口蹄疫O型液相阻断ELISA免疫抗体检测方法的应用_胡珊莲
液相阻断ELISA在口蹄疫抗体检测中的应用

试剂盒(生产批号:20200109134,抗原批号:101/24)。 1.3试验步骤 1.3.1 羊群免疫
使用口蹄疫0型灭活疫苗,按照产品使用说明规定免疫剂 量及免疫方法对该湖羊养殖家庭农场羊群接种免疫, 于 2 免 24d后采血,并进行免疫效果检测[2]。 1.3.2洗涤液准备
用蒸馏水或去离子水按1:10稀释洗涤液(如取100ml洗涤 液,需要900ml蒸馏水或去离子水稀释),充分混匀后备用。 1.3.3 样品稀释和加样
本次试验主要采取液相阻断ELISA法追踪检测郎溪某羊羊 牲畜养殖家庭农场养殖的湖羊0型口蹄疫免疫抗体滴度。通过 利用口蹄疫病毒0型抗体会与包被板上的重组抗原和抗羊二抗 酶标结合物特异性结合,以及抗羊二抗酶标结合物底物反应显 色原理反映岀待测血清中口蹄疫病毒0型抗体情况叫 为监管 基层国家强制免疫计划工作开展,保证养殖场健康发展提供坚 实数据支撑,现将检测应用报告情况汇报如下。 1 材料与方法 1.1检测才样品
本次试验共使用3块ELISA板,每板2个阴性对照孔OD 值均小于0.15, 3块ELISA板试验结果均有效。计算岀1号板 Cov值为0.168,抗体阳性孔数88个,抗体阴性孔数2个,合
格率97.7%; 2号板Cov值0.187,抗体阳性孔数86个,抗体 阴性孔数4个,合格率95.5%; 3号板Cov值0.178,抗体阳性 孔数34个,抗体阴性孔数0个,合格率100% (详见表2)遥 3讨论
揭开封板膜,甩去孔内液体。排枪注满配置好的洗涤液 (约300滋l),滞留1min后甩去遥重复洗涤3次,最后一次甩 净,在吸水纸上拍干。 1.3.5 加酶反应
除空白对照孔外,其余每孔加入酶标结合物50滋l,盖好封 板膜,37益避光恒温箱反应30min。 1.3.6 包被板洗涤
口蹄疫O 型灭活疫苗免疫成年羊与羔羊效果

口蹄疫O 型灭活疫苗免疫成年羊与羔羊效果作者:郑晓萍来源:《畜牧兽医科学》 2019年第23期郑晓萍(江苏省苏州市吴中区动物卫生监督所,苏州 215000)摘要:依照农业部拟定的口蹄疫免疫流程,有针对性追踪监测散养羊免疫后的抗体水平,进而初步探析口蹄疫O型灭活疫苗免疫接种后抗体水平增长与消退规律。
结果表明,具有一定基础免疫抗体的羔羊初次免疫后1月加强1次,在4月中O型口蹄疫的免疫抗体合格率均达到农业部设定的70%以上,取得的免疫接种效果较明显。
关键词:口蹄疫;口蹄疫O型;灭活疫苗;免疫效果中图分类号:S858.26 文献标识码:B doi:10.3969/j.issn.2096-3637.2019.23.0050 引言口蹄疫(FMD)是由口蹄疫病毒(FMDV)引起的急性、热性、高传染性疾病,偶蹄动物是该病的主要发病群体,目前口蹄疫是世界动物卫生组织(OIE)A类家畜传染病“队列”中占据首位的病症,中国将其列为一类动物传染病。
FMD的表现以口腔黏膜、鼻镜、蹄部和乳房皮肤处有水平与溃烂形成为典型特征。
传染性极强、传播快速、感染率与发病率均处于较高水平等是FMD的主要特征。
FMD可能会引起偶蹄动物大量死亡,使养殖户承受较大的经济损失。
当下针对FMD尚无特效药物治疗,多采用综合防控办法控制FMD疫情,疫苗预防始终是我国主要防治手段,被列为强制免疫项目[1]。
为使畜群免疫抗体水平能在较长时间内维持在有效保护状态中,应科学设定免疫时间与频次,本文对口蹄疫O型灭活疫苗免疫情况进行对比分析,探析抗体消长规律,以更完善免疫方案。
1 材料与方法1.1 试验动物选择某乡镇2个散养户的经产羊与刚初生的羔羊为试验研究对象,严格依照农业部设定的免疫接种流程进行免疫的免疫程序,并针对免疫抗体水平进行追踪监测。
