酿酒酵母中的转录调控网络
酿酒酵母抗逆境的代谢机制研究
酿酒酵母抗逆境的代谢机制研究酿酒酵母是一种广泛应用于工业和科学研究的微生物，其发酵能力和代谢途径的多样性使其成为了一种卓越的研究对象。
但在实际操作中，酿酒酵母常常会遭遇各种逆境，如高温、低温、低氧、高浓度乙醇等，严重影响酒精等产品的质量和产量。
因此，研究酿酒酵母的抗逆境机制成为目前酒业研究中的一个重要领域。
酵母在逆境环境中如何应对？酿酒酵母面对的逆境主要分为两种：生理性逆境和环境性逆境。
其生理性逆境包括无营养、多余基因组、积累毒素等；而环境性逆境则包括酸碱度变化、离子浓度不均、质子数增加等。
在逆境面前，酵母有如下应对方式：1. 启动分子伴侣机制。
在应对高温、低温等生理性逆境时，酵母会启动分子伴侣机制，通过一系列反应来稳定蛋白质的折叠状态和功能。
其中，HSP90、HSP70、HSP60等分子伴侣家族对酿酒酵母中的众多功能蛋白起到了重要的保护作用。
2. 转录因子的表达调控。
当酿酒酵母遇到有害物质时，传感器会触发总转录因子的调整，从而改变酿酒酵母细胞内大量蛋白的表达水平，最终实现细胞内适应环境的生理和代谢状态。
3. 细胞膜的调整。
酿酒酵母在高食盐和其他离子型逆境环境中会控制细胞膜成分和结构的调整，以保持细胞膜的完整性和保护膜上酶及其他结构的功能。
4. 维生素等小分子物质的积累和应用。
生理性逆境如缺氮、缺磷、维生素缺乏等都会影响酵母的代谢途径和生长，酿酒酵母往往采用积累和应用能量物质或小分子物质来应对。
此外，酿酒酵母还可以通过不同的途径来调节酵素反应、葡萄糖运输和脂质代谢、毒物代谢等，以保持正常的代谢通路和细胞功能。
酿酒酵母抗逆境机制的代谢调节酿酒酵母在应对逆境时，还会通过代谢途径来维持自己的生存和生长。
代谢调节是酵母应对逆境时最重要和最直接的策略之一，可以说有很大一部分逆境环境下的适应性表达是通过代谢调节实现的。
酿酒酵母具有高度适应性和灵活性的代谢网络，能够在不同的代谢模式间进行转化。
因此，对酵母代谢通路的研究为解决酿酒酵母的逆境问题提供了可行的技术路径。
酿酒酵母发酵机制的分子调控研究
酿酒酵母发酵机制的分子调控研究随着人们对于美食和美酒的要求不断提高，酿酒的工艺也不断得到提升和改进。
其中一个重要的进步就是酿酒酵母发酵机制的分子调控研究。
酿酒酵母是酒类发酵中最常用的微生物，其发酵机制的深入研究能够提高酒的质量和口感，也有助于推动酿酒行业的发展。
酿酒酵母发酵过程中，主要有两种代谢方式：呼吸代谢和乳酸代谢。
呼吸代谢是指酵母通过氧化葡萄糖等有机物为能量而进行的代谢，产生的主要产物是二氧化碳和水。
乳酸代谢则是指在缺乏氧气的情况下，通过乳酸发酵产生乳酸来获得能量。
这两种代谢方式的选择与酿酒酵母的基因表达和调节有关。
首先，细胞内的信号通路能够调节酿酒酵母的代谢方式。
在缺氧环境下，酵母感受到低氧压力后，可以通过启动HIF-1信号通路来调节代谢方式。
这个信号通路可以促进酵母进行乳酸代谢以产生更多的ATP。
此外，在缺乏蔗糖等碳源的情况下，酵母也会通过AMPK信号通路来切换代谢方式，进入葡萄糖酵解阶段。
这些信号通路的调节，能够通过基因表达和转录后的蛋白质调控来实现。
其次，酿酒酵母在发酵过程中，一些关键的代谢酶也会被调控。
举例来说，PFK1和PDC这两种酶分别参与葡萄糖的酵解和产生乙醛的过程。
这两种酶的活性和表达水平受到微环境中氧气和二氧化碳浓度的影响。
此外，这些酶的活性和表达也受到一些信号分子的调控，比如AMPK、cAMP和GSN1等。
除此之外，酿酒酵母的基因表达还受到一些转录因子的调控。
举例来说，HAP1、HAP4和ROX1这三个因子在细胞内能够启动或抑制呼吸代谢等代谢途径的基因表达。
这些转录因子的调控机制，可能涉及到酿酒酵母细胞内的一些信号通路和代谢途径的调节。
最后，酿酒酵母的代谢方式也和细胞周期有关。
