实验 家兔呼吸运动的调节(参考提供)
家兔呼吸运动的调节实验报告
一、实验目的1. 观察家兔呼吸运动的生理变化，了解呼吸运动的调节机制。
2. 分析血液中化学因素（PCO2、PO2、[H]）对家兔呼吸频率、节律、通气量的影响及调节机制。
3. 探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
呼吸中枢分布于大脑皮层、间脑、桥脑、延髓、脊髓等部位，各级部位相互配合，共同完成呼吸节律性运动。
呼吸运动受体内、外各种因素影响，如血液中CO2分压、PO2、[H]等化学因素，以及迷走神经、肺牵张反射等神经调节机制。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水3. 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水四、实验方法与步骤1. 麻醉与固定：将家兔置于兔体手术台上，用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。
待家兔麻醉后，将其背位固定在手术台上。
2. 气管插管：在颈部切开皮肤，分离气管，插入气管插管，连接呼吸传感器。
3. 分离迷走神经：在颈部分离双侧迷走神经，穿线备用。
4. 记录呼吸运动：启动计算机采集系统，记录家兔呼吸频率、节律、通气量。
5. 观察血液中化学因素对呼吸运动的影响：a. 向气管插管内注入一定量的CO2，观察呼吸运动的变化；b. 向气管插管内注入一定量的生理盐水，观察呼吸运动的变化；c. 向气管插管内注入一定量的[H]，观察呼吸运动的变化。
6. 观察迷走神经对呼吸运动的影响：a. 切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化；b. 重新连接双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
五、实验结果与分析1. 观察到在注入CO2后，家兔呼吸频率、节律、通气量均增加，表明CO2对呼吸运动具有促进作用。
2. 观察到在注入生理盐水后，家兔呼吸运动无明显变化，表明生理盐水对呼吸运动无明显影响。
3. 观察到在注入[H]后，家兔呼吸频率、节律、通气量均降低，表明[H]对呼吸运动具有抑制作用。
家兔呼吸运动的调节（详细参考）
家兔呼吸运动的调节（详细参考）家兔呼吸运动的调节⼀、实验⽬的1、掌握家兔⽿缘静脉注射法、家兔颈部⼿术操作、神经⾎管分离、⽓管插管技术、记录家兔呼吸曲线2、观察⾎液中化学因素（CO2，O2和[H+]）及药物对呼吸运动的影响、迷⾛神经对呼吸运动的调节⼆、实验原理呼吸运动是受呼吸中枢控制的呼吸肌节律性活动，伴随着压⼒变化⽽使⽓体进出呼吸道。
呼吸运动受神经以及⾎液中PO2，PCO2，[H+]等因素的调节。
药物能作⽤于呼吸中枢⽽影响呼吸运动。
肺牵张反射的传⼊神经是迷⾛神经，通过此反射弧完成正常地节律性呼吸。
三、实验⽤品1、动物：家兔2、器械：动物⼿术器材（⼿术⼑、⼿术剪、⽌⾎钳、玻璃分针,动脉夹，丝线，注射器，兔⼿术台），⽓管插管，橡⽪管3、药品和试剂：20%乌拉坦、⽣理盐⽔等。
四、实验步骤⼀、仪器连接与标定⼆、称重、⿇醉三、固定、剪⽑四、颈部⼿术（颈部正中切⼝—分离软组织—暴露⽓管—钝性分离双侧迷⾛神经—各⾃穿2根丝线备⽤钝性分离⽓管，底下穿棉线备⽤⽓管倒T形切⼝，插⼊Y形⽓管插管，棉线固定五、⽓管插管六、分离迷⾛神经（由⾥向外翻出⽓管⼀侧组织——颈动脉鞘：粗—迷⾛神经中—交感神经细—减压神经）七、腹部⼿术（切开胸⾻下端剑突部位的⽪肤，再沿腹⽩线切开长约2ml的切⼝。
细⼼分离表⾯的组织（勿伤及胸⾻），暴露出剑突与⾻柄（注意不要伤害膈肌2、将系有长线的⾦属钩钩住或⽤线系住胸⾻柄，线的另⼀端接张⼒换能器。
）注意事项分离神经时不能⽤尖的或锋利的⾦属机械；实验观察中，在刺激开始、撤除时，应做好标记。
