western的操作步骤
WESTERNBLOT操作步骤图PPT课件
1
图中绿色的是夹玻璃片的架子
2
玻璃板对齐后放入架中，把两侧的夹子卡紧。要使短玻璃靠 外，长玻璃靠内。
3
然后垂直卡在架子上准备灌胶。操作时要使两玻璃对齐，以 免漏胶。 图示两块玻璃板放在一个架子上。
4
配10％分离胶，加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。灌胶时，可用10ml枪吸 取5ml胶沿玻璃放出，待胶面升到绿带中间线高度时即可。然后胶上加一层 水，液封后的胶凝的更快。（灌胶时开始可快一些，胶面快到所需高度时要 放慢速度。操作时胶一定要沿玻璃板流下，这样胶中才不会有气泡。加水液
33
将膜用TBS从下向上浸湿后，移至含有封闭液的平皿中
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室温下脱色摇床上摇动封闭1h。 35
按所需稀释浓度滴加一抗（直接加在封闭液里）4℃ 过夜或37℃ 3h。
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第二天取出膜，用TBST洗三次每次10min，然后加 入TBS液中，按稀释浓度滴加二抗。室温孵育1h,再用 TBST洗三次每次10min。最后DAB显色或者化学发光法 显影。
封时要很慢，否则胶会被冲变型。）
5
当水和胶之间有一条折射线时，说明胶已凝了。再等 3min使胶充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸 干。 按前面方法配4％的浓缩胶,加入TEMED后立即摇匀即可 灌胶。将剩余空间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。 灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。
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电泳时间一般1-2 h，电压为100V较好，也可用60V。电
泳至溴酚兰刚跑出即可终止电泳。
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取出转移槽
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2020/3/6
可编辑修改
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取下玻璃板
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两块玻璃板都已经取下
Western操作步骤
Western-Blot 操作流程（一）组织中总蛋白的提取用干净的剪刀剪取绿豆大小的组织块于1.5ml的EP管中，加入200uLRIPA裂解液(含PMSF，比例为97：1：1：1)，用杵子研磨3-4min,段事先在酒精里浸泡至少30min，用之前用滤纸吸干酒精，）20-30s,每隔5min后在 4℃下12000rpm 离心 5min，取上清分装于 1.5mlEP管中并置于-80℃冰箱保存。
（二）BCA法蛋白含量的测定(1) 从-20℃取出 1mg/ml BSA，室温融化后，备用。
(3)以上步骤完成后，在所有加样的孔里各加上200uLBCA蛋白浓度测定试剂（按试剂A：试剂B=50：1的比例配置），然后置于37℃水浴锅30min后取出。
(4)酶标仪测定OD值。
(5)EXCEL表格制作标准曲线，按照标准曲线计算各样本的蛋白浓度。
