药学兽医药理学实验

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兽医药理学总论实验

兽医药理学总论实验

第二章兽医药理学总论实验实验一植物药主要有效成分实验目的掌握植物药主要有效成分的检定方法。

一、生物碱定性实验1.如水提取液为酸性时,应加碱调至弱碱性。

2.因脂肪酸盐等也能产生持久性泡沫,故应再做溶血试验或醋酐-浓硫酸试验,以进一步确定之。

(二)皂苷溶血实验实验材料器材——圆底烧瓶、水浴锅、滤纸、试营、试管架、离心管、滴管。

药品——远志粗粉、1.8%氯化钠溶液、生理盐水、哺乳动物静脉血。

实验方法取远志水浸液(依皂苷泡沫实验中提取液即可)10mL,加等量1.8%氯化钠溶液混匀作为待试液。

取试管5支。

一管加蒸馏水1mL,另一管加生理盐水1mL;余者三管分别加待试液0.1、0.5、0.9mL及生理盐水0.9、0.5、0.1mL。

然后5支试管各加入2%红细胞悬浮液lmL,观察有何现象?(若溶液变清并带红色,即表示溶血。

因皂苷有溶血作用。

)此实验亦可用显微镜观察是否溶血。

即可在载玻片上滴一小滴红细胞悬浮液,再加远志水浸液少许,置显微镜下观察,如红细胞破裂、消失,表明含有皂苷成分。

(三)强心苷显色实验实验材料器材——试管、试管架、滴管。

药品——强心苷、冰醋酸、9%三氯化铁溶液、浓硫酸、碱性3,5-二硝基苯甲酸试剂。

实验方法1.α-去氧糖实验取强心苷2~3mg溶于5mL混合试剂(为100mL冰醋酸中含9%三氯化铁溶液0.5mL)中,缓缓加入浓硫酸5mL,使形成两层。

如两层之间液面呈褐色环带,渐变浅绿、蓝色,最后冰醋酸层呈深兰色,则表明含有α-去氧糖成分。

2.碱性3,5-二硝基苯甲酸实验取强心苷甲醇提取液1mL置小试管中,加入新配制的碱性3,5-二硝基苯甲酸试剂3~4滴,显红色或紫红色,则表示含有活性亚甲基化合物。

三、挥发油定性实验实验材料器材——试管、滴管、蒸发皿。

药品——乙醚、香荚豆素-浓硫酸试剂(取香荚豆素或称香荚醛0.5g,慢慢加入浓硫酸10mL,也可用浓盐酸)、桉叶蒸馏液。

实验方法取桉叶蒸馏液3~4mL置试管中,加入乙醚2mL,立即用手按住试管振摇片刻,然后用滴管吸取上层乙醚提取液1mL,置蒸发皿中,待乙醚挥发后,残留物滴加香荚豆素-浓硫酸试剂1~2滴,如呈现黄、红、紫、蓝等颜色,则表示有挥发油存在。

(完整版)兽医药理学实验

(完整版)兽医药理学实验
给家兔灌服时宜用兔固定箱或由两人操作。助手取坐位,用两腿夹住动物腰腹部,左手抓免双耳,右手握持前肢,以固定动物;术者将木制开口器横插入兔口内并压住舌头,将胃管经开口器中央小孔沿上腭壁插入食道约15 cm,将胃管外口置一杯水中,看是否有气泡冒出,检测是否插入气管,确定胃管不在气管后,即可注入药物(图3.4-2)。
将麻醉好的狗仰卧置于实验台上,用特制的狗头夹固定狗头(图3.3-3)。固定前将狗舌拽出口外,避免堵塞气道。将狗嘴伸入铁圈,再将直铁杆插入上、下颌之间,再下旋铁杆,使弯形铁条紧压犬的下颌(仰卧固定)或压在鼻梁上(俯卧固定)。再将狗头夹固定在手术台上。
固定好狗头后,取绳索用其一端分别绑在前肢的腕关节上部和后肢的踝关节上部,绳索的另一端分别固定在实验台同侧的固定钩上。固定两前肢时,亦可将两根绳索交叉从犬的背后穿过并将对侧前肢压在绳索下,分别绑在实验台两例的固定钩上。若采取俯卧位固定时,绑前肢的绳索可不交叉,直接绑在同侧的固定钩上。
(2)灌服法
灌服法是将动物适当固定,强迫动物摄入药物。这种方法能准确把握给药时间和剂量,及时观察动物的反应,适合于急性和慢性动物实验,但经常强制性操作易引起动物不良生理反应,甚至操作不当引起动物死亡。故应熟练掌握该项技术。强制性给药方法主要有两种:
①固体药物口服
一人操作时用左手从背部抓住动物头部,同时以拇、食指压迫动物口角部位使其张口,右手用镊子夹住药片放于动物舌根部位,然后让动物闭口吞咽下药物。
兽医药理学实验
1.兽医处方的书写(讲授)2.3.实验动物的种类、捉拿及给药途径(讲授结合实验)
4.
实验材料:小鼠5-10(22人拟分成4-5组)只,1ml注射器20支,12-16#小鼠灌胃针5个,生理盐水
5.实验动物的采血及处死方法(讲授结合实验)