五、实验结果观察家兔呼吸运动的调节→正常时→窒息时<--1、CO2浓度增加使呼吸运动加强分析：CO2对呼吸有很强的刺激作⽤，每当动脉⾎中PCO2增⾼时呼吸加深加快，肺通⽓量增⼤。
H+刺激延髓化学感受器，间接作⽤于呼吸中枢。
2、缺氧使呼吸运动增加吸⽓末吹吸⽓末抽⽓分析：吸⼊氮⽓时，因吸⼈⽓中缺O2，导致动脉⾎中PO2下降，通过刺激主动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。
兔子的呼吸运动的调节实验报告
兔子的呼吸运动的调节实验报告引言呼吸是生物体维持生命活动的基本过程之一。
呼吸运动的调节对于维持正常生理功能非常重要。
兔子作为常见的哺乳动物，其呼吸运动机制一直是研究的热点之一。
本实验旨在研究兔子的呼吸运动的调节过程，并探讨外界环境因素对呼吸运动的影响。
实验方法实验材料和设备•实验兔（6只）•注射器和针头•氧气供应系统•呼吸频率记录仪•麻醉剂实验步骤1.实验前准备：将实验兔置于实验舱中，使其适应环境。
准备好氧气供应系统和呼吸频率记录仪。
2.注射麻醉剂：使用注射器和针头给实验兔注射一定剂量的麻醉剂，使其进入麻醉状态。
3.观察呼吸运动：记录兔子在麻醉状态下的呼吸频率和呼吸深度，并观察呼吸运动的变化情况。
4.外界环境因素调节：在实验过程中，通过改变室内温度、氧气浓度等外界环境因素来调节兔子的呼吸运动，记录并比较不同环境条件下的呼吸频率和呼吸深度的变化。
5.数据记录和分析：将实验过程中观察到的数据记录下来，使用适当的统计方法进行数据分析，并绘制相应的图表。
实验结果与讨论实验数据显示，在麻醉状态下，兔子的呼吸频率较平时明显降低。
此外，呼吸深度也较平时有所减弱。
这可能是由于麻醉剂的作用导致兔子神经系统的抑制，进而影响了呼吸运动。
在外界环境因素调节下，实验结果显示温度的变化对兔子的呼吸运动有一定的影响。
当室内温度较高时，兔子的呼吸频率和呼吸深度会明显增加；而当室内温度较低时，兔子的呼吸频率和呼吸深度则会明显降低。
这说明温度是调节兔子呼吸运动的一个重要因素。
另外，实验结果还显示氧气浓度的变化也会对兔子的呼吸运动产生影响。
当氧气浓度较高时，兔子的呼吸频率和呼吸深度会明显增加；而当氧气浓度较低时，兔子的呼吸频率和呼吸深度则会明显降低。
这表明氧气浓度是调节兔子呼吸运动的另一个重要因素。
结论通过本次实验，我们了解到兔子的呼吸运动受到多种因素的调节。
其中，外界环境因素如温度和氧气浓度对兔子的呼吸频率和呼吸深度有明显的影响。
家兔呼吸运动的调节实验报告
家兔呼吸运动的调节实验报告本实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制，通过实验观察和数据分析，深入了解家兔呼吸运动的调节规律，为相关生理学研究提供理论依据和实验数据支持。
实验材料与方法。
1. 实验材料，健康的家兔若干只，呼吸频率计、呼吸深度计、心率监测仪等实验设备。
2. 实验方法，将家兔置于实验箱内，记录其正常呼吸状态下的呼吸频率和呼吸深度，并监测其心率。
接着通过不同方式的刺激（如运动、音响刺激等）观察家兔呼吸频率、呼吸深度和心率的变化情况。
实验结果。
1. 正常状态下，家兔的呼吸频率约为每分钟40-60次，呼吸深度约为每次10-15毫升，心率约为每分钟120-150次。
2. 运动刺激后，家兔的呼吸频率明显增加，呼吸深度也有所增加，心率也随之加快。
3. 音响刺激后，家兔的呼吸频率和呼吸深度均有所增加，但心率的变化不明显。
实验分析。
1. 家兔呼吸运动受到外界刺激的调节，运动刺激和音响刺激都能引起家兔呼吸频率和呼吸深度的变化，说明家兔呼吸运动受到外界刺激的调节。
2. 家兔呼吸运动调节具有一定的灵活性，家兔对不同刺激的呼吸反应不同，表明其呼吸运动调节具有一定的灵活性，能够根据外界环境变化做出相应调整。
实验结论。
家兔呼吸运动的调节受到外界刺激的影响，具有一定的灵活性，这为家兔在不同环境下适应生存提供了生理基础。
同时，本实验结果也为相关呼吸生理学研究提供了重要的实验数据支持。
结语。
通过本次实验，我们对家兔呼吸运动的调节机制有了更深入的了解，同时也为今后的相关研究提供了重要的实验基础。
