小篮子法测呼吸
《小篮子法测呼吸》课件
持续观察并记录实验材料的呼 吸情况，直到实验结束。
注意事项
在实验过程中，要确 保实验材料处于安静 状态，避免外界干扰 。
在记录实验数据时， 要认真观察并准确记 录，避免主观误差。
确保计时器的准确性 ，以避免实验误差。
03
小篮子法的应用场景
临床医学
诊断呼吸系统疾病
通过小篮子法测量呼吸频率、呼 吸深度等指标，有助于诊断哮喘 、慢性阻塞性肺病等呼吸系统疾
比较分析
学生可以使用小篮子法测量不同个体 或不同条件下的呼吸参数，进行比较 分析，培养科研思维和数据分析能力 。
学生可以在实验中实际操作小篮子法 ，测量自己的呼吸参数，提高实验技 能和实践能力。
04
小篮子法的优缺点分析
优点
操作简便
适用于多种生物
小篮子法是一种简单易行的呼吸测量方法 ，不需要复杂的设备和技能要求，方便在 各种环境下进行测量。
小篮子法不仅适用于人类，还可以用于测 量其他动物和昆虫的呼吸率，具有较广的 应用范围。
实时监测
低成本
小篮子法能够实时监测生物的呼吸情况， 有助于及时发现和解决潜在的健康问题。
小篮子法所需材料简单，成本较低，适合 在资源有限的环境中使用。
缺点
精度不高
由于小篮子法的测量原理限制，其测量精度相对较低，可能无法准确 反映生物呼吸的细微变化。
受环境因素影响较大
环境中的温度、湿度等变化可能会影响小篮子法的测量结果，导致数 据不稳定。
个体差异影响
不同生物个体之间的生理差异可能会影响小篮子法的测量结果，使得 数据可比性降低。
限制生物活动
使用小篮子法测量呼吸时，需要将生物放入篮子中，这可能会对生物 的活动和行为产生一定的影响，导致测量结果出现偏差。
实验八 植物呼吸强度的测定 (小篮子法)
• 四、实验步骤 • 1、取500 ml广口瓶一个，装配一只三孔橡皮塞，一孔 插入盛碱石灰的干燥棒，以吸收空气中的CO2,保证进入 呼吸瓶中的空气无CO2,一孔插入温度计，一孔用橡皮塞 塞住以备滴定用。 • 2、称取萌发的小麦种子15g,装于小篮子内，将小篮子挂 在广口瓶的塞子下，同时在瓶内加入25 ml 0.05M Ba(OH)2溶液，立即塞紧瓶塞并计时，每10分钟轻轻摇 动广口瓶，注意不要让溶液沾到小篮子上。 • 3、1小时后，小心取下瓶塞，迅速取下小篮子，加入2 滴指示剂，重新塞紧瓶塞，拔出小橡皮塞，开始滴定。 溶液由蓝绿色变为无色即为滴定终点，记录所用草酸体 积V1 • 4、另取沸水杀死的种子做同样的空白实验，记录所用 草酸体积V0 • 5、计算呼吸强度=（V0-V1）/种子鲜重（g）*时间（h）
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一、实验目的 掌握小篮子法测定呼吸强度的原理与方法 二、实验原理 利用Ba(OH)2 溶液吸收呼吸作用产生的CO2,实验结 束后用草酸溶液滴定残留的Ba(OH)2，从空白和样品 两者消耗的草酸之差，即可计算出呼吸作用释放的 CO2的量。 三、器材与试剂 仪器：广口瓶、温度计、酸式滴定管、干燥棒、尼 龙小篮子 试剂：0.05M Ba(OH)2，0.1%麝香草酚酞酒精溶液， 1/44M草酸溶液（每毫升草酸相当于1 mgCO2） 材料：萌发的水稻种子
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
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五、结果与讨论 •计算小麦种子萌发后的呼吸强度 •六、作业 六 •分析本实验的影响因素及注意事项
实验五_种子呼吸强度的测定
4）防止口中呼出的气体浸入瓶内；
