为无皮毛覆盖的细线。
3、编号用苦味酸（黄色）的酒精饱和溶液逆着小鼠的毛染色（可维持1~2个月）不同的颜色部位代表不同的标号。
一般习惯上的部位顺序为：1左前肢。
2左腹部，3左后肢，4头颈部，5背部，6尾根部，7右腹部9右后肢。
4、给药（1）灌胃左手抓取和固定小鼠，特别是其头颈部，右手持灌胃针，用灌胃针轻轻压其头部，尽量使其口腔和食道成一条直线再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道，当灌胃针进入约3cm左右时即到达胃内，向胃内注射0.9%生理盐水后轻轻抽出灌胃针，小鼠每次最大灌胃量为0.5ml。
（2）腹腔给药左手抓取和固定小鼠，右手持注射器，从左下腹部腹股沟上约0.5cm，腹中线旁外1cm进针，进针时腹部平面形成45度，进针深度约1cm。
（3）尾静脉注射将小鼠放入固定的小笼内，尾巴滞留在外，消毒尾部，并挤压尾根部用左右拇指和食指控制小鼠尾巴角度。
右手持注射器，使其与尾两侧的静脉平行，从尾下1/4处进针，将注射器外套置于拇指与中指交叉处，保持针头刺入点、血管、注射器成一条直线。
向充盈的尾静脉刺入3—5mm，食指及中指夹住注射器外套，拇指推注射器，将0.9%生理盐水按一定速度推入。
小鼠系统解剖实验报告
一、实验目的1. 了解小鼠的解剖结构，熟悉小鼠的内部器官及其相互关系。
2. 掌握解剖工具的使用方法，提高实验操作技能。
3. 通过观察小鼠解剖结构，加深对生物学知识的理解。
二、实验材料与工具1. 实验动物：昆明小鼠1只2. 实验工具：解剖剪、解剖镊、解剖针、解剖盘、解剖显微镜、解剖刀、生理盐水、消毒棉球等3. 实验试剂：戊巴比妥钠、10%福尔马林三、实验步骤1. 麻醉与处死- 用戊巴比妥钠溶液对小鼠进行腹腔注射，剂量为0.5ml/100g体重。
- 待小鼠麻醉后，用剪刀剪断小鼠颈部，使小鼠死亡。
2. 皮肤剥离- 在小鼠腹部正中线切开皮肤，剪开两侧皮肤，直至四肢。
- 用解剖剪将皮肤与肌肉分离，暴露出腹腔。
3. 腹腔器官解剖- 撕开腹腔，观察腹腔器官的排列顺序和相互关系。
- 按顺序解剖以下器官：- 脾脏：位于腹腔左侧，呈暗红色，用手触摸可感知质地。
- 肝脏：位于腹腔右侧，呈暗红色，质地较脾脏软。
- 胃：位于腹腔上方，呈粉红色，用手触摸可感知蠕动。
- 小肠：位于腹腔下方，呈粉红色，呈螺旋状排列。
- 肾脏：位于腹腔背部，呈红褐色，用手触摸可感知质地。
- 膀胱：位于腹腔下方，呈淡黄色，用手触摸可感知质地。
4. 胸腔器官解剖- 撕开胸腔，观察胸腔器官的排列顺序和相互关系。
- 按顺序解剖以下器官：- 心脏：位于胸腔中部，呈粉红色，用手触摸可感知心跳。
- 肺：位于胸腔两侧，呈粉红色，用手触摸可感知呼吸。
- 食管：位于胸腔前方，呈粉红色，用手触摸可感知蠕动。
5. 神经系统解剖- 撕开颅骨，观察大脑、脊髓和神经的排列顺序和相互关系。
- 按顺序解剖以下器官：- 大脑：位于颅腔内，呈粉红色，用手触摸可感知质地。
- 脊髓：位于脊柱内，呈粉红色，用手触摸可感知质地。
- 神经：分布于全身各处，用手触摸可感知质地。
6. 器官固定与保存- 将解剖出的器官用生理盐水清洗，放入10%福尔马林溶液中固定。