1.2 器材96孔稀释板,微型振荡器,移液枪、加样槽等。
1.3 疫苗口蹄疫O型灭活疫苗生产厂家为兰州兽医研究所。
1.4 检测采样分别监测该乡镇2个散养羊户羊只的免疫抗体,分别在成年羊和羔羊免疫后 1~4月(羔羊初次免疫后1月加强免疫1次)后进行随机抽样检查。
口蹄疫病毒3ABC单抗阻断ELISA抗体检测方法应用

平均检 出率(%)
0.34 1.85 0.69 0.40
3 分析 本实验采用基于两种单克隆抗体(Mab)的口蹄
疫病毒非结构蛋白 3ABC抗体阻断 ELISA方法监 测,自 2016年 11月 起 至 2017年 5月 结 束,样 品 2063份,检出率平均值为 0.82%。根据免疫登记信 息,3ABC阳性抗体犊牛都已经口蹄疫三价苗免疫, 结合后期临床诊断,阳性犊牛无感染口蹄疫病毒症
孔,混匀,封上封口膜,盖上板盖,室温(18-25℃) 性;血清样品 PI值 <50%,判为阴性。
反应 20h。
2 实验结果
1.2.4 洗板 用 PBST稀释液连续洗涤 5次,在吸
口蹄疫病毒 3ABC抗体检出率见表 1。
水纸上拍干。
表 1 口蹄疫病毒 3ABC抗体检出率
2016年
2017年
区域
牧场 1 牧场 2 牧场 3 牧场 4
行配制 1∶25倍稀释。
1.2.10 实验结果判定 1)实验成立条件:阴性对
1.2.3 加入血样 在捕获 3ABC抗原酶标板每孔 照平均 OD450值 >1.0;弱阳性对照血清阻断率 >
中加入 80μL血清稀释液,然后依次加入 20μL阴、 50%,阳性对照血清阻断率 >70%。2)结果判定标
弱阳性、阳性对照血清各平行 2孔、血清样品各一 准:血清样品 PI值≥50%,判为非结构蛋白抗体阳
48
浙江畜牧兽医
2018年第 2期
口蹄疫病毒 3ABC单抗阻断 ELISA抗体检测方法应用
根据新型口蹄疫疫苗生产工艺,用灭活疫苗免 1.2.5 加酶标单克隆抗体 用血清稀释液 1∶100
疫的动物不会产生病毒非结构蛋白 3ABC抗体。因 比例稀释酶标单克隆抗体,每孔加入 100μL,封口
口蹄疫病毒O型抗体液相阻断ELISA试验的测量不确定度评估

82
2018 年第 35 卷第 4 期
ELISA 试验的测量不确定度进行研究,希望能探 索一种较为合理的 ELISA 检测结果不确定度评估 模式,并为兽医实验室开展相关工作提供借鉴。 1 材料和方法 1.1 样品
口蹄疫病毒 O 型抗体阳性、阴性血清:中国 农业科学院兰州兽医研究所提供。 1.2 试剂
应用液相阻断 ELISA 技术,检测牛、羊或猪 等偶蹄动物血清中口蹄疫病毒 O 型抗体。 2 结果与分析 2.1 数学模型
根据中国农业科学院兰州兽医研究所口蹄疫 病毒 O 型抗体液相阻断 ELISA 检测试剂盒说明书 提供的检测结果计算及判定方法,建立数学模型:
定与表示》,并于 2012 年最新修订 [2]。近年《陆生动物诊断试验和疫苗 手册》[3] 中也对测量不确定度提出了要求。
ELISA 具有快速、灵敏和高通量等特点,且 无需昂贵仪器,是目前基层兽医检测部门应用的 主要方法。本文对口蹄疫病毒 O 型抗体液相阻断
口蹄疫病毒 O 型抗体
液相阻断 ELISA 试验的测量不确定度评估
杜 鹃 (北京市动物疫病预防控制中心,北京 102629)