在不同的生长阶段，酵母的代谢方式也会发生转换。
举例来说，在细胞分裂前后，酵母会切换代谢方式以增加细胞内ATP的含量，从而保证细胞活力和生长。
这种代谢方式的调控和细胞周期的调控有着紧密的联系。
综上所述，酿酒酵母发酵过程中的代谢方式和基因表达等调控机制有着极其复杂的关系，涉及到多个信号通路、代谢酶和转录因子的调节。
酵母菌转录因子的表达谱分析
酵母菌转录因子的表达谱分析酵母菌是一类非常常见的真菌，它们广泛存在于自然界中，包括空气、水、土壤等环境中，也常被应用于科研领域中的基础研究、发酵工程和遗传工程等方面。
酵母菌的基因表达调控机制与人类生物体中非常相似，因此被广泛应用于人类健康、疾病和药物研究等方向。
转录因子是一类调控基因表达的蛋白质，它们通过结合DNA上的特定序列，调控基因的转录过程。
酵母菌中转录因子的种类非常丰富，这些转录因子参与了许多重要的生物过程，如细胞周期调控、DNA复制、DNA修复、细胞凋亡等。
因此，探究酵母菌中转录因子的表达谱，对于进一步了解酵母菌的基因调控机制、生物过程等方面有着十分重要的意义。
在过去的几十年中，随着生物技术的不断发展，分析某种生物的转录因子表达谱的方法也在不断地更新。
其中，微阵列技术、RNA测序技术是比较常用的方法，而在这些方法中，RNA测序技术的应用范围更加广泛，可以高通量、全面地分析细胞中的RNA。
以Saccharomyces cerevisiae（酿酒酵母）为例，对其转录因子进行表达谱分析，可以获得许多有价值的信息，如：1. 转录因子的数量和种类利用RNA测序技术可以对酿酒酵母中的所有转录因子进行全面、高通量的扫描，从而获得转录因子数量和种类信息。
基于这些信息，可以对酿酒酵母中不同转录因子的调控功能进行初步了解，为后续的研究提供基础数据。
2. 转录因子的表达模式通过RNA测序技术，可以获得酿酒酵母在不同生长阶段、不同环境条件下转录因子的表达水平。
通过对这些数据的分析，可以发现某些转录因子的表达水平随生长阶段或环境发生了明显变化，而另一些转录因子则一直保持稳定的表达水平。
这些信息可以为后续的酿酒酵母研究提供参考。
3. 转录因子之间的相互作用关系酿酒酵母中的转录因子之间可以形成复杂的调控网络，而RNA测序技术可以提供高通量的数据，可以很好地揭示不同转录因子之间的相互作用关系。
通过分析线粒体DNA缺失突变株和野生型株RNA-seq数据，研究者鉴定出Respiration Control Network（RCN）的核心蛋白Oaf1在调控线粒体膜蛋白基因表达时依赖于其识别的共同序列（OAC和OBD）的比例（OAC比例和OBD比例），并进一步对其真核的机制展开研究。
酿酒酵母的遗传调控及其对发酵品质的影响
酿酒酵母的遗传调控及其对发酵品质的影响酿酒是一项重要的经济活动，酿酒酵母是发酵的关键，其发酵性能、抗逆性能和适应性决定着酒的品质和稳定性。
酿酒酵母的基因组已被完整测序，并且已有大量的研究表明，遗传调控在酵母的发酵过程中发挥着重要作用。
酿酒酵母基因调控的基本特点酿酒酵母细胞包含有两种基因调控系统，一种是转录因子(TF)~激活蛋白(AP)网络，另一种是RNA结合蛋白(RBP)网络，两种网络共同调控了发酵过程中数以千计的基因。
据研究发现，在整个发酵过程中，酿酒酵母的基因调控可能会发生大量的变化。
例如，苯乙醇酵母Kluyveromyces marxianus在发酵过程中，基因表达量会发生大量变化，与其他酵母相比，其基因表达调控具有更强的动态性。
遗传调控与酿酒酵母的发酵性能酿酒酵母的遗传调控可以影响其发酵性能。
例如，糖酵解是酿酒过程的重要环节，由于逆境等不良环境的存在，酿酒酵母的糖酵解相关基因会发生调控，促进其发酵能力。
在实验室条件下，通过对酿酒酵母基因进行改造和筛选可以大幅度提高其发酵性能。