《兽医药理学综合实验》教学课件:实验5 普鲁卡因与丁卡因的表面麻醉作用和毒性比较

《兽医药理学综合实验》教学课件:实验5 普鲁卡因与丁卡因的表面麻醉作用和毒性比较
丁卡因脂溶性高,穿透性强,其麻醉效能是普鲁卡 因的10~20倍,毒性亦为普鲁卡因的10~20倍。
毒性反应:中枢神经和心血管系统的毒性,包括惊 厥、抽搐、呼吸心跳停止等。
三、实验材料
器材:滴管、注射器、手术剪 药品:1%盐酸丁卡因、1%盐酸普鲁卡因 动物:兔、小鼠
四、实验方法
1、普鲁卡因和丁卡 因的表面麻醉作用
实验五 普鲁卡因与丁卡因的 表面麻醉作用和毒性比较
一、实验目的
比较普鲁卡因和丁卡因的表面麻醉作用, 以评价表面麻醉药物的作用差异。
比较鲁卡因和丁卡因的毒性大小,以对药 物进行全面评价。
二、实验原理
局部麻醉药:
是一类能在用药局部可逆性的阻断感觉神经冲动发生与传递 的药品,简称“局麻药”。
在保持清醒的情况下,可逆的引起局部组织痛觉消失; 局麻药的作用局限于给药部位并随药物扩散而迅速消失。
表示眨眼反射阴性,表明角膜已麻醉。
3. 结果以阳性反应率(阳性反应点数/刺激点数)表示。
五、实验结果
普鲁卡因与丁卡因的毒性比较
鼠号
体重 药物与 惊厥潜 惊厥性质 最后结果 剂量 伏期 和程度



六、讨论
普鲁卡因和丁卡因的表面麻醉效果有什么 不同,为什么?
常用的表面麻醉药物有哪些?使用时需要 注意什么问题?
讨论常用局部麻醉药的毒性及其防止中毒 的方法。
实验设计
丁卡因(或普鲁卡因)对兔的毒性作用
信息: 兔耳缘静脉注射1%丁卡因0.3-0.4ml/kg后会出
现惊厥 兔肌肉注射1%丁卡因2.5ml后会出现角弓反张
表面麻醉:
将穿透力强的局麻药施用于皮肤或粘膜表面,使其阻滞位 于粘膜下的神经末梢,产生麻醉现象。眼、鼻、咽喉、气管、 尿道等处的浅表手术常用此法。

