家兔呼吸运动的调节解读
生理学高分实验报告家兔呼吸运动的调节
肺牵张感受器位于肺泡壁和支气管 平滑肌中，可感受肺部的扩张和缩 小。
呼吸肌感受器位于呼吸肌中，可感 受呼吸肌的收缩和舒张。
中枢和外周感受器的相互作用
中枢和外周感受器之间存在复杂的相 互作用，共同维持呼吸运动的稳定性 和适应性。
02
给实验组家兔分别注射不同浓度的呼吸兴奋剂和呼 吸抑制剂。
03
观察并记录注射药物后家兔呼吸运动的变化情况， 包括呼吸频率、呼吸深度的改变。
实验步骤与操作
• 在药物作用高峰期，再次测定家兔的血气指标，以评估药物对呼吸功能的影响。
实验步骤与操作
4. 数据分析与统计
对实验数据进行整理和分析，比较对照组和实验组家兔在呼吸运动参数和 血气指标上的差异。
体液调节与神经调节的相互作用
协同作用
在某些情况下，体液调节和神经调节可协同作用，共同调节呼吸运动。例如，当机体处 于缺氧状态时，外周化学感受器和中枢化学感受器同时受到刺激，引起呼吸加深加快。
拮抗作用
在某些情况下，体液调节和神经调节可相互拮抗，共同维持呼吸运动的平衡。例如，当 机体处于过度通气状态时，动脉血氧分压升高可抑制外周化学感受器的活动，而中枢化 学感受器则继续受到刺激，引起呼吸减慢变浅。这种拮抗作用有助于防止过度通气对机
证了呼吸运动的调节机制。
04
本实验为深入研究呼吸运动的调节机制提供了有价 值的参考数据，有助于进一步揭示呼吸生理学的奥
秘。
对未来研究的展望和建议
0标1题
进••一文文步研字字究内内不容容同物种 之•间文呼吸字运内动容调节机 制•的文异同字，内以容更全面
地了解呼吸生理学的 普遍规律。
实验十家兔呼吸运动的调节解读
实验十家兔呼吸运动的调节2005级生物科学（1）班赵银锁（40508010）一、实验目的1.学习气管插管的方法；2.学习记录呼吸运动的方法和膈肌放电的引导方法；3.观察观察并分析肺牵张反射以及影响呼吸运动各种因素。
二、实验动物与器材1.实验动物：家兔；2.实验器材：兔体手术台、常用手术器械、动物呼吸传感器（张力传感器）、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水。
三、实验步骤1. 麻醉→背位固定→剪去颈部与剑突腹面的被毛→切开颈部皮肤→分离气管→分离双侧迷走神经，穿线备用→插入气管插管。
2. 剑突软骨分离术切开胸骨下端剑突部位的皮肤，并沿腹白线再切开长约2cm的切口。
细心分离剑突表面的组织，并暴露剑突软骨，提起剑突，可见剑突随膈肌的收缩而自由运动。
3. 将系有棉线的金属钩钩于剑突中间部位，线的另一端系于张力传感器的应变梁上。
4. 开启计算机采集系统，“呼吸-同步记录”，调节记录系统，使呼吸曲线清楚地显示在显示器上。
5. 剪掉腹部的被毛，切开腹部皮肤，从腹白线切开腹部肌肉，用针形记录电极插入膈肌，6 观察记录膈肌放电（1）记录正常的呼吸运动、膈肌放电，注意分清呼气和吸气运动与曲线的方向。
（2）增加无效腔对呼吸运动的影响将长约0.5m、内径1cm的橡皮管连于气管插管的一个侧管上，用止血钳夹闭另一侧管，使无效腔增加，观察并记录呼吸运动的改变，一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除橡皮管，待呼吸恢复正常。
（3）增加气道阻力对呼吸运动的影响待呼吸运动恢复正常后，将气管插管的两个侧管同时夹闭数秒钟，观察呼吸变化。
方法与步骤观察项目(4)肺牵张反射在气管插管的一个侧管上，连通一个20ml注射器，并吸入20ml空气。
待呼吸运动平稳后，在吸气末用相当正常呼吸时三个呼吸节律的时间，徐徐向肺内注入20ml 空气，同时夹闭气管插管的另一侧管。
注意观察呼吸节律的变化及呼吸运动的状态。
呼吸兔子调节实验报告
一、实验目的1. 了解呼吸兔子调节的基本原理和方法。
2. 观察和分析呼吸兔子在不同生理状态下的呼吸运动调节。