5）把握红色消失第1点。
7. 思考题
本实验中有哪些因子影响呼吸速率？哪些步骤
容易出现误差？应怎样避免？
9.2
1%酚酞指示剂。
4. 实验步骤
1）取2个三角瓶（配橡皮塞），装置如图所示。用移液管分
别准确加入0.05mol/LBa(OH)2溶液20.00 ml，立即塞紧橡
皮塞。
2）分别称取萌发种子和沸水煮死种子各20.0g用纱布包扎好 将其制作成小篮子，将小篮子悬在瓶内，立即塞紧瓶塞， 并开始计时，每隔3-5 min轻轻摇动三角瓶，以利于对 CO2的吸收（？）。
在植物生理研究中常有测定必要。
学习呼吸强度的碱吸收测定方法； 了解环境因素（如温度）对呼吸强度的影响。
2. 实验原理
植物进行呼吸时放出CO2，计算一定的植物样品在单位时间 内放出CO2的数量，即为该样品的呼吸速率。 1）呼吸放出的CO2可用Ba(OH)2溶液吸收 Ba(OH)2 +CO2 →BaCO3↓+ H2O 2）实验结束后用已知浓度的草酸滴定剩余的Ba(OH)2 溶液
实验五 植物呼吸强度的测定 ------小篮子法
呼吸作用（respiration)：是指生活细胞内的有机物，在 一系列酶的参与下，逐步氧化分解成简单物质，并释放 能量的过程。呼吸作用是一切生物的共性，呼吸作用的 强弱及呼吸速率的大小是生命活动的重要指标之一。
呼吸速率(respiratory rate)：又称呼吸强度, 指单位时间
5. 结果与分析
表1 小篮子法测定水稻种子呼吸强度的数据记录表
处理 样品重 开始反应 (g) （温度） 时间 终止反应时 间 呼吸滴定草 酸用量(ml) 空白与呼吸草酸 用量差值(ml) 呼吸速率 (mgCO2·－ g 1 Fw·－1) h
【精品】实验6_小篮子法测定种子呼吸速率
【精品】实验6_小篮子法测定种子呼吸速率一、实验原理种子呼吸速率是指在单位时间内单位质量种子在暗处自然呼吸消耗氧气和排放二氧化碳的速度，可表示为单位质量每小时消耗的氧气量或排放的二氧化碳量。
种子呼吸速率的大小与种子的代谢活动密切相关，因此是反映种子生理特性的重要指标之一。
小篮子法是一种直接测定种子呼吸速率的方法。
该方法的基本原理是利用浸制的种子与外界通过小篮子内氧气和二氧化碳的交换来测定种子呼吸速率。
具体步骤如下：1. 取少量种子（小麦、玉米、大豆）淘洗干净，取重，然后用水浸湿并放到小篮子中；2. 组织好实验，先测定好氧气和二氧化碳的初始标准或参照值；3. 然后将小篮子放置在温度恒定的恒温箱中，显微镜根据实验所需的时间间隔观察板子上的氧气变化，并进行记录；4. 实验一段时间后暂停记录，将氧气电极和二氧化碳电缆拿出小篮子，观察检查，注意不要让电极污染；5. 继续测量，直到所需的时间段结束，然后将电极和电缆清洗干净，备用。
二、实验仪器和材料仪器：恒温箱、显微镜、小篮子、O2和CO2测量设备；材料：小麦、玉米、大豆种子；三、实验步骤四、实验注意事项1. 将小篮子放置到恒温箱中时，应严格控制温度，避免外界环境变化对实验结果的影响；2. 小泡菜等浸泡种子的盐度过高或时间过长，会导致种子呼吸速率降低；3. 实验前要检查氧气和二氧化碳的检测器设备，确保工作正常；4. 实验期间要避免随意打开恒温箱，以免影响实验结果。
五、实验结果分析将实验所得数据进行统计和分析，计算出种子呼吸速率，通过不同种子之间的比较、不同处理之间的比较等方式来研究种子呼吸特性。
分析实验数据时要考虑实验所选用的种子的不同特性，如对光、气、温度、湿度等的敏感性等。