（三）稀释蛋白及蛋白变性如果计算出的样本的蛋白浓度偏高，需要用RIPA裂解液将蛋白稀释（一般将蛋白浓度稀释至5-10ug/uL）;稀释完后取10-30uL的样本蛋白置于新的1.5mLEP管中，加入新EP管中总体积1/4体积的上样缓冲液，置于99-100℃的干式恒温器中加热5-10min,使蛋白变性。
（注意：将EP管的盖子盖紧，插入加热器的大圆孔中）煮过的蛋白置于-20℃冰箱保存。
（四）制作SDS电泳胶⑴清洗玻璃板，双蒸水冲洗晾干后，根据厂家说明安装玻璃板。
⑵配置10%的分离胶配方：H2O2 4.0ml30%丙烯酰胺液 3.3ml1.5mol/l Tris （ PH8.8）2.5ml10%SDS 100ul10%过硫酸胺 100ulTEMED 4ul⑶分离胶溶液中加入 TEMED 以及 10%过硫酸胺后需立即混匀（防止未灌胶就发生凝固），将混合液立即加入玻璃板内，距梳子下缘约 lcm 处即可，蒸馏水封顶，待凝胶完全聚合（约30min）后，倒去双蒸水。
⑷制备5%的浓缩胶配方；H2O2 3.4ml30%丙烯酰胺液 0.83ml1.5mol/l Tris （ PH6.8） 0.63ml10%SDS 50ul10%过硫酸胺 50ulTEMED 5ul(5)将所剩余空间加满浓缩胶，迅速将梳子插入浓缩胶中，室温放置约10min，待浓缩胶凝固后，轻轻将梳子拔出。
Westernblot实验操作步骤
Western blot实验步骤一、制备蛋白样品（单层贴壁细胞总蛋白提取）1.倒掉细胞培养液,加3ml预冷的PBS洗涤细胞，重复两次，弃掉PBS后将细胞培养瓶置于冰上。
2.裂解液RIPA(强)1ml +PMSF10ul(100:1),两者混匀后加入培养瓶中裂解细胞，冰上裂解30min,为使细胞充分裂解,培养瓶要经常来回摇动。
3.裂解完后，用细胞刮将细胞刮于一侧（动作要快），转移至ep管中.4.4度，12000rpm,离心5min.离心后取上清至新的ep管中，用于后续实验（-80保存）常用蛋白收样：倒掉细胞培养基后，预冷PBS洗涤细胞2次，弃去，再加入1ml PBS，用细胞刮轻轻刮取细胞，转移至1.5ml ep管中，12000rpm，离心5min，尽量吸净上清，沉淀于-80保存，用于后续实验。
融化蛋白样品，加入RIPA+PMSF细胞裂解液（200ul/ep管），充分混匀，冰上裂解20min，4度离心，5min ，12000rpm，小心吸取上清至新的ep管中。
二、蛋白浓度测定(BCA法)BCA(碧云天)蛋白浓度测定试剂盒灵敏度高，检测浓度下限达到25ug/ml，最小检测蛋白量达到0.5ug，待测样品体积为1-20ul。
在50-2000ug/ml浓度范围内有较好的线性关系。
标准蛋白BSA浓度：5mg/ml (-20保存) ,完全溶解蛋白标准品，取10ul稀释至100ul，使终浓度为0.5mg/ml(ug/ul)。
蛋白样品在什么溶液中，标准品也宜用什么溶液稀释。
但为了简便起见，也可以用0.9%NaCl或PBS稀释标准品。
1. 配置BCA工作液A液： B液= 50 : 1 ，混匀 A液+B液=200ul (每个样本)样本数量： 7个标准品 + N 个待测蛋白样本2. 先将每孔加入200ul BCA工作液，再加入蛋白样本。
（96孔板）,总体积为10ul.待测蛋白样本先10倍稀释。
3.37度，温箱中孵育30min。
western 实验步骤
Western Blot 实验基本步骤一、原理Western blotting（免疫印迹）是在蛋白质电泳分离和抗原抗体检测的基础上发展起来一项检测蛋白质的技术。
它将SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳的高分辨力与抗原抗体反应的特异性相结合。
经过PAGE分离的蛋白质样品，转移到固相载体（例如硝酸纤维素薄膜）上，固相载体以非共价键吸附蛋白质，且能保持电泳分离的多肽类型及生物学活性不变。
以固相载体上的蛋白质或多肽作为抗原，与对应飞抗体起免疫反应，再与酶或同位素标记的第二抗体其反应，经过底物显色或放射自显影以检测电泳分离的特异性目的基因表达的蛋白成分。
