链脲佐菌素STZ诱导I型糖尿病
Micro-CT检测STZ诱导的糖尿病大鼠牙槽骨微结构改变

论著Micro-CT检测STZ诱导的糖尿病大鼠牙槽骨微结构改变易子欣,易婷,姚心雨,祝贝贝,贲亚琍,张雯(江汉大学医学院口腔医学系,湖北武汉430000)摘要目的:通过Micro-CT观察糖尿病大鼠牙槽骨微结构的变化。
方法:雄性SD大鼠随机分为2组:对照组(n=4)和STZ(糖尿病)组(n=4)。
糖尿病组大鼠腹腔内注射55mg/kg链脲佐菌素。
饲养12周后处死大鼠,上颌骨Micro-CT扫描分析,并进行HE染色。
结果:HE染色可见STZ组牙槽骨边缘吸收明显,牙周膜纤维排列紊乱,牙龈上皮有明显的炎症细胞浸润。
STZ 组相较正常对照组CEJ-ABC距离明显增加(P<0.05)。
Micro-CT分析STZ组Tb.N值减小(P<0.01),Tb.sp值增加(P< 0.05)。
Micro-CT图像三维重构后可见STZ组牙槽骨吸收。
结论:STZ诱导的糖尿病大鼠牙槽骨组织损伤明显,Micro-CT技术呈现了牙周骨组织微结构改变。
关键词Micro-CT;STZ;1型糖尿病;牙槽骨中图分类号R781.42文献标志码A doi:10.3969/j.issn.2096-3351.2021.02.003Micro-CT detection of microstructure changes of alveolar bone in rats withdiabetes induced by streptozotocinYI Zixin,YI Ting,YAO Xinyu,ZHU Beibei,BEN Yali,ZHANG WenDepartment of Stomatdogy,Medical College of Jianghan University,Wuhan430000,Hubei Provine,ChinaAbstract Objective:To investigate the microstructure changes of alveolar bone in diabetic rats by micro-CT. Methods:Male Sprague-Dawley rats were randomly divided into control group and diabetes group,with4rats in each group.The rats in the diabetes group were given intraperitoneal injection of55mg/kg streptozotocin.The rats were sacrificed after12weeks of feeding,and micro-CT scan and HE staining were performed for the maxillary bone.Results:HE staining showed marked absorption of the edge of alveolar bone,disordered arrangement of peri⁃odontal membrane fibers,and marked inflammatory ceils infiltration in the gingival epithelium in the diabetes group. Compared with the control group,the diabetes group had a significant increase in distance from the cemento-enamel junction to the alveolar bone crest(P<0.05).Micro-CT analysis showed a significant reduction in Tb.N value(P< 0.01)and a significant increase in Tb.sp value in the diabetes group(P<0.05).Micro-CT