另外，酿酒酵母在处理一些外部压力和环境变化时，可以通过启动内源性适应性反应来增强其发酵性能和适应性。
例如，在高温酵母中，热休克蛋白和脱氧核糖核酸抗氧化酶等抗逆基因在遭受不良外界环境时会被调控。
酿酒酵母的遗传调控对酒品质的影响酿酒酵母的遗传调控对酒品质具有重要影响。
例如，酒芽酵母Saccharomyces cerevisiae的二氧化硫代谢途径被发现与葡萄酒的品质有关。
酒芽酵母越是能够转化多量的二氧化硫，越能够生产出具有更长寿命、更好品质的葡萄酒。
此外，酿酒酵母的遗传调控还可以影响其他因素对酒质的影响。
例如，在一些实验中，不同的酿酒酵母表现出了不同的对二氧化碳甚至氧气的敏感性，而这些气体含量的变化也会影响酿酒酵母在发酵过程中的表达方式和酒的品质。
总结通过对酿酒酵母的遗传调控及其对发酵品质的影响进行分析可以得知，遗传调控在酿酒酵母的发酵过程中发挥着重要作用，对酒的品质和稳定性具有重要影响。
酿酒酵母发酵代谢途径的基因表达调控机制研究
酿酒酵母发酵代谢途径的基因表达调控机制研究酿酒酵母作为一种重要的发酵微生物，广泛应用于葡萄酒、啤酒等酿造过程中。
在发酵酿造过程中，酿酒酵母的代谢活动起着至关重要的作用。
发酵代谢途径是酿酒酵母进行代谢活动的一个重要途径。
酿酒酵母发酵代谢途径的基因表达调控机制研究是近年来的热点之一。
一、背景酿酒酵母在发酵过程中能够产生乙醇、二氧化碳等物质，并且能够调节代谢途径。
发酵代谢途径由许多基因所编码。
因此，研究酿酒酵母发酵代谢途径的基因表达调控机制对于增强酒类酿造中的代谢活性以及提高酿酒酵母发酵性能有着重要的意义。
二、基因调控机制基因表达调控是指在不同的生理状态下基因的表达会发生变化，最终导致蛋白质的产生。
基因表达调控可分为转录调控、转录后修饰调控和翻译后调控等多种类型。
对于酿酒酵母的发酵代谢途径的基因表达调控而言，主要的调控方式是转录后修饰调控。
转录后修饰调控包括RNA剪接、RNA编辑、RNA稳定性控制、RNA核糖体结合等方式。
转录后修饰调控存在于长转录本和短转录本两个方面，两者功能丰富，对于基因的表达和功能影响很大。
同时，转录后修饰还能够影响基因的翻译速率、翻译效率等。
三、酿酒酵母代谢途径酿酒酵母发酵代谢途径主要包括三个方面：1.糖代谢途径糖代谢途径是酿酒酵母进行代谢活动的重要途径之一。
人们通常会给予酵母适量的糖类物质，使其在发酵过程中能够产生乙醇、二氧化碳等物质。
2.酯类代谢酿酒酵母进行酯类代谢的主要途径是脂肪酸代谢。
脂肪酸代谢需通过脂肪酸转运蛋白转运到线粒体，再经过脂肪酸β氧化途径，将其转化为乙酰辅酶A。
3.酸类代谢酿酒酵母进行酸类代谢的主要途径是三羧酸循环。
三羧酸循环的主要功能是将酸类物质转化为乙醛酸。
四、技术手段对于酿酒酵母发酵代谢途径的基因表达调控机制研究，有许多技术手段可供选择。
例如，RNA干扰技术可以抑制特定基因的表达；基因芯片技术可以同时检测多个基因的表达水平，并对表达水平进行全程分析；基于全基因组重组技术的方法可以实现基因组范围内的操作。
酿酒酵母发酵过程中各类代谢物质代谢途径及其调控机制研究
酿酒酵母发酵过程中各类代谢物质代谢途径及其调控机制研究酒是人类在几千年的历史中所创造的一种美酒。
酒的制作过程中，必不可少的一个元素就是酵母。
酒酵母是一种单细胞真菌，可以将糖类等有机物质转化为乙醇、二氧化碳等有机物。
在发酵过程中，酒酵母需要调节各类代谢物质的代谢途径，以维持整个发酵过程的正常进行。
本文将介绍酿酒酵母发酵过程中各类代谢物质的代谢途径及其调控机制的研究。
一、酿酒酵母的代谢途径简介酿酒酵母的代谢途径主要包括三个方面：糖类代谢途径、脂类代谢途径和氮素代谢途径。
1、糖类代谢途径糖类代谢途径是酿酒酵母在发酵过程中最为重要的代谢途径。
在糖类代谢途径中，酿酒酵母可以将葡萄糖、果糖等糖类分子转化为乙醇、二氧化碳和能量等有机物质。