六、实验思考题1. 种子呼吸速率会受到哪些因素的影响？2. 如何选取合适的种子作为实验对象？3. 小篮子法测定种子呼吸速率的优缺点有哪些？4. 种子呼吸速率的重要性是什么？答：1. 种子呼吸速率主要受光、气、温度、湿度等因素的影响；2. 实验选取种子时应考虑不同种子之间的生长环境和生长条件，如光照、温度、土壤类型等方面，以确保实验结果的相对准确性；3. 小篮子法测定种子呼吸速率的优点是简便易行，数据可比性强，适用于室内、室外等环境下的生物试验。
小篮子法测定植物呼吸速率实验中的两点说明
小篮子法测定植物呼吸速率实验中的两点说明实验名称：小篮子法测定植物呼吸速率实验一、实验原理与背景1.实验原理：植物呼吸是指植物通过氧化还原反应，将有机化合物分解释放出能量的过程。
呼吸速率是指单位时间内植物呼吸所消耗的氧气量。
2.背景知识：小篮子法是一种常用的测定植物呼吸速率的方法。
它利用小篮子在水中的漂浮和下沉变化，通过测定植物呼吸所消耗的氧气量来计算呼吸速率。
二、实验步骤与材料1.实验步骤：（1）将一盆植物浸入水中，直至水淹没植物。
（2）用绳子将一个小篮子系在板子上，将篮子放在水面上并固定好。
（3）将小篮子完全浸入水中，观察小篮子在水中的表现。
（4）记录下小篮子在水中漂浮和下沉的时间。
2.实验材料：（1）一盆植物（2）一块木板（3）一根绳子（4）一个小篮子（5）计时器三、实验原理与分析1.原理解释：植物通过呼吸过程消耗氧气，产生二氧化碳。
当小篮子放在水中时，植物的呼吸会将篮子下沉，因为植物呼吸消耗的氧气使水中气体分压降低，导致水分子进入小篮子，使其质量增加。
篮子下沉的速度与植物呼吸速率有关。
2.分析说明：小篮子法可以通过测量小篮子在水中漂浮和下沉所用的时间来计算植物呼吸速率。
浮时是篮子浮起到下沉的时间，下沉时间是篮子下沉到重新浮起的时间。
实验中记录的浮时和下沉时间与植物的呼吸速率成正比关系。
四、实验注意事项1.植物选择：应选择健康的植物，以确保实验结果的准确性。
2.浸水的程度：植物应浸入水中至少10分钟以上，保证其可以正常进行呼吸作用。
3.水质的选择：实验中应使用纯净的水，避免水中有杂质影响实验结果。
4.实验设计：应设计不同条件下的实验组和对照组，以便比较不同条件下植物的呼吸速率差异。
5.实验重现：每个实验步骤应重复三次以上，以获得可靠的实验结果。
五、实验结果及数据处理1.实验结果：根据实验中记录的小篮子在水中漂浮和下沉的时间，可以计算出植物的呼吸速率。
2.数据处理：根据实验记录的数据，可以使用以下公式来计算植物的呼吸速率：呼吸速率（单位：ml/h）= 水中小篮子的增重（单位：g）/浸水时间（单位：h）六、实验应用与意义1.实验应用：小篮子法是一种常用的用于测定植物呼吸速率的方法，可用于研究不同条件下植物的呼吸特性，如光强、温度、湿度等对植物呼吸速率的影响。
实验八呼吸速率的测定小篮子法教学内容
实验八呼吸速率的测定小篮子法教学内容
一、实验原理
呼吸速率是指单位时间内呼吸动作的次数。
通常以每分钟呼吸次数来表示。
测定呼吸速率是了解人体呼吸系统正常功能状态的方法之一。
小篮子法是一种简便、可靠、应用广泛的呼吸速率测定方法。
二、实验仪器和试剂
仪器：小篮子（或带有表面积计的走时器）
三、实验操作
1．将测定者请坐在舒适的椅子上，然后让他平静地呼吸2～3分钟，以适应新环境，不要在此期间采集数据。
2．让被试深呼吸2～3次，并记录最后一次呼吸后的开始时间。
3．将小篮子轻轻地放在被测者的胸口下巴上，在小篮子颈上内侧的刻度处置一刻内侧边缘的两点在同等高度上，即一刻间将过渡了两厘米左右的选择。
这样可以使小篮子得到最大限度的抬升和下沉。
4．记录30秒内小篮子上升和下降的次数，通过公式计算呼吸速率（F）值。
F = 记录次数× 2
5．取3次测定的平均值作为最终结果。
四、实验注意事项