四、实验结果1. 小鼠的器官排列顺序和相互关系清晰，解剖结构完整。
小鼠颈部采血实验报告
一、实验目的1. 掌握小鼠颈部采血的操作技术。
2. 了解颈部采血在动物实验中的应用及其注意事项。
3. 通过实验，提高实验操作技能和动物福利意识。
二、实验材料1. 实验动物：清洁级昆明小鼠（体重20-25g）。
2. 实验器材：解剖剪、镊子、眼科剪、注射器、注射针、酒精棉球、消毒液、生理盐水、抗凝管等。
3. 实验试剂：肝素抗凝剂。
三、实验方法1. 实验动物适应环境：将小鼠置于安静、温度适宜的实验环境中，适应1-2天。
2. 实验动物麻醉：采用空气栓塞法进行小鼠麻醉。
将小鼠置于解剖盘中，用酒精棉球擦拭颈部皮肤，然后用眼科剪剪去颈部被毛。
左手固定小鼠颈部皮肤，右手持注射针，从颈部后侧向头部方向刺入，注入空气，使小鼠进入麻醉状态。
3. 颈部血管定位：麻醉成功后，观察小鼠颈部血管搏动情况，确定采血部位。
一般选择左侧第3-4肋间的心脏搏动最强处。
4. 颈部采血：左手拇指和食指固定小鼠颈部皮肤，右手持注射针，从心脏搏动最强处穿刺。
当刺中心脏时，血液会自动进入注射器。
采血量根据实验需求确定，一般为0.5-0.6mL。
5. 采血结束：采血结束后，立即用酒精棉球擦拭穿刺部位，防止感染。
观察小鼠恢复情况，必要时给予保暖措施。
6. 实验动物处死：实验结束后，采用空气栓塞法处死小鼠，以避免动物痛苦。
四、实验结果1. 实验成功：小鼠颈部采血操作顺利，采血量符合实验需求。
2. 实验动物恢复情况：采血后，小鼠在短时间内恢复意识，呼吸平稳。
五、实验讨论1. 颈部采血是一种常用的动物采血方法，适用于实验动物心、肺、肾等器官功能的研究。
2. 颈部采血操作需注意以下几点：（1）实验动物麻醉要充分，防止动物挣扎，影响采血操作。
（2）穿刺部位要准确，避免误伤其他器官。
（3）采血过程中要控制好采血速度，防止血压下降过快。
（4）采血结束后，要及时处理实验动物，避免动物痛苦。
3. 本实验采用肝素抗凝剂，可有效防止血液凝固。
但在实验过程中，应注意肝素抗凝剂的剂量，避免抗凝效果过强。
药理学小鼠实验报告
一、实验目的1. 了解药理学实验的基本操作流程。
2. 掌握小鼠给药和采血的方法。
3. 观察药物在小鼠体内的药效和代谢过程。
4. 分析药物的毒副作用。
二、实验材料1. 实验动物：昆明种小鼠，体重18-22g，雌雄各半。
2. 实验药物：某新型抗炎药物（以下简称药物A）。
3. 实验仪器：电子天平、小鼠给药器、离心机、显微镜、恒温水浴锅、注射器、剪刀、镊子等。
4. 实验试剂：生理盐水、肝素钠、抗凝剂等。
三、实验方法1. 实验分组：将实验动物随机分为实验组（给予药物A）和对照组（给予生理盐水）。
2. 给药方法：采用灌胃给药法，实验组小鼠按体重给予药物A，对照组小鼠给予等体积生理盐水。
3. 观察指标：观察小鼠的生理指标（如体温、呼吸、心率等）、行为学指标（如活动、睡眠、摄食等）以及肝肾功能指标。
4. 采血与检测：分别在给药前、给药后1小时、2小时、4小时、8小时、12小时和24小时对小鼠进行尾静脉采血，检测血液中的药物浓度。
5. 组织学观察：对实验组小鼠和对照组小鼠的肝脏、肾脏进行病理学观察。
