家兔呼吸运动神经的调节(实验报告)

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生理学高分实验报告家兔呼吸运动的调节

生理学高分实验报告家兔呼吸运动的调节
化学感受器位于颈动脉体和主动脉 体中,可感受血液中氧分压和二氧 化碳分压的变化。
肺牵张感受器位于肺泡壁和支气管 平滑肌中,可感受肺部的扩张和缩 小。
呼吸肌感受器位于呼吸肌中,可感 受呼吸肌的收缩和舒张。
中枢和外周感受器的相互作用
中枢和外周感受器之间存在复杂的相 互作用,共同维持呼吸运动的稳定性 和适应性。
02
给实验组家兔分别注射不同浓度的呼吸兴奋剂和呼 吸抑制剂。
03
观察并记录注射药物后家兔呼吸运动的变化情况, 包括呼吸频率、呼吸深度的改变。
实验步骤与操作
• 在药物作用高峰期,再次测定家兔的血气指标,以评估药物对呼吸功能的影响。
实验步骤与操作
4. 数据分析与统计
对实验数据进行整理和分析,比较对照组和实验组家兔在呼吸运动参数和 血气指标上的差异。
体液调节与神经调节的相互作用
协同作用
在某些情况下,体液调节和神经调节可协同作用,共同调节呼吸运动。例如,当机体处 于缺氧状态时,外周化学感受器和中枢化学感受器同时受到刺激,引起呼吸加深加快。
拮抗作用
在某些情况下,体液调节和神经调节可相互拮抗,共同维持呼吸运动的平衡。例如,当 机体处于过度通气状态时,动脉血氧分压升高可抑制外周化学感受器的活动,而中枢化 学感受器则继续受到刺激,引起呼吸减慢变浅。这种拮抗作用有助于防止过度通气对机
证了呼吸运动的调节机制。
04
本实验为深入研究呼吸运动的调节机制提供了有价 值的参考数据,有助于进一步揭示呼吸生理学的奥
秘。
对未来研究的展望和建议
0标1题
进••一文文步研字字究内内不容容同物种 之•间文呼吸字运内动容调节机 制•的文异同字,内以容更全面
地了解呼吸生理学的 普遍规律。

呼吸兔子调节实验报告

呼吸兔子调节实验报告

一、实验目的1. 了解呼吸兔子调节的基本原理和方法。

2. 观察和分析呼吸兔子在不同生理状态下的呼吸运动调节。

3. 掌握实验操作技能,提高实验操作能力。

二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。

呼吸运动调节机制包括呼吸中枢、肺牵张反射以及外周化学感受器的反射性调节。

本实验通过观察家兔在不同生理状态下的呼吸运动,分析呼吸兔子调节的机制。

三、实验材料1. 实验动物:家兔2. 实验仪器:兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管3. 实验试剂:20%氨基甲酸乙酯、生理盐水四、实验方法1. 家兔麻醉:使用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉,待家兔麻醉成功后,背位固定于兔体手术台上。