1．被试应该平静坐着并不讲话，在呼吸开始时，开始计时器，并一直计时到充分测定。
2．小篮子必须轻轻地放在被测者的胸口下巴上，确保不会干扰被测者正常的呼吸动作。
3．测量过程中，注意尽可能减少被测者的移动和干扰，以减少呼吸速率的变化。
4．实验结束后，及时将实验器材清洗、归位。
五、实验报告
1．实验结果：填写呼吸速率实验数据表格。
2．实验分析：分析呼吸速率测定结果的变化，个体差异等相关因素。
植物生理学 小篮子法测定植物的呼吸速率
2. 称取萌发的豆芽2份各15g，一份装入小蓝中， 为实验组；另一份装入烧杯中，加水浸没，放 于微波炉中沸水煮死，再装于小蓝中，作为对 照组；分别将小蓝挂与广口瓶内；在瓶中准确 加入0.05mol/L 的Ba(OH)2溶液20ml，立即塞 紧橡皮塞，计时，每10分钟左右轻轻摇动广口 瓶，破坏溶液表面的碳酸钡薄膜，以利于二氧 化碳的吸收。
三实验步骤取500ml广口瓶一个瓶口瓶用打有三孔的橡皮塞塞紧一孔插一盛碱石灰的干燥管使呼吸过程中能进入无co的空气一孔插温度计另一孔直径约1cm供滴定用平时用一小橡皮塞塞紧瓶塞下面挂一铁丝纱小篮以便装植物样品整个装置即谓广口瓶呼吸测定装置
实验7 小篮子法测定植物的呼吸速率
一、原理
植物进行呼吸时放出CO2，计算一定的植 物样品在单位时间内放出CO2的数量，即为该 样品的呼吸速率。呼吸放出的CO2可用氢氧化 钡溶液吸收，实验结束后用已知浓度的草酸溶 液滴定剩余的碱液，从空白和样品二者消耗草 酸溶液之差即可计算出呼吸过程中释放的CO2 的量。
于蒸馏水中定容至1000ml，每ml相当于1mgCO2；
酚酞指示剂：1g酚酞溶于100ml 95％乙醇中，贮于滴瓶中。
三、实验步骤
1. 取500ml广口瓶一个，瓶口瓶用打有三孔的橡皮 塞塞紧，一孔插一盛碱石灰的干燥管，使呼吸过 程中能进入无CO2的空气，一孔插温度计，另一 孔直径约1cm，供滴定用，平时用一小橡皮塞塞 紧，瓶塞下面挂一铁丝纱小篮，以便装植物样品， 整个装置即谓“广口瓶呼吸测定装置”。每组两 套，一套做空（一）材料：萌发的豆芽 （二）仪器设备：1.呼吸测定装置；2.天平；3.钟表；4. 酸式及碱式滴定管；5.温度计 （三）试剂： 0.05mol/L 的Ba（OH）2：称取Ba（OH）2 8.6g溶于1000ml蒸馏
植物呼吸强度的测定(小篮子法).
植物呼吸强度的测定（小篮子法）一、实验目的：掌握小篮子法测定呼吸强度的方法及其原理。
二、实验原理：测定呼吸作用，一般测定呼吸过程消耗的O2量，或放出的CO2量。
本实验用小篮子法测定呼吸过程中释放的CO2。
植物进行呼吸时放出CO2，计算一定的植物样品在单位时间内放出CO2的数量，即为该样品的呼吸速率。
利用Ba(OH)2溶液吸收呼吸过程中释放的CO2，试验结束后，用草酸溶液滴定残留的Ba(OH)2，从空白和样品两者消耗草酸溶液之差，即可计算出呼吸过程中释放的CO2量。
三、仪器药品广口瓶酸式滴定管尼龙网制小篮0.05mol/L Ba(OH)2指示剂：0.1%麝香草酚酞酒精溶液1/44mol/L 草酸溶液四、操作步骤取500ml广口瓶一个, 瓶塞下面挂一网状小篮,用以盛实验材料。
称取萌发的小麦种子15g装于小篮内,将小篮挂在广口瓶内,同时加入0.05mol/LBa(OH)2溶液15ml于广口瓶内,立即塞紧瓶塞,防止漏气。
每十分钟左右,轻轻摇动广口瓶,破坏溶液表面BaCO3薄膜,以利对CO2的吸收。
1小时后,小心打开瓶塞,迅速取出小篮,加入2滴指示剂,立即重新塞紧瓶塞。
然后拔出小橡皮塞,将滴定管插入小孔中,用1/44mol/L草酸滴定,直到紫红色转变成无色为止。
