大肠菌群计数方法
大肠菌群检测(MPN法)
大肠菌群检测(MPN法)大肠菌群检测(MPN法)是一种常用的微生物学技术，可用于检测土壤、水源、食品等中的大肠菌群进行水质和食品安全监测。
本文将介绍大肠菌群及其检测方法-最可能数法(MPN法)。
一、大肠菌群概述大肠菌群是以肠道菌属为主体的一类细菌，包括肠道埃希菌、沙门氏菌、志贺菌、伤寒杆菌等成员，它们可以在人类和动物的肠道中生存并繁殖。
在自然界中，大肠菌群也是广泛存在的微生物家族，如彗星菌、副肠杆菌、耶尔森氏菌等都属于大肠菌群。
1.菌落计数法该方法主要是利用琼脂平板培养皿在水培的条件下，大肠菌群在培养基上经不同时间的生长，形成菌落来进行菌数计数。
缺点是容易受到其他微生物的干扰，只能算出概略的数值，一定误差，没有国家标准。
2. 硝酸德钠试剂法将测样加硝酸德阳试剂进行加热，最终乳黄色的镜检测前进行比色，得出含大肠菌群的细菌群落达标后延迟显色的时间。
该方法已被最可能数(MPN)法所替代。
3. 最可能数法(MPN法)该方法先将测量的样品分别稀释到不同浓度下，再将每一份稀释液添加到以琼脂平板固化培养基为基础的不同培养液中，观察哪一份培养液出现大肠菌群的生长，最后通过MPN表格计算每85ml或100ml的水样中最可能含有的大肠菌群数量，计算公式为：10^x = n / 联合效价（即dilution rate的倒数）其中，x代表最可能数，n代表测量到大肠菌群的样品数。
在实际工作中，MPN法检测显示出了较好的结果，优点是用固定方法，可重复性好，而且可以通过相关将分析获得定量值，便于与相关的标准进行比较。
三、大肠菌群的检测范围1. 水源：大肠菌群检测是办公室里检测饮用水可能携带的最佳方法。
一般情况下，检测过程是检测水中的微生物是否合乎标准。
2.食品：由于食品生产经常存在卫生要求，因此食品也是大肠菌群检测重要的一环。
例如，必须检测火腿或肉类制品中的大肠菌群是否合格以确保食品安全。
3. 其他领域：大肠菌群检测可以用于医学、农业、环境和建筑等领域，如医院污水浑浊度的检测和土壤中大肠菌群的检测。
大肠菌群MPN计数方案
饮用水中大肠菌群MPN计数
1.设备与材料：恒温培养箱，冰箱，天平，无菌吸管:1ml,无菌锥形瓶500ml，无菌培养皿
2.培养基与试剂：月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤，煌绿乳糖胆盐（BGLB）肉汤，结晶紫中性红胆盐琼脂（VRBA）。
磷酸盐缓冲液：无菌生理盐水
3.检验程序
4.样品的稀释：（1）将25g样品放入盛有225ml生理盐水的带有玻璃珠的锥形瓶内，均质10min，制成1:10的样品稀释液.
用1ml无菌吸管吸取1:10样品匀液1ml，沿管壁缓缓注入9ml生理盐水试管中，制成1:100的样品匀液。
（2）按上述操作，依次制成10倍递增系列稀释样品匀液。
（3）初发酵实验：每个样品，选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液，每个稀释度接种3管LST肉汤，每管接种1ml，36度培养24h，观察倒管内是否有气泡产生，如未产生气泡则继续培养至48h，记录在24h和48h内产气的LST肉汤管数，未产气为大肠菌群阴性，产气者为大肠菌群阳性管。
（4）复发酵实验：用接种环分别从所有48h内发酵产气的LST肉汤管中分别取培养物1环，移种于BGLB肉汤管中，36度培养48h，观察产气情况，产气者记为大肠菌群阳性管。
5.大肠菌群MPN报告。
粪便中大肠菌群总数
粪便中大肠菌群总数
摘要：
一、大肠菌群总数的定义
二、大肠菌群总数的检测方法
1.平板计数法
2.免疫磁珠法
三、大肠菌群总数与健康关系
1.与肠道菌群平衡的关系
2.与粪便卫生质量的关系
四、大肠菌群总数的参考值
正文：
大肠菌群总数是指在一定条件下，粪便中所含大肠菌群的数目。
它是一个重要的卫生指标，用于评估人体肠道中菌群平衡状态，以及粪便的卫生质量。
大肠菌群总数的检测方法主要有平板计数法和免疫磁珠法。
平板计数法是测定大肠菌群总数的最常用方法。
它通过将粪便样品均匀涂布在含有抗生素的培养基上，然后在特定条件下培养一定时间后，对菌落进行计数。