three-dimensional image reconstruction showed alveolar bone absorption in the diabetes group.Conclusion:Marked alveolar bone injury is observed in rats with STZ-induced diabetes,and micro-CT technique displays the microstructure changes of peri⁃odontal bone tissue.Keywords Micro-CT;Streptozotocin;Type1diabetes;Alveolar bone基金项目:湖北省教育厅科学研究计划指导性项目(B2018258)第一作者简介:易子欣,本科生。
stz 胰岛β细胞原理

stz 胰岛β细胞原理
STZ胰岛β细胞原理
STZ是一种化学物质,全称为链脲佐菌素(Streptozotocin),它是一种抗癌药物,也是一种糖尿病研究中常用的试剂。
STZ能够破坏胰岛β细胞,从而导致胰岛素分泌不足,引起糖尿病。
胰岛β细胞是胰岛中的一种细胞,它们负责分泌胰岛素,这是一种重要的激素,能够帮助身体将血糖转化为能量。
当血糖水平升高时,胰岛β细胞会分泌更多的胰岛素,以帮助身体将多余的糖分解掉。
但是,当胰岛β细胞受到STZ的破坏时,它们就无法正常分泌胰岛素,导致血糖水平升高,引起糖尿病。
STZ的作用机制是通过破坏胰岛β细胞的DNA,从而导致细胞死亡。
STZ会进入胰岛β细胞内部,与细胞内的DNA结合,形成DNA加合物,从而导致DNA链断裂和碱基缺失。
这些损伤会触发细胞的自我毁灭机制,导致细胞死亡。
STZ的破坏作用是选择性的,它主要作用于胰岛β细胞,而对其他细胞类型的影响较小。
这使得STZ成为一种理想的糖尿病研究试剂,可以用来模拟糖尿病的发生和发展过程,研究糖尿病的病理机制和治疗方法。
STZ胰岛β细胞原理是通过破坏胰岛β细胞的DNA,导致细胞死亡,从而引起胰岛素分泌不足,导致糖尿病。
STZ的选择性作用使
得它成为一种重要的糖尿病研究试剂,可以用来模拟糖尿病的发生和发展过程,为糖尿病的治疗提供新的思路和方法。
1型糖尿病大鼠模型的制备及建模失败后补救措施与效果

1型糖尿病大鼠模型的制备及建模失败后补救措施与效果魏泽宁;张凤成;李传洁;王俊成;刘娜;李亚男【摘要】目的:研究通过链脲佐菌素(Streptozotocin,STZ)诱导建立1型糖尿病大鼠模型的方法及首次建模失败后的补救措施及效果.方法:健康6-8周龄雄性Wistar 大鼠30只,随机分为2组,建模组25只,非建模组5只.给予建模组大鼠一次性大剂量腹腔注射STZ(65mg/kg),同时对非建模组大鼠腹腔注射相同体积的柠檬酸缓冲液.72h后检测大鼠的血糖值判断建模是否成功.对首次建模失败的大鼠常规饲养一周,再次腹腔注射STZ(65mg/kg),观察其成模状况.分别在建模后第0、2、4、6、8周测量大鼠的体重与血糖并观察其一般情况.于第8周处死全部大鼠,取胰腺标本进行HE染色和胰岛素的免疫组化染色,观察胰腺组织的病理学改变.结果:建模组有21只大鼠首次注射STZ 72h后,血糖值达到成模标准,4只血糖值未达到成模标准,再次注射STZ72h后血糖值检测均达到成模标准.持续观察8周,首次建模成功及补救建模组大鼠均成模稳定,糖尿病症状明显,未见血糖转复正常.非建模组大鼠各项指标均未见异常.与非建模组相比,首次建模成功组及补救组大鼠胰岛形态不规则,体积萎缩变小,胰岛内分泌细胞数量明显减少.胰岛素胰腺免疫组化检测发现,与非建模组相比,首次建模成功组和补救组胰岛素分布面积显著减少.结论:一次性大剂量腹腔注射STZ可制备有效、稳定的1型糖尿病大鼠模型.首次建模失败后,适时再次注射STZ 仍可制备高质量的1型糖尿病大鼠模型.【期刊名称】《口腔颌面修复学杂志》【年(卷),期】2016(017)003【总页数】5页(P135-139)【关键词】链脲佐菌素;1型糖尿病模型;大鼠【作者】魏泽宁;张凤成;李传洁;王俊成;刘娜;李亚男【作者单位】解放军总医院口腔科北京100853;解放军总医院口腔科北京100853;解放军总医院口腔科北京100853;解放军总医院口腔科北京100853;解放军总医院口腔科北京100853;解放军总医院口腔科北京100853【正文语种】中文【中图分类】R780.21型糖尿病又被称作胰岛素依赖型糖尿病,表现为胰岛β细胞破坏导致胰岛素绝对缺乏,部分同时表现出胰岛素抵抗[1]。