希望本实验结果能够为相关领域的科研工作者提供参考，推动相关领域的研究进展。
家兔呼吸运动的调节
[实验对象]
家兔,2~2.5kg,雌雄不拘
[实验器材和药品]
1.器材：兔手术台、哺乳动物手术器械一 套、Y型气管插管。 CO2球胆、盛有钠石 灰的气囊、张力换能器、BL-410实验系统、 水检压计。
2.试剂和药品：25％乌拉坦溶液（氨基甲 酸乙酯溶液） (1g／kg )
[ 实验方法 ]
1.称重
[观察项目]
表1 不同因素对呼吸功能的影响
观察项目
处 理 前 处 理 后 呼吸频率 幅度 胸内负压 呼吸频率 幅度 米水柱
次/分钟
克
毫米水柱
吸入气中CO2浓度增加
吸入气中O2浓度降低 增大无效腔 切断一侧迷走神经 切断双侧迷走神经
刺激一侧迷走神经中枢端
[ 注意事项 ]
1. 张力换能器上的连线松紧要适中，要与 胸廓皮肤垂直。 2. 每次给予一项处理前均要使呼吸运动恢 复平稳。 3. 胸膜腔穿刺时不要插得过深,以免刺破 肺组织.
正确捉拿家兔
2.麻醉并固定
３．颈部正中手术
(1)分离气管,做一“ ”形切口，气管插 管 (2)分离左右两侧迷走神经（穿线备用）
4. 呼吸描记
5.胸内负压的测量(直接法）
在右侧第5肋骨 上缘进针，插入至 有落空感，水检压 计液面有波动。
6.连接电脑
张力换能器 实验项目 BL－410机能实验系统的 第一通道 呼吸实验 呼吸运动调节
[ 实验目的 ]
1.掌握哺乳动物呼吸运动的描记方法。
2.初步分析呼吸运动的调节及其影响因素。
3.学习胸内负压的测量方法。
4.观察胸内负压的存在及其变化对呼吸功能 的影响。
[ 实验原理 ]
1. 呼吸运动(respiratory movement)是呼 吸中枢节律性活动的反映。 2. 呼吸(respiration)的反射性调节：化 学感受性呼吸反射，肺牵张反射 3. 胸膜腔内压(intrapleural pressure) 即胸内负压
家兔呼吸运动的调节实验报告
家兔呼吸运动的调节实验报告家兔呼吸运动的调节实验报告引言：呼吸是生物体生命活动中不可或缺的过程之一。
对于家兔这类哺乳动物来说，呼吸运动的调节对其生存和适应环境至关重要。
本次实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制，以增进我们对生物体呼吸系统的理解。
实验方法：1. 实验材料准备：本次实验所需材料包括家兔、呼吸频率计、呼吸深度计、氧气浓度计、二氧化碳浓度计等。
2. 实验步骤：首先，将家兔置于实验室的呼吸室中，确保环境温度和湿度适宜。
然后，使用呼吸频率计和呼吸深度计来测量家兔的呼吸频率和呼吸深度。
接下来，使用氧气浓度计和二氧化碳浓度计来测量家兔所处环境中的氧气和二氧化碳浓度。
3. 实验记录：记录家兔在不同环境条件下的呼吸频率、呼吸深度以及环境中的氧气和二氧化碳浓度。
实验结果：通过实验记录的数据，我们得出以下结论：1. 温度对家兔呼吸运动的调节有显著影响。
在较高温度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度明显增加，以促进体内热量的散发。
而在较低温度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以减少体内热量的散失。
2. 湿度对家兔呼吸运动的调节也有一定影响。
在较高湿度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度增加，以帮助散发体内的湿气。
而在较低湿度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以减少体内水分的流失。
3. 氧气浓度对家兔呼吸运动的调节非常重要。
在较低氧气浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度明显增加，以增加氧气的摄入量。