3. 掌握实验操作技能，提高实验操作能力。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
呼吸运动调节机制包括呼吸中枢、肺牵张反射以及外周化学感受器的反射性调节。
本实验通过观察家兔在不同生理状态下的呼吸运动，分析呼吸兔子调节的机制。
三、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管3. 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水四、实验方法1. 家兔麻醉：使用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉，待家兔麻醉成功后，背位固定于兔体手术台上。
2. 分离气管和迷走神经：切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管，分离出双侧迷走神经，穿线备用。
3. 连接实验仪器：将张力传感器、引导电极和计算机采集系统连接好，用于记录呼吸运动。
4. 记录正常呼吸曲线：观察家兔在正常生理状态下的呼吸运动，记录呼吸频率、节律和幅度。
5. 改变呼吸运动调节因素：a. 增加无效腔：将气管插管适当延长，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。
b. 切断迷走神经：切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
c. 改变血液中CO2分压：通过注射生理盐水或二氧化碳，改变血液中CO2分压，观察呼吸运动的变化。
6. 记录和分析实验结果。
五、实验结果1. 正常呼吸曲线：家兔在正常生理状态下的呼吸运动呈现规律性，呼吸频率、节律和幅度稳定。
2. 增加无效腔：增加无效腔后，家兔的呼吸频率和呼吸深度增加，呼吸张力增强，呼吸阻力增大。
3. 切断迷走神经：切断双侧迷走神经后，家兔呈现慢而深的呼吸运动，呼吸频率降低，呼吸深度增加。
4. 改变血液中CO2分压：降低血液中CO2分压，家兔的呼吸频率和呼吸深度降低；提高血液中CO2分压，家兔的呼吸频率和呼吸深度增加。
六、实验分析1. 增加无效腔：增加无效腔导致呼吸阻力增大，使家兔通过增加呼吸频率和呼吸深度来满足身体对氧气的需求。
家兔呼吸运动的调节实验报告
一、实验目的1. 观察家兔呼吸运动的生理变化，了解呼吸运动的调节机制。
2. 分析血液中化学因素（PCO2、PO2、[H]）对家兔呼吸频率、节律、通气量的影响及调节机制。
3. 探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
呼吸中枢分布于大脑皮层、间脑、桥脑、延髓、脊髓等部位，各级部位相互配合，共同完成呼吸节律性运动。
呼吸运动受体内、外各种因素影响，如血液中CO2分压、PO2、[H]等化学因素，以及迷走神经、肺牵张反射等神经调节机制。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水3. 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水四、实验方法与步骤1. 麻醉与固定：将家兔置于兔体手术台上，用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。
待家兔麻醉后，将其背位固定在手术台上。
2. 气管插管：在颈部切开皮肤，分离气管，插入气管插管，连接呼吸传感器。
3. 分离迷走神经：在颈部分离双侧迷走神经，穿线备用。
4. 记录呼吸运动：启动计算机采集系统，记录家兔呼吸频率、节律、通气量。
5. 观察血液中化学因素对呼吸运动的影响：a. 向气管插管内注入一定量的CO2，观察呼吸运动的变化；b. 向气管插管内注入一定量的生理盐水，观察呼吸运动的变化；c. 向气管插管内注入一定量的[H]，观察呼吸运动的变化。