糖类代谢途径主要包括三个部分：糖酵解途径、三羧酸循环和氧化磷酸戊糖途径。
2、脂类代谢途径脂类代谢途径主要是指酿酒酵母在发酵过程中通过β-氧化、格丽尔酯途径等途径，将脂肪酸代谢为能量和生长所需的脂类物质。
酿酒酵母在糖类能源不足的情况下，会启动脂类代谢途径维持生物体的正常代谢过程。
3、氮素代谢途径氮素代谢途径主要是指酿酒酵母在发酵过程中将胺基酸和氨基化合物等通过转移和合成等途径，合成生物体所需的蛋白质和核酸等物质，从而完成代谢过程。
二、酿酒酵母代谢途径调控机制酿酒酵母的代谢途径调控机制可以由多种因素参与，如细胞内外环境因子、代谢产物均有影响。
其中，下面我们将具体说明几个调控机制。
1、酒精脱氢酶（ADH）和乙醇酸脱氢酶（ALDH）调控ADH和ALDH是酿酒酵母在糖类代谢途径中最为重要的代谢酶。
ADH能够将葡萄糖、果糖等糖类分子转化为乙醇；而ALDH则能够将乙醇进一步氧化为乙酸。
这两种脱氢酶在整个代谢途径中起到非常重要的调控作用。
2、代谢通路中枢调控代谢通路中枢调控是指通过酶活性的调节和代谢产物的交互作用，来调控酿酒酵母在代谢途径上的分化发育和维持生长，以适应各种环境的需要。
比如，在整个糖类代谢途径中，酿酒酵母可以通过调节各种关键酶的活性，来影响代谢物质的转化和积累。
酿酒酵母TOR信号通路研究进展
酿酒酵母TOR信号通路研究进展张爱利【摘要】TOR信号通路是酿酒酵母非常重要的保守信号通路,它连接着细胞所能得到的营养信号与细胞生长过程.它可以通过调节翻译、转录、核糖体生物合成、营养物质的运转以及与营养条件相关的自溶来调控细胞的生长.本文综述了酿酒酵母TOR信号通路的主要作用元件,并介绍了其与酿酒酵母时序寿命和Ras/cAMP/PKA信号通路的关系.%TOR signal pathway is an important conservative pathway of Saccharomyces cerevisiae which connects available nutrients signals and cell growth. TOR pathway controls cell growth through regulates translation, transcription, ribosome biosynthesis, nutrients trafficking and nutrients related autophage. In this paper, major elements of TOR signal pathway were reviewed. The relationships of TOR pathway with chronological life span and Ras/cAMP/PKA pathway were also discussed.【期刊名称】《化学工业与工程》【年(卷),期】2011(028)005【总页数】5页(P68-72)【关键词】酿酒酵母;TOR信号通路;时序寿命;Ras/cAMP/PKA信号通路【作者】张爱利【作者单位】天津大学化工学院,天津300072【正文语种】中文【中图分类】Q291丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶TOR (Target Of Repamycin)最初是Heitman等 (1991)从酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae，S. cerevisiae)中分离到的[1]。
酵母菌的遗传调控和代谢途径研究进展
酵母菌的遗传调控和代谢途径研究进展酵母菌是一个重要的微生物模型。
它们是单细胞真核生物，在生命科学中发挥着重要的作用。
酵母菌广泛存在于自然界中，从发酵和面包制作等人类活动中，到水果和植物表面等生态环境中。