该技术广泛应用于检测蛋白水平的表达。
既可以定性，又可以半定量的Western是初步鉴定蛋白质最方便也是最通用的方法。
典型的印迹实验包括三个步骤：①蛋白质的电泳分离②将电泳后凝胶上的蛋白质转移至固体膜上，用非特异性，非反应活性分子封闭固体膜上未吸附蛋白质区域③免疫学检测。
免疫印迹克服了聚丙烯酰胺凝胶电泳后直接在凝胶上进行免疫学分析的弊端，极大地提高了其利用率、分辨率和灵敏度，使其成为使用最广泛的免疫化学方法之一。
第一阶段为SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）。
抗原等蛋白样品经SDS处理后带阴电荷，在聚丙烯酰酰凝胶中从阴极向阳极泳动，分子量越小，泳动速度就越快。
此阶段分离效果肉眼不可见（只有在染色后才显出电泳区带）。
第二阶段为电转移。
将在凝胶中已经分离的条带转移至硝酸纤维素膜上，选用低电压（100V）和大电流（1～2A），通电45min转移即可完成。
此阶段分离的蛋白质条带肉眼仍不可见。
第三阶段为酶免疫定位。
将印有蛋白质条带的硝酸纤维素膜（相当于包被了抗原的固相载体）依次与特异性抗体和酶标第二抗体作用后，加入能形成不溶性显色物的酶反应底物，使区带染色。
阳性反应的条带清晰可辨，并可根据SDS-PAGE时加入的分子量标准，确定各组分的分子量。
western显色的方法主要有以下几种：i. 放射自显影ii. 底物化学发光ECLiii. 底物荧光ECFiv. 底物DAB呈色现常用的有底物化学发光ECL和底物DAB呈色，体同水平和实验条件的是用第一种方法，目前发表文章通常是用底物化学发光ECL。
WesternBlot操作流程
WesternBlot操作流程Western Blot操作流程本⼈将⾃⼰做WB实验时的具体操作流程，做了详细的记录并整理。
因为每个实验室的条件不⼀样，所以本流程仅供参考，具体适合⾃⼰的实验操作需要⼤家摸索。
由于知识量有限，有些描述⽤词并不专业，请⼤家谅解。
⼀、流程图制胶→→电泳跑胶(1.5-2.5h)→→转膜（3h）→→（可使⽤⽴春红检测是否蛋⽩是否成功转移）TBST清洗（10min）→→封闭（2h）→→TBST清洗（10min）→→附Ⅰ抗（内参：⼩⿏抗β-Actin，先摇床轻摇30min，再放冰箱4度过夜）→→TBST 清洗三次（10min/次）→→附Ⅱ抗（内参：⼭⽺抗⼩⿏，轻摇1.5h）→→TBST清洗三次（10min/次）→→显影⼆、物料及配制1、电泳液：⼀包电泳粉+1000ml双蒸⽔（可回收使⽤）2、10%过硫酸铵：1g过硫酸铵+10ml双蒸⽔3、转膜液：⼀包转膜粉+800ml双蒸⽔+200ml甲醇（可回收使⽤）4、TBST溶液：50ml 20*TBS+950ml双蒸⽔+1ml吐温20。
（⽆需回收）5、封闭液：购买6、Ⅰ抗（内参）：将⼩⿏抗β-Actin：Ⅰ稀释液按1:500稀释待⽤，4度保存。
Ⅰ抗（⽬的蛋⽩58kDa）：将smad2：Ⅰ稀释液按1:1000稀释待⽤，4度保存。
7、Ⅱ抗（内参）：将⼭⽺抗⼩⿏：Ⅱ抗稀释液按1:5000稀释代⽤，4度保存。
Ⅱ抗（⽬的蛋⽩58kDa）：将⼭⽺抗兔：Ⅱ抗稀释液按1:5000稀释待⽤，4度保存。
7、显影液：按说明书配制，避光可长期回收使⽤8、定影液：按说明书配制，可长期回收使⽤9、发光液：超敏发光液A液：B液=1:1三、步骤（⼀）制胶1、Tris-⽢氨酸SDS-PAGE聚丙烯酰胺凝胶电泳分离胶溶液的配制2、Tris-⽢氨酸SDS-PAGE聚丙烯酰胺凝胶电泳5%积层胶所⽤溶液3、1）将规格1.0mm或其它规格的玻璃板固定好。
2）依次将所需试剂加⼊烧杯中，加⼊TEMED之后，混匀，⽤1000ml的移液枪沿玻璃板缝左右两边的⾓交替加⼊分离胶溶液，也可从左到右连续加⼊（⽬的：两种⽅法都可以使液⾯快速达到⽔平状态）。
western蛋白提取步骤