6. 观察迷走神经对呼吸运动的影响：a. 切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化；b. 重新连接双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
五、实验结果与分析1. 观察到在注入CO2后，家兔呼吸频率、节律、通气量均增加，表明CO2对呼吸运动具有促进作用。
2. 观察到在注入生理盐水后，家兔呼吸运动无明显变化，表明生理盐水对呼吸运动无明显影响。
3. 观察到在注入[H]后，家兔呼吸频率、节律、通气量均降低，表明[H]对呼吸运动具有抑制作用。
家兔呼吸运动的调节实验报告
家兔呼吸运动的调节实验报告本实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制，通过实验观察和数据分析，深入了解家兔呼吸运动的调节规律，为相关生理学研究提供理论依据和实验数据支持。
实验材料与方法。
1. 实验材料，健康的家兔若干只，呼吸频率计、呼吸深度计、心率监测仪等实验设备。
2. 实验方法，将家兔置于实验箱内，记录其正常呼吸状态下的呼吸频率和呼吸深度，并监测其心率。
接着通过不同方式的刺激（如运动、音响刺激等）观察家兔呼吸频率、呼吸深度和心率的变化情况。
实验结果。
1. 正常状态下，家兔的呼吸频率约为每分钟40-60次，呼吸深度约为每次10-15毫升，心率约为每分钟120-150次。
2. 运动刺激后，家兔的呼吸频率明显增加，呼吸深度也有所增加，心率也随之加快。
3. 音响刺激后，家兔的呼吸频率和呼吸深度均有所增加，但心率的变化不明显。
实验分析。
1. 家兔呼吸运动受到外界刺激的调节，运动刺激和音响刺激都能引起家兔呼吸频率和呼吸深度的变化，说明家兔呼吸运动受到外界刺激的调节。
2. 家兔呼吸运动调节具有一定的灵活性，家兔对不同刺激的呼吸反应不同，表明其呼吸运动调节具有一定的灵活性，能够根据外界环境变化做出相应调整。
实验结论。
家兔呼吸运动的调节受到外界刺激的影响，具有一定的灵活性，这为家兔在不同环境下适应生存提供了生理基础。
同时，本实验结果也为相关呼吸生理学研究提供了重要的实验数据支持。
结语。
通过本次实验，我们对家兔呼吸运动的调节机制有了更深入的了解，同时也为今后的相关研究提供了重要的实验基础。
希望本实验结果能够为相关领域的科研工作者提供参考，推动相关领域的研究进展。
家兔呼吸运动的调节实验原理
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家兔呼吸运动的调节实验原理
家兔呼吸运动的调节呀，就像是一个超级精密的小机器在运作呢。
咱们都知道呼吸对家兔来说那可是超级重要的事儿。
呼吸运动主要是靠呼吸肌的收缩和舒张来完成的，就像家兔身体里的小助手在一拉一推的。
呼吸运动的调节其实有很多因素在起作用哦。
比如说神经调节，这就像是指挥官在发号施令。
家兔的呼吸中枢在脑干呢，这个地方就像个司令部，它可以控制呼吸的节律、深度等。
当身体有一些信号传来，比如血液中的二氧化碳含量变化啦，这个司令部就会做出反应，让呼吸肌调整呼吸的状态。
还有化学因素的调节呢。
二氧化碳对家兔呼吸的调节可厉害了。
如果家兔身体里二氧化碳多了，就像是给呼吸中枢一个信号，告诉它要加快呼吸，把多余的二氧化碳排出去。
氧气也会有影响哦，如果氧气少了，家兔的呼吸也会有相应的改变，不过氧气对呼吸的刺激没有二氧化碳那么直接。
氢离子浓度的变化也会参与到呼吸运动的调节当中，它要是变了，就像一个小提示，让呼吸中枢知道要调整呼吸的状态啦。
另外呢，肺牵张反射也在呼吸运动调节里有份儿。
家兔的肺在扩张或者缩小的时候，会通过神经反射来调整呼吸运动。
就好比肺自己有个小感觉，它把这个感觉传给呼吸中枢，呼吸中枢再根据这个信息来决定呼吸是该快点还是慢点，是该深点还是浅点。