四、实验结果1. 生理指标：给药后，实验组小鼠体温、呼吸、心率等生理指标与给药前相比无显著差异，与对照组相比无显著差异。
2. 行为学指标：给药后，实验组小鼠活动、睡眠、摄食等行为学指标与给药前相比无显著差异，与对照组相比无显著差异。
3. 肝肾功能指标：给药后，实验组小鼠的肝肾功能指标与对照组相比无显著差异。
4. 药物浓度：给药后，实验组小鼠血液中的药物浓度随时间逐渐降低，给药后8小时基本降至给药前水平。
5. 组织学观察：实验组小鼠的肝脏、肾脏组织学观察与对照组相比无显著差异。
五、讨论1. 本实验结果表明，药物A在小鼠体内具有良好的耐受性，对小鼠的生理指标、行为学指标以及肝肾功能无明显影响。
2. 药物A在体内的代谢过程较快，给药后8小时基本降至给药前水平。
3. 本实验为药物A的临床应用提供了初步依据，为进一步研究药物A的药效和毒副作用奠定了基础。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
实验一 大鼠和小鼠给药、 采血、麻醉和解剖
实验目的
1.掌握大小鼠常用给药方法和采血技术 2.掌握大小鼠的麻醉方法和解剖步骤 3.熟悉大小鼠的解剖 结构
小鼠的抓取和固定(1)
小鼠的抓取和固定(2)
注意点
抓取小鼠时动作要迅速，要轻 防止被小鼠转过头咬，抓其颈后皮肤要
多 万一被咬，应立即挤出血液，清水冲洗
大鼠的抓取与固定(1)
大鼠的抓取与固定(2)
大鼠的抓取与固定(3)
一、小鼠灌胃（给药方法之一）
将实验小鼠徒手固定 灌胃针从嘴角处插入口腔内，紧贴咽
后壁插入食道（1ml注射器，深度大 约为3cm） 推动针管给药（生理盐水） 注意不要插入气管，不要抓的太紧以 致小鼠窒息死亡
安全采血量：小鼠0.3ml;大鼠：2ml!
大鼠心脏采血
五、大鼠大体解剖观察及绘图
1.按0.1ml/10g体重，将SD大鼠用3.5% 水合氯醛腹腔注射麻醉。 2.腹部朝上固定于解剖板。 3. 用10cm剪刀从下腹部向上剪开皮肤， 打开腹腔，观察腹腔内脏器，观察大鼠肝 脏时特别注意大鼠无胆囊。 4. 用14cm剪刀打开胸腔，观察胸腔脏器。 5. 根据大体解剖所见，绘图。
麻醉剂：麻醉药为3.5%水合氯醛，剂量 按大鼠体重0.1ml/10g，200g的大鼠 为2ml。
四、大鼠心脏采血
右下腹腔麻醉（麻醉药为3.5%水合氯醛，剂 量按0.1ml/10g)
待其麻醉后，仰卧位固定在解剖板上 胸骨左侧，腋窝平行线下2-3肋骨间，大鼠心
搏动最强处斜行刺入（1ml注射器） 缓慢抽动针管采血 取血量多时采用（同样适用于小鼠）
最大灌胃量：小鼠1ml;大鼠：8ml!
尾静脉
二、小鼠尾静脉注射（给药方法之二）
固定器固定小鼠 消毒尾部，扩张血管，左右两侧的静脉 将尾巴成一个适宜注射的角度，1ml注射
器平行向心方向刺入三 、大鼠手术麻醉
腹腔注射麻醉：进针点为右下腹腔，进 针角度为与身体成45度，深度约1cm。
解剖观察
操作项目
小鼠：灌胃、尾静脉注射 大鼠：腹腔注射麻醉、心脏
采血、解剖观察
实验报告下次课上交
注意事项:
实验时请不要戏弄动物、防止被动 物咬伤，防止动物逃逸。
实验结束后请协助把器械清洗干净， 整理齐全；废弃物、动物尸体分类 存放。