2. 分离气管和迷走神经:切开颈部皮肤,分离气管并插入气管插管,分离出双侧迷走神经,穿线备用。

3. 连接实验仪器:将张力传感器、引导电极和计算机采集系统连接好,用于记录呼吸运动。

4. 记录正常呼吸曲线:观察家兔在正常生理状态下的呼吸运动,记录呼吸频率、节律和幅度。

5. 改变呼吸运动调节因素:a. 增加无效腔:将气管插管适当延长,增加无效腔,观察呼吸运动的变化。

b. 切断迷走神经:切断双侧迷走神经,观察呼吸运动的变化。

c. 改变血液中CO2分压:通过注射生理盐水或二氧化碳,改变血液中CO2分压,观察呼吸运动的变化。

6. 记录和分析实验结果。

五、实验结果1. 正常呼吸曲线:家兔在正常生理状态下的呼吸运动呈现规律性,呼吸频率、节律和幅度稳定。

2. 增加无效腔:增加无效腔后,家兔的呼吸频率和呼吸深度增加,呼吸张力增强,呼吸阻力增大。

3. 切断迷走神经:切断双侧迷走神经后,家兔呈现慢而深的呼吸运动,呼吸频率降低,呼吸深度增加。

4. 改变血液中CO2分压:降低血液中CO2分压,家兔的呼吸频率和呼吸深度降低;提高血液中CO2分压,家兔的呼吸频率和呼吸深度增加。

六、实验分析1. 增加无效腔:增加无效腔导致呼吸阻力增大,使家兔通过增加呼吸频率和呼吸深度来满足身体对氧气的需求。

家兔呼吸运动的调节实验报告

家兔呼吸运动的调节实验报告

一、实验目的1. 观察家兔呼吸运动的生理变化,了解呼吸运动的调节机制。

2. 分析血液中化学因素(PCO2、PO2、[H])对家兔呼吸频率、节律、通气量的影响及调节机制。

3. 探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用。

二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。

呼吸中枢分布于大脑皮层、间脑、桥脑、延髓、脊髓等部位,各级部位相互配合,共同完成呼吸节律性运动。

呼吸运动受体内、外各种因素影响,如血液中CO2分压、PO2、[H]等化学因素,以及迷走神经、肺牵张反射等神经调节机制。

三、实验材料与仪器1. 实验动物:家兔2. 实验仪器:兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水3. 实验试剂:20%氨基甲酸乙酯、生理盐水四、实验方法与步骤1. 麻醉与固定:将家兔置于兔体手术台上,用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。

待家兔麻醉后,将其背位固定在手术台上。

2. 气管插管:在颈部切开皮肤,分离气管,插入气管插管,连接呼吸传感器。

3. 分离迷走神经:在颈部分离双侧迷走神经,穿线备用。

4. 记录呼吸运动:启动计算机采集系统,记录家兔呼吸频率、节律、通气量。

5. 观察血液中化学因素对呼吸运动的影响:a. 向气管插管内注入一定量的CO2,观察呼吸运动的变化;b. 向气管插管内注入一定量的生理盐水,观察呼吸运动的变化;c. 向气管插管内注入一定量的[H],观察呼吸运动的变化。

6. 观察迷走神经对呼吸运动的影响:a. 切断双侧迷走神经,观察呼吸运动的变化;b. 重新连接双侧迷走神经,观察呼吸运动的变化。

五、实验结果与分析1. 观察到在注入CO2后,家兔呼吸频率、节律、通气量均增加,表明CO2对呼吸运动具有促进作用。

2. 观察到在注入生理盐水后,家兔呼吸运动无明显变化,表明生理盐水对呼吸运动无明显影响。

3. 观察到在注入[H]后,家兔呼吸频率、节律、通气量均降低,表明[H]对呼吸运动具有抑制作用。

兔呼吸运动的调节实验报告

兔呼吸运动的调节实验报告

兔呼吸运动的调节实验报告实验目的,通过对兔呼吸运动的调节实验,探究兔呼吸运动的调节机制,加深对呼吸调节的认识。

实验原理,呼吸是机体维持生命活动所必需的生理功能,呼吸运动的调节是由中枢神经系统和周围化学和机械感受器共同完成的。

在实验中,我们将通过控制呼吸气体成分、呼吸频率和呼吸深度等因素,来研究兔呼吸运动的调节机制。

实验材料,实验所需的材料包括兔、呼吸气体混合器、呼吸频率和深度监测仪、呼吸气体成分分析仪等。

实验步骤:1. 准备工作,将兔置于实验台上,接入呼吸气体混合器,并将呼吸频率和深度监测仪、呼吸气体成分分析仪连接到兔的呼吸系统上。

2. 控制呼吸气体成分,首先,我们改变呼吸气体中氧气和二氧化碳的浓度,观察兔的呼吸频率和深度的变化。

通过调节呼吸气体成分,我们可以模拟高原低氧环境或呼吸系统疾病等情况,从而研究兔呼吸运动的调节机制。

3. 控制呼吸频率和深度,接着,我们通过调节呼吸频率和深度监测仪,改变兔的呼吸模式,观察其对呼吸气体成分的调节响应。

这可以帮助我们了解兔呼吸运动的调节机制在不同呼吸模式下的变化。

实验结果与分析:通过实验,我们观察到在不同呼吸气体成分下,兔的呼吸频率和深度会有不同的变化。

当呼吸气体中氧气浓度降低或二氧化碳浓度升高时,兔的呼吸频率会增加,呼吸深度会减小。

这表明兔可以通过调节呼吸频率和深度来适应不同的呼吸气体成分,以维持机体内部环境的稳定。

此外,我们还观察到当我们改变兔的呼吸模式时,其对呼吸气体成分的调节响应也会有所不同。

在不同呼吸模式下,兔对呼吸气体成分的调节敏感度不同,这说明兔呼吸运动的调节机制在不同呼吸模式下会发生变化。

结论,通过本次实验,我们深入了解了兔呼吸运动的调节机制。

兔可以通过调节呼吸频率和深度来适应不同的呼吸气体成分,以维持机体内部环境的稳定。

此外,兔呼吸运动的调节机制在不同呼吸模式下会发生变化,这为我们进一步研究呼吸调节提供了新的思路。

实验总结,本次实验通过对兔呼吸运动的调节进行了深入研究,为我们理解呼吸调节的机制提供了重要的实验数据。

家兔呼吸运动的调节实验报告

家兔呼吸运动的调节实验报告

家兔呼吸运动的调节实验报告本实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制,通过实验观察和数据分析,深入了解家兔呼吸运动的调节规律,为相关生理学研究提供理论依据和实验数据支持。