免疫磁珠法是一种快速、灵敏的检测方法。
它通过抗体与目标菌结合，然后用磁珠捕获结合的细菌，最后通过计数磁珠的数量来推算大肠菌群总数。
大肠菌群总数与健康关系密切。
正常情况下，肠道内存在大量微生物，形成一个稳定的菌群平衡。
大肠菌群总数的变化可能影响肠道菌群的平衡，进而影响人体健康。
此外，大肠菌群总数还可以反映粪便的卫生质量。
若大肠菌群
总数过高，可能表明粪便中存在较多的致病菌，对人体健康造成潜在威胁。
根据不同国家和地区，大肠菌群总数的参考值可能有所不同。
一般情况下，大肠菌群总数应该小于10^8 CFU/g粪便。
大肠菌群计数检验重点
第一法 大 肠菌群 MPN 计 数法
第二法 大 肠菌群平 板计数法
一．3、5、7小组： 使用第一法（附带做第二法中，两个平板接 种），以自来水为样品。
二．4、6小组： 使用第二法（附带做第一法中，3个试管初发酵 试验），以污水为样品。
第一法：检样稀释与初发酵试验
1
MPN：表示食品 中大肠菌群数是以 每100ML或克检 样内大肠菌群最大 可能数。一般采用 9管法.
3. 证实试验
○ 从VRBA 平板上挑取10个不同类型的典型和可疑菌落，分别移种于 BGLB 肉汤管内，36 ℃±1 ℃培养24 h～48 h，观察产气情况。凡 BGLB 肉汤管产气，即可报告为大肠菌群阳性。
原理
溴甲酚紫，中性时呈蓝紫色，酸性时呈黄色，如果颜色不变 （呈蓝紫色），说明无产酸的大肠菌群；如果颜色变黄色，说 明可能出现能分解乳糖产酸的大肠菌群。
第一法 复发酵试验
用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环，移种于煌绿乳糖胆盐肉汤（BGLB）管中， 36℃±1℃培养48h±2h，观察产气情况。产气者，计为大肠菌群阳性管。
1. 第二法 平板菌落数的选择与证实试验
2. 平板菌落数的选择
○ 选取菌落数在15CFU～150CFU 之间的平板，分别计数平板上出现 的典型和可疑大肠菌群菌落。典型菌落为紫红色，菌落周围有红色 的胆盐沉淀环，菌落直径为0.5mm 或更大。
第二法：检样稀释与平板计数
检样稀释：同ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ。 平板计数：
1. 每个稀释度接种2个无菌平皿，每皿1mL稀释样品，另外一个平皿加1mL生理盐水作空白对照。 2. 及时将15—20mLVRBA（结晶紫中性红胆盐琼脂）倾注每个平皿中。 3. 待琼脂凝固后，再加3—4mLVRBA覆盖表层。翻转平板培养。
食品微生物学检验 大肠菌群计数作业指导书
食品微生物学检验大肠菌群计数1、范围：适用于食品中大肠菌群的计数2、定义：在一定培养条件下能发酵乳糖、产酸产气的需氧和兼性厌氧革兰氏阴性无芽孢杆菌。
3、设备和材料：除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：3.1 恒温培养箱：36℃±1℃。
3.2 冰箱：2℃~5℃。
3.3 恒温水浴箱：46℃±1℃。
3.4 天平：感量0.1g。
3.5 均质器。
3.6 振荡器3.7 无菌吸管：1ml、10ml或微量移液器及吸头。
3.8 无菌锥形瓶：容量500 mL。
3.9无菌培养皿：直径 90 mm。
3.10 pH计或pH比色管或pH试纸。
3.11菌落计数器。
4、培养基和试剂：4.1 月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤；4.2 煌绿乳糖胆盐（BGLB）肉汤；4.3结晶紫中性红胆盐琼脂（VRBA）；4.4磷酸盐缓冲液；4.5无菌生理盐水；4.6无菌1moL/L NaoH；4.7 无菌1moL/L HCL。
第一法：大肠菌群 MPN计数法5、操作步骤：5.1样品的稀释固体和半固体样品：称取 25 g 样品置盛有 225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内，8000 r/min～10000 r/min 均质 1～2 min，制成 1:10 的样品匀液。