链脲佐菌素诱导的高血糖对大鼠肾、肝及眼睛的影响

链脲佐菌素诱导的高血糖对大鼠肾、肝及眼睛的影响张琪;刘亚千;陈华【摘要】目的通过不同剂量链脲作菌素(STZ)诱导1型糖尿病大鼠模型,探讨不同高血糖对脏器影响.方法实验分为STZ 40 mg/kg组,50 mg/kg组,60 mg/kg组,25mg/kg连续3次、每次间隔1 d(25 mg/kg*3)组,空白对照组.给药后0、1、3、7、11、24、48、72h检测血糖,之后每3 d测量1次,期间观察大鼠一般情况,并于第9周进行血生化以及胰腺、肾、肝及眼睛病理检查.结果 72 h内血糖检测:STZ造模时血糖先轻微升高后降低之后再大幅度升高.50 mg/kg和60 mg/kg组出现给药后第3天死亡现象,存活鼠成模率分别为70%、80%、100%、100%.期间血糖和体质量呈负相关,血糖顺序为:40 mg/kg<50 mg/kg<25 mg/kg*3<60 mg/kg.40 mg/kg组于第10周出现白内障,其他实验组均于第8周出现白内障.第9周血生化检测发现40 mg/kg组insulin、C-Peptide、urea、UA、Cr、ALT、AST、TP、ALB正常,其它实验组均有波动.胰腺、肾、肝病理支持上述改变.结论25 mg/kg*3诱导高血糖最佳,其成模率高且高血糖稳定;高血糖的并发症的评估要将空腹和随机血糖相结合;不同的高血糖对肾、肝及眼睛影响不同,其中眼睛对高糖反应比较敏感,肾次之,肝影响最小.【期刊名称】《南方医科大学学报》【年(卷),期】2014(034)008【总页数】6页(P1098-1103)【关键词】1型糖尿病;链脲佐菌素;高糖血症;并发症【作者】张琪;刘亚千;陈华【作者单位】解放军总医院医学实验动物中心,北京100853;解放军总医院医学实验动物中心,北京100853;解放军总医院医学实验动物中心,北京100853【正文语种】中文1型糖尿病是儿童糖尿病的主要类型,其病理机制是自身免疫诱导胰岛beta细胞死亡,致使胰岛素绝对不足,进而血糖升高[1-4]。
糖尿病大鼠模型

[13]郑里翔.STZ和alloxan联合使用复制实验性糖尿病大鼠模型[J].中国病理生理杂志,1999,15(8):758
2.2.1 链脲佐菌素(streptoxolocin,STZ)
STZ是一种广谱抗菌素,具有抗菌、抗肿瘤的性能和致糖尿病的副作用,对实验动物的胰岛β细胞具有高度选择性的毒性作用【5】。STZ诱导的糖尿病因给药方式不同,其成模效果也有所差别,如采用小剂量分次给药的方法,则建立与人类1型糖尿病表现相似的大鼠模型,如采用较大剂量一次性注射的给药方法,则建立与人类2型糖尿病表现相似的大鼠模型,其原理可能与胰岛的损伤程度有关【6】。
1型糖尿病模型(IDDM模型):静脉或腹腔一次大剂量注射STZ所制得的速发型糖尿病系胰岛β细胞直接受损害所致:按55mg/kg给大鼠腹腔内注射STZ,由于STZ对胰岛β细胞的直接损害,胰岛的分泌减少而致血糖升高,出现糖尿病的各种表现【6】。多次小剂量注射所制得的迟发型糖尿病模型则与T淋巴细胞介导的β细胞不断破坏有关:应用30mg/kg多次注射STZ诱导大鼠DM,逐渐加重胰岛功能损伤,终达失代偿,可有效模拟糖尿病病程及发病机理,并降低动物模型的死亡率【7】。这样建立的动物模型与人类IDDM更接近。
[6]黄 波,刘学政,庞东渤.不同途径注射链脲佐菌素致大鼠糖尿病模型的研究[J].锦州医学院学报,2003,24(1):19.
[8]司晓晨,尚文斌,卞慧敏,等.链脲佐菌素加高脂膳食诱导2型糖尿病大鼠模型[J].安徽中医临床杂志,2003,15(5):383.
[9]郭啸华,刘志红,李 恒,等高糖高脂饮食诱导的2型糖尿病大鼠模型及其肾病特点[J].中国糖尿病杂志,2002,10(5):290.