《兽医药理学综合实验》教学课件:实验13 传出神经系统药物对家兔血压的影响

《兽医药理学综合实验》教学课件:实验13 传出神经系统药物对家兔血压的影响
家兔手术台手术刀手术剪止血钳气管插管动脉插管动脉夹静脉注射针压力传感器电脑及记录装置注射器铁支架螺旋夹棉线药棉纱布压力传感器生物信号采集系统压力传感器内注满6柠檬酸钠溶液排除全部气泡将三通阀处于关闭位置
实验十三 传出神经系统药物对麻醉 家兔动脉血压的影响
实验目的
观察传出神经系统药物对麻醉家兔动脉血压 的影响,分析肾上腺素受体激动剂、胆碱能 受体激动剂与拮抗剂之间的相互作用,分析 药物的作用机理。
表1 观察传出神经系统药物对麻醉家兔动脉血压的影响
组 别
实验项目
剂 量
收缩压 (mmHg)
舒张压 (mmHg)
平均动 脉压
给药前 给药后 给药前 给药后
生理盐水
1
盐酸肾上腺素 去甲肾上腺素
异丙肾上腺素
氯化乙酰胆碱
2
甲基硫酸新斯的 明
氯化乙酰胆碱
硝酸毛果芸香碱
3 硫酸阿托品
硝酸毛果芸香碱
思考题
1.根据实验结果说明拟肾上腺素对血压作 用的特点,分析其机理。 2.第二组实验结果说明乙酰胆碱和新斯的 明的作用有何关系? 3.比较第三组中①和③的结果有何不同? 为什么?
① 0.01%氯化乙酰胆碱溶液 0.1mL/kg bw; ② 0.05%甲基硫酸新斯的明溶液 0.1mL/kg bw; ③ 0.01%氯化乙酰胆碱溶液 0.1mL/kg bw。
比较使用甲基硫酸新斯的明前后,给予氯化乙酰 胆碱时血压曲线有何不同。
(3)M受体阻断药对拟胆碱药作用的影响
① 0.1%硝酸毛果芸香碱溶液 0.1mL/kg bw; ② 0.1%硫酸阿托品溶液 0.1mL/kg bw ; ③ 0.1%硝酸毛果芸香碱溶液 0.1mL/kg bw.
➢ 将动物背位固定于手术台上,拉伸头颈部以便手 术操作。

《兽医药理学实验》

《兽医药理学实验》

02
实验动物用药记录
03
动物福利与伦理
详细记录动物的用药情况,包括 药物名称、剂量、给药方式、时 间等,以便分析实验结果。
遵守动物福利和伦理原则,确保 实验动物的权益和福利得到保障。
03 药物作用机制
CHAPTER
药物作用机制介绍
药物作用机制定义
药物作用机制是指药物如何与机 体细胞上的受体结合,通过一系 列的信号转导和代谢过程,最终 发挥药理或毒理作用的原理。
病情况。
对照组设置
设立对照组以评估实验组药物对疾病 的治疗效果,对照组可采用安慰剂或
未处理组。
设计给药方案
根据实验目的和药物性质,制定合理 的给药方案,包括给药剂量、给药途 径和给药周期等。
实验数据收集
记录实验过程中动物的生命体征、症 状变化、生理生化指标等数据,为后 续分析提供依据。
药物疗效评价结果分析
的和药物特性进行选择。
给药方法
02
根据实验要求,选择适当的给药途径和方法,如灌胃、皮下注
射、静脉注射等。
实验指标
03
选择与药物作用机制相关的生理、生化、病理等指标进行观察
和检测,以评估药物的作用效果。
药物作用机制分析
数据处理与分析
对实验数据进行处理和分析,利用统计学方法对实验结果 进行比较和评价。
实验步骤
实验准备
选择合适的实验动物、准备实验药品和器材, 确保实验条件符合要求。
实验操作
按照规定的实验方法和技术,对实验动物进 行给药、观测和记录数据。
数据处理
对实验数据进行整理、分析和统计,得出实 验结论。
实验报告撰写
按照规定的格式和要求,撰写实验报告,总 结实验结果和经验教训。

兽医药理实验报告(3篇)

兽医药理实验报告(3篇)

第1篇实验名称:抗生素对金黄色葡萄球菌的抑菌实验实验目的:1. 了解抗生素对金黄色葡萄球菌的抑菌作用。

2. 掌握平板划线法在微生物实验中的应用。

3. 分析抗生素的抑菌效果,为临床合理使用抗生素提供参考。

实验原理:金黄色葡萄球菌是一种常见的革兰氏阳性球菌,对多种抗生素敏感。

本实验通过平板划线法,将金黄色葡萄球菌接种在含有不同浓度抗生素的琼脂平板上,观察并记录抑菌圈的大小,以评估抗生素的抑菌效果。

实验材料:1. 金黄色葡萄球菌菌种2. 生理盐水3. 不同浓度的青霉素、链霉素、红霉素、庆大霉素药液4. 琼脂平板5. 移菌针6. 酒精灯7. 灭菌棉签实验方法:1. 将金黄色葡萄球菌菌种接种于生理盐水中,制成菌悬液。

