北京中医药大学实验动物学考试复习资料

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一、名词解释

1.人类疾病动物模型：在生物医学研究中所建立的具有人类疾病模拟性表现的动物实验对象和材料。

2.实验性动物模型：通过人为方式使实验动物受到物理、化学、生物等致病因素的作用，而发生类似某些人类疾病的动物模型，也叫诱发性动物模型。

3.实验动物：指经人工饲育，对其携带的微生物实行控制，遗传背景明确或来源清楚的，用于科学研究、教学、生产、检定及其他科学实验的动物。

4.实验用动物：泛指用于各类实验的所有动物，即用于实验的动物。广义的实验动物包括实验动物、野生动物、经济动物和其他动物。

5.近交系动物：经过20代以上连续全同胞兄妹或连续亲代与子代交配所培育出来的，遗传上达到高度一致的动物群，基因纯合度可达99.8%。

6.3R原则：指动物实验替代方法，即减少(Reduction)、替代(Replacement)和优化(Refinement)。意思为尽量减少动物实验的次数和使用动物数量；尽可能使用替代物和善待动物；使实验设计尽善尽美。所以能用小动物的不用大动物，能用低等动物不用高等动物。

7.无菌动物：无可检出的一切生命体。

8.SPF级动物：无特殊病原体级动物，除清洁动物应排除的病原外，不携带主要潜在感染或条件致病和对科学实验干扰大的病原。

9.隔离系统：采用无菌隔离装置以保持无菌状态或无外来污染物。隔离装置内的空气、饲料、水、垫料和设备应无菌，动物和物料的动态传递须经过特殊的系统，该系统既能保证与环境的绝对隔绝，又能满足转运动物时保持内环境一致。

10.清洁级动物：除普通级动物应排除的病原外，不携带对动物危害大和对科学研究干扰大的病原。

11.免疫缺陷动物：由于先天性遗传突变或用人工的方法造成一种或多种免疫系统组成成分

缺陷的动物。

12.转基因动物：指用实验的方法导入的外源基因,在其染色体基因组内稳定整合并可以表达和传给后代的一类动物；整合在动物基因组内的外源基因称为转基因。

二、简答题

1.简述大鼠的给药方法（包括给药途径、常用药量及其注意事项）

（1）、灌胃(po)：左手固定大鼠，右手持灌胃器，灌胃针头自口角进入口腔，紧贴上腭插入食道，如遇阻力，将灌胃针头抽回重插，以防损伤。常用灌胃量为0.1～0.2ml/10g。

（2）、皮下注射(ih)：可用腹部、背部、腹股沟的皮下，此处皮肤比较松弛，也可由助手协助。

（3）、皮内注射：注药量一般为0.1～0.2ml/10g。

（4）、肌肉注射(im)：一人抓住大鼠头部皮肤和尾巴，另一人持连4号针头的注射器，将针头刺入后腿外侧肌肉。注射量一般不超过0.1～0.2 ml/只。

（5）、尾静脉注射(iv)：将大鼠置入固定器，酒精涂擦尾部，以使血管扩张。自尾部末端刺入，刺入血管后抽针芯可见回血。常用注射量为0.1～0.2 ml/10g。

（6）、腹腔注射(ip)：将小鼠固定后，从下腹部外侧进针，深度较皮下注射深。常用注射量为0.1～0.2 ml/10g。

（7）、脑内注射：

（8）、涂布给药

（9）、呼吸道给药

（10）、阴茎静脉注射

2. 简述小鼠的给药方法（包括给药途径、常用药量及其注意事项）

（1）、灌胃(po)：左手固定小鼠，右手持灌胃器，灌胃针头自口角进入口腔，紧贴上腭插入食道，如遇阻力，将灌胃针头抽回重插，以防损伤。常用灌胃量为0.1～0.2 ml/10g。