摘 要:为探索一种较为合理的兽医实验室ELISA试验的测量不确定度评估模式,应用液相阻断ELISA试验方 法,对口蹄疫O型抗体进行检测,依据《测量不确定度评定与表示》(JJF1059.1—2012),分析试验的不确定 来源并评定各分量的标准不确定度、合成标准不确定度和扩展不确定度。结果显示:最终cutoff临界值与样品判 定浓度的OD450 mm值的比值为1.390,U=0.221(k=2);测量不确定度的加入提升了测量结果的可信度,并有效 降低了假阳性、假阴性出现的风险;分析不确定度各分量对测量结果的相对贡献,可以找出影响检测质量的主 要因素,从而有利于实验室的质量控制和检测质量的提高。 关键词:口蹄疫病毒O型;液相阻断ELISA;测量不确定度 中图分类号:S852.4 文献标识码:A 文章编号:1005-944X(2018)04-0082-06 DOI:10.3969/j.issn.1005-944X.2018.04.021
液相阻断ELISA在口蹄疫病毒抗体水平检测中的应用

Ap l a i n o i u d p a e b o k n p i to fl i — h s l c i g ELI A n t e d t c i n o c q S i h e e t f o
刘 俊 林 , 祁淑 芸 马 军 武 崔 燕 , ,
( .甘肃 农业 大 学 动 物 医学 院 , 肃 兰州 7 0 7 ;2 1 甘 3 0 0 .中 国农 业 科 学 院 兰 州 兽 医 研 究 所 , 国家 家 畜 疫 病病 原 生 物学 重 点 实 验 室 , 农业 部畜 禽 病 毒 学 重 点 实 验 室 , 国家 口蹄 疫参 考 实 验 室 。 肃 兰 州 7 0 4 ) 甘 30 6
3 B - E IA 对 液 相 阻 断 E IA 方 法 所 选 的部 分 阴 性血 清进 行 了 验证 试 验 . 果 显 示 : 用 A i I 和 0 型 液 A C I LS - LS 结 利 s -型 a 相 阻 断 E IA 方 法 筛选 的 阴 性动 物 , 免 疫 和 攻 毒 后 , 清 抗 体 水 平 显 著 升 高 , 明 该 法 可 完 全 用 于 口蹄 疫 阴 性 LS 在 血 表 动 物 筛 选 及 口蹄 疫 病 毒 抗 体 水 平 的 检 测 .
维普资讯
20 年 6
大
学
学
报
第 43卷
双 月 刊
第 3期 1  ̄2 8 0
J OURNAL OF GANS AGRI U CUL TURAL U NI VERS TY I
简述口蹄疫免疫抗体监测的方法及意义

一、检测方法特异性抗体检测在疫病诊断、传染病流行病学调查及评价疫苗免疫效果评价具有重要的参考意义。
现阶段,抗体检测的方法较多,除传统的沉淀反应,凝集试验,补体结合试验外,标记免疫测定已成为主要的免疫抗体测定技术(如酶联免疫测定、放射免疫测定、荧光免疫测定、发光免疫测定等),而酶联免疫测定是目前应用最为广泛的方法之一。
1.中和抗体中和抗体是当病原微生物侵入机体时产生的相应的抗体。
病原微生物入侵细胞时需要依赖病原体自身表达的特定分子与细胞上的受体结合,才能感染细胞,并进一步扩增。
中和抗体是B淋巴细胞产生的某些抗体,中和抗体的作用机制是改变病毒表面构型,阻止病毒吸附于易感细胞,使病毒不能穿入胞内进行增殖;病毒与中和抗体形成的免疫复合物,易被巨噬细胞吞噬清除;有包膜的病毒表面抗原与中和抗体结合后,激活补体,可导致病毒的溶解。
病毒中和试验是世界动物卫生组织推荐的标准方法,抗体与口蹄疫病毒特异性中和作用使病毒失丧失感染力,需要培养病毒敏感细胞;所需的病毒必须为活病毒,具有感染性。
2、结构蛋白抗体在原则上来说,只要是异己蛋白质进入机体,就会被免疫系统识别,然后产生相应抗体。
灭活疫苗的本质是一种抗原,只不过它通过改造已经没有了病毒的毒性。
当疫苗注入到机体之后,由于病毒抗原含有多种不同的蛋白,因此机体会产生不同的抗体。
然而,并非所有的结构抗体都有抗病毒的作用。
中华人民共和国农业农村部规定的口蹄疫免疫抗体评价的方法分别为液相阻断E L I S A抗体检测试验、正向间接血凝试验、V P1结构蛋白抗体检测试验。