STZ致大鼠Ⅰ型糖尿病模型稳定性探讨

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西部 医 学 2 1 年 3月 第 2 02 4卷 第 3期 Me Wet hn , rh2 1 , 12 , . dJ s iaMac 0 2 Vo. 4 性探 T
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文 晓红 , 张仁 东, 圆字 , 赵 郭 洋
n r l D r t r a d ml i i e n o c n r lg o p a d e p rme t l r u .Ra si h x e i n a r u e a y ma e S a swe e r n o y d v d d i t o t o r u n x e i n a o p g t n t e e p rme t lg o p r —
【 中图 分 类 号】 R 5 7 1 8. 【 献标 识 码 】 A 文 【 章 编 号】 I I 1 . 9 9 Ji n 1 7— 5 1 2 1 . 3 0 4 文 3 :0 3 6 /.s . 6 23 1 . 0 2 0 . 0 0 s
S u y o he s a iiy o y e I d a e i o e n r t n uc d b t e t z t c n t d n t t b lt f t p i b tc m d li a s i d e y s r o o o o i
成 模 标 准 的 大 鼠 (0只 ) , 1 中 8只 IG P TT 异 常 , 中 3只 分 别 在 第 1 、8和 第 4 d血 糖 达 成 模 标 准 ; 其 42 2 2只 IG P TT 各 天 血
糖 均 正 常 。 未 成 模 大 鼠有 的胰 岛似 对 照 组胰 岛 的 形 态 结 构 , 的 胰 岛似 成 模 大 鼠 胰 岛 的 形 态 结 构 。结 论 S 有 Tz诱 导 大 鼠 I型 糖 尿 病 模 型 的稳 定 性 良好 ; 始 未 达 成 模 标 准 的 大鼠 大部 分 糖 耐 量 已减 退 , 中 的 小部 分 以后 可 达 成 模 标 准 。 开 其 【 键 词 】 链 脲 佐 菌 素 ;糖 尿 病 模 型 ; 糖 ;腹 腔 葡 萄 糖 耐 量 试 验 ;大 鼠 关 血
糖肾平胶囊对STZ诱导糖尿病肾病大鼠肾脏保护及其对TGF1p38MAPK信号转导通路的影响
糖肾平胶囊对STZ诱导糖尿病肾病大鼠肾脏保护及其对TGF1p38MAPK信号转导通路的影响一、本文概述本文旨在探讨糖肾平胶囊对链脲佐菌素(STZ)诱导的糖尿病肾病(DN)大鼠的肾脏保护作用,以及其对转化生长因子β1(TGF-β1)和p38丝裂原活化蛋白激酶(p38MAPK)信号转导通路的影响。
糖尿病肾病是一种严重的糖尿病并发症,表现为肾小球滤过率下降、蛋白尿、肾功能进行性减退等,严重威胁患者生活质量及生命安全。
目前,糖尿病肾病的治疗以控制血糖、血压、调节脂质代谢等为主,但效果有限,因此寻找新的治疗策略具有重要意义。
糖肾平胶囊作为一种传统中药制剂,已被证实对糖尿病肾病具有一定的治疗效果。
然而,其具体的作用机制尚未完全明确。
因此,本研究通过STZ诱导的糖尿病肾病大鼠模型,观察糖肾平胶囊对肾脏的保护作用,并深入探讨其对TGF-β1和p38MAPK信号转导通路的影响。
TGF-β1是一种多功能细胞因子,在糖尿病肾病的发生和发展中起重要作用。
p38MAPK信号转导通路是细胞内重要的信号转导系统,参与多种生理和病理过程。
本研究将通过检测大鼠肾脏组织中TGF-β1和p38MAPK的表达水平,探讨糖肾平胶囊对这两条信号通路的调节作用,从而揭示其肾脏保护作用的分子机制。
通过本研究,有望为糖尿病肾病的治疗提供新的思路和方法,为糖肾平胶囊的临床应用提供科学依据。
也将为进一步阐明中药在糖尿病肾病治疗中的作用机制提供重要参考。
二、材料与方法选用健康雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠,体重180-220g,购自[动物实验中心名称]。
动物饲养在恒温(22±2℃)、恒湿(55±5%)的环境中,并遵循12小时光照/黑暗周期。
所有实验均按照[动物实验伦理委员会名称]制定的指导原则进行。
糖肾平胶囊(由[制药公司名称]提供,批号:[批号]);链脲佐菌素(STZ,购自[试剂供应商名称]);转化生长因子β1(TGF-β1)及p38丝裂原活化蛋白激酶(p38MAPK)相关试剂和抗体(购自[试剂供应商名称])。
Ⅰ型糖尿病胃轻瘫大鼠动物模型建立与优化