记录滴定所耗用草酸溶液的ml数。
另取用沸水煮死的种子为材料,做同样测定,以此作为对照。
取500ml广口瓶一个, 瓶塞下面挂一网状小篮,用以盛实验材料。
称取萌发的小麦种子15g装于小篮内,将小篮挂在广口瓶内,同时加入0.05mol/LBa(OH)2溶液15ml于广口瓶内,立即塞紧瓶塞,防止漏气。
每十分钟左右,轻轻摇动广口瓶,破坏溶液表面BaCO3薄膜,以利对CO2的吸收。
1小时后,小心打开瓶塞,迅速取出小篮,加入2滴指示剂,立即重新塞紧瓶塞。
然后拔出小橡皮塞,将滴定管插入小孔中,用1/44mol/L草酸滴定,直到紫红色转变成无色为止。
记录滴定所耗用草酸溶液的ml数。
[新版]小篮子法测呼吸
2、准备植物材料：
取待测小麦或大麦种。
v 3、正式滴定： v 3.1 萌发的种子
倒出废液，用蒸馏水洗凈 广口瓶，重加20 ml Ba(OH)2 溶液于瓶内，将装有待测种 子的小篮迅速挂在小钩上， 塞紧瓶塞。 v 3.2 煮熟的种子
方法同上。
v 开始记录时间，30分钟后，小 心打开瓶塞，迅速取出小篮， 立即重新盖紧瓶塞，充分摇动 2分钟，使瓶内CO2的完全被 吸收，从滴定孔中滴入2滴酚 酞。其余操作如前，记下草酸
用量，即为样品滴定值。
v 六、计算呼吸速率
v
(空白滴定值-样品滴定值)× mg CO2
v 呼吸速率=
植物组织鲜重 ×时间
v 呼吸速率的单位一般可采用mg(CO2) ·g-1 FW ·h-1，
v mg CO2·ml-1草酸＝1
v 七、注意事项 v 操作时勿使口中呼出的气体进入瓶中。 v 测定期间轻轻地摇动广口瓶，破坏溶液表面的
BaCO3薄膜，以利CO2的吸收。 v 将滴定管轻轻插入橡皮塞中，摇动广口瓶时握住滴
定管，以免折断滴定管。
小篮子法测定呼吸速率的原理
v 在广口瓶中，放入一定量的Ba(OH)2溶液，用其吸收植物材料呼吸过程 中释放的CO2。然后用草酸溶液滴定剩余碱量，由空白和样品二者消耗 草酸溶液之差，计算出呼吸过程中释放的CO2量。
v 反应如下： v Ba(OH)2 + CO2 BaCO3＋H2O （1） v Ba(OH)2(剩余)+H2C2O4 BaC2O4＋2H2O（2）
五、实验步骤
1、空白滴定：
v 通过滴定孔向广口瓶内放入Ba(OH)2溶液20 ml， 加入2滴酚酞试剂。
v 塞紧小橡皮塞，摇动广口瓶几分钟，使瓶内 CO2 充分吸收。
植物呼吸强度的测定(小篮子法)
植物呼吸强度的测定(小篮子法)植物呼吸强度的测定可以通过小篮子法来实现。
小篮子法是一种比较简单的测定植物呼吸强度的方法，通常可以用于比较不同植物、不同生境以及不同时期植物的呼吸强度差异。
下面将详细介绍小篮子法的实验步骤。
实验材料：1. 植物样品：选择同种植物，在不同发育期采取新鲜嫩叶作为样品。
2. 小篮子：长9cm，宽8cm，深5cm。
3. 水杯和水：用于保持小篮子内的环境湿润。
4. 测量仪器：选用植物叶片呼吸仪以及原理一致的其他呼吸仪器。
实验步骤：1. 准备植物样品：选取同种植物，采取新鲜嫩叶作为样品，将叶片洗净并风干。
2. 准备小篮子：将小篮子浸泡在水中5-10分钟，让其充分吸收水分，然后再用干布擦干水份。
放入被测植物叶片。
3. 安装测量仪器：将小篮子放在植物呼吸仪或者其他选择的呼吸仪器中，如果是植物呼吸仪，则需要在呼吸仪的夹子上固定小篮子，保证小篮子内的植物样品与仪器接触良好。
将呼吸仪接通电源，按照仪器的说明书设置好实验参数。
4. 进行实验：实验前先将测量某一段时间内的呼吸强度（例如30分钟），记录下记录时间和样品编号等信息。
然后开始进行实验，将测量数据自动记录下来。
5. 数据分析：将实验数据导出，进行呼吸强度的计算，得到不同时间点上的呼吸强度信息。