而在较高氧气浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以避免氧中毒。
4. 二氧化碳浓度也对家兔呼吸运动的调节产生影响。
在较高二氧化碳浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度明显增加，以增加二氧化碳的排出量。
而在较低二氧化碳浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以避免呼出过多二氧化碳。
讨论：通过本次实验，我们可以看到家兔呼吸运动的调节是一个相当复杂的过程。
它受到温度、湿度、氧气浓度和二氧化碳浓度等多个因素的影响。
家兔通过调节呼吸频率和呼吸深度来适应不同的环境条件，以保持体内的氧气和二氧化碳平衡。
家兔呼吸运动的调节实验报告
家兔呼吸运动的调节实验报告一、实验目的本实验旨在观察和分析各种因素对家兔呼吸运动的调节作用，深入理解呼吸运动的生理机制以及神经、体液等因素在呼吸调节中的重要性。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌节律性收缩和舒张所引起的胸廓有节律的扩大和缩小。
呼吸运动受神经和体液因素的调节。
神经调节主要包括迷走神经和交感神经，体液调节则包括血液中二氧化碳分压、氧分压和氢离子浓度等的变化。
三、实验材料与方法（一）实验材料1、实验动物：健康家兔 1 只，体重 20 25kg。
2、实验器材：哺乳动物手术器械一套、兔手术台、气管插管、压力换能器、生物信号采集处理系统、50cm 长的橡皮管、20ml 和 5ml 注射器、CO₂气囊、N₂气囊、装有钠石灰的广口瓶、装有空气的广口瓶、生理盐水、3%乳酸溶液等。
（二）实验方法1、家兔称重后，用 20%乌拉坦溶液（5ml/kg）于耳缘静脉缓慢注射麻醉。
将家兔仰卧固定于手术台上，剪去颈部手术部位的被毛。
2、颈部正中切开皮肤，分离气管并插入气管插管，通过压力换能器与生物信号采集处理系统相连，记录呼吸运动曲线。
3、分离双侧迷走神经，穿线备用。
4、观察并记录正常呼吸运动曲线。
四、实验步骤（一）增加吸入气中二氧化碳浓度将装有 CO₂的气囊通过橡皮管与气管插管的侧管相连，使家兔吸入含较高浓度 CO₂的气体，观察呼吸运动的变化。
（二）缺氧将装有 N₂的气囊通过橡皮管与气管插管的侧管相连，使家兔吸入氮气造成缺氧，观察呼吸运动的变化。
（三）增大无效腔将一段 50cm 长的橡皮管连接在气管插管的侧管上，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。
（四）静脉注射乳酸溶液用 5ml 注射器经耳缘静脉缓慢注入 3%乳酸溶液 2ml，观察呼吸运动的变化。
（五）切断迷走神经分别切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
然后再分别刺激切断后的迷走神经中枢端和外周端，观察呼吸运动的变化。
五、实验结果（一）增加吸入气中二氧化碳浓度当家兔吸入含较高浓度 CO₂的气体后，呼吸运动明显加深加快。
生理学实验：家兔呼吸运动的调节
实验数据分析1.正常的家兔呼吸曲线由图可知，本组选取的家兔自身呼吸频率较快，幅度加大，后续增强呼吸的因素作用不是十分明显。
2.接空气气囊的家兔呼吸曲线图2.接空气气囊的家兔呼吸曲线曲线由图可知，改接空气气囊后，家兔呼吸幅度和频率均未出现太大变化。
3.接CO2气囊的家兔呼吸曲线CO2图3.接CO2气囊的家兔呼吸曲线由图可知，接CO2气囊后，家兔呼吸曲线幅度增大，频率加快。
这是因为CO2是调节呼吸运动最重要的生理性因素，不但对呼吸有很强的刺激作用，而且对维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动是必须的。
当呼入气体中CO2浓度升高，血液中CO2浓度随之升高，CO2透过血脑屏障使脑脊液的CO2浓度也升高。