液体样品：以无菌吸管吸取 25 mL 样品置盛有 225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分混匀，制成 1:10 的样品匀液。
样品均液的pH值应在6.5~7.5之间，必要时分别用1moL/L NaoH或1moL/L HCL调节。
用 1 mL 无菌吸管或微量移液器吸取 1:10 样品匀液1 mL，沿管壁缓慢注于盛有 9 mL 稀释液的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用 1 支无菌吸管反复吹打使其混合均匀，制成 1:100 的样品匀液。
根据对样品污染状况的估计，按上述操作，依次制成十倍递增系列稀释样品均液。
废水粪大肠菌群数量计算公式
废水粪大肠菌群数量计算公式
废水中大肠菌群数量的计算公式可以根据不同的情况而有所不同。
一般来说，大肠菌群数量的计算公式可以根据水样的稀释倍数、培养基的选择和培养条件等因素来确定。
在微生物学中，大肠菌群
数量通常是通过将水样进行适当稀释后，接种在含有适当营养物质
的琼脂平板上，然后在合适的温度下培养一段时间，最后根据形成
的菌落数量来计算。
一般来说，大肠菌群数量的计算公式可以按照以下步骤进行：
1. 首先是水样的稀释。
根据实际情况，将水样进行适当的稀释，以便在琼脂平板上形成可数的菌落。
2. 接种培养。
将稀释后的水样接种在含有适当培养基的琼脂平
板上，然后在适当的温度下培养一定的时间，一般是24小时至48
小时。
3. 计数。
在培养适当的时间后，通过肉眼或者显微镜观察，在
琼脂平板上形成的菌落数量，然后根据稀释倍数进行计算，得出原
始水样中大肠菌群数量的估算值。
需要注意的是，不同的实验室和标准可能会有不同的具体计算公式和操作规程，因此在具体实验中应当参考相应的标准方法和操作规程进行操作。
同时，为了保证实验结果的准确性，应当严格控制实验条件，确保实验操作的准确性和可重复性。
大肠杆菌及大肠菌群计数方法
大肠杆菌及大肠菌群计数方法大肠杆菌和大肠菌群计数方法Enumeration of Escherichia coli and the coliform章节内容：传统检测大肠菌群和大肠杆菌的方法LST-MUG法检测冷藏和冷冻食品中的大肠杆菌（除双壳类软体动物制品外）瓶装水检测方法贝类和贝类肉制品检测方法柑桔类水果汁中大肠杆菌检测方法大肠菌群和大肠杆菌计数的其他方法参考文件大肠埃希氏菌，以前常称大肠杆菌，于1885年由德国儿科医生Theodor Escherich 发现，广泛存在于人类和温血动物的肠道中，是人类和动物肠道中需氧性共生菌的优势菌群，维持宿主健康部分生理功能必需的肠道菌。
大肠埃希氏菌属肠杆菌科，肠杆菌科包括许多种细菌，致病菌有沙门氏菌、志贺氏菌、和耶尔森氏菌。
虽然大多数的大肠埃希氏菌为非致病菌，但是当宿主免疫力降低或细菌侵入肠道的外组织或器官时，可引起肠外感染。
某些血清型可产生毒素，为致病性大肠埃希氏菌，可引起人类腹泻。
1892年，Shardinger建议把大肠杆菌作为粪便污染的指标。
由于大肠杆菌广泛存在于人类和动物中，而在其他地方少见。
再者，大肠杆菌能发酵葡萄糖（以后改为为乳糖）产生气体。
与已知的非产气致病菌容易区别开来。
因此，大肠杆菌的检测已成为水和食品的近期粪便污染指标，表明可能含有致病菌。
肠道中柠檬酸盐菌，克雷伯氏菌和肠杆菌能发酵乳糖，与大肠杆菌的生物型非常相似，使得把大肠杆菌作为健康威胁的指标，在实际应用中很复杂。
于是，大肠菌群这个术语用来描述这类肠道菌，大肠菌群不是一个分类学上的定义，而是一个工作定义，指的是一群在35℃培养48h，产酸产气的，革兰氏阴性的芽孢杆菌。
1914年，每国公共健康协会把大肠菌群作为一个重要的卫生标准。
虽然大肠菌群很容易检测到，但不一定与粪便污染有关系，因为在自然环境样品中也常存在。
于是，粪大肠菌群就作为粪便污染的指标。
首先由Eijkman提出，指的是在高温下发酵乳糖，是总大肠菌群的亚群，同时也称为耐热大肠菌群。
大肠菌群平板计数法实验报告
大肠菌群平板计数法实验报告
