细胞毒性实验方案
细胞毒性实验方案
细胞毒性实验方案(总5页) --本页仅作预览文档封面，使用时请删除本页--细胞毒性实验设计方案1.准备材料： DMEM(高糖) 胰酶双抗(青霉素/链霉素） DAPIMTT(5mg/mL) DMSO PBS 4%多聚甲醛指甲油 6孔培养板 96孔培养板超薄载玻片培养瓶(25mL) 一包μm滤膜灭菌： 50mL，10mL，5mL离心管两种枪头2.实验方案本实验所用的材料为载药的通过二硫键桥连透明质酸的夹心二氧化硅（SiO2-SS-HA/DOX），在高谷胱甘肽条件下，二硫键断裂，透明质酸脱离，同时夹心二氧化硅中药物得以释放。
本实验的目的为测定透明质酸修饰的夹心二氧化硅（SiO2-SS-HA/DOX）的细胞毒性。
实验组为SiO2-SS-HA/DOX、SiO2-SS-HA、DOX，空白对照组为纯细胞,分别采用HepG2人肝癌细胞为肿瘤细胞模型和L929成纤维细胞为正常细胞模型。
采用HepG2人肝癌细胞为肿瘤细胞模型，实验组为SiO2-SS-HA/DOX、SiO2-SS-HA、DOX，空白对照组为纯细胞。
培养基中含有10% (v/v) FBS和1% (w/v) 双抗(青霉素/链霉素)。
配制不同浓度的SiO2-SS-HA/DOX、SiO2、HA、DOX药物载体培养基溶液。
(1).以HepG2人肝癌细胞为肿瘤细胞模型:培养基的配置：双抗 1% 血清12% DMEM 87%具体操作步骤：细胞的复活：①将冻存于液氮中的细胞取出，迅速放入37℃温水中，使细胞快速溶解。
②将悬浮的细胞移至离心管中，加5mL无血清培养基，1000rmp,5min离心去上清，再加5mL有血清培养基，转移至培养瓶中。
（每次转移时，将之前的离心管洗涤，并用移液枪来回吸，使液体混合均匀。
）③将培养瓶放入培养箱中培养。
细胞的传代：将%的胰酶分装至小离心管中，每个管中2mL，冻存于-20℃，每次使用一管，避免反复冻融。
①将培养瓶从培养箱中取出，盖子旋紧，喷75%的酒精放入超净台。
细胞毒性实验方案
细胞毒性实验设计方案1.准备材料：DMEM(高糖) 胰酶双抗(青霉素/链霉素）DAPIMTT(5mg/mL) DMSO PBS 4%多聚甲醛指甲油 6孔培养板96孔培养板超薄载玻片培养瓶(25mL) 一包0.45μm滤膜灭菌： 50mL，10mL，5mL离心管两种枪头2.实验方案本实验所用的材料为载药的通过二硫键桥连透明质酸的夹心二氧化硅（SiO2-SS-HA/DOX），在高谷胱甘肽条件下，二硫键断裂，透明质酸脱离，同时夹心二氧化硅中药物得以释放。
本实验的目的为测定透明质酸修饰的夹心二氧化硅（SiO2-SS-HA/DOX）的细胞毒性。
实验组为SiO2-SS-HA/DOX、SiO2-SS-HA、DOX，空白对照组为纯细胞,分别采用HepG2人肝癌细胞为肿瘤细胞模型和L929成纤维细胞为正常细胞模型。
采用HepG2人肝癌细胞为肿瘤细胞模型，实验组为SiO2-SS-HA/DOX、SiO2-SS-HA、DOX，空白对照组为纯细胞。
培养基中含有10% (v/v) FBS和1% (w/v)双抗(青霉素/链霉素)。
配制不同浓度的SiO2-SS-HA/DOX、SiO2、HA、DOX药物载体培养基溶液。
(1).以HepG2人肝癌细胞为肿瘤细胞模型:培养基的配置：双抗 1% 血清12% DMEM 87%具体操作步骤：细胞的复活：①将冻存于液氮中的细胞取出，迅速放入37℃温水中，使细胞快速溶解。
②将悬浮的细胞移至离心管中，加5mL无血清培养基，1000rmp,5min离心去上清，再加5mL有血清培养基，转移至培养瓶中。
（每次转移时，将之前的离心管洗涤，并用移液枪来回吸，使液体混合均匀。
）③将培养瓶放入培养箱中培养。