家兔呼吸运动的调节是一个多方面相互作用的结果，这些调节机制就像一个团队一样，共同保证家兔的呼吸能够正常进行，让家兔可以健康地生活在它的小世界里呢。
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兔子呼吸调节实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 观察兔子呼吸运动的基本规律，包括呼吸频率、节律和幅度。
2. 探讨影响兔子呼吸运动的各种因素，如无效腔、二氧化碳浓度、缺氧等。
3. 分析迷走神经在兔子呼吸运动调节中的作用。
4. 掌握气管插管术和神经血管分离术等基本操作。
二、实验原理呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。
在不同生理状态下，呼吸运动所发生的适应性变化有赖于神经系统的反射性调节，其中较为重要的有呼吸中枢、肺牵张反射以及外周化学感受器的反射性调节。
因此，体内外各种刺激，可以直接作用于中枢部位或通过不同的感受器反射性地影响呼吸运动。
三、实验材料与器材1. 实验动物：家兔2. 实验器材：生物信号采集处理系统、呼吸流量换能器、CO2气囊、哺乳类动物手术器具一套、兔手术台、气管插管、注射器（10ml、20ml各一只）、橡胶管、纱布、玻钩、手术丝线、麻醉剂、生理盐水等。
四、实验步骤1. 实验动物准备：选择健康成年家兔，称重后进行麻醉。
2. 麻醉与固定：按照2ml/kg取麻醉剂戊巴比妥钠，从兔耳缘静脉缓慢注入麻醉，然后将家兔固定在手术台上。
3. 颈部手术：颈部剪毛，于颈部正中切开皮肤，钝性分离肌肉组织，暴露并分离气管。
在3-4气管环之间切开气管，做一倒T形切口，气管插管后用手术丝线固定，两侧迷走神经穿线备用。
4. 连接仪器：将呼吸流量换能器连接在气管插管上，并连接生物信号采集处理系统。
5. 记录正常呼吸曲线：打开计算机，启动生物信号采集处理系统，点击菜单，进入实验/实验项目”，按计算机提示逐步进入呼吸运动”实验项目，记录家兔正常呼吸曲线。
6. 增加无效腔：通过改变气管插管长度，增加无效腔，观察呼吸曲线的变化。
7. 增加二氧化碳浓度：使用CO2气囊，向气管插管中注入一定浓度的二氧化碳，观察呼吸曲线的变化。
8. 轻度缺氧实验：使用低氧气体，向气管插管中注入一定浓度的氧气，观察呼吸曲线的变化。
9. 剪短迷走神经：剪断一侧迷走神经，观察呼吸曲线的变化。
家兔呼吸运动调节解读
家兔呼吸运动的调节实验目的：1.用气管插管描记呼吸流量间接反映家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的方法，研究吸入二氧化碳、静脉注射乳酸溶液、增大解剖无效腔以改变血液中二氧化碳浓度、氧气浓度、[H+]和气道阻力、切断颈部迷走神经、电刺激迷走神经中枢端对呼吸运动的影响并初步探讨其作用部位，并分析机制。
2.掌握气管插管术和神经血管分离术。
实验材料：对象：家兔；试剂：20g/L 乳酸溶液，氨基甲酸乙酯；仪器：RM6240生物信号采集系统，手术器械一套，兔手术台，T型气管插管，注射器，50cm长橡皮管一条，CO2气袋，丝线，铁架台，婴儿秤，呼吸换能器，电刺激连线。
实验方法：1.麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入，注意观察家兔的反应。
待麻醉后，将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头。
2．手术：剪去家兔颈部的被毛，沿颈部正中线作一长6～7cm的切口，用止血钳钝性分离皮下组织，暴露并游离气管，并于气管下穿线备用。
在气管两侧肌肉深面颈动脉鞘内分离迷走神经，并在其下穿线备用。
在甲状软骨下第4～5个气管软骨处作一“⊥”形切口。
将T型气管插管向肺的方向插入气管内，用预留备用线线结扎固定。