（2）、皮下注射(ih)：可用腹部、背部、腹股沟的皮下，此处皮肤比较松弛，也可由助手协助。注药量一般为0.1～0.2 ml/10g。

（3）、皮内注射：注药量一般为0.1～0.2 ml/10g。

（4）、肌肉注射(im)：一人抓住小鼠头部皮肤和尾巴，另一人持连4号针头的注射器，将针头刺入后腿外侧肌肉。注射量一般不超过0.1～0.2 ml/只。

（5）、尾静脉注射(iv)：将小鼠置入固定器，酒精涂擦尾部，以使血管扩张。自尾部末端刺入，刺入血管后抽针芯可见回血。常用注射量为0.1～0.2 ml/10g。

（6）、腹腔注射(ip)：将小鼠固定后，从下腹部外侧进针，深度较皮下注射深。常用注射量为0.1～0.2 ml/10g。

（7）、脑内注射：

（8）、涂布给药

（9）、呼吸道给药

3. 实验动物和实验用动物的主要区别是什么？

实验动物：指经人工饲育，对其携带的微生物实行控制，遗传背景明确或来源清楚的，用于科学研究、教学、生产、检定及其他科学实验的动物。

实验用动物：泛指用于各类实验的所有动物，即用于实验的动物。广义的实

4. 试举3例说明实验动物编号的方法主要有哪些？

1）染色法：常用的染液有：苦味酸溶液（黄色）、硝酸银溶液（咖啡色）和中性品红溶液（红色），如下图所示，可编99个号

2）针刺法：用七号或八号针头蘸取少量碳素墨水，在耳部、前后肢以及尾部等处刺入皮下，在受刺部位留有一黑色标记。

3）号牌法：用金属制的牌号，挂在实验动物的颈部、耳朵等部位。

5. 小鼠、大鼠的最大安全采血量分别是多少？

最大安全采血量指一次采血不会引起动物死亡或者严重威胁其健康的采血量上限.通常为血容量的10-15%.成者体重的1%:最小致死量：一次采血可引起动物死亡的最小采血量，通常为血容量的20%以上。最大安全采血量小鼠0.1mL, 大鼠1mL；最小致死采血量小鼠0.3mL, 2mL

6. 实验动物麻醉过量时，可采用什么对策？

麻醉过量时,应根据动物的表现而采取不同的处理办法：若动物呼吸极慢且不规则,但血压或脉搏仍属正常时,可行人工呼吸和注射苏醒剂；若动物呼吸停止,血压下降,舌头开始由红变紫,但仍有心跳时,可进行人工呼吸,同时静脉注射适量温热的50％葡萄糖，l：10,000的肾上腺素以及苏醒剂。常用的苏醒剂有咖啡因(1 mg／kg)、可拉明(2～5 mg／kg)和山梗菜碱(0.3～l mg／kg)等，使用时可通过肌肉注射或静脉给药。若动物呼吸停止，且心搏极弱或刚停止时，用5%CO2和95%O2的混合气体人工呼吸，进行心脏按摩，注射热的生理盐水，心搏恢复后注射50%葡萄糖及苏醒剂。

7. 家兔消化系统的组成如何？有何结构为家兔独有？

家兔的消化系统由口腔、咽、食道、胃、小肠、十二指肠、空肠、回肠、大肠、盲肠、结肠、直肠、肛门组成。此外还有唾液腺、肝脏、胰脏等消化腺体。

家兔回肠与盲肠相接处膨大形成一个壁厚的圆囊，称圆小囊。

8. 简述动物术后的注意事项

1）麻醉期尚未过时，注意动物的保暖。还要摆正头颈部位置以保持呼吸通畅，及时清除口腔鼻腔的呕吐物和分泌物；

2) 防止手术创口的感染；

3）动物因疼痛而躁动不安时，先制动，在实验允许的情况下使用镇痛药；

4）术后未完全清醒时不给任何饮食，清醒后先喂水，然后给予食物。若为消化道手术，要禁食3d并补液；

5）加强环境的消毒防疫，防止并发症。

9. 实验动物分组中设置空白对照组、假手术组和阳性对照组的意义是什么？

空白对照组：以评定测量方法的准确度以及观察实验是否处于正常状态；其与实验组结果的比较对照，能排除动物自身或其他非实验因素对实验的影响；是判断实验结果的统计需要。

假手术组：排除生理创伤或刺激等非目标因素对实验结果的影响。

阳性对照组：是100%出现阳性结果的“实验”组，除了用来评价结果之外，还可以起到与空白对照组相似的效果，即观察实验是否处于正常状态，排除非实验因素的影响。

10. 家兔开胸后打开心包胸膜暴露心脏进行实验操作时，不需作人工呼吸的原因是什么？

家兔的胸腔有纵膈，将胸腔分为左右两个室，且互不相通。因此在开胸后打开心包胸膜暴露心脏，并不影响肺部的压力，因此不需作人工呼吸。