western蛋白提取步骤•相关推荐western蛋白提取步骤蛋白提取方法一、对于培养细胞样品：1. 融解Western及IP细胞裂解液，混匀。
取适当量的裂解液，在使用前数分钟内加入PMSF，使PMSF的最终浓度为1mM。
2. 对于贴壁细胞：去除培养液，用PBS、生理盐水或无血清培养液洗一遍(如果血清中的蛋白没有干扰，可以不洗)。
按照6孔板每孔加入100-200微升（6cm培养皿200-300ul）裂解液的比例加入裂解液。
用枪吹打数下，使裂解液和细胞充分接触。
通常裂解液接触细胞1-2 秒后，细胞就会被裂解。
对于悬浮细胞：离心收集细胞，用手指把细胞用力弹散。
按照6孔板每孔细胞加入100-200微升裂解液的比例加入裂解液。
再用手指轻弹以充分裂解细胞。
充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。
如果细胞量较多，必需分装成50-100万细胞/管，然后再裂解。
大团的细胞较难裂解充分，而少量的细胞由于裂解液容易和细胞充分接触，相对比较容易裂解充分。
3. 在冰上充分裂解20-30min后，10000-14000g离心3-5分钟，取上清，即可进行后续的PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
裂解液用量说明：通常6孔板每孔细胞加入100微升裂解液已经足够，但如果细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到150微升或200微升。
二、对于组织样品：1. 把组织剪切成细小的碎片。
2. 融解Western及IP细胞裂解液，混匀。
取适当量的裂解液，在使用前数分钟内加入PMSF，使PMSF的`最终浓度为1mM。
3. 按照每20毫克组织加入100-200微升裂解液的比例加入裂解液。
(如果裂解不充分可以适当添加更多的裂解液，如果需要高浓度的蛋白样品，可以适当减少裂解液的用量。
)4. 用玻璃匀浆器匀浆，直至充分裂解。
5. 充分裂解后，10000-14000g离心3-5分钟，取上清，即可进行后续的PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
Western blotting 具体操作步骤
Western blotting步骤一：配胶用具：玻璃板（厚板和薄板），海绵垫，梳子，移液枪（1000ul、200ul、20ul等）。
试剂：分离胶成分10%（水、Tris8.8、40%丙烯酰胺、10%APS、TEMED），浓缩胶5%（水，Tris6.8、40%丙烯酰胺、10%APS、TEMED），压线液异丙醇。
过程：1.配制40%的丙烯酰胺溶液，放4℃保存，配制10%APS溶液（0.1g/ml)，备用2.用一蒸水清洗玻璃板，海绵垫和梳子用自来水冲洗，必须冲洗干净，放入烘箱中烘干。
3.组装玻璃板，放入架子中夹紧，注意板一定要平齐后再放入，将各个量程的移液枪调至所需的量程，先配分离胶，加入各组分至50ml离心管中（最后加TEMED），充分混匀后，立即加入板中，注意沿着玻璃板壁加入，加至液面与板子凹槽平齐，立即加入0.5ml 高度的压线液异丙醇赶走气泡，并及时清洗配胶用的管子以防凝固，30min后待出现折光线即可倾倒去除异丙醇，用吸水纸将残留液体吸净，再配浓缩胶。
4.浓缩胶配制类似分离胶，配好后加入到玻璃板中，至顶部加满即可，插入梳子，及时洗配液管，待凝固后拆板，用双蒸水浸泡，现用或放入4℃冰箱中存放平衡，待第二天取用。
注意：APS，为白色粉末，常温保存，10%APS存于-20℃冰箱配置时提前半小时取出放置室温预热。