手术完毕后用纸巾擦拭手术伤口部位。
3．观察准备：用皮管连接气管插管和呼吸换能器。
打开呼吸换能器，启动计算机RM6240生物信号采集系统，点击“实验”菜单，选择“呼吸运动调节”，双击一通道，调节增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕中央，便于观察。
4．观察项目（1）记录正常呼吸曲线作为对照，辨认曲线上呼气、吸气的波形方向。
（2）在气管插管一个侧管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），观察和记录呼吸运动的变化。
（3）增加吸入气中CO2浓度：待呼吸曲线恢复正常，将装有CO2气袋的皮管口移近气管插管的侧管，打开皮管夹子，使吸入气中含有较多的CO2。
记录并观察吸入高浓度的CO2对呼吸运动的影响。
家兔呼吸运动调节解读
家兔呼吸运动调节解读家兔呼吸运动的调节实验目的：1.用气管插管描记呼吸流量间接反映家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的方法，研究吸入二氧化碳、静脉注射乳酸溶液、增大解剖无效腔以改变血液中二氧化碳浓度、氧气浓度、[H+]和气道阻力、切断颈部迷走神经、电刺激迷走神经中枢端对呼吸运动的影响并初步探讨其作用部位，并分析机制。
2.掌握气管插管术和神经血管分离术。
实验材料：对象：家兔；试剂：20g/L 乳酸溶液，氨基甲酸乙酯；仪器：RM6240生物信号采集系统，手术器械一套，兔手术台，T 型气管插管，注射器，50cm长橡皮管一条，CO2气袋，丝线，铁架台，婴儿秤，呼吸换能器，电刺激连线。
实验方法：1.麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入，注意观察家兔的反应。
待麻醉后，将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头。
2．手术：剪去家兔颈部的被毛，沿颈部正中线作一长6～7cm的切口，用止血钳钝性分离皮下组织，暴露并游离气管，并于气管下穿线备用。
在气管两侧肌肉深面颈动脉鞘内分离迷走神经，并在其下穿线备用。
在甲状软骨下第4～5个气管软骨处作一“⊥”形切口。
将T 型气管插管向肺的方向插入气管内，用预留备用线线结扎固定。
手术完毕后用纸巾擦拭手术伤口部位。
3．观察准备：用皮管连接气管插管和呼吸换能器。
打开呼吸换能器，启动计算机RM6240生物信号采集系统，点击“实验”菜单，选择“呼吸运动调节”，双击一通道，调节增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕中央，便于观察。
4．观察项目（1）记录正常呼吸曲线作为对照，辨认曲线上呼气、吸气的波形方向。
（2）在气管插管一个侧管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），观察和记录呼吸运动的变化。
（3）增加吸入气中CO2浓度：待呼吸曲线恢复正常，将装有CO2气袋的皮管口移近气管插管的侧管，打开皮管夹子，使吸入气中含有较多的CO2。
记录并观察吸入高浓度的CO2对呼吸运动的影响。
生理学实验：家兔呼吸运动的调节
实验数据分析1、正常得家兔呼吸曲线图1、正常得家兔呼吸曲线曲线由图可知,本组选取得家兔自身呼吸频率较快，幅度加大,后续增强呼吸得因素作用不就是十分明显。
2、接空气气囊得家兔呼吸曲线图2、接空气气囊得家兔呼吸曲线曲线由图可知,改接空气气囊后,家兔呼吸幅度与频率均未出现太大变化。
３、接CO2气囊得家兔呼吸曲线图3、接CO２气囊得家兔呼吸曲线由图可知，接ＣＯ2气囊后，家兔呼吸曲线幅度增大,频率加快。
这就是因为CO２就是调节呼吸运动最重要得生理性因素，不但对呼吸有很强得刺激作用，而且对维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动就是必须得。