一、实验目的
本实验旨在通过大肠菌群平板计数法，检测两种不同类型的样品，分
别研究其大肠菌群的数量。
二、实验原理
大肠菌群平板计数法是一种测定复合微生物群落中不同细菌种群数量
的方法，通过在培养基上培养细菌分离特定细菌和其他微生物，然后在培
养基表面形成菌落，把形成的菌落数目统计出来就可以测定某一种细菌的
数量。
三、实验材料
1.无菌培养环：用于现场取样，主要成分是聚丙烯，尺寸为20
cm×40 cm；
2.筛选液：用于本实验的筛选液是根据微生物学原理，采用等量的乳
酸盐，氯化钠和磷酸盐等有机物质制备而成的液体，用于筛选出大肠菌群；
3.抗生素优势培养基：用于本实验，培养基由甘露醇、尿素、抗生素
等制备而成，用于培养出大肠菌群；
4.保存液：用于本实验的液体是根据微生物学原理，采用等量的乳酸盐、氯化钠和磷酸盐等有机物质制备而成，用于保存细菌；
5.透明细菌示踪液：用于本实验，示踪液由甘露醇、尿素、抗生素等
有机物质制备而成，用于追踪细菌的繁殖情况。
四、实验步骤
1.采样：用无菌环把样品和筛选液放在瓶中，搅拌均匀，然后加入适量。
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版本:A/1 日期:2012-05-25页数: Page 1 of 12标题： 大肠菌群计数方法文件修改记录分发号 : ______(仅适用于控制文件) (仅盖有红色印章的文件才有效)版本 修订次数 修订日期 修 订 内 容0 0 2011-02-14 A 1 2012-05-25 修订版本:A/1日期:2012-05-25页数: Page 2 of 12标题：大肠菌群计数方法1.0目的规定大肠杆菌计数的方法。
2.0适用范围适用于加多宝凉茶、浓缩汁或原辅材料中的大肠杆菌群的计数。
3.0术语3.1大肠菌群：一群在36℃条件下培养48h能发酵乳糖、产酸产气的需氧和兼性厌氧格兰仕隐形无芽孢杆菌。
3.2MPN最可能数（most probable number）：基于泊松分布的一种间接计数方法。
4.0职责4.1质检部：负责按此方法对加多宝来凉茶、浓缩汁或原辅材料中大肠菌群进行计数。
5.0流程图见附录A、附录B。
6.0内容及要求6.1设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其它设备和材料如下：6.1.1恒温培养箱：36℃±1℃6.1.2冰箱：2℃-5℃6.1.3恒温水浴箱：46℃±1℃6.1.4天平：感量0.1g6.1.5振荡器6.1.6无菌吸管：1ml（具0.01刻度）、10ml（具0.1刻度）或微量移液器及吸头。
6.1.7无菌锥形瓶：容量500ml6.1.8无菌试管：18×200ml6.1.9小导管6.1.10无菌培养皿：直径90mm6.1.11菌落计数器6.2培养基和试剂6.2.1月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤6.2.2煌绿乳糖胆盐（BGLG）肉汤版本:A/1日期:2012-05-25页数: Page 3 of 12标题：大肠菌群计数方法6.2.3乳糖胆盐发酵培养基（LBB）6.2.4乳糖蛋白胨培养基（LPB）6.2.5伊红美蓝琼脂培养基（EMB）6.2.6结晶紫中性红胆盐琼脂（VRBA）6.2.775%乙醇溶液6.2.8无菌生理盐水：称取8.5g氯化钠溶于1000ml蒸馏水中，121℃高压灭菌15min6.3大肠菌群MPN计数法6.3.1加多宝凉茶、浓缩汁等产品及原辅材料中大肠菌群的测定6.3.1.1样品稀释a、固体和半固体样品：称取25g样品置于盛有225ml无菌生理盐水的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1-2min，制成1：10的样品匀液。
b、液体样品：以无菌吸管吸取25ml样品置于盛有225ml的无菌生理盐水的无菌锥形瓶中，充分混匀，制成1：10的样品匀液。
c、用1ml无菌吸管吸取1：10样品匀液1ml，沿管壁缓慢注入盛有9ml无菌生理盐水的试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管，制成1：100的样品匀液。