TEMED需4℃保存丙烯酰胺粉末，常温保存即可，而40%的丙烯酰胺溶液则需4℃避光保存步骤二、电泳用具：移液枪（20ul，100ul)，上样枪头试剂：marker，蛋白样品（已加上样缓冲液和100℃，5min加热处理）准备工作：配制10*电泳液保存，电泳时稀释成1*的电泳液1L现用过程：将玻璃板装入电泳架中，放入电泳槽中，垂直拔出梳子，先在两板内侧加满电泳液，外侧加一些，不得影响上样，吹打胶丝，去除样品孔中的气泡，上样20ul每孔，左端和右端不加样组分别加多（5ul）和少（2.5ul）的marker，枪头可以看出界线，主要是使marker 的量不一样，右端的多颜色深，左端的量少颜色浅，能区分左和右。
western-blot实验操作步骤
western-blot实验操作步骤Western，也称Western blot、Western blotting、Western印迹，是用抗体检测蛋白的重要方法之一。
可按照以下步骤操作。
1.收集蛋白样品(Protein sample preparation)使用细胞裂解液，对贴壁细胞、悬浮细胞或组织样品进行裂解。
然后测定每个蛋白样品的蛋白浓度。
2. 电泳(Electrophoresis)(1) SDS-PAGE凝胶配制SDS-PAGE凝胶（分离胶及浓缩胶）可以参考一些文献资料进行配制(2) 样品处理在收集的蛋白样品中加入适量浓缩的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液。
例如2X或5X的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液。
使用5X的SDS-PAGE 蛋白上样缓冲液可以减小上样体积，在相同体积的上样孔内可以上样更多的蛋白样品。
5X的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液可以参考相关文献资料配制， 100℃或沸水浴加热3-5分钟，以充分变性蛋白。
(3) 上样与电泳（1）冷却到室温后，把蛋白样品直接上样到SDS-PAGE胶加样孔内即可。
为了便于观察电泳效果和转膜效果，以及判断蛋白分子量大小，最好使用预染蛋白质分子量标准。
（2）电泳时通常推荐在上层胶时使用低电压恒压电泳，而在溴酚蓝进入下层胶时使用高电压恒压电泳。
对于Bio-Rad的标准电泳装置或类似电泳装置，低电压可以设置在80-100V，高电压可以设置在120V左右。
（3）为了电泳方便起见，也可以采用整个SDS-PAGE过程恒压的方式，通常把电压设置在100V，然后设定定时时间为90－120分钟。
设置定时可以避免经常发生的电泳过头。
通常电泳时溴酚蓝到达胶的底端处附近即可停止电泳，或者可以根据预染蛋白质分子量标准的电泳情况，预计目的蛋白已经被适当分离后即可停止电泳。
3. 转膜(Transfer)（1）我们推荐在Western实验中选用PVDF膜。
硝酸纤维素膜(NC膜)也可以使用，但硝酸纤维素膜比较脆，在操作过程中特别是用镊子夹取等过程中容易裂开。
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Western Blot操作全过程
一，收蛋白
a（如果要收集死细胞）
1.取冰，将4°C离心机提前降温。
2.将死细胞收集到离心管：孔板内的细胞用PBS洗1-2遍，用适量
的胰酶消化，用离心管内的原培养液将孔板内细胞吹打下来，收集到离心管，室温离心1000rpm，5min。
3.弃上清，将离心管倒扣在滤纸上，尽量吸尽残留上清。
4.视细胞量的多少加入细胞裂解液。
（1×Cell Lysis Buffer：
PMSF=100：1，1×Cell Lysis Buffer，PMSF-20°C保存。
PMSF 常温易降解，拿出时间不得超过30min，必须放置冰上。
）
5.冰上裂解15min，将裂解液转移至EP管离心，4°C，12000rpm，
15min。
6.小心将上清转移至另一EP管，记下吸取的量。
如：100μL。
7.将收集好的蛋白保存与—20°C。
（可长期保存）