细胞的传代：将0.25%的胰酶分装至小离心管中，每个管中2mL，冻存于-20℃，每次使用一管，避免反复冻融。
①将培养瓶从培养箱中取出，盖子旋紧，喷75%的酒精放入超净台。
②将培养液倒入废液缸，残留培养基用吸管吸干净，操作完成后，培养瓶口用火烧。
细胞毒试验流程
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乳酸脱氢酶(LDH)细胞毒性检测试剂盒一站式解决方案
乳酸脱氢酶（LDH）细胞毒性检测试剂盒一站式解决方案乳酸脱氢酶（lactate dehydrogenase，LD 或LDH ，EC1.1.1.27 ）是一类NAD依赖性激酶，有LDHA、LDHB、LDHC三种亚基，可构成6种四聚体同工酶。
动物乳酸脱氢酶是由4个亚单位组成的四聚体，常见的A、B 两种亚基构成的5种LDH同工酶（LDH1-5），C亚基则仅组成一种LDH同工酶即LDH-C4。
乳酸脱氢酶为含锌离子的金属蛋白，分子量为135-140kD，是糖无氧酵解及糖异生的重要酶系之一，可催化丙酸与L-乳酸之间的还原与氧化反应，也可催化相关的α-酮酸。
LDH广泛存在于人体组织中，以肾脏含量最高，其次是心肌和骨肌。
红细胞内LDH约为正常血清的100倍。
一、乳酸脱氢酶分类1.根据结合辅酶的不同，微生物体一般包含两种乳酸脱氢酶，NAD-依赖型乳酸脱氢酶（NAD-dependent lactate dehydrogenases，nLDHs）和NAD-非依赖型乳酸脱氢酶（NAD-independent lactate dehydrogenases，iLDHs）两大类。
2.按其催化底物的构型不同，NAD-依赖型乳酸脱氢酶可以分为NAD依赖型-L-乳酸脱氢酶（L-NAD-依赖型乳酸脱氢酶）和NAD依赖型-D-乳酸脱氢酶（D-NAD-依赖型乳酸脱氢酶）两大类，分别催化丙酮酸合成L-乳酸和D-乳酸。
3.根据天然电子受体的不同，可以将NAD-非依赖型乳酸脱氢酶分为三类。
第一类为膜蛋白，利用膜醌类作为外部的电子受体；第二类直接利用O2作为电子受体，根据氧化终产物的不同，又将其细分为乳酸氧化酶（Lactate oxidase，LOX）和乳酸单氧酶（Lactate monooxygenases，LMO），其中前者产生丙酮酸和H2O2，而后者产生乙酸、CO2和H2O；第三类是硫胺b2（flavocytochrome b2），存在于真菌中，它天然的电子受体为细胞色素c。
sp方案化疗
sp方案化疗SP方案化疗概述SP方案化疗是一种常用的细胞毒性化疗方案，由紫杉醇（S）和顺铂（P）两种药物组成。
该方案主要用于治疗多种恶性肿瘤，包括乳腺癌、卵巢癌、肺癌等。
SP方案化疗通过同时使用两种不同作用机制的药物，发挥协同作用，提高肿瘤的治疗效果。
药物成分紫杉醇（S）紫杉醇是一种微管抑制剂，通过阻断肿瘤细胞的有丝分裂，抑制肿瘤细胞增殖。
紫杉醇是一种天然植物中提取的化合物，在临床中被广泛应用于治疗恶性肿瘤。
紫杉醇的主要不良反应包括骨髓抑制、神经病变、过敏反应等。
顺铂（P）顺铂是一种铂类细胞毒性药物，通过与肿瘤细胞DNA结合，干扰DNA复制和转录过程，从而抑制肿瘤细胞的增殖和分裂。
顺铂是一种广谱抗肿瘤药物，常用于治疗包括卵巢癌、肺癌等恶性肿瘤。
顺铂的主要不良反应包括骨髓抑制、肾毒性等。
治疗方案SP方案化疗一般在专科医生的指导下进行，其治疗方案可以根据患者的具体情况进行调整。
适应症SP方案化疗主要适用于以下类型的恶性肿瘤：- 乳腺癌：包括早期和晚期乳腺癌；- 卵巢癌：包括卵巢上皮癌、卵巢原发性淋巴瘤等；- 肺癌：包括非小细胞肺癌、小细胞肺癌等。
剂量和给药周期SP方案化疗的药物剂量和给药周期可以根据患者的具体情况进行调整。