实验注意事项：1. 植物样品必须是新鲜的，不能使用枯萎或者其他不健康的植株。
2. 小篮子必须充分湿润，否则会影响实验结果。
3. 实验室环境必须保持稳定，避免干扰测量结果。
4. 在进行实验前应该先进行校准，确保测量仪器准确可靠。
总结：小篮子法是一种比较简单的测定植物呼吸强度的实验方法，通过该方法可以比较不同植物、不同生境以及不同时期植物的呼吸强度差异。
在进行该实验的过程中要注意实验操作规范，以及保证测量数据的可靠性和精确性。
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小篮子法测呼吸【实验目的】1.掌握小篮子法测呼吸的原理及方法。
2.掌握了解植物呼吸速率测定在实际生产中的意义。
【实验原理】在密闭容器中，植物进行呼吸作用后有交换的气体成分为2O 或2CO ，可以选择测量其中一种的增加量或减少量来衡量植物体的呼吸作用。
小篮子法选取的是测量2CO 的增加量。
用2)a(OH B 将产生的2CO 吸收，用草酸滴定出剩余量，由2)a(OH B 减少量可定量测出2CO 的增加量，进而测定出植物的呼吸速率（以2CO 增加速率表示）。
实验所涉及的反应方程式如下：O H BaCO CO OH B 2322)(a +→+2)a(OH B (剩余）+422O C H →O H O BaC 242+植物呼吸速率可以如下公式表示：时间死种子产生量活种子产生量（呼吸速率⨯=FW CO )-)(mg 2【实验材料】植物材料：大麦种子，小麦种子试剂：2)a(OH B 溶液：0.05 mol/L ；422O C H 溶液：1/44 mol/L ；酚酞指示剂器材：广口瓶，三孔塞，温度计，漏斗（装有碱石灰），小篮子，酸式滴定管 量筒，滴管 【实验内容】 1.实验装置的组装取一只广口瓶，加一只三孔橡皮塞，一孔插入装有碱石灰的漏斗，漏斗口塞棉花，将压碎的碱石灰粉末覆盖于棉花上，能吸收进入瓶中的2CO ，另一小孔供滴定用，平时用一小橡皮塞塞紧；第三孔插入温度计，记录测定时的温度。
瓶盖下面装一小钩，以悬挂小筐，供装植物材料用。
2.实验材料准备称量两份大麦种子，两份小麦种子，分别记下质量。
其中一份大麦种子和一份小麦种子煮熟，备用。
3.呼吸速率的测定 （1）空白滴定：通过滴定孔向广口瓶内放2)a(OH B 溶液20 ml ，加入2滴酚酞试剂。
塞紧小橡皮塞，摇动广口瓶几分钟，使瓶内2CO 充分吸收。
待瓶内2CO 吸收后，拔出小橡皮塞，把酸式滴定管插入小孔中，用草酸滴定，至红色刚刚消失为止。
记下草酸溶液用量的毫升数，即为空白滴定值（0V ）。
（2）活种子测定：倒出废液，用蒸馏水洗凈广口瓶，重加20 ml 2)a(OH B 溶液与酚酞指示剂于瓶内，将装有待测种子的小篮迅速挂在小钩上，塞紧瓶塞。
开始计时，三十分钟后，迅速将小篮子取出，塞进瓶塞，充分摇动2分钟，使瓶内2CO 的完全被吸收按照（1）的滴定方法进行滴定，消耗草酸体积记为1V 。
（3）煮熟种子测定：按（2）的步骤，将活种子换成煮熟的种子进行测定。
消耗草酸体积记为2V .。