2.1液相阻断ELISA抗体检测试验(国际贸易指定法)我国目前采取以免疫为主的综合防控措施进行口蹄疫防控,免疫抗体检测是衡量疫苗免疫效果的重要指标。
目前,国际粮农组织(FAO)和世界动物卫生组织推荐液相阻断ELISA来对口蹄疫免疫效果进行评价。
硏究表明口蹄疫液相阻断ELISA抗体检测技术具有良好的敏感性、快速诊断性和可重复性,与攻毒保护有很好的相关性,现被广泛应用于口蹄疫免疫抗体水平的监测。
口蹄疫O型液相阻断ELISA免疫抗体检测方法的应用

关键词 : 液相阻断 E L I S A ; O型1 2 I 蹄疫; 抗体检测; 奶牛
s e r o t y p i n g H a e m o p h i l u s p a r a s u i s [ J ] .J C l i n Mi c r o b i o l ,
2 0 0 3 , 4 1 ( 2 ) : 8 8 0~8 8 2 .
[ 3 ]蔡旭旺 , 刘 正飞. 副猪嗜血杆 菌 的分 离培养 和血清学 鉴
学报 : 自然 科 学 版 , 2 0 0 9, 3 5 ( 5 ) : 5 1 7—5 2 0 .
本试 验 通 过 对疑 似 发 病猪 场 采 集 患猪 病 料 , 并 进行 病原 菌 分 离 鉴 定 、 动物试验 , 鉴 定 为 副 猪 嗜 血 杆菌 。 通过 药敏试 验 , 确诊 分离 菌对 庆大 霉素 、 环丙 沙 星、 氧氟 沙星 、 诺 氟 沙 星 和 头孢 哌酮 高 敏 , 复 方 新 诺
发病 报 告 。该 病 可分 为 O 、 A、 C、 南 非 I型 、 南 非
收稿 日期 : 2 0 1 4 — 1 1 - 2 1
0
Ⅱ型 、 南 Ⅲ型 和 亚 洲 I型 等 7个 血 清 型 , 其 中以 O 型和 A型分 布最 广 , 危害 最大 。
本 试 验应 用 液 相 阻 断 E L I S A 检 测 方 法 跟 踪 检
[ 4 ]高丰 , 罗毅 , 成军 , 等. 副猪 嗜血杆菌 感染 的诊 断与 防治
口蹄疫病毒O型抗体检测注意事项及结果分析

健康养殖·诊疗畜牧业环境 2021.0286摘 要:口蹄疫是由口蹄疫病毒引起的急性、热性传染性疫病,此病常发生于偶蹄动物,被世界卫生组织列为传染病,又被我国列为一类动物疫病。
文章主要介绍口蹄疫阻断ELISA 抗体检测实验步骤和注意事项,为洛南县生畜养殖场或户的免疫抗体水平做好分析,为口蹄疫抗体监测工作提供依据和参考。
关键词:口蹄疫病毒;O型抗体检测;注意事项;结果分析1 样品来源该实验样品来自于全县16个镇,随机抽取生猪养殖场20个,每场采集血清样品15份;零散养殖户随机抽取16户,每户采集血清样品5份,共计380份。
2 实验仪器量筒、烧杯、离心管架、超纯水机、电热恒温箱、洗板机、酶标分析仪、移液枪头、单道移液器、多道移液器、离心管、一次性洗液皿、一次性吸水纸。
3 洗涤液配制用量筒取900ml蒸溜水或去离子水与100ml洗涤液混合(洗涤液是浓缩洗液,需要稀释),充分混匀即为工作浓度洗涤液。
4 具体实验步骤4.1 实验前的准备工作将阻断ELISA抗体检测试剂盒和待检血清从冷藏和冷冻箱中取出,将待检血清竖行排列于离心管架上,并做好编码,等试剂和血清样品温度恢复到室温20℃~25℃,在进行实验。
4.2 操作步骤4.2.1 加样(1)预先取出包被板,取出样品稀释液,在每孔加入样品稀释液50 µl。
(2)再用10 µl的移液器添加50µl待检样品。
(3)在包被板最后加入50µl阴性和阳性对照品各2孔,盖膜,避光在37℃反应60min。
4.2.2 洗板60min时间到取包被板,揭掉封板膜,倒掉孔内液体,用预先配制好的洗涤液洗涤3次,每次停留1min;最后一次倒干净后,用吸水纸将包被板内液体拍干。