一般来说，紫杉醇的剂量为每平方米体表面积175mg/m²，顺铂的剂量为每平方米体表面积75mg/m²。
药物一般通过静脉输注给予，给药周期一般为21天，连续治疗4-6个周期。
不良反应和处理方法SP方案化疗可能会引起一些不良反应，包括骨髓抑制、恶心呕吐、脱发、神经病变等。
对于不同的不良反应，可以采取相应的处理方法：- 骨髓抑制：需要定期进行血常规检查，确保血细胞计数在安全范围内。
如果出现严重的骨髓抑制，可能需要暂停化疗或减少剂量。
- 恶心呕吐：可以通过口服或静脉给予抗呕吐药物进行缓解。
- 脱发：脱发是化疗常见的不良反应，通常是暂时性的。
可以通过戴假发、佩戴头巾等方式减轻脱发的影响。
药物免疫毒性试验实验报告
药物免疫毒性试验实验报告实验目的：本实验旨在评估某药物对免疫系统的潜在毒性，通过一系列体外和体内实验，确定药物对免疫细胞功能的影响，为药物安全性评估提供科学依据。
实验材料：1. 药物样品2. 小鼠脾细胞3. 人外周血单核细胞(PBMCs)4. 细胞培养基5. 细胞计数板6. 酶联免疫吸附试验(ELISA)试剂盒7. 流式细胞仪8. 实验动物：BALB/c小鼠9. 其他必要的实验试剂和设备实验方法：1. 细胞培养：将小鼠脾细胞和人外周血单核细胞(PBMCs)在适宜的细胞培养基中培养。
2. 药物处理：将药物以不同浓度加入细胞培养体系中，进行不同时间的处理。
3. 细胞活性测定：采用MTT法测定药物处理后细胞的活性。
4. 细胞增殖能力测定：通过细胞计数板计数细胞数量，评估细胞增殖情况。
5. 细胞因子释放测定：使用ELISA试剂盒测定药物处理后细胞释放的细胞因子水平。
6. 细胞凋亡检测：采用Annexin V-FITC/PI双染色法检测细胞凋亡情况。
7. 免疫细胞功能测定：通过流式细胞仪检测药物处理后免疫细胞表面标志物的表达情况。
8. 动物实验：将药物以不同剂量给药于BALB/c小鼠，观察药物对小鼠免疫器官的影响，并进行免疫细胞功能的相关检测。
实验结果：1. 细胞活性：药物处理后，细胞活性随药物浓度的增加而降低，表明药物具有一定的细胞毒性。
2. 细胞增殖：药物处理组的细胞增殖能力较对照组有所下降，说明药物可能影响细胞的增殖。
3. 细胞因子释放：药物处理后，部分细胞因子的释放水平发生显著变化，提示药物可能影响免疫细胞的功能。
4. 细胞凋亡：药物处理组的细胞凋亡率较对照组有所增加，说明药物可能诱导免疫细胞凋亡。
5. 免疫细胞功能：药物处理后，免疫细胞表面标志物的表达发生变化，表明药物可能影响免疫细胞的活化和功能。
6. 动物实验：药物给药后，小鼠免疫器官的重量和形态发生改变，免疫细胞功能检测结果显示药物对小鼠免疫系统有影响。
细胞毒性实验方案
细胞毒性实验设计方案1.准备材料：DMEM(高糖) 胰酶双抗(青霉素/链霉素）DAPIMTT(5mg/mL) DMSO PBS 4%多聚甲醛指甲油 6孔培养板96孔培养板超薄载玻片培养瓶(25mL) 一包0.45μm滤膜灭菌： 50mL，10mL，5mL离心管两种枪头2.实验方案本实验所用的材料为载药的通过二硫键桥连透明质酸的夹心二氧化硅（SiO2-SS-HA/DOX），在高谷胱甘肽条件下，二硫键断裂，透明质酸脱离，同时夹心二氧化硅中药物得以释放。
本实验的目的为测定透明质酸修饰的夹心二氧化硅（SiO2-SS-HA/DOX）的细胞毒性。
实验组为SiO2-SS-HA/DOX、SiO2-SS-HA、DOX，空白对照组为纯细胞,分别采用HepG2人肝癌细胞为肿瘤细胞模型和L929成纤维细胞为正常细胞模型。
采用HepG2人肝癌细胞为肿瘤细胞模型，实验组为SiO2-SS-HA/DOX、SiO2-SS-HA、DOX，空白对照组为纯细胞。