它们是典型的进食者，通常使用糖作为主要的碳源。
在酵母菌中，遗传调控和代谢途径是相互关联的。
酵母的基因组已经完全测序，因此，人们可以对其功能进行很好的研究和分析。
下面我们将介绍酵母菌的遗传调控和代谢途径研究的最新进展。
一、酵母菌的遗传调控酵母基因组中有许多蛋白质和调控序列，这些序列可以通过多种途径进行调控。
其中最重要的是转录调控，转录因子是重要的调控分子。
它们可以与DNA结合并转录DNA到RNA，从而影响蛋白质的表达。
酵母基因组中有400多个转录因子（约占基因组的5%），其中超过200个已经被鉴定出来，并且在多个条件下进行了全基因组表达研究。
一些研究表明，酵母菌的转录调控网络相对简单，大约有10%的基因与另一个或多个转录因子相关。
利用全基因组技术，人们已经确定了酵母菌中转录因子的互连网。
然而，具体的基因调控机理仍然不清楚。
未来的研究将包括进一步研究转录因子与其他分子（如催化酶和修饰酶）之间的相互作用，并确定它们对基因转录的影响方式和时间序列。
二、酵母菌的代谢途径酵母菌代谢途径的研究是酵母生物学的重要方面。
这些代谢途径包括糖、脂肪、氨基酸等的利用和产生。
酵母菌通常的代谢途径，与其他真核生物一样，包括糖酵解（将糖转化成能量和新合成分子），三羧酸循环（将葡萄糖完全氧化为CO2，同时产生能量），和呼吸链（最终将电子转移给氧生成水，从而产生能量）。
尽管基于酵母人工代谢学的诸多研究已经使我们对酵母菌的代谢途径有了深刻理解，但是人们仍需深入研究去探究酵母代谢途径的不同条件下的反应规律。
用于实现这一目标的关键工具是定量代谢组学。
该技术已经被广泛应用于研究生物体在各种生长条件下的代谢组变化。
结论酵母菌作为一种普遍存在于自然界中的单细胞真核生物，在生命科学的研究中扮演着重要的角色。
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酿酒酵母中的转录调控网络小组成员：生信1301唐聪，包健宇，杨帆摘要：我们已经确定转录因子如何在真核生物酿酒酵母中编码通过活细胞中的整个基因组基因。
正如代谢网络图描述，可以由一个细胞来完成代谢过程的潜在途径，这网络调节基因的相互作用描述了酵母细胞可以通过潜在途径调节全局基因表达程序。
我们使用此信息来确定网络结构，最简单的网络结构单元，并且展示了一个可使用基序的转录调控网络的结构组装的自动过程。
我们的研究结果表明，真核细胞的功能高度相关联的通过可调节其他转录元件的转录调控元件网络。
实验设计：第一步：标记并筛选用全基因组定位分析来研究酵母转录调控因子如何在基因组中绑定到启动子序列。
选定酵母蛋白质组数据库中的且反映出与DNA结合并拥有转录活性的所有141转录因子用以研究。
方法：酵母转录调节器通过引入了原癌基因的表位标签的编码序列被标记，然后进入每个调节器正常的基因组位点。
以这种方式构建106株酵母菌株，其表达可以在合适的生长条件进行检测。
对106株的进行Chip（染色体免疫共沉淀）。
通过ChiP程序富集的启动子区通过与含有全基因组组酵母启动子区域的芯片杂交被鉴定。
为什么只有106株呢？•通过聚合酶链反应和免疫印迹分析证实标记的适当插入和标记蛋白的表达。
但标记的导入可能会影响某些转录调节的功能。
在141转录因子其中有17个，尽管尝试标记每个调节器三次，也无法获得可行的标记细胞。
在酵母细胞在培养基中生长时，在可检测水平上检测，不是所有的转录调节器都按预期可检测出表达，通过免疫印迹分析表明，124株标记的调节蛋白只有106株可检测出。
第二步：全基因组位置分析实验•将106株被标记的酵母菌株每个在三个独立（酵母提取物，蛋白胨，葡萄糖）的全培养基上培养。
•全基因组的位置数据进行质量控制的过滤和规范，以及用免疫沉淀比例增长来控制的DNA测定每个矩阵点。