实验材料与方法。

1. 实验材料,健康的家兔若干只,呼吸频率计、呼吸深度计、心率监测仪等实验设备。

2. 实验方法,将家兔置于实验箱内,记录其正常呼吸状态下的呼吸频率和呼吸深度,并监测其心率。

接着通过不同方式的刺激(如运动、音响刺激等)观察家兔呼吸频率、呼吸深度和心率的变化情况。

实验结果。

1. 正常状态下,家兔的呼吸频率约为每分钟40-60次,呼吸深度约为每次10-15毫升,心率约为每分钟120-150次。

2. 运动刺激后,家兔的呼吸频率明显增加,呼吸深度也有所增加,心率也随之加快。

3. 音响刺激后,家兔的呼吸频率和呼吸深度均有所增加,但心率的变化不明显。

实验分析。

1. 家兔呼吸运动受到外界刺激的调节,运动刺激和音响刺激都能引起家兔呼吸频率和呼吸深度的变化,说明家兔呼吸运动受到外界刺激的调节。

2. 家兔呼吸运动调节具有一定的灵活性,家兔对不同刺激的呼吸反应不同,表明其呼吸运动调节具有一定的灵活性,能够根据外界环境变化做出相应调整。

实验结论。

家兔呼吸运动的调节受到外界刺激的影响,具有一定的灵活性,这为家兔在不同环境下适应生存提供了生理基础。

同时,本实验结果也为相关呼吸生理学研究提供了重要的实验数据支持。

结语。

通过本次实验,我们对家兔呼吸运动的调节机制有了更深入的了解,同时也为今后的相关研究提供了重要的实验基础。

希望本实验结果能够为相关领域的科研工作者提供参考,推动相关领域的研究进展。

家兔呼吸运动的调节实验报告总结

家兔呼吸运动的调节实验报告总结

家兔呼吸运动的调节实验报告总结一、引言家兔呼吸运动的调节是生理学中一个重要且复杂的研究课题。

通过实验探究家兔呼吸运动的调节机制,不仅可以更深入地了解呼吸系统的功能,还有助于揭示人类呼吸系统的生理和病理特点。

本实验旨在通过调节不同呼吸节律和环境条件来观察家兔呼吸运动的变化,从而探索呼吸运动的调节机制。

二、实验目的1. 了解家兔呼吸运动的基本特征和调节机制。

2. 观察家兔呼吸运动在不同呼吸节律和环境条件下的变化。

3. 探究家兔呼吸运动的调节机制。

三、实验方法1. 实验动物:健康家兔。

2. 实验仪器:生物信号采集系统、呼吸运动测定仪等。

3. 实验步骤:1) 采集基础值:记录家兔在自由呼吸状态下的呼吸频率和潮气量。

2) 调节呼吸节律:通过呼吸运动测定仪调节家兔的呼吸节律,观察呼吸运动的变化。

3) 调节环境条件:改变家兔所处环境的温度、湿度等条件,观察呼吸运动的变化。

四、实验结果1. 基础值记录:家兔自由呼吸状态下,呼吸频率为25次/分,潮气量为200ml/次。

2. 调节呼吸节律:当将家兔的呼吸节律调至较快时,呼吸频率明显增加,而潮气量减少;当呼吸节律调至较慢时,呼吸频率减少,而潮气量增加。

3. 调节环境条件:在较高温度和湿度条件下,家兔呼吸频率增加,潮气量减少;在较低温度和湿度条件下,家兔呼吸频率减少,潮气量增加。

五、实验讨论1. 家兔呼吸运动的调节机制是复杂多样的,受到呼吸中枢、化学感受器和周围感受器的共同调节。

2. 调节呼吸节律和环境条件对家兔呼吸运动的影响是明显的,反映了呼吸系统对外界环境的适应性和调节性。

六、实验总结本实验通过调节家兔呼吸节律和环境条件,观察了呼吸运动的变化,并探讨了家兔呼吸运动的调节机制。

从实验结果可以看出,家兔呼吸运动受到多种因素的影响,是一个复杂的生理过程。

深入探究家兔呼吸运动的调节机制,有助于我们更好地理解呼吸系统的功能和生理特点,对于进一步研究人类呼吸系统的生理和病理特点具有重要意义。

家兔呼吸运动神经的调节(实验报告)