培养基中含有10% (v/v) FBS和1% (w/v)双抗(青霉素/链霉素)。
配制不同浓度的SiO2-SS-HA/DOX、SiO2、HA、DOX药物载体培养基溶液。
(1).以HepG2人肝癌细胞为肿瘤细胞模型:培养基的配置：双抗 1% 血清12% DMEM 87%具体操作步骤：细胞的复活：①将冻存于液氮中的细胞取出，迅速放入37℃温水中，使细胞快速溶解。
②将悬浮的细胞移至离心管中，加5mL无血清培养基，1000rmp,5min离心去上清，再加5mL有血清培养基，转移至培养瓶中。
（每次转移时，将之前的离心管洗涤，并用移液枪来回吸，使液体混合均匀。
）③将培养瓶放入培养箱中培养。
细胞的传代：将0.25%的胰酶分装至小离心管中，每个管中2mL，冻存于-20℃，每次使用一管，避免反复冻融。
①将培养瓶从培养箱中取出，盖子旋紧，喷75%的酒精放入超净台。
②将培养液倒入废液缸，残留培养基用吸管吸干净，操作完成后，培养瓶口用火烧。
动物药学的实验室技术与方法
动物药学的实验室技术与方法动物药学作为一门综合性学科，研究动物用药的相关问题及药物在动物体内的作用机理。
为了有效地开展动物药学的研究工作，掌握实验室技术与方法是至关重要的。
本文将介绍一些常用的动物药学实验室技术与方法，以帮助读者更好地理解和应用它们。
一、药物给药方法药物给药是研究药物作用的重要环节，常用的药物给药方法包括口服给药、静脉注射、皮下注射和气管注射等。
口服给药是最常见的药物给药方式，适用于固体和液体药物的给予。
静脉注射可使药物迅速进入血液循环，适用于需要快速作用的药物。
皮下注射常用于给予水溶性药物，使药物缓慢吸收。
气管注射常用于给药时需要直接作用于呼吸系统的药物。
二、动物模型建立在动物药学研究中，合理的动物模型建立对于研究结果的准确性和可靠性至关重要。
常用的动物模型包括小鼠、大鼠、兔子、猪等。
选择适合的动物模型需要考虑到研究目的、动物特征以及相关的道德伦理规范。
模型建立后，需要对动物进行特定药物的给予，观察其生理与行为变化，以评估药物的疗效和安全性。
三、药物代谢研究药物代谢是指药物在生物体内的转化和消除过程，了解药物代谢有助于提高药物疗效和减少不良反应。
常用的药物代谢研究方法包括质谱分析、高效液相色谱法和放射性同位素标记等。
质谱分析可用于检测药物及其代谢产物在体内的浓度和分布情况。
高效液相色谱法可用于分离和鉴定药物的代谢产物。
放射性同位素标记可用于追踪药物在生物体内的代谢。
四、药物毒性评价药物毒性评价是对药物毒副作用进行评估和监测的过程。
常用的方法包括细胞毒性实验、动物中毒实验以及组织学和生化学分析等。
细胞毒性实验可用于评估药物对细胞的损伤程度。
动物中毒实验可以观察动物在药物作用下的生理和行为变化。
组织学和生化学分析可用于评估药物对生物组织的影响和变化。
五、药物效价评估药物效价评估是评价药物疗效和治疗效果的过程，常用的方法包括生物学活性测定、药物浓度和疗效关系建立等。
通过生物学活性测定可以评估药物的作用机制和生物效应。
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细胞毒性实验方案 Prepared on 22 November 2020
细胞毒性实验设计方案
1.准备材料：DMEM(高糖)胰酶双抗(青霉素/链霉素）
DAPIMTT(5mg/mL)DMSOPBS4%多聚甲醛指甲油6孔培养板96孔培养板超薄载玻片培养瓶(25mL)一包μm滤膜
灭菌：50mL，10mL，5mL离心管两种枪头
2.实验方案
本实验所用的材料为载药的通过二硫键桥连透明质酸的夹心二氧化硅（SiO2-SS-HA/DOX），在高谷胱甘肽条件下，二硫键断裂，透明质酸脱离，同时夹心二氧化硅中药物得以释放。