Ⅰ型糖尿病胃轻瘫大鼠动物模型建立与优化陈霞;赵宏贤;徐富翠;梅欣明;郭勇【摘要】目的探讨I型糖尿病胃轻瘫大鼠模型的建立方法,为糖尿病胃肠动力障碍研究提供合理的平台.方法链脲佐菌素(STZ)一次性腹腔注射方法建立I型糖尿病动物模型,观察大鼠一般状况、血糖、胃排空、小肠传输速率.结果①模型组大鼠于造模后均出现糖尿病症状;平均体重明显低于对照组(P<0.01);平均血糖浓度显著高于对照组(P<0.01).②模型组大鼠胃内色素残留率明显高于对照组(P<0.01);小肠传输速率显著慢于对照组(P<0.01).结论链脲佐菌素一次性腹腔内注射10周后能成功诱导出糖尿病胃轻瘫大鼠模型.【期刊名称】《四川动物》【年(卷),期】2010(029)005【总页数】3页(P630-632)【关键词】糖尿病;胃轻瘫【作者】陈霞;赵宏贤;徐富翠;梅欣明;郭勇【作者单位】泸州医学院附属医院消化内科,四川泸州,646000;泸州医学院组胚教研室,四川泸州,646000;泸州医学院组胚教研室,四川泸州,646000;泸州医学院组胚教研室,四川泸州,646000;泸州医学院组胚教研室,四川泸州,646000【正文语种】中文【中图分类】Q95-33;R587.1Abstract:Objective To establish ratmodelsof typeⅠdiabetic gastroparesis and to provide reasonable approaches for research of gastrointestinal dysfunction of diabetes.M ethods SD ratswere randomly divided into a control group and model group.Rats in the model group were intraperitoneally injected with a single dose of streptozotocin(STZ)to induce typeⅠdiabetic models.General condition,blood sugar levels,gastric emptying,and the intestinal conduction velocity of ratsweredetected.Results Compared with rats in the control group:(1)Typical symptoms of diabetes mellitus appeared in the model group,in which the average weightwas significantly lower(P<0.01)and the average fasting concentration of blood glucose was significantly higher(P<0.01).(2)The rate of gastric residual pigment in the model group was significantlyhigher(P<0.01)and the intestinal conduction velocity of diabetic ratswas significantly lower(P<0.01).Conclusion Diabetic rats induced by STZ showed gastroparesismanifestation at 10 weeks.Key words:diabetes;gastroparesis糖尿病性胃轻瘫 (diabetic gastroparesis,DGP)是继发于糖尿病的以胃动力低下、胃排空延迟、胃节律紊乱为特点的临床综合征。
糖尿病小鼠模型的构建
糖尿病小鼠模型的构建I型糖尿病模型方法:模型的诱导采用多次小剂量链脲佐菌素(STZ)给药法(MLDSTZ),雄性BALB/c小鼠,随机分为3组:模型组、阴性对照组、阳性对照组。
模型组小鼠连续5天腹腔注射STZ溶液(60mg/kg),注射前禁食8h,不禁水。
注射时将STZ溶于0.1mol/L柠檬酸钠缓冲液(pH4.5),避光冰上配置,溶解后尽量在30min完成注射。
阴性对照组腹腔注射柠檬酸缓冲液,正常对照组不作处理。
II型糖尿病模型目前,构建II型糖尿病动物模型的方法有很多种,其中自发性糖尿病动物模型、转基因/基因敲除糖尿病动物模型、单纯应用STZ所致糖尿病模型、STZ 与饮食协同作用所致II型糖尿病动物模型等应用较多。
1、自发性糖尿病动物模型自发性II型糖尿病动物模型主要是啮齿类,其最大优点是疾病的发生、发展与人类的很相似,因此在研究II型糖尿病的生理、病理及有关临床药物研发等方面有重要价值。