d、根据对样品污染状况的分析，按上述操作，依次制成10倍递增系列稀释样品匀液。
注意每递增稀释一次，换用一支1ml无菌吸管。
从制备样品匀液至样品接种完毕，全过程不得超过15min。
6.3.1.2初发酵试验a、每个样品，选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液（液体样品可以选择原液），每个稀释度接种3管月桂基硫酸胰蛋白胨（LST）肉汤，每管接种1ml（如果接种量超过1ml，则用双料LST肉汤）。
b、将以上接种好的试管置于36±1℃培养24±2h，观察导管内是否有气泡产生，如未产气则继续培养至48±2h。
记录在24h和48h内产气的LST肉汤管数。
未产气者为大肠菌群阴性，产气者则进行复发酵试验。
6.3.1.3复发酵试验版本:A/1日期:2012-05-25页数: Page 4 of 12标题：大肠菌群计数方法用接种环从所有48±2h内发酵产气的LST肉汤中分别取培养物1环，移种于煌绿乳糖胆盐（BGLB）肉汤管中，36±1℃培养48±2h，观察产气情况。
产气者，计为大肠菌群阳性管。
6.3.1.4大肠菌群最可能数（MPN）的报告根据大肠菌群阳性管数，检索MPN表（见附录C），报告每克（或每毫升）样品中大肠菌群的MPN值。
6.3.2工艺水等水样中大肠菌群的测定6.3.2.1推测性试验a、取待检样品10ml，接种到10ml双料的乳糖胆盐发酵培养液或乳糖蛋白胨培养液中，共接种5管；对于可能存在污染的水源，取待检样品10ml、1ml、0.1ml（取样品1ml于9ml无菌生理盐水中稀释，取稀释后的样液1ml），分别接种于含10ml双料、单料和单料乳糖胆盐发酵培养液或乳糖蛋白胨培养液中，各接种5管。
b、如果水样污染较严重，应加大稀释度，可接种1ml、0.1ml、0.01ml甚至0.1ml、0.01ml、0.001ml，每个稀释度接种5管，每个水样共接种15管。
接种1ml以下水样时，必须做10倍递增稀释后，取1ml接种，每递增稀释一次，换用1支1ml无菌刻度吸管。
c、将以上接种好的试管置于36±1℃培养箱内培养24±2h，如所有乳糖胆盐发酵管或乳糖蛋白胨发酵管都不产气，则可报告为大肠菌群阴性，如有产气者，则按下列程序进行。
6.3.2.2确证性试验6.3.2.2.1方法一a、分离培养将产酸产气的发酵管分别转种在伊红美蓝琼脂平板上，置于36±1℃生化培养箱内，培养18-24h取出。
观察菌落形态，用接种环挑取符合下列特征的菌落作革兰氏染色、镜检和证实试验。
①菌落呈深紫黑色，表面有金属光泽；②紫黑色、不带或略带金属光泽的菌落；③淡紫红色、中心较深的菌落。
b、证实试验版本:A/1日期:2012-05-25页数: Page 5 of 12标题：大肠菌群计数方法经上述染色镜检为革兰氏阴性无芽孢杆菌，同时接种乳糖胆盐发酵管内，置于36±1℃生化培养箱培养24±2h，有产酸产气者，即证实有大肠菌群存在。
6.3.2.2.2方法二自推测性检验阳性管中取1接种环培养液，接种到煌绿乳糖胆盐（BGLG）肉汤管中，置于36±1℃培养箱内培养48h。
观察BGLG管中的产气情况，如有气体产生，就可确定为大肠菌群阳性，如无气体产生则为大肠菌群阴性。
6.3.2.3结果报告根据证实为大肠菌群阳性的管数，查MPN检索表，可得出水样中大肠菌群的MPN 值。
5管法见附录F，15管法结果见附录E。
稀释样品查表后所得结果应乘以稀释倍数。
如所有乳糖胆盐发酵管均为阴性时，可报告大肠菌群未检出。
6.4大肠菌群平板计数法6.4.1样品稀释按6.3.1.1执行6.4.2平板计数6.4.2.1选取1-3个适宜的稀释度（液体样品可以选用原液）接种两个无菌平皿，每皿1ml，同时分别取1ml无菌生理盐水加入到两个无菌平皿作空白对照。
6.4.2.2及时将冷却至46℃的结晶紫中性红胆盐琼脂（VRBA）15-20ml倾注于每个平皿中。
小心旋转平皿，将培养基与样液充分混匀，待琼脂凝固后再加3-4ml结晶紫中性红胆盐琼脂（VRBA）覆盖平板表层。