4.2.3 检测(1)在包被板中加酶标结合物(1号液)100µl,盖膜,避光在37℃反应60min。
60min时间到后取出包被板,揭膜,倒掉孔内液体,用预先配制好的洗涤液洗涤3次,每次停留1min;最后一次倒干净后,用吸水纸将包被板内液体拍干。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
2015年第1期浙江畜牧兽医欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍欍表3副猪嗜血杆菌西药药敏试验结果药物耐药中敏高敏抑菌圈直径环丙沙星1516-202126氧氟沙星1011-151632头孢哌酮1516-202136复方新诺明1011-151611林可霉素1415-20210诺氟沙星1516-181924青霉素1920-27280链霉素1112-14150庆大霉素1213-141521Hps 血清型较多,目前报道有15种,不同菌株对同一种抗生素的敏感性存在很大差异,临床治疗应结合分离菌株的药敏试验结果,科学用药。
3小结与讨论本试验通过对疑似发病猪场采集患猪病料,并进行病原菌分离鉴定、动物试验,鉴定为副猪嗜血杆菌。
通过药敏试验,确诊分离菌对庆大霉素、环丙沙星、氧氟沙星、诺氟沙星和头孢哌酮高敏,复方新诺明中敏,青霉素、链霉素、林可霉素耐药;对金银花及其组成的复方敏感,且复方作用效果优于单方[9]。
副猪嗜血杆菌病临床治疗上中药建议使用金银花及其组成复方,西药建议使用庆大霉素、环丙沙星、氧氟沙星、诺氟沙星和头孢哌酮。
参考文献[1]Oliveira S ,Blackall P J ,Pijoan C.Characterization of thedi -versity of Haemophilus parasuisfield isolates by use of sero -typing and genotyping [J ].Am J Vet Res ,2003,64(4):435-442.[2]Del Rio M L ,Gutierrez C B ,Rodriguez Ferri E F.Value ofin -direct hemagglutination and coagglutination tests for serotyping Haemophilus parasuis [J ].J Clin Microbiol ,2003,41(2):880-882.[3]蔡旭旺,刘正飞.副猪嗜血杆菌的分离培养和血清学鉴定[J ].华中农业大学学报,2005(2):55-58.[4]高丰,罗毅,成军,等.副猪嗜血杆菌感染的诊断与防治[J ].动物医学进展,2002,23(6):101-102.[5]朱小宁,余兴龙,李润成,等.副猪嗜血杆菌的分离与鉴定及其16S rRNA 生物信息学分析[J ].湖南农业大学学报:自然科学版,2009,35(5):517-520.[6]易顺华,陈进喜,蒋碧桂.副猪嗜血杆菌的分离鉴定与药敏试验[J ].动物医学进展,2009,30(9):41-44.[7]冼琼珍,黄耿森,王淑敏,等,副猪嗜血杆菌的分离鉴定[J ].中国兽医杂志:2006:42(3):27-28.[8]尹秀凤,王艳,姜平,等.副猪嗜血杆菌PCR检测方法的建立与应用[J ].中国兽医学报,2007,27(2):180-183.[9]华升,梅书棋,曾德芳.副猪嗜血杆菌病研究进展[J ].动物医学进展,2006,27(11):7-10.收稿日期:2014-11-21口蹄疫O 型液相阻断ELISA 免疫抗体检测方法的应用胡珊莲(上海市闸北区光明荷斯坦牧业有限公司,上海闸北200436)摘要:应用液相阻断ELISA 试验方法检测上海光明荷斯坦牧业有限公司牧场牛群经口蹄疫O 型灭活疫苗免疫的奶牛血清样品2412份。