【实验结果】实验数据记录与计算：大麦 小麦 发芽种子1m 称量/g8.0480 8.0028 0V /ml38.9038.00mgV CO /)-4405.020()(m 020⨯⨯5.16.00T /℃17.0 22.0 1V /ml37.85 37.70 mgV CO /)-4405.020()(m 121⨯⨯6.15 6.3 1T /℃19.0 26.0 )()(2021CO m CO m -/ mg1.050.3每克鲜重对应2CO 值/mg0.13 0.037 煮熟种子2m 称量/g 8.0031 7.6470 0V /ml38.0038.90mgV CO /)-4405.020()(m 020⨯⨯6.0 5.10T /℃26.0 17.0 2V /ml35.20 37.50 mgV CO /)-4405.020()(m 222⨯⨯8.8 6.5 2T /℃22.019.0)()(2022CO m CO m -/mg2.8 1.4每克鲜重对应2CO 值/mg0.340.18灰色部分为煮熟种子的各项测量值与计算值，但实验误差过大，将煮熟种子的测量值略去，即若不考虑死种子对环境2CO 含量的影响，只用发芽种子与空白值进行计算，结果如下：大麦：呼吸速率=0.13/0.5=0.26（1-1-h gFW mg ⋅⋅) 小麦：呼吸速率=0.037/0.5=0.074(1-1-h gFW mg ⋅⋅)【实验讨论】1,本次实验由于器材的缺少且时间紧张，由两组同学合作完成实验，本组完成的是发芽的大麦种子和煮熟的小麦种子，另一组同学完成的是煮熟的大麦种子和发芽的小麦种子。
因此实验设计方面存在很多不足，导致实验结果出现较大误差，无法进行计算。
所存在的不足主要有以下几点：（1）两组所用的广口瓶不同，因此空白值测定不同（2）所称鲜重不同，因此测出的2CO 增加值不同，即使可以换成每克鲜重的增加值，但其结果必然会出现很大的误差。
（3）温度不同，实验时两组所测得的温度均处于较低值，呼吸速率较低，且两组之间温度值相差较大，导致两组种子的呼吸速率不同，在同样较低的情况下，误差很大，直接导致即使同一种材料，两组数据也没有可比性。
（4）实验所用的熟种子可能并未完全煮熟，导致其剩余的呼吸作用还较强。
温度较高，使得其呼吸作用反超发芽种子。
由以上几点，可以看出，本次实验所得数据没有可操作性。
2.实验改进：（1）若两组同学合作试验，最好应为每组做同一种子的呼吸，例如一组同学测量大麦的萌发种子和煮熟种子的2CO 释放值，另一组同学测量小麦种子的2CO 释放值。
（2）测量同一种植物种子的2CO 释放值时，应先测量萌发种子的2CO 释放值，再将同一份种子煮熟，冷却至温度与刚刚萌发种子的温度相同，吸干表面的水分，再按同样的方法，用同样的装置进行煮熟种子2CO 释放值的测量。
这样，虽然前后有一定的时间差，但是由于空白值的使用，种子的重量，温度均相同，因此可以认为是在相同外界环境条件下进行的测量，此时测量结果所得差距可认为均由种子自身决定，该种测量不用测量空白值，只需测量萌发种子和煮熟种子的2CO 释放值即可。
3.呼吸作用有两个主要生理功能，一是为代谢过程和生理活动提供能量，二是为生物大分子合成提供原料。
生长旺盛和生理活性高的部位如幼根、幼茎、幼叶、幼果等，呼吸作用所产生的能量和中间产物，大多数用来构成细胞生长的物质如蛋白质、核酸、纤维素、磷脂等，因而呼吸效率很高。
但在生长活动已停止的成熟组织或器官内，除一部分用于维持细胞的活性外，有相当部分能量以热能形式散失掉，因而呼吸效率低。
根据上述情况可把呼吸分为两类：一种是维持呼吸，用以维持细胞的活性。
另一种是生长呼吸，用于生物大分子的合成，离子吸收等。
维持呼吸是相对稳定的，每克干重植物约消耗15～20mg 葡萄糖，而生长呼吸则随生长发育状况而不同。
从植物的一生来看，种子萌发到苗期，主要是进行生长呼吸，呼吸效率高，随着营养体的生长，生长呼吸占总呼吸比例下降，而维持呼吸所占的比例增加。
株型高大的品种，维持呼吸所占的比例较高。
从以上理论来看，种子萌发时呼吸效率应较高，但本实验所得结果呼吸速率相对较低，最可能原因是由于温度过低影响其呼吸速率导致。