当呼入气体中CO2浓度升高，血液中CO2浓度随之升高，CO2透过血脑屏障使脑脊液得CO2浓度也升高。
CO2与水反应生成H2CO3,随后水解成ＨＣO３-与H+,由H+刺激延髓化学感受器，间接作用于CO2呼吸中枢,通过一系列调控使得呼吸作用加强。
此外,当CＯ2浓度增高时,还刺激主动脉体与颈动脉体得外周化学感受器，反射性地使呼吸加深加快。
4、接N2气囊得家兔呼吸曲线图４、接N2气囊得家兔呼吸曲线由图可知，接Ｎ2气囊后,家兔呼吸曲线幅度略有增大。
这就是因为吸入纯N 2时，因吸入气体中缺乏O2,肺泡气Ｏ2浓度下降,导致动脉血中O2浓度下降;而CO２浓度却基本不变（CO2扩散速度较快)。
随着动脉血中Ｏ２浓度下降,通过刺激主动脉体与颈动脉体外周化学感受器延髓得呼吸中枢兴奋,隔肌与肋间外肌活动加强,反射性引起呼吸运动增加。
5.增长解剖无效腔得家兔呼吸曲线图５、增长解剖无效腔得家兔呼吸曲线由图可知,增长解剖无效腔后,家兔呼吸幅度略有下降,而呼吸频率则稍稍上升，这就是因为实验中通过插管得方式增大无效腔，也就就是减小了进入肺泡得潮气量，即每次得有效气体更新变小。
结果促使O2分压下降,ＣO２分压上升,使其反射性得调节使呼吸加深加快。
所以膈肌放电得变化幅度加大,频率有微量增大。
反映到膈肌得收缩曲线,由于收缩频率得增大,为了维持正常得肺部通气量，所以收缩强度减弱。
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实验十家兔呼吸运动的调节
一、实验目的
1. 学习测定兔呼吸运动的方法。
2. 学习记录膈肌放电的方法。
3. 观察并分析肺牵张反射以及影响呼吸运动的各种因素。
二、实验动物与器材
动物：家兔。
仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管。
试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水。
三、方法与步骤
1. 麻醉→背位固定→剪去颈部与剑突腹面的被毛→切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管→分离出双侧迷走神经，穿线备用。
2. 剑突软骨分离术
切开胸骨下端剑突部位的皮肤，并沿腹白线再切开长约2cm的切口。
细心分离剑突表面的组织，并暴露剑突软骨与骨柄。
提起剑突，可见剑突随膈肌的收缩而自由运动。
3. 将系有剑突的金属钩钩于剑突中间部位，线的另一端系于张力传感器的应变梁上。
4. 开启计算机采集系统，接通张力传感器的输入通道，调节记录系统，使呼吸曲线清楚地显示在显示器上。
5. 记录膈肌放电.
6、观察项目
1）记录正常的呼吸运动、膈肌放电曲线，注意分清呼气和吸气运动与曲线的方向。
（2）增加无效腔对呼吸运动的影响
将长约0.5m、内径1cm的橡皮管连于气管插管的一个侧管上，用止血钳夹闭另一侧管，使无效腔增加，观察并记录呼吸运动的改变，一旦出现明显变化，
则立即打开止血钳，去除橡皮管，待呼吸恢复正常。
（3）增加气道阻力对呼吸运动的影响：将气管插管的两个侧管同时夹闭数秒，观察呼吸变化。
(4)肺牵张反射
在气管插管的一个侧管上，连通一个20ml注射器，并吸入20ml空气。
待呼吸运动平稳后，在吸气末用相当正常呼吸时三个呼吸节律的时间，徐徐向肺内注入20ml空气，同时夹闭气管插管的另一侧管。
注意观察呼吸节律的变化及呼吸运动的状态。
实验后立即打开夹闭的侧管，待呼吸恢复正常。
同法，与呼气末用注射器抽取肺内气体，观察呼吸的状态有何变化。
（5）待呼吸运动恢复正常后，同时结扎颈部双侧迷走神经，观察并记录呼吸运动的变化。
（6）剪断双侧迷走神经，分别刺激迷走神经中枢端与外周端，观察并记录呼吸运动。
四、注意事项
1.分离剑突表面的组织时勿伤及胸腔。