经检测,2412份样品中规模奶牛场牛群免疫抗体滴度≤1ʒ64样品42份,抗体滴度≥1ʒ128样品2370份,抗体保护率为98%。
关键词:液相阻断ELISA ;O 型口蹄疫;抗体检测;奶牛中图分类号:S858.23文献标识码:A 文章编号:1005-7307(2015)01-0003-003口蹄疫属我国农业部公布的一类动物疫病,是由口蹄疫病毒引起偶蹄动物的一种急性、热性、高度接触性传染病,以牛,猪最易感,羊、骆驼、象等均有发病报告。
该病可分为O 、A 、C 、南非Ⅰ型、南非Ⅱ型、南Ⅲ型和亚洲Ⅰ型等7个血清型,其中以O型和A 型分布最广,危害最大。
本试验应用液相阻断ELISA 检测方法跟踪检测上海光明荷斯坦牧业有限公司下属牧场O 型口蹄疫疫苗免疫抗体滴度水平,以利及时指导下属牧3浙江畜牧兽医2015年第1期场O型口蹄疫防疫工作,为牧场健康发展提供有效保障。
现将检测应用情况报告如下。
1材料与方法1.1检测样品上海光明荷斯坦牧业有限公司下属牧场牛群经口蹄疫O型灭活疫苗(JYBL-2014-5-21)免疫的奶牛血清样品2412份。
1.2实验器材酶标仪、37ħ恒温温箱;5.0 50.0μL移液器、50.0 200.0μL移液器及50.0 300.0μL12道移液器;配套移液枪尖,移液槽;吸水纸;96孔平底酶标板;96孔U形底聚丙烯微量抗原抗体反应板;检测试剂盒系采用中国农科院兰州兽医研究所口蹄疫O型抗体液相阻断ELISA检测试剂盒。
1.3实验步骤1.3.1牛群免疫应用口蹄疫O型灭活疫苗按照产品说明书规定免疫剂量及免疫方法对公司下属牧场牛群接种免疫,于2免21d后采血进行免疫效果检测。
1.3.2试剂准备包被缓冲液(pH9.6)、磷酸盐-吐温缓冲液(PBST)、PBST稀释液、底物溶液按试剂盒说明书进行配制。
1.3.3包被pH9.6包被缓冲液稀释口蹄疫O型病毒兔抗血清至工作浓度(1ʒ1000),混合均匀,酶标板上每孔加入50μL,振荡,封板室温过夜,使抗体在pH9.6条件下吸附于酶标板上。
1.3.4抗原抗体反应(对照血清及待检血清)以96孔U型微量血凝板检测,以20份样品为例,需板2块,血清以倍比稀释法进行(注:空白孔为无样品加入)。
A.加PBST稀释。
A1—A10加入150μL PBST 稀释液,B1—B10,C1—C10,D1—D10,E1—E10各加入50μL PBST稀释液。
H1加入150μL PBST稀释液,H2—H10各加入50μL PBST稀释液,A12—B12各加50μL PBST稀释液。
B.加血清稀释。
在A1中加入50μL待检血清样品,混匀后取50μL加入B1,再混匀后取50μL 加入C1连续2倍稀释(从A11ʒ4倍开始稀释到E1 1ʒ64倍,A1—A10共10个样品),直至加到E1混匀,再从E1中吸取50μL弃去。
阳性血清取50μL 加入H1,混匀后取50μL加入到H2,直至加入到H10混匀,再从H10中吸取50μL弃去(从H11ʒ4倍开始稀释到H101ʒ2048倍)。
阴性血清取50μL 加入A12,混匀后取50μL加入B12,混匀后取50μL弃去。
C.加病毒抗原。
口蹄疫O型病毒抗原用PBST 稀释液稀释到工作浓度(1ʒ12,即1份病毒抗原加11份PBST),96孔U型微量血凝板中待检样品血清及阴阳性血清每孔加50μL,加入等量工作浓度的病毒抗原后,血清稀释度加倍。
E12—H12四个对照孔各加100μL稀释至工作浓度的病毒抗原。
振荡,盖膜封板,2 8ħ过夜(详见图1)。