其次，瓶中积聚的2CO 和减少的2O 对呼吸作用的限制也是可能的原因。
4.影响植物体呼吸的主要因素：（1）不同组织器官：在生长发育旺盛的部分，如种子，幼茎，幼叶等，呼吸速率会很高，以满足旺盛的生长发育对能量的需求。
即一般生长呼吸速率要大于维持呼吸速率。
（2）温度：温度对呼吸的影响主要来自于温度对酶活性的影响，温度低，则酶活性较弱，温度过高，酶则钝化。
本实验由于在温度较低的情况下进行，因此种子的呼吸速率会相对较低，在低2CO 产出的情况下，只要很小的误差对2CO 释放值测定影响就会很大。
（3）含水量：干燥种子的呼吸作用与粮食贮藏有密切关系。
含水量很低的风干种子呼吸速率微弱。
一般油料种子含水量在8％～9％以下，淀粉种子含水量在12％～14％时，种子中原生质处于凝胶状态，呼吸酶活性低，呼吸极微弱，可以安全贮藏,此时的含水量称之为安全含水量。
当油料种子含水量达10％～11％，淀粉种子含水量达到15％～16％时，呼吸作用就显著增强。
如果含水量继续增加,则呼吸速率几乎成直线上升。
其原因是，种子含水量增高后，原生质由凝胶转变成溶胶，自由水含量升高，呼吸酶活性大大增强，呼吸也就增强。
淀粉种子安全含水量高于油料种子的原因，主要是淀粉种子中含淀粉等亲水物质多，其中存在的束缚水含量要高一些。
而油料种子中含疏水的油脂较多，存在的束缚水也较少。
本实验所用种子含水量均较高，理论上讲呼吸速率也应较大，造成实验结果偏小的主要原因还是来自于温度过低。
（4）2CO 含量：2CO 含量升高时，呼吸速率会减慢。
在密闭体系中，当2CO 浓度达到一定程度，会相对抑制呼吸作用。
在实际生活中，适当增加贮藏环境的2CO 浓度有利于降低其呼吸速率。
（5）2O 含量：氧气含量下降时，会抑制呼吸作用。
有研究表明，当2O 含量下降至20%以下时，呼吸速率会显著下降。
因此在实验过程中，由于密闭体系，与外界无气体交换，因此2O 含量在后期会下降至20%一下，导致呼吸作用受到抑制。
从以上两点看出，无论是2O 含量还是2CO 含量，密闭体系中的植物后期呼吸作用都会显著降低，因此所测得的呼吸速率只是一个平均速率，前期速率较快，而后期速率相对较慢。
在实际生活中，适当增加贮藏环境的2CO 浓度和降低2O 浓度有利于降低其呼吸速率。
（6）机械损伤：如果植物体遭受机械损伤，则其呼吸速率会显著增大。
因此在贮藏食物的过程中，要避免机械损伤，以减少呼吸作用。
5.研究植物呼吸在实际应用中的作用：种子萌发的主要条件是水分、空气和温度。
其中水分的充分吸收是种子萌发的先决条件。
水稻种子吸水量达到干重的40%，豆类种子吸水量达到干重的100％～150％才可萌发。
在种子萌发的初期(8～10h 内)，呼吸速率会上升，主要是因为吸收了水分的缘故，而与温度并无十分显著的关系。
18～24h 后，呼吸速率的再度增高，则可归因于温度和氧气。
同时呼吸商也有明显的变化，在种胚未突破种皮之前，主要进行无氧呼吸，种子呼吸产生的CO 2大大超过O 2的消耗，RQ 大于1;当胚根露出后，O 2的消耗速率上升，一般RQ 等于1.0左右，表明此时以糖为呼吸底物；以后由于有机酸的参与或由于缺氧产生酒精发酵会使RQ 大于1.0，可达到2～3左右。
如贮藏的蛋白质和脂肪都用作呼吸底物时，RQ 会下降，小于1.0。
有时油料种子萌发时，脂肪通过乙醛酸循环转化为糖，需耗氧而不释放二氧化碳，RQ 可降低到0.5以下，当脂肪耗尽，以糖为呼吸底物时，RQ 会接近于1。
种子如果播种过深或长期淹水缺氧，则会影响正常的有氧呼吸，对物质转化和器官的形成都不利，特别是根的生长和分化会受到明显的抑制。
油料种子萌发时，耗氧多，呼吸商小，所以更需要注意浅播，保证O 2的供应。