2. 将不同浓度的抗生素药液分别加入琼脂平板中,制成含有不同浓度抗生素的琼脂平板。

3. 使用移菌针将金黄色葡萄球菌菌悬液均匀涂布在琼脂平板上。

4. 将琼脂平板倒置,置于37℃恒温培养箱中培养24小时。

5. 观察并记录抑菌圈的大小。

实验结果:1. 青霉素对金黄色葡萄球菌的抑菌效果最佳,抑菌圈直径最大。

2. 链霉素、红霉素、庆大霉素对金黄色葡萄球菌也有一定的抑菌效果,但抑菌圈直径较青霉素小。

3. 随着抗生素浓度的增加,抑菌圈的大小也随之增大。

实验分析:1. 本实验结果表明,青霉素对金黄色葡萄球菌的抑菌效果最佳,可能是由于青霉素能抑制细菌细胞壁的合成,导致细菌死亡。

2. 链霉素、红霉素、庆大霉素对金黄色葡萄球菌也有一定的抑菌效果,但其抑菌效果不如青霉素。

这可能是由于这些抗生素的作用机制与青霉素不同,或者是金黄色葡萄球菌对这些抗生素的耐药性较高。

3. 在临床用药过程中,应根据患者的病情和药物敏感性,合理选择抗生素,以充分发挥抗生素的抑菌效果。

实验结论:1. 青霉素对金黄色葡萄球菌的抑菌效果最佳,可作为临床治疗金黄色葡萄球菌感染的首选药物。

2. 链霉素、红霉素、庆大霉素对金黄色葡萄球菌也有一定的抑菌效果,可根据患者的病情和药物敏感性选择使用。

兽医药理学实验设计

兽医药理学实验设计

兽医药理学实验设计
兽医药理学实验设计
一、实验题目
鱼类兽医药理学研究
二、实验目的
研究鱼类兽医药理学,探讨鱼类对药物的反应,探究鱼类的药理作用。

三、实验步骤
1. 对不同种类的鱼进行实验前准备,建立实验样本。

2. 将各种药物分别混合在不同的浓度水中,测试鱼类对该药物
的反应。

3. 将鱼类分别浸泡在不同浓度的药物溶液中,记录鱼类的反应
情况,做出实验结论。

4. 分析实验结果,得出结论,提出对鱼类药理作用的解释。

四、实验报告
此实验的目的在于研究鱼类兽医药理学,探讨鱼类对药物的反应,探究鱼类的药理作用。

实验步骤如上所示。

实验中,选用了三种不同种类的鱼,分别是大黄鱼、罗非鱼和鲫鱼,分别将它们浸泡在不同浓度的药物溶液中,观察鱼类的反应。

实验结果发现,罗非鱼对于药物的反应最为敏感,其后为大黄鱼和鲫鱼。

根据实验结果,认为鱼类对于不同的药物种类有着不同的反应,这可能是由于鱼类的身体环境和特定药物的机理而引起的。

另外,不
同种类的鱼也会有不同的反应情况,这可能是由于不同种类鱼的体型、体重等生理状况略有差异而引起的。

本次实验证实了鱼类对于药物的反应是不一致的,这为进一步研究鱼类药理学提供了有价值的情节和实证基础。

兽医药理学实验-05-精品文档

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实验步骤
1. 实验装置的准备
(1)BL-420F生物机能实验系统
2. 麻醉
实验步骤
1.称重;2.Biblioteka 定3.麻醉实验步骤
3. 手术 (1)气管插管术
1.剪毛;
2.消毒
3.切开
实验步骤
3. 手术 (1)气管插管术
4.分离气管; 5.倒“T”切开 6.固定结扎
实验步骤
3. 手术 (2)动脉插管
1.分离血管; 2.“V”形切口 3.固定结扎
组别
药物
血压值(mmHg)
最高
最低
变化值
(收缩压) (舒张压) (压差)
①生理盐水
②盐酸肾上腺素
第一组 ③重酒石酸去甲肾上腺素
④盐酸麻黄碱
⑤盐酸异丙肾上腺素
比较以上拟肾上腺素药的血压曲线特点并分析其原理
实验步骤
实验步骤
5. 给药,观察血压变化
组别
药物
第二组 第三组
①氯化乙酰胆碱 ②甲基硫酸新斯的明 ③氯化乙酰胆碱 ①硝酸毛果芸香碱 ②硫酸阿托品 ③ 硝酸毛果芸香碱
【动物】家兔 【药品】 1.肾上腺素受体激动剂: 0.01%盐酸肾上腺素溶液; 0.01%重酒石酸去甲肾上腺素溶液; 0.5%盐酸麻黄碱溶液; 0.005%盐酸异丙肾上腺素溶液。
实验动物、药品、器械
【药品】 2. 拟胆碱药: 0.01%氯化乙酰胆碱溶液; 0.1%硝酸毛果芸香碱溶液。 3. 抗胆碱酯酶药 0.05%甲基硫酸新斯的明溶液