A B C D E F G H1234567891011 121ʒ81ʒ81ʒ81ʒ81ʒ81ʒ81ʒ81ʒ81ʒ81ʒ8-1ʒ4 1ʒ161ʒ161ʒ161ʒ161ʒ161ʒ161ʒ161ʒ161ʒ161ʒ161ʒ8 1ʒ321ʒ321ʒ321ʒ321ʒ321ʒ321ʒ321ʒ321ʒ321ʒ321ʒ641ʒ641ʒ641ʒ641ʒ641ʒ641ʒ641ʒ641ʒ641ʒ641ʒ1281ʒ1281ʒ1281ʒ1281ʒ1281ʒ1281ʒ1281ʒ1281ʒ1281ʒ128+1ʒ81ʒ161ʒ321ʒ641ʒ1281ʒ2561ʒ5121ʒ10241ʒ2048病毒抗原对照图196孔U型微量血凝板10份血清加入工作浓度病毒抗原后的浓度表1.3.5洗酶标板及抗原抗体转移先将2块抗原抗体反应板从4ħ中取出室温放置,用PBST稀释液连续洗酶标板4次,吸水纸上甩干,再将抗原抗体混合物从反应板上按次序转移至酶标板上的对应孔,每孔加50μL,封板,37ħ温育60min(详见图2)。
1.3.6洗酶标板及加豚鼠抗血清用PBST稀释液连续洗酶标板4次,吸水纸上甩干,用豚鼠抗血清稀释液将口蹄疫O型病毒豚鼠抗血清稀释至工作浓度(1ʒ1000),每孔加50μL,封板,37ħ温育60min。
42015年第1期浙江畜牧兽医A B C D E F G H123456789101112 S11ʒ16S2S3S4S5S6S7S8S9S10+1ʒ16-1ʒ4 S11ʒ321ʒ32-1ʒ8 S11ʒ641ʒ64空白S41ʒ1281ʒ128空白S111ʒ16S12S13S14S15S16S17S18S19S201ʒ256S111ʒ321ʒ512S111ʒ641ʒ1024S111ʒ1281ʒ2048病毒抗原对照图296孔酶标板检测20份样品布局图1.3.7洗酶标板及加辣根过氧化物酶用PBST 稀释液连续洗酶标板4次,吸水纸上甩干,用PBST 稀释液将兔抗豚鼠IgG—辣根过氧化物酶结合物稀释至工作浓度(1ʒ500),每孔加50μL,封板,37ħ温育60min。
1.3.8洗酶标板及加底物溶液用PBST稀释液连续洗酶标板4次,吸水纸上甩干,加50μL底物溶液(底物溶液每1mL加10μL3%双氧水),封板,37ħ温育15min。
1.3.9加终止液15min后,每孔加50μL终止液终止反应,在酶标仪上读取D492nm值。
1.4实验结果判定1.4.1实验认可标准每板设4孔病毒抗原对照,病毒抗原对照不加任何血清,直接用PBST稀释至使用浓度,与血清/病毒抗原复合物同步加入ELISA板孔,50.0μL/孔,病毒抗原对照D492nm值应在1.5ʃ0.5范围内。
阳性对照抗体效价应在(1ʒ1024)ʃ1滴度内,阴性对照血清抗体效价应<1ʒ8。
病毒抗原对照平均D492nm值50.00%计算(临界值),抗原对照4孔,弃去最高和最低D492nm OD值,计算剩余2孔的平均D492nm值,除2,即50.00%对照值。
该值即为临界值,表示阻断50.00%反应的对照D492nm值。
1.4.2结果判定标准以病毒抗原对照平均D492 nm值的50.00%为临界值,被检血清稀释孔D492 nm值>临界值的孔为阴性孔,≤临界值的孔为阳性孔,阳性孔的D492nm值=临界值时所对应的稀释度为该份血清的抗体滴度。
2结果与分析2.1病毒抗原对照D492nm值2412份检测血清样品,共采用121个ELISA板,484个病毒抗原对照D492nm值在1.1 2.0范围内。
2.2阴、阳性对照血清抗体效价121个牛群检测血清样品ELISA板临界值均在对应板阳性对照血清1ʒ1024ʃ1滴度的D492nm值内,121个阴性对照血清样品1ʒ8处滴度的D492nm值均≥相应板的临界值相。