b （如果不收集死细胞）
1．弃上清，孔板PBS洗1-2遍，吸尽PBS。
在孔板中视细胞量的多少加入相应细胞裂解液。
（同上）
2．冰上裂解15min，用细胞刮在孔板里将细胞刮刮。
（不同的孔不能用同一个刮子，刮前用水冲洗，擦干。
）
3．将裂解液转移至EP管离心，4°C，12000rpm，15min。
4．小心将上清转移至另一EP管，记下吸取的量。
5．将收集好的蛋白保存与—20°C。
（可长期保存）
二，测蛋白浓度
BCA法（或者按照自己的试剂盒说明操作）
1.需96孔板，测蛋白浓度的A液，B液，标准蛋白，要测的样品蛋
白。
2.按要测的样品蛋白的数量来配AB液，每孔需AB混合液80μl（A：
B=50：1）。
例：有5个样品，加上5个标准蛋白和空白对照。
共有11个孔。
则A液取11×80=880μl，B液取880÷50=两液混匀，加入96孔板，每孔80μl。
然后加入标准蛋白及样品蛋白4μl。
（标准蛋白先配好浓度125，250，500，1000，2000）
3.将孔板放入37°C温箱孵育30min。
4.用酶标仪测蛋白浓度。
5.记下蛋白浓度，根据要上样的μg量算出μl量。
例：蛋白浓度为
1000，需上样15μg。
则需上样15÷1000=上样量不超过20μl。
三，配胶
1.将薄板和厚板用洁净的布擦干净，对齐，夹好。
（板必须擦干净，
下端对齐，否则容易漏胶。
）
2.配分离胶，根据要跑的蛋白分子量，配相应浓度的胶。
3.快速将分离胶加入薄厚板之间，不能太满，留出浓缩胶的部分。
(浓缩胶高度大约1CM)
4.在分离胶上灌水，要缓慢，为了让胶凝的更好。
5.30分钟左右，分离胶凝了，将水倒掉，滤纸吸干，找好梳子。
制
浓缩胶。
6.灌胶，快速插入相应的梳子。
7.约15min胶可以凝固。
四，煮蛋白
1.煮蛋白前将蛋白中加入6×SDS+DTT(即上样缓冲液)。
例样品蛋白
共有100μl，则需加100÷5=20μl 6×SDS+DTT。
混匀。
（加有DTT的SDS应-20°C保存。
DTT应-20°C保存。
SDS：DTT=9：1）。
2.将蛋白沸水煮10min。
煮过的蛋白在两周内有效。
五，上样，跑胶，转膜
1.电泳巢内加入电泳液，夹好胶板。
拔去梳子。
2.每孔上样量不超过20μl，每块胶应上有Maker。
剩余的孔里上1
×SDS。
3.蛋白上样前要震荡混匀。
4.浓缩胶80V，分离胶120V。
5.转膜
半干法转膜或者湿转自己的试验条件决定。
根据分子量的大小，按照Maker的位置裁胶，根据胶的大小，剪相应大小的NC膜。
（NC膜要先用甲醇活化）。
六，封闭
5%牛奶（TBST稀释的脱脂牛奶）室温封闭1-2h，
七，封一抗
摸清抗体要用的浓度。
用TBST或5%牛奶加抗体。
室温1-2h，或4°C过夜。
用过的抗体要回收，做记号，用的第几次。
放入-20°保存。
八，洗膜
用TBST摇床上洗3遍，每次10min。
（一抗不要摇的太剧烈）
九，封二抗
摸清二抗的浓度。
室温45min-2h。
抗体回收，做记号，用的第几次。
放入-20°保存。
十，洗膜
用TBST摇床上洗3遍，每次10min。
（二抗可以摇的稍快些）
十一，发光
1.在发光板内放入干净的可以夹住NC膜的薄膜，放好已经洗好
的膜。
用滤纸吸干膜上的水。
2.拿齐发光板，发光液，1ml的枪及枪头（至少两根），胶片，一
张滤纸，一个离心管。
3.进入暗室，反锁好门，开红灯，在离心管内配发光液，A液：B
液=1：1。
先A后B。
切记换枪头，打开薄膜，将AB液混匀，均匀的洒在NC膜上。
盖上薄膜，将多余的发光液推开，以防水多膜移动。
漏出薄膜外的可用滤纸吸干。
4.关灯，看见荧光，盖上胶片。
胶片盖上之前先在左上角（个人
习惯）折个角，好辨认方向。
5.根据荧光强度按压几秒或几分钟。
将胶片放入洗片机冲洗。
6.等片子完全洗好，可开灯。
或者DAB显色需要买试剂盒。
十二，扫描保留结果。