家兔呼吸运动神经的调节(实验报告)

创作编号:BG7531400019813488897SX创作者:别如克*家兔呼吸运动神经的调节【实验目的】1.学习测定兔呼吸运动的方法。

2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。

3.学习哺乳类动物的手术操作,掌握气管插管和神经血管分离术4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理【实验器材】1.1 动物体重2.5 kg家兔(rabbit),雌雄不拘。

1.2 器材BL420E+生物信号处理系统,呼吸换能器(pressure-gradient transducer)1.3 药品试剂20%乌来糖(urethane),12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate),5%碳酸氢钠(Sodium bicarbonate),N2,CO2。

【实验步骤】1. 家兔称重,按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔,家兔麻醉后将其仰卧,固定四肢和头。

2. 颈部手术颈正中切口5~7 cm左右皮肤。

用血管钳钝性分离出气管穿线备用,用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。

3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管,结扎固定。

4.将气管插管一端连接呼吸换能器。

5观察记录(observations)1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液,注射速度5-6 ml/min,观察家兔呼吸运动的变化。

10 min后,颈总动脉采血0.5 ml,作血气分析4.. 按bm nnnBE×0.5×体重计算出50 g/L碳酸氢钠剂量,按4 ml/min 速度静脉注射,观察呼吸变化。

10 min后,颈总动脉采血0.5 ml,作血气分析5. 记录切断一侧、两侧迷走神经前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。

家兔呼吸运动的调节实验报告

家兔呼吸运动的调节实验报告

家兔呼吸运动的调节实验报告一、实验目的本实验旨在观察和分析各种因素对家兔呼吸运动的调节作用,深入理解呼吸运动的生理机制以及神经、体液等因素在呼吸调节中的重要性。

二、实验原理呼吸运动是呼吸肌节律性收缩和舒张所引起的胸廓有节律的扩大和缩小。

呼吸运动受神经和体液因素的调节。

神经调节主要包括迷走神经和交感神经,体液调节则包括血液中二氧化碳分压、氧分压和氢离子浓度等的变化。

三、实验材料与方法(一)实验材料1、实验动物:健康家兔 1 只,体重 20 25kg。

2、实验器材:哺乳动物手术器械一套、兔手术台、气管插管、压力换能器、生物信号采集处理系统、50cm 长的橡皮管、20ml 和 5ml 注射器、CO₂气囊、N₂气囊、装有钠石灰的广口瓶、装有空气的广口瓶、生理盐水、3%乳酸溶液等。

(二)实验方法1、家兔称重后,用 20%乌拉坦溶液(5ml/kg)于耳缘静脉缓慢注射麻醉。

将家兔仰卧固定于手术台上,剪去颈部手术部位的被毛。

2、颈部正中切开皮肤,分离气管并插入气管插管,通过压力换能器与生物信号采集处理系统相连,记录呼吸运动曲线。

3、分离双侧迷走神经,穿线备用。

4、观察并记录正常呼吸运动曲线。

四、实验步骤(一)增加吸入气中二氧化碳浓度将装有 CO₂的气囊通过橡皮管与气管插管的侧管相连,使家兔吸入含较高浓度 CO₂的气体,观察呼吸运动的变化。

(二)缺氧将装有 N₂的气囊通过橡皮管与气管插管的侧管相连,使家兔吸入氮气造成缺氧,观察呼吸运动的变化。

(三)增大无效腔将一段 50cm 长的橡皮管连接在气管插管的侧管上,增加无效腔,观察呼吸运动的变化。

(四)静脉注射乳酸溶液用 5ml 注射器经耳缘静脉缓慢注入 3%乳酸溶液 2ml,观察呼吸运动的变化。

(五)切断迷走神经分别切断双侧迷走神经,观察呼吸运动的变化。

然后再分别刺激切断后的迷走神经中枢端和外周端,观察呼吸运动的变化。

五、实验结果(一)增加吸入气中二氧化碳浓度当家兔吸入含较高浓度 CO₂的气体后,呼吸运动明显加深加快。

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家兔呼吸运动神经的调节
【实验目的】
1.学习测定兔呼吸运动的方法。