我们通过错误模型计算来自每个矩阵的每个点的P值。
•每个实验中的三个样品的数据通过一个加权平均法结合得到最终P值。
为什么实验选定P阈值=0.001？P值的阈值的影响。
所有调节启动子区相互作用的总和与P值的取值相干。
P值越小，显示相互作用的调节启动子区总和越少。
为了接下来的结果分析处于较高置信度区间内，实验选定阈值为0.001.分析表明，选该阈值，调节器与DNA相互作用的误报率会大大减少，仅为6％至10％。
估计，在细胞中的三分之一的调节器-DNA相互作用不在这P值=0.001的范围内。
调节器的密度•在P阈值为0.001下，可观察到调节器与启动区存在将近4000的相互作用。
启动子区内的6270个酵母基因中有2343个（37%）被实验106个转录调节器约束。
许多酵母启动子是由多个转录调节器约束。
实际位置数据（红色圆圈）相同数据下，P的阈值随机时，调节器与基因间区（白色圆圈）结论：调节器与启动子区的相互作用并不是随机的，而是存在一定的联系。
多于三分之一的启动子区域被两个或更多的调节器约束。
表明，酵母基因也经常通过调节器组合调节。
相对于从随机化数据的预期分布，不成比例的大量启动子区是由四个或更多的调节器的约束。
原因在于，P阈值选择的严格控制，将导致调节器密度的值变低。
不同的启动子区域被调节器约束的数量范围从0到181，平均每调节器约束38启动子区域。
调节器Abf1约束181个启动子区域。
网络图案（Network motifs）：最简单常用的转录调控网络体系结构，或网络图案，提供直观的解释，如正面和负面反馈循环。
我们所用的全基因组的位置数据，以确定网络图案：自动调节，多元循环，前馈循环，单输入，多输入和调节器链。
一个自动调节基序由一个稳压器结合的启动子区域及其自己的基因。
我们确定了10个自动调节图案与106全基因组位置数据监管者（P值阈值=0.001），这表明ENCOD-ING调节酵母基因的大约10％被调节。
这个百分比基本上不改变P值阈值。
与此相反，研究大肠杆菌的基因调控网络表明大多数（52％至74％）的原核编码转录调节基因被调节。
自动调节被认为是提供了多种选择生长优势，包括减少响应时间对环境刺激，降低监管成本的生物合成，和增加的基因表达的稳定性。
例如，在于配合信息素的浓度。
信息素响应转录STE12迅速增加，因为STE12结合并转录其自己的基因。
随之增加STE12蛋白导致的其它的结合所需的基因。
多组分环图案涉及两个或多个因素。
我们观察到3个在位置的多组分环基序对于监管106（P值阈值数据=0.001）。
闭环结构提供了反馈控制能力和提供潜在生产双稳系统，可以两种替代状态之间进行切换。
该多组分循环尚未确定在细菌基因网络。
原则上，一个前馈回路可提供一些功能。
前馈回路可充当一个开关被设计为敏感于持续而不是短暂的输入。
前馈回路具有提供的电位一个过程的暂时控制，因为表达最终的目标基因的可能依赖于足够的积累主服务器和辅助监管的水平。
前馈回路可提供一个多步高敏电位，作为形式在的水平或活性的小变化主调节器在循环的顶部可能在最终目标被放大因共同作用的基因主调节器和第二调节器，其是主调节器的控制之下。
单输入基序包含一个单一的调节器一组特定基因的结合条件。
单输入图案是潜在的用于协调生物的离散单元功能，如一组基因生物合成装置的亚基编码代谢途径的酶。
对于亮氨酸生物合成的几个基因通路是由LEU3控制转录调控因子进行转录调节。
多输入基序由一组调节器组成一组基因的结合。
我们发现了295个组合的2个或更多可能与一组共同的启动区。
这个发现提供了潜在的用于协调基因表达在各种各样的生长条件。
例如，每一个监管部门一组基因可以负责调节这些基因在响应于一个独特的输入。
以这种方式，两种不同的调节器响应到两个不同的输入将允许坐标组基因的表达这两种不同的条件下进行。
上述的调节基序对基因调控机制的模式可以预测实验数据。