此类动物模型包括小鼠、大鼠、地鼠,其中小鼠包括KK-Ay、ob/ob、db/db等单基因突变鼠、新西兰肥胖小鼠和NSY小鼠:大鼠包括GK大鼠、Zucker大鼠和OLETF大鼠等;地鼠则以中国地鼠为主。
2、转基因构建糖尿病模型以实验方法敲入外源基因或敲除内源基因,在染色体组内稳定整合并能遗传给后代的一类动物称为转基因动物。
转基因糖尿病动物模型主要是通过基因技术,按照自己的意愿,控制实验动物的特定基因及其表达,使动物表现为一定的遗传性状。
主要利用基因定位与基因转移,由于转基因为随机整合,所以在子代观察到得效果取决于成功整合发生的位点和拷贝的数量,转基因的表达效果也因动物体系不同而有所差异。
3、单纯应用STZ所致糖尿病模型使用不同剂量(60mg/kg\45mg/kg)的STZ静脉注射,注射前禁食8h,不禁水。
注射时将STZ溶于0.1mol/L柠檬酸钠缓冲液(pH4.5),避光冰上配置,溶解后尽量在30min完成注射。
链脲佐菌素诱导大鼠糖尿病模型
链脲佐菌素诱导大鼠糖尿病模型STZ 诱发糖尿病动物模型的原理STZ对一定种属动物的胰岛β细胞有选择性破坏作用,能诱发许多动物产生糖尿病,一般采用大鼠和小鼠制造动物模型。
国外有学者报道选用雄性大鼠制造模型的成模率明显高于雌性大鼠。
1型糖尿病与2型糖尿病动物模型的制备与STZ注射的剂量有关系:大剂量注射时,由于直接引起胰岛β细胞的广泛破坏,可造成1型糖尿病模型;而注射较少量STZ时,由于只是破坏一部分胰岛β细胞的功能,造成外周组织对胰岛素不敏感,同时给予高热量饲料喂养,两者结合便诱导出病理、生理改变都接近于人类2型糖尿病的动物模型。
造模前的喂养Ⅰ型糖尿病模型成模比较快,通常大鼠在普通饲料适应性喂养2周后即可开始造模Ⅱ型糖尿病模型:高脂饮食诱导加小剂量STZ。
造模前喂以高脂(高糖)饲料,诱发出胰岛素抵抗。
高脂(高糖)饲料高脂(高糖)饲料成分:其中含10%蔗糖,10%猪油,5%胆固醇由基础鼠饲料加蔗糖、炼猪油和蛋黄按比搭配制作高脂高糖饲料:其比例为猪油18 % ,蔗糖20 % ,蛋黄3 % ,基础饲料59 %。
预实验的重要性很重要。
实验时STZ的给药量应参照预实验的结果,尽量不要盲目按照文献上或他人的给药量来直接使用,鼠均重和空腹(低糖状态)抗药力、禁食时长、注射选时、以及之前饲养过程、测糖选时等都不相同,通过预实验来确定符合自己实验鼠的给药计量,才是最科学的。
常用给药剂量Ⅰ型糖尿病模型:大鼠剂量为70~65mg/KgⅡ型糖尿病模型:高糖高脂喂养1~2 个月的大鼠,STZ 剂量在25~40mg/Kg或参考文献(鼠均重不同,本剂量以200克均重为例)。
配置STZ溶液柠檬酸缓冲液的配制:柠檬酸(FW:210.14)2.1g加入双蒸水100mL中配成A液柠檬酸钠(FW:294.10)2.94g加入双蒸水100mL中配成B液链脲佐菌素配制液:用时将A、B液按一定比例混合(1:1.32也有按1:1的),PH计测定ph值,调节ph=4.2-4.5,即是所需配置STZ的柠檬酸缓冲液。
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小剂量多次链脲佐菌素腹腔注射诱导1型糖尿病小鼠模型及模型鉴定摘要:目的考察对C57BL/6J小剂量多次链脲佐菌素腹腔注射诱导1型糖尿病模型的成模率、模型鉴定及稳定性。
方法雄性C57BL/6J小鼠随机分为正常对照组、链脲佐菌素50mg/kg多次给药组,考察多次给药后链脲佐菌素对小鼠血糖、血清胰岛素、IL-10、IFN-γ、胰腺组织的影响。
结果50mg/kg多次给药诱导C57BL/6J小鼠成模率为83.64%,空腹血糖值显著升高(P<0.01),血清胰岛素和IL-10值明显下降(P<0.01),血清IFN-γ含量明显增加(P<0.01),胰腺组织中胰岛数目显著减少,胰岛周围及胰岛内出现胰岛炎。
结论小剂量(50mg/kg)多次链脲佐菌素腹腔注射C57BL/6J可诱导稳定可靠的1型糖尿病小鼠模型。