CO2与水反应生成H 2CO3，随后水解成HCO3-和H+，由H+刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过一系列调控使得呼吸作用加强。
此外，当CO2浓度增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射性地使呼吸加深加快。
4.接N2气囊的家兔呼吸曲线图4.接N2气囊的家兔呼吸曲线由图可知，接N2气囊后，家兔呼吸曲线幅度略有增大。
这是因为吸入纯N2时，因吸入气体中缺乏O2，肺泡气O2浓度下降，导致动脉血中O2浓度下降；而CO2浓度却基本不变（CO2扩散速度较快）。
随着动脉血中O2浓度下降，通过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌和肋间外肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。
5.增长解剖无效腔的家兔呼吸曲线图5.增长解剖无效腔的家兔呼吸曲线由图可知，增长解剖无效腔后，家兔呼吸幅度略有下降，而呼吸频率则稍稍上升，这是因为实验中通过插管的方式增大无效腔，也就是减小了进入肺泡的潮气量，即每次的有效气体更新变小。
结果促使O2分压下降，CO2分压上升，使其反射性的调节使呼吸加深加快。
所以膈肌放电的变化幅度加大，频率有微量增大。
反映到膈肌的收缩曲线，由于收缩频率的增大，为了维持正常的肺部通气量，所以收缩强度减弱。
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实验28 家兔呼吸运动的调节
浙江中医药大学
1.摘要
目的观察血液中化学因素（PCO2、PO2、[H﹢]）改变对家兔呼吸频率、节律、通气量的影响及机制。
观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机制。
学习气管插管术和神经血管分离术。
方法通过增大 CO2分压，增大无效腔，快速注射 2%乳酸，先后切断两侧迷走神经，以及电刺激迷走神经中枢端，观察呼吸运动的改变情况。
结果增大无效腔气量、提高 PCO2、注射乳酸均可使家兔呼吸加深加快，而剪断一侧及两侧迷走神经、电刺激迷走神经中枢端则使呼吸变浅、频率变慢。
结论增加 PCO2，增大无效腔，快速注射乳酸后，可使家兔通气量、呼吸频率及平均呼吸深度明显增加；剪断一侧迷走神经对呼吸运动影响不大，剪断双侧迷走神经，呼吸变慢变深。
2.材料和方法
2.1材料
家兔；CO2，氨基甲酸乙酯，乳酸；呼吸换能器；微机生物信号采集处理系统。
2.2方法
2.2.1实验系统连接及参数设置用胶管连接流量头与气管插管，流量头连接呼吸流量换能器。
呼吸换能器输出线连接微机生物信号处理系统。
打开RM6240系统：点击“实验”菜单，选择“呼吸运动调节”，仪器参数：通道时间常数为直流，滤波频率30Hz，灵敏度10cmH2O(或50ml/s)，采样频率800Hz，扫描频率1s/div。
连续单刺激方式，刺激强度5-10V，刺激波宽2ms,刺激频率30Hz。
2.2.2麻醉固定家兔称重后，按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。
待兔麻醉后，将其仰卧，先后固定四肢及兔头。
2.2.3手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6-7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉，暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘，细心分离两侧鞘膜内迷走神经，在迷走神经下穿线备用。
分离气管，在气管下两根粗棉线备用。
2.2.4气管插管在甲状软骨下约1cm处，做倒“T”形剪口，用棉签将气管切开及气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺端插入，插时应动作轻巧，避免损伤气管粘膜引起出血，用意粗棉线将插管口结扎固定，另一棉线在切口的头端结扎止血。