将压力信号 转化为电信 号,并通过 软件处理显 出成图像
实验原理
1.什么是血压? 血压是指血管内血液施于单位面积血管壁的侧 压力,通常检测到的血压指动脉血压。
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A:对照组:灌胃给生理盐水0.2ml腹腔注射组:腹腔注射给3.5%硫酸镁溶液0.2ml/10g。
斗下,让其尾部露出。用酒精或二甲苯涂擦尾部,或将鼠尾在 50'C热水中浸泡半分钟使血管扩张。左手拉尾端,右手持注射器 将针头刺入尾静脉,推入药液。
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13
• 动物的给药方法
•家兔
• 灌胃:需两人合作进行。一人取坐位用两腿夹持兔身,左手握
家兔双耳,右手抓住两前肢。另一人将木制开口器横插家兔口内, 压住舌头并固定之。取8号导尿管从开口器中部小孔插入食道。插 管时如误入气管会出现动物的挣扎和呼吸困难。也可将导尿管的 外端浸入水中,如有气泡吹出,表示插在气管内,此时应拔管重 插。当判明导尿管在食道以内后,用注射器接通导尿管将药液推 入。
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5
• 实验设计基本原则
• 随机原则
• 使每一实验对象都有同等的机会抽到实验组或对照 组中,除处理因素外其他因素尽可能均衡一致,从 而抵消非实验因素的影响。
• 对照原则
• 组间对照:阴性对照,阳性对照,同因素不同水平 对照;
• 自身前后对照
• 重复原则
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6
• 实验动物 •动物的选择
• 小白鼠:适用于需大量动物的实验,如某些 药物的筛选,半数致死量的测定。也较适用于 避孕药实验、抗炎镇痛药实验、中枢神经系统 药实验、抗肿瘤药及抗衰老药实验等。 • 大白鼠:比较适用于抗炎药物实验,血压测 定、利胆、利尿药实验,也可用于进行亚急性 和慢性毒性实验。
实事求是地做好记录;
• 注意节约实验药品;
• 维持良好的课堂纪律。
• 实验后
•各组同学将实验动物处死,实验台擦干净,将实验方盘
送回准备室;
•值日生搞好实验室卫生,将死亡动物送至指定场所;
•书写实验报告。
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4
• 实验报告的书写
• 题目 • 目的 • 原理 • 材料:实验动物,器材,药品 • 方法:用自己的语言简单扼要描述出来; • 结果:要求真实、清楚; • 讨论:将实验结果进行比较、分析;实验中有哪些不足 之处;结果异常或失败的原因; • 结论:将实验结果进行归纳总结,应带有提示性质。
实验八 链霉素急性毒性反应及解救
实验九 有机磷酸酯类中毒及解救
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2
实验一 药理实验基础知识
• 目的
• 掌握基本操作,锻炼动手、动脑能力; • 更好地掌握药理学基本理论知识; • 培养科学思维
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3
• 基本要求
• 实验前:预习实验内容并复习相关理论知识;
• 实验时
• 实验器材要妥善保管;
• 实验操作按步骤进行,仔细观察实验中出现的现象,
动物医学、制药专业
兽医药理学实验
山东农业大学动物科技学院 主讲:刘远飞
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1
本课程实验内容
实验一 药理实验基础知识
实验二 不同给药途径对药物效应的影响
实验三 药物的协同作用和拮抗作用
实验四 动物机能状态对药物作用的影响
实验五 利多卡因和普鲁卡因的表面麻醉作用观察
实验六 药物敏感性实验
实验七 磺胺类药物内服给药后的血中药物浓度测定
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7