本实验的目的为测定透明质酸修饰的夹心二氧化硅（SiO2-SS-HA/DOX）的细胞毒性。
实验组为SiO2-SS-HA/DOX、SiO2-SS-HA、DOX，空白对照组为纯细胞,分别采用HepG2人肝癌细胞为肿瘤细胞模型和L929成纤维细胞为正常细胞模型。
采用HepG2人肝癌细胞为肿瘤细胞模型，实验组为SiO2-SS-HA/DOX、SiO2-SS-HA、DOX，空白对照组为纯细胞。
培养基中含有10%(v/v)FBS和1%(w/v)双抗(青霉素/链霉素)。
配制不同浓度的SiO2-SS-HA/DOX、SiO2、HA、DOX药物载体培养基溶液。
(1).以HepG2人肝癌细胞为肿瘤细胞模型:
培养基的配置：双抗1%血清12%DMEM87%
具体操作步骤：
细胞的复活：
①将冻存于液氮中的细胞取出，迅速放入37℃温水中，使细胞快速溶解。
②将悬浮的细胞移至离心管中，加5mL无血清培养基，1000rmp,5min离心去上清，再加5mL有血清培养基，转移至培养瓶中。
（每次转移时，将之前的离心管洗涤，并用移液枪来回吸，使液体混合均匀。
）
③将培养瓶放入培养箱中培养。
细胞的传代：
将%的胰酶分装至小离心管中，每个管中2mL，冻存于-20℃，每次使用一管，避免反复冻融。
①将培养瓶从培养箱中取出，盖子旋紧，喷75%的酒精放入超净台。
②将培养液倒入废液缸，残留培养基用吸管吸干净，操作完成后，培养瓶口用火烧。
③加入2mL胰酶将瓶底铺满，消化2-3min，于显微镜下观察细胞形态，呈圆形，即消化完毕，加入2mL12%DMEM终止消化，用枪吹打，使细胞悬浮。
④将细胞悬浮液移入10mL离心管中，1000rmp,5min,离心。
⑤迅速倒掉上清，加入6mLDMEM培养基，分装至两个培养瓶中，再各加入
培养箱中培养48h。
2mLDMEM，至5mL，于37℃，5%的CO
2
⑥下一次传代步骤同①-⑤。
细胞存活率测定方法（布板，加样）：
①同传代步骤①-④。
②给每个离心管中加入定量的培养基，并用移液枪来回吸，使液体混合均匀，将所有含有细胞的培养基转移到一个50mL离心管中，最终使液体体积为30mL。
③96孔板中每个浓度设计5个复孔，每块板设一组空白调零孔，内加培养液，不含细胞与药物，一组空白对照组，只加培养基和细胞，不加药物。
除过空白调零孔，每孔加入100μL含细胞的培养基。
将孔板放入培养箱中，培养箱保持一定的湿度，5%(v/v)CO2，温度保持在37℃，培养22小时。
④将谷胱甘肽加入到10mL培养基，充分溶解，浓度为mL,取2微升的mL 谷胱甘肽溶液加入到10mL的培养基中，将这两个浓度含谷胱甘肽的培养基替换部分原来的培养基，作为对照，不需要加谷胱甘肽的孔换上新鲜培养基，将孔板放入培养箱中，培养箱保持一定的湿度，5%(v/v)CO2，温度保持在37℃，培养2小时，具体的加样孔见图一。
⑤将的SiO2-SS-HA/DOX样品溶到3mL的培养基中，分成两份，其中一份里加入的培养基，再将稀释后的含液样的培养基分成两份，其中一份加入新鲜培
养基，依此类推，便得到一个浓度梯度的SiO2-SS-HA/DOX样品。
SiO2-SS-HA样品的浓度配制方法同上。
⑥将的SiO2-SS-HA/DOX样品溶到3mL的培养基中，剩下的步骤同⑤。
⑦将配制好的载体溶液替换原来96孔板中的培养基，如图1所示。
将孔板放入培养箱中，培养箱保持一定的湿度，5%(v/v)CO2，温度保持在37℃，培养24小时。
⑧配制5mg/mL的MTT溶液，将孔板中的培养更换成MTT溶液，将孔板放入培养箱中，培养箱保持一定的湿度，5%(v/v)CO2，温度保持在37℃。
培养4小时后，将孔板中的培养基取出，用PBS溶液清洗3次，然后向每孔加入