2.3实验观察
2.3.1记录正常呼吸曲线启动生物信号采集处理系统记录按钮，记录一段正常呼吸运动曲线作为对照。
辨认曲线上吸气、呼气的波形方向（呼气曲线向上、吸气曲线向下）。
2.3.2增加吸入气中CO2分压待呼吸曲线恢复正常，将CO2导管口使气体冲入气管插管，是家兔吸入较高浓度CO2的空气。
待家兔呼吸运动增强后，立即移去CO2气体导管。
待呼吸正常后再做下一步实验。
2.3.3在气管插管一个侧管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），观察和记录呼吸运动的变化。
2.3.4 增加血液中[H＋] 耳缘静脉缓慢注入3%乳酸溶液2ml，观察呼吸运动的变化。
2.3.5 迷走神经对呼吸运动的调节作用分别观察切断一侧迷走神经和切断两侧迷走神经以后呼吸运动的变化。
以5-10V强度，15-30Hz，2ms波宽的连续电脉冲间断刺激迷走神经中枢端，观察呼吸运动较之切断前有何改变。
3.实验结果
图一正常呼吸曲线
图二增加吸入气中CO2分压后的呼吸变化曲线
图三接无效腔后的呼吸变化曲线
图四注入乳酸后的呼吸变化曲线
图五剪断左侧迷走神经后的呼吸变化曲线
图六剪短两侧迷走神经后的呼吸变化曲线
图七电刺激左侧迷走神经后的呼吸变化曲线
从实验结果可以看出（参照的均为正常呼吸）：
1.吸入高浓度CO2的空气候呼吸明显加深，频率明显加快。
2.增大无效腔后呼吸加深，频率加快。
3.通过家兔耳缘静脉注射0.06g乳酸后，呼吸亦加深，频率加快。
4.剪断一侧及两侧迷走神经后，家兔呼吸均加深，频率均减慢，且后者比前者变化更大。
5．电刺激一侧迷走神经中枢端后家兔呼吸变浅，频率加快，几乎成一条直线。
4.讨论与分析
4.1 CO2是调节呼吸运动最重要的生理性化学因素，一定水平的PCO2水平对维持呼吸和呼吸中枢的兴奋性是必要的CO2刺激呼吸是通过两条途径实现的：①通过刺激中枢化学感受器再兴奋呼吸中枢；②刺激外周化学感受器，冲动经窦神经
和迷走神经传入延髓呼吸有关核团，反射性地使呼吸加深、加快，增加通气量。
肺通气量增加可以增加CO2的排出，肺泡气和动脉血P CO2可重新接近正常水平。
4.2 无效腔是指未进行气体交换的一部分肺泡容量，包括解剖无效腔和肺泡无效腔。
且肺泡通气量=（潮气量﹣无效腔气量）×呼吸频率，所以当给家兔气管插管的侧管连接 50cm 长的胶管时，增大了解剖无效腔，使肺泡通气量减少，因此家兔通过调节增大潮气量即呼吸加深，增加呼吸频率是肺泡通气量保持不变，维持正常呼吸。
4.3 动脉血[H﹢]增加，呼吸加深加快，肺通气量增加；[H﹢]降低，呼吸受到抑制。
H﹢对呼吸的调节也是通过外周化学感受器和中枢化学感受器实现的。
中枢化学感受器对H﹢的敏感性较外周的高，约为外周的25倍。
但是，H﹢通过血液屏障的速度慢，限制了它对中枢化学感受器的作用。
所以以外周化学感受器的途径为主。
4.4 切断一侧迷走神经后，由于这一侧迷走神经的神经冲动传递受阻，使得呼吸运动的调节受阻；随后由于迷走神经为混合神经，另一侧迷走神经将起到呼吸调节作用，此时发挥负反馈调节作用，加速吸气和呼气活动的交替，即呼吸频率加快。
4.5 肺牵张反射的肺扩张反射的作用在于阻抑吸气过长过深，促使吸气及时转入呼气。
肺扩张反射的感受器位于从气管到细支气管的平滑肌中，当吸气时肺扩张牵拉呼吸道，感受器兴奋，冲动经迷走神经传入延髓，在延髓内通过一定的神经联系是吸气切断机制兴奋，切断吸气，转入呼气。
这样便加速了吸气向呼气转换，使呼吸频率增加。
所以切断两侧迷走神经后，吸气延长、加深，呼吸变得深而慢4.6 当用5V的电脉冲刺激迷走神经中枢端时，相当于恢复了迷走神经的功能，又由于刺激电压过大，使呼吸频率显著加快，呼吸也由此变浅。
5.结论
增加 PCO2，增大无效腔，快速注射乳酸后，可使家兔通气量、呼吸频率及平均呼吸深度明显增加；剪断一侧迷走神经对呼吸运动影响不大，剪断双侧迷走神经，呼吸变慢加深；电刺激迷走神经中枢端呼吸变浅加快。