一个监管的主题引起我们注意的是核糖体蛋白基因;核糖体是重要的蛋白质生物合成器，但转录对核糖体蛋白基因的调控不是很好的理解。
FHL1，蛋白质的功能以前不知道，形成一个单一的基本组成的输入调节基序所有核糖体蛋白基因，这里没有其他监管机构展现出这种行为。
如果没有其他监管机构能够代替它，这预示着损失FHL1功能应该对核糖体的生物合成有严重影响，事实上，许多核糖体蛋白基因也是组成一种多输入主题涉及的人和其他监管机构的部分，这表明这些基因的表达可能是多个监管机构在不同的协调下生长条件。
这种模式和其他建议的监管图案可以与未来的实验讨论酵母调控网络中网络图的实例。
监管机构由蓝色圆圈表示;基因启动子由红色矩形表示。
一个调节器结合于启动子用实箭头表示。
监管机构编码基因被链接到各自的监管机构用虚线箭头表示。
例如，在自动调节图中，该STE12蛋白结合至STE12基因，该基因被转录和翻译成STE12蛋白质。
这些网络图被揭露通过各种算法搜索数据绑定。
自动调节 多组分环前馈环单输入图 多输入图调节链装配成图案网络结构•假定调控网络图案形成可以被组合成更大的网络结构积木。
算法被开发一起探索所有的全基因组的位置数据与来自超过500个表达实验的表达数据，以确定是既协同结合，协调表达的基因组。
简言之，该算法首先定义一组基因，G，即由一组调节，S的结合。
模型为酵母细胞周期转录调控网络。
对于酵母细胞周期的转录调控网络从绑定和表达数据（见正文）的组合而得。
酵母细胞形态是在细胞周期的不同阶段示出。
每个蓝色方块代表一组由一组共同的监管约束，共表达在整个细胞周期的基因。
每一个蓝盒子内的文本列出了常见的集绑定到一组由框表示基因的调节。
各框根据由框表示的基因峰表达水平的时间定位在细胞周期。
调节器，由椭圆表示的，被连接到套基因它们由实线调节。
与每个调节器相关联的电弧有效地限定活动的调节器的期间。
虚线表示，在框中基因编码的外圈发现了一个调节器。
•由此产生的网络模型的三个特征是显着的。
首先，计算方法正确分配的所有调节细胞周期，在那里他们被示出在以前的研究发挥作用的阶段。
第二，有牵连细胞周期调控，但其功能的两个监管机构不明确，可以在网络中直接绑定数据的基础上进行分配。
第三，最重要的是，调节体系结构的重建是自动和所需的细胞周期中控制转录的调节器的先验知识。
这种方法应该代表建设等调控网络的一般方法。
细胞过程的协调•转录调节往往会编码其他转录调节基因。
•细胞周期调节结合到其他细胞周期调控，而这种现象也很明显落入代谢和环境响应的类别的转录调节中。
•每个类别内的多个转录调节能够结合到编码负责其他细胞过程的控制调节基因。
转录调节结合编码其它转录调节的基因网络。
这是在丰富培养基进行定位分析全部106转录调节显示在一个圆圈，并分成功能类别的它们的靶基因的主要功能的基础上，由色键所示。
带箭头的线条勾勒出结合的调节器（P值阈值=0.001）编码另一个调节基因。
带箭头圆圈描绘了调节器的其自身基因的启动子区结合。
监管网络信息的意义本研究确定的网络主题，对酵母提供具体的监管能力，揭示了这个真核生物发展中被选中的监管战略。
通过自动化的方法这些主题可被用作构建块，结合全基因组的位置和表达数据在没有调节功能的先验知识下来构造大网络结构。
转录调节控制其它转录调节网络是高度连接，这表明对细胞功能如细胞周期和发展的网络子结构本身在转录水平协调。
•有可能设想映射控制在相当大的深度的基因表达方案在酵母和其它活细胞的调控网络。
在酵母转录调控网络的更完整的理解下将需要各种生长条件和模型实验测试，从调节器结合，基因表达的计算分析和其他信息出现下调节结合位点的知识。
•此处所描述的方法也可用于在高等真核生物中发现的转录调控网络。
这些网络的知识将有助于理解人类的健康和设计，以消除疾病的新策略非常重要。
感谢聆听 (。
・・)ノ。