100μL的DMSO，溶解孔中的甲瓒，采用酶标仪测定，波长设定为490nm
图1药物载体布板示意图
⑵.以L929成纤维细胞为正常细胞模型:
实验组为SiO2-SS-HA/DOX、SiO2-SS-HA、DOX，空白对照组为纯细胞。
实验目的为测定药物载体溶液对正常细胞的细胞毒性。
培养基的配置：双抗1%血清12%DMEM87%
具体操作步骤：
细胞的复活：
①将冻存于液氮中的细胞取出，迅速放入37℃温水中，使细胞快速溶解。
②将悬浮的细胞移至离心管中，加5mL无血清培养基，1000rmp,5min离心去上清，再加5mL有血清培养基，转移至培养瓶中。
（每次转移时，将之前的离心管洗涤，并用移液枪来回吸，使液体混合均匀。
）
③将培养瓶放入培养箱中培养。
细胞的传代：
将%的胰酶分装至小离心管中，每个管中2mL，冻存于-20℃，每次使用一管，避免反复冻融。
①将培养瓶从培养箱中取出，盖子旋紧，喷75%的酒精放入超净台。
②将培养液倒入废液缸，残留培养基用吸管吸干净，操作完成后，培养瓶口用火烧。
③加入2mL胰酶将瓶底铺满，消化2-3min，于显微镜下观察细胞形态，呈圆形，即消化完毕，加入2mL12%DMEM终止消化，用枪吹打，使细胞悬浮。
④将细胞悬浮液移入10mL离心管中，1000rmp,5min,离心。
⑤迅速倒掉上清，加入6mLDMEM培养基，分装至两个培养瓶中，再各加入
培养箱中培养48h。
2mLDMEM，至5mL，于37℃，5%的CO
2
⑥下一次传代步骤同①-⑤。
细胞存活率测定方法（布板，加样）：
①同传代步骤①-④。
②给每个离心管中加入定量的培养基，并用移液枪来回吸，使液体混合均匀，将所有含有细胞的培养基转移到一个50mL离心管中，最终使液体体积为12mL。
③96孔板中每个浓度设计5个复孔，每块板设一组空白调零孔，内加培养液，不含细胞与药物，一组空白对照组，只加培养基和细胞，不加药物。
除过空白调零孔，每孔加入100μL含细胞的培养基。
将孔板放入培养箱中，培养箱保持一定的湿度，5%(v/v)CO2，温度保持在37℃，培养22小时。
④将所有加样的孔换成新鲜培养基，作为与癌细胞④的对照。
将孔板放入培养箱中，培养箱保持一定的湿度，5%(v/v)CO2，温度保持在37℃，培养2小时。
⑤将的SiO2-SS-HA/DOX样品溶到1mL的培养基中，分成两份，其中一份里加入的培养基，再将稀释后的含液样的培养基分成两份，其中一份加入新鲜培养基，依此类推，便得到一个浓度梯度的SiO2-SS-HA/DOX样品。
SiO2-SS-HA样品的浓度配制方法同上。
⑥将的SiO2-SS-HA/DOX样品溶到1mL的培养基中，剩下的步骤同⑤。
⑦将配制好的载体溶液替换原来96孔板中的培养基，如图2所示。
将孔板放入培养箱中，培养箱保持一定的湿度，5%(v/v)CO2，温度保持在37℃，培养24小时。
⑧配制5mg/mL的MTT溶液，将孔板中的培养更换成MTT溶液，将孔板放入培养箱中，培养箱保持一定的湿度，5%(v/v)CO2，温度保持在37℃。
培养4
小时后，将孔板中的培养基取出，用PBS溶液清洗3次，然后向每孔加入
100μL的DMSO，溶解孔中的甲瓒，采用酶标仪测定，波长设定为490nm 细胞存活率采用百分比表示:细胞存活率=(OD treated--OD blank/OD control-OD blank)×
100%。
OD
blank 是只有培养液，没有细胞的培养孔的吸光值，0D
control
为不含药物载
体含细胞和空白培养基的培养孔中所测吸光值，ODtreated为含药物载体培养孔所测吸光值。
细胞相对存活率根据吸光值计算。
图2正常细胞组的药物载体布板示意图。