关键词:链脲佐菌素;1型糖尿病模型;腹腔注射;小剂量多次Multiple low dose intraperitoneal injection of streptozotocin-induced type 1 diabetes miceand model identificationAbstract:Objective To investigate the molded rate of type 1 diabetes and model stability of C57BL/6Jinduced by intraperitoneal injection of multiple low dose strptozotocin. Method Male C57BL/6J wererandomly divided into normal control group and streptozotozin 50mg/kg dose group, blood glucose,serum insulin, IL-10 and IFN-γ were measured after repeated administration of streptozotocin. ResultsThe molded rate of multiple 50mg/kg dose group was 83.64%, the fasting blood glucose serum IFN-γlevel were significantly higher than the normal group while the serum insulin and IL-10 valuesdecreased significantly (P<0.01). The number of islets of pancreatic tissue was significant reductionand insulitis occurs surrounding the islets. Conclusion Multiple low dose (50mg/kg) intraperitonealinjection of streptozotocin in C57BL/6J can induce stable mouse model of type 1 diabetes.Key words: streptozotocin; type 1 diabetes model; intraperitoneal injection; multiple low dose胰岛素依赖型糖尿病又名1型糖尿病,是由于机体自身反应性免疫应答攻击胰岛β细胞,使其遭破坏、功能缺失,从而导致胰岛素绝对缺乏所引起的糖尿病。
由于β细胞具有产生胰岛素和调节血糖的功能,β细胞群的毁坏最终导致了血糖的失调和高糖血症的发生。
这种疾病的发生通常被认为是由于遗传易感性以及免疫系统对环境的免疫应反应答亢进而引起。
因此,可以说1型糖尿病是由遗传和环境因素相互作用而引起的一种代谢异常综合征。
胰岛素依赖型糖尿病已成为危害青少年健康最主要的慢性病之一,其治疗仍然是全球医疗的棘手问题。
糖尿病带来的危害,几乎都来自它的并发症。
血糖控制良好与否与并发症密切相关,因此治疗目标是达到最佳血糖控制,以延缓或防止并发症。
[1]。
建立可靠的动物模型是治疗1型糖尿病的必备条件。
目前诱导1型糖尿病模型的方法众多,如化学诱导法、T细胞介导法等,其中化学诱导法由于简单易操作得到较为广泛的应用。
链脲佐菌素(STZ)是诱导糖尿病动物模型的最常用药物之一[2],链脲佐菌素即2-甲基-2-(3-亚硝基脲)-D-吡喃糖,结构类似于N-乙酰葡糖糖胺,最初是作为抗生素和抗肿瘤药物从细菌中分离得到的,生物半衰期为5-15分钟,STZ诱导1型糖尿病模型分为两种方法:一次大剂量腹腔注射和多次小剂量腹腔注射,一次大剂量造模短时间内造成大量胰岛β细胞破坏往往使动物容易死亡,而应用小剂量多次腹腔注射STZ造成小批量持续性的胰岛β细胞损坏,这种渐进的方式使动物模型易发生胰岛炎症,最终导致胰岛素分泌绝对不足和高血糖的发病过程与人类1型糖尿病十分相似[3, 4]。
目前研究认为GlcNAcase[5]、多聚(ADP-核糖)转移酶(PARP)[6]、K ATP通道[7]、活性氧(ROS)[8, 9]、iNOS[10]等可能与STZ对β细胞的毒性作用有关。
不同品系的小鼠对STZ的敏感性是不同的,C57BL/6小鼠是近交系小鼠,因其实验结果精度高、可比性好以及应激反应均一等优点收到较多应用[11, 12]。
雄性小鼠比雌性小鼠更倾向于被STZ诱导,产生细胞毒性[13]。
本研究考察了50mg/kg剂量的STZ对C57BL/6J多次腹腔注射后诱导的1型糖尿病小鼠血糖、成模率和模型稳定性,探讨STZ对小鼠血清胰岛素、细胞因子及胰岛炎症的影响。
1材料与方法1.1材料1.1.1实验动物100只4周龄C57BL/6J小鼠,雄性,体重17±3g,购自扬州大学比较医学中心,许可证号:SCXR(苏)2012-0004;1.1.2主要试剂链脲佐菌素(STZ,南京百世金进口分装),小鼠胰岛素ELISA试剂盒、小鼠IL-10 ELISA试剂盒、小鼠IFN-γELISA试剂盒均购自于南京百世金生物技术有限公司;1.1.3主要仪器博仕珑血糖仪,博仕珑血糖试纸(台湾厚美德生物科技有限公司),Bio-Rad550型酶标仪(美国Bio-Rad公司)。