2.肺牵张反射时注意，注气与抽气时间仅限于三个呼吸节律的时间，然后立即打开夹闭的侧管。
3.结扎双侧迷走神经时，要二人同时操作，第一结一定要紧、狠，务必阻断神经冲动的传导。
4.打标记。
五、实验结果及分析
1、家兔正常的呼吸运动和膈肌放电
中枢的传出神经传出冲动的节律与频率，支配膈肌的收缩和舒张活动，从而，引起胸廓的扩大和缩小，为肺通气提供了原动力。
剑突的运动节律和方向与膈肌的一致，通过剑突与张力传感器的应变梁连接，即可记录到家兔的呼吸运动。
如图10-1，在正常情况下，随着膈肌放电频率增大，肺进行吸气运动；而随着膈肌放电频率不断减小，肺进行呼气运动。
这是因为：膈肌放电频率达到一定程度，引起膈肌收缩，使胸廓扩大，从而肺进行吸气运动；随着中枢的传出神经传出冲动频率降低，膈肌放电频率也减小，膈肌舒张，使胸廓缩小，从而肺进行呼气运动。
2、增加无效腔对呼吸运动的影响
如图10-2，增加无效腔后，与正常情况相比，膈肌放电和呼吸运动的频率和幅度都增大了。
这是因为：在双侧迷走神经保持完整时，增加无效腔后，肺内空气的更新率下降，促使O2分压下降，CO2 分压上升。
O2对呼吸的影响是通过外周化学感受器实现的；而CO2 对呼吸的影响主要通过中枢化学感受器对呼吸运动起调节作用。
由于两者的影响同时刺激中枢化学感受器和外周化学感受器，使其反射性的调节使呼吸加深加快，肺通气量和肺泡通气量增加。
3、增加气道阻力对呼吸运动的影响
如图10-3，增加气道阻力后，与正常情况相比，膈肌放电和呼吸运动的频率和幅度都增大。
这是因为：增加气道阻力导致家兔体内的O2 含量降低，CO2含量升高，O2对呼吸的影响是通过外周化学感受器实现的；而CO2 对呼吸的影响主要通过中枢化学感受器对呼吸运动起调节作用。
由于两者的影响同时刺激中枢化学感受器和外周化学感受器，使其反射性的调节使呼吸加深加快，肺通气量和肺泡通气量增加。
4、肺牵张反射
进行肺牵张反射实验处理后，如图10-4所示，在吸气末，向肺内注入20ml 空气后，呼气运动的时程变长，呼气加强，吸气被抑制；如图10-5所示，在呼气末，抽取肺内气体，吸气运动的时程变长，呼气被抑制，吸气加强。
这是因为：由肺扩张或缩小而反射地引起吸气抑制或加强效应。
包括两部分，最常见为肺充气时引起吸气抑制效应，称肺充气反射；其次，为肺放气时所引起的吸气效应，也称肺放气反射，此反射当用力呼气才发生。
以表10-1，进行概括总结肺牵张反射的原理。
表10-1 肺牵张反射（黑-伯二氏反射）总结表
5、结扎颈部双侧迷走神经对呼吸运动的影响
如图10-6，结扎颈部双侧迷走神经后，与正常情况相比，膈肌放电和吸气运动的幅度增大、频率变慢。
这是因为：肺扩张反射对呼气抑制所致。
肺扩张反射的感受器位于气管到支气管的平滑肌内，传入神经为迷走神经。
吸气时，肺扩张牵拉呼吸道，兴奋肺牵张感受器，冲动沿迷走神经的传入纤维到达延髓，在延髓内通过一定的神经联系使吸气切断机制兴奋，切断吸气，转入呼气，使呼吸保持一定深度和频率。
当结扎双侧迷走神经后，使家兔吸气不能及时转入呼气，出现吸气延长和加深，变为深而慢的呼吸。
6、刺激迷走神经中枢端与外周端对呼吸运动的影响
如图10-7和10-8所示，剪断迷走神经后，与正常情况相比，膈肌放电和吸气运动的幅度增大、频率变慢。
其原理与“5、结扎颈部双侧迷走神经对呼吸运动的影响”的原理是一致的。
刺激迷走神经的中枢端，比剪断迷走神经时，膈肌放电和吸气运动的幅度变得更大、频率变得更慢，这是因为：迷走神经属于传入神经，刺激其时，使更多的冲动沿迷走神经的传入纤维到达延髓，在延髓内通过一定的神经联系使吸气切断机制更加兴奋，延长切断吸气和转入呼气的时间，使呼吸深度加深、频率变小；而刺激迷走神经的外周端后，与剪断迷走神经时，膈肌放电和吸气运动的幅度、频率变化不大，这主要是因为迷走神经是传入神经，刺激其外周端，不能引起神经冲动的传入中枢，从而也无法使膈肌和肺呼吸运动有进一步的反应。