2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。

3.学习哺乳类动物的手术操作,掌握气管插管和神经血管分离术
4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制
5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理
【实验器材】
动物体重2.5 kg家兔(rabbit),雌雄不拘。

器材BL420E+生物信号处理系统,呼吸换能器(pressure-gradient transducer)药品试剂20%乌来糖(urethane),12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate),5%碳酸氢钠(Sodium bicarbonate),N2,CO2。

【实验步骤】
1. 家兔称重,按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔,家兔麻醉后将其仰
卧,固定四肢和头。

2. 颈部手术颈正中切口5~7 cm左右皮肤。

用血管钳钝性分离出气管穿线备用,用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。

3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管,结扎固定。

4.将气管插管一端连接呼吸换能器。

5观察记录(observations)
1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量
2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化
3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液,注射速度5-6 ml/min,观察家兔呼吸运动的变化。

10 min后,颈总动脉采血ml,作血气分析
4.. 按bm nnnBE××体重计算出50 g/L碳酸氢钠剂量,按4 ml/min速度静脉注射,观察呼吸变化。

10 min后,颈总动脉采血ml,作血气分析
5. 记录切断一侧、两侧迷走神经前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。

6. 记录用强度5 V、频率20 Hz、波宽2 ms的连续电脉冲刺激一侧迷走神经中枢端前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。

【实验结果】
图1.正常呼吸曲线
图2.增大无效腔的呼吸曲线
图3注射磷酸二氢钠后的呼吸曲线
图4.注射碳酸氢钠后的呼吸曲线
图5.切断一侧迷走神经
图6.切断另一侧迷走神经
图7刺激迷走神经中枢端
【结果分析与讨论】
1.增大呼吸无效腔对呼吸运动的影响
增加气道长度后家兔呼吸张力增加,呼吸频率增加。

增加气道长度就等于增加家兔解剖无效腔,增加无效腔从而减少了肺泡的通气量,使肺泡气体更新率下降造成动脉血PO2降低,PCO2升高,反射性引起呼吸运动加强;PO2降低和PCO2升高都可引起呼吸运动加强。

但以PCO2的作用为主,CO2对呼吸的刺激作用主要通过刺激中枢化学感受器,进而引起延髓呼吸中枢兴奋,导致呼吸加快。

也可刺激颈动脉体和主动脉体外周化学感受器,通过窦神经和主动脉神经传入延髓呼吸中枢,使呼吸运动加强,PO2下降主要是通过刺激外周化学感受器,引起呼吸中枢兴奋;气道加长使呼吸气道阻力增大,反射性呼吸加深加快。

2注射磷酸二氢钠,和碳酸氢钠后,呼吸强度均加深,频率加快。

但是磷酸二氢钠少剂量注射,变化明显,变化快,而后者,变化速度缓慢,而且需要注射较多剂量才能有明显的曲线变化。

家兔血液中的H 浓度升高,刺激外周化学感受器和中枢化学感受器——中枢化学感受器对H+的敏感较外周的高,但H+不易通过血-脑屏障,因而此时H+的效应主要是刺激外周化学感受器,使膈肌、肋间外肌收缩,肺通气量增加,呼吸加深加快。

3.切断一侧迷走神经后,由于这一侧迷走神经的神经冲动传递受阻,使得呼吸运动的调节受阻;随后由于迷走神经为混合神经,另一侧迷走神经将起到呼吸调节作用,此时发挥负反馈调节作用,加速吸气和呼气活动的交替。

4..切断双侧颈迷走神经后,动物的呼吸运动呈慢而深的变化,迷走神经中含有肺牵张反射的传人纤维。

肺牵张反射中的肺扩张反射(亦称吸气抑制反
射)的生理作用。

在于阻止吸气过长过深,促使吸气及时转人呼气,从而加速了吸气和呼气动作的交替,调节呼吸的频率和深度。

当切断两侧颈迷走神经后,中断了肺牵张反射的传人通路,肺牵张反射的生理作用被消除,因此呈现出慢而深的呼吸运动,使吸气延长。

5刺激迷走神经中枢端,家兔的呼吸变得浅快,因为迷走神经中含有肺牵张反射传入纤维,肺的牵张反射包括:肺扩张后引起吸气活动的抑制,呼气加强;肺缩小后引起呼气活动抑制,吸气加强的过程。

这两种反射传入神经纤维都经由迷走神经传入中枢,调节呼吸运动。

电刺激迷走神经中枢端,引起这两种纤维成分都同时持续兴奋,故家兔的呼吸运动变得浅快,严重时甚至将导致呼吸运动的暂停。

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