• 实验动物
•动物的选择
• 豚鼠:因其对组胺敏感,并易于致敏,故常被选用于 抗过敏药、平喘药和抗组胺药的实验。也常用于离体心 脏、心房、肠管实验。又因它对结核敏感,常用于抗结 核病药的实验。 • 家兔:常用于观察研究脑电生理作用,药物对小肠的 作用。由于家兔体温变化敏感,也常用于体温实验,用 于热原检查。 • 狗:狗是记录血压,呼吸最常用的大动物。还可利用 狗做成胃瘘、肠瘘,以观察药物对胃肠蠕动和分泌的影 响。在进行慢性毒性实验时,也常采用狗。
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15
实验二 不同给药途径对药物效应的影响
• 实验目的
•观察不同给药途径对药物效应的影响。
• 实验材料
• l.0ml注射器、针头、小鼠灌胃针头、烧杯、普 通天平、3.5%硫酸镁溶液
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16
• 观察指标
• 动物活动增加情况、呼吸急促、反射亢进、震颤、惊厥 及死亡时间、炭末推进率等。
• 实验方法
• 取禁食12h的昆明种小鼠3只,称重,分别标为对照组、 灌胃组和腹腔注射组按以下给药:
上,颈部伸直。右手持配有灌胃针头的注射器,自口角 插入口腔,再从舌面沿上腭进入食道。小鼠灌胃容量一 般为0.1-0.3m1/10g。
h
11
• 动物的给药方法
•小白鼠
• 腹腔注射(i.p.):以左手固定小鼠,方法同灌胃,右手持注
射器,取30度角将针头从下腹部向头端刺入腹腔。进针部位不宜 过高,刺入不宜太深,以免伤及内脏。小鼠腹腔注射量一般为 0.1-0.3ml/l0g。
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8
• 动物捉拿及固定方法
•小白鼠
右手提起鼠尾, 左手拇指和食指捏住双耳及头部皮肤,无名 指、小指和掌心夹其背部皮肤及尾部,便可将小鼠完全固定。如 图1。
单手捉持,用拇指和食指抓住小鼠尾巴,用小指、无名指和 手掌压住尾根部,再用腾出的拇指、食指及中指抓住鼠双耳及头 部皮肤而固定。如图2。
图1
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图2
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14
• 动物的给药方法
•家兔
• 皮下、肌肉、腹腔注射:给药方法基本上同小鼠,唯针头可
稍大,给药量可稍多。皮下与肌内为0.5-1.0/mg,腹腔为1.05.0ml/mg
• 静脉注射:将家兔置固定箱内,拨去耳壳外缘的毛,选择一条
比较明显的耳缘静脉(兔耳外缘的血管为静脉,中央的血管为动 脉,如图) ,用酒精棉球涂擦皮肤,使血管显露。用左手拇指和 中指捏住兔的耳尖部,食指垫在兔耳注射处的下面,右手持注射 器,将针头从近耳尖处刺入,当确认针头在血管中后,将药液推 入。
×

• 肌肉注射(i.m.):小鼠因肌肉较少,很少采用肌肉注射,
若有需要可注射于股部肌肉,多选后腿上部外侧,一处注射量不 超过0.1mL 。
h
12
• 动物的给药方法
•小白鼠
• 皮下注射(s.c.):用左手固定小鼠后,右手持注射器于拇指
和食指捏起的皮肤处进针即可。
• 静脉注射(i.v.):将小鼠置于特制的固定筒内或倒置的大漏
9
• 动物捉拿及固定方法
•豚鼠
豚鼠性情温和不咬人,用手握住躯干即可。
• 家兔
可用一手抓住家兔颈背部皮肤,将兔提起,另一手托 其臀部,使兔呈坐位姿势。在进行仰位手术操作时,可用 绳带将其四肢仰位捆绑在兔手术台上。头部用兔头固定夹 固定。
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10
• 动物的给药方法
•小白鼠 •灌胃法(i.g.):以左手固定小鼠后,使其腹部朝
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