翻转平板，置于36±1℃培养箱内培养18-24h。
6.4.2.3用肉眼观察，必要时用放大镜或菌落计数器，记录稀释倍数和相应的菌落数量。
选取菌落数在15CFU-150CFU之间的平板，分别计数平板上出现的典型和可疑的大肠菌群菌落。
典型菌落为紫红色，菌落周围有红色的胆盐沉淀环，菌落直径为0.55mm或更大。
6.4.3证实试验从VRBA平板上挑取10个不同类型的典型和可疑菌落，分别移种于BGLB肉汤管内，36±1℃培养箱内培养24-48h，观察产气情况。
凡BGLB肉汤管产气，即可报告为大肠菌群阳性。
版本:A/1日期:2012-05-25页数: Page 6 of 12标题：大肠菌群计数方法6.4.4平板计数法的报告经最后证实为大肠菌群阳性的试管比例乘以6.4.2.3中计数的平板菌落数，再乘以稀释倍数，即为每克（或每毫升）样品中大肠菌群数。
例：10-4样品稀释液1ml，在VRBA平板上有100个典型和可疑菌落，挑取其中10个接种BGLB肉汤管，证实有6个阳性管，则该样品的大肠菌群数为：100×（6/10）×104 g（ml） = 6.0×105 CFU/g （CFU/ml）7.0质量记录7.1 KJWIF-QA-34 《成品检测记录》版本:A/1日期:2012-05-25页数: Page 7 of 12标题：大肠菌群计数方法附录A大肠菌群MPN计数检验程序检样25g（25ml）样品+225ml稀释液，均质10倍系列稀释选择适宜三个连续稀释度的样品匀液，接种LST肉汤管36℃±1℃ 48h±2h不产气产气BGLB肉汤36℃±1℃ 48h±2h不产气产气大肠菌群阴性大肠菌群阳性查ＭＰＮ表报告结果版本:A/1日期:2012-05-25页数: Page 8 of 12标题：大肠菌群计数方法附录Ｂ大肠菌群平板计数检验程序检样25g（25ml）样品+225ml稀释液，均质１０倍系列稀释选择2——3个适宜稀释度的样品匀液，接种VRBA平板36℃±1℃ 18—24h计数典型和可疑菌落BGLB肉汤或复发酵试验36℃±1℃ 24—48h报告结果版本:A/1日期:2012-05-25页数: Page 9 of 12标题：大肠菌群计数方法附录C大肠菌群最可能数（MPN）检索表每克（或每毫升）检样中大肠菌群最可能数（MPN）的检索见下表：阳性管数MPN 95%可信限阳性管数MPN95%可信限0.1 0.01 0.001 下限上限0.1 0.01 0.001 下限上限0 0 0 <3.0 —9.5 2 2 0 21 4.5 42 0 0 1 3.0 0.15 9.6 2 2 1 28 8.7 94 0 1 0 3.0 0.15 11 2 2 2 35 8.7 94 0 1 1 6.1 1.2 18 2 3 0 29 8.7 94 0 2 0 6.2 1.2 18 2 3 1 36 8.7 940 3 0 9.4 3.6 38 3 0 0 23 4.6 941 0 0 3.6 0.17 18 3 0 1 38 8.7 110 1 0 1 7.2 1.3 18 3 0 2 64 17 180 1 0 2 11 3.6 38 3 1 0 ？9 180 1 1 0 7.4 1.3 20 3 1 1 75 17 200 1 1 1 11 3.6 38 3 1 2 120 37 420 1 2 0 11 3.6 42 3 1 3 160 40 420 1 2 1 15 4.5 42 3 2 0 93 18 4201 3 0 16 4.5 423 2 1 150 37 4202 0 0 9.2 1.4 383 2 2 210 40 430 2 0 1 14 3.6 42 3 2 3 290 90 1000 2 0 2 20 4.5 42 3 3 0 240 42 1000 2 1 0 15 3.7 42 3 3 1 460 90 2000 2 1 1 20 4.5 42 3 3 2 1100 180 4100 2 1 2 27 8.7 94 3 3 3 >1100 420 —注1：本表采用3个稀释度［0.1g（或0.1ml）、0.01g（或0.01ml）和0.001g（或0.001ml）］，每个稀释度接种3管。