1.2方法1.2.1STZ造模100只雄性C57BL/6J小鼠适应性喂养2周,随机分为2组,造模组90只,正常对照组10只。
正常对照组腹腔注射柠檬酸钠缓冲溶液(0.1mol/L新鲜柠檬酸钠缓冲溶液,pH 4.5)0.1mL/只,模型组腹腔注射同等体积STZ-柠檬酸钠缓冲溶液,剂量为50mg/kg,每日1次,连续5天。
造模前,小鼠禁食不禁水12h。
1.2.2造模前后小鼠血糖变化在STZ注射前,分别用血糖仪测定正常对照组和模型组小鼠的血糖,并于造模后第1、2、3、4、7、13周测定对照组和模型组小鼠的血糖,观察STZ注射前后小鼠血糖的变化,以末次注射STZ第7天和14天,空腹血糖(禁食8h)≥11.1mmol/L视为模型成功。
1.2.3血清胰岛素、IL-10、IFN-γ含量的测定分别选取造模前正常小鼠以及造模后第2、4、13周空腹血糖值≥11.1mol/L 的小鼠眼镜脉丛取血,室温静置待血凝固后,4000r/min 离心10min 后分离血清,-70℃冻存。
血清胰岛素、IL-10、IFN-γ含量的测定方法均为酶联免疫分析法(ELISA),操作过程按照试剂盒说明书进行。
1.2.4 胰腺组织病理学分析采用常规HE 染色法观察胰岛的组织学改变,选择正常对照组小鼠以及造模后空腹血糖≥11.1mmol/L 且持续2周的模型组小鼠,脱颈法处死送于南京百世金生物技术有限公司做H&E 染色分析,主要步骤为去胰腺组织固定于10%福尔马林溶液内,脱水,石蜡包埋,制片(4μm 厚),HE 染色,光学显微镜观察胰岛:0级,胰岛完整,胰岛周围及内部均为炎细胞浸润;1级,胰岛外周有轻度炎细胞浸润;2级,以岛内有炎细胞浸润,面积<50%;3级,胰岛岛内炎细胞浸润,面积>50%;4级,炎细胞完全浸润胰岛,胰岛萎缩、坏死、消失。
1.3 统计学分析实验数据均以平均值±SD 值表示,使用SPSS 13.0进行统计学分析,对实验结果进行t 检验,生存率的比较用卡方检验,P <0.05为有统计学意义,实验结果用origin 8.0作图。
2 结果2.1 造模后小鼠血糖的变化与正常小鼠相比,造模后的小鼠出现多饮、多食、多尿等糖尿病病症,空腹血糖值明显升高,与正常组比较具有极显著性差异(P <0.01),同时模型组小鼠的空腹血糖能够维持高血糖水平(图1)。
以末次注射STZ 后,连续两周空腹血糖≥11.1mmol/L 为模型成功,即在注射STZ 完毕后第2周,有76只小鼠血糖≥11.1,死亡12只,模型成功率为83.64%,死亡率为13.33%。
血糖(m m o l /L )注射STZ后时间(周))图1 造模前后小鼠血糖变化Fig.1 Effect of STZ on blood glucose level of mice2.2 造模前后血清胰岛素、IL-10和IFN-γ的变化选取造模后第2、13周成模小鼠和造模前正常小鼠血清测定血清胰岛素、IL-10和IFN-γ含量。
与造模前正常小鼠相比,刚成模小鼠血清胰岛素水平显著降低(P <0.01),直到造模后第13周,胰岛素水平能够维持在较低水平,与正常小鼠具有极显著性差异(P <0.01)(如图2所示)。
与造模前正常小鼠相比,血清IL-10的水平显著降低,直到造模后13周时,IL-10一直在较低水平(P <0.01)(如图3所示)。
与正常小鼠相比,血清IFN-γ的水平显著升高,到造模后13周,血清IFN-γ一直在较高水平(P <0.05)。
121416182022**132血清胰岛素(m )U /L 注射STZ后时间(周))0**图2 造模前后血清胰岛素变化Fig.2 Effect of STZ on blood insulin of mice**P <0.01,*P <0.05, compared with 0 week400600800132注射STZ后时间(周)**I L -10(p g /m L )**图3 造模前后血清IL-10变化Fig.3 Effect of STZ on blood IL-10 of mice**P <0.01,*P <0.05, compared with 0 week 600800100012001400132*I F N -γ(n g /L )注射STZ后时间(周)*0图4 造模前后血清IFN-γ变化Fig.4 Effect of STZ on blood IFN-γ of mice**P <0.01,*P <0.05, compared with 0 week2.3 胰岛病理切片分析图5A 为缓冲液组,HE 染色细胞着色浅、胰岛排列呈团索状,边缘规则,数目多。