流式细胞仪全面讲解

流式细胞仪全面讲解
流式细胞仪全面讲解

流式细胞仪入门

----- 秦华 译

目录

前言

第1章综述

第2章液流系统

第3章散射光信号及荧光信号

3.1 散射光信号

3.2 荧光信号

第4章光电系统

4.1 光平台

4.2 光学滤片

4.3 信号探测器

4.4 阀值

第5章数据分析

5.1 数据采集及显示

5.2 设门

5.3 细胞亚群的数据分析

5.4 流式细胞仪其它应用的数据分析第6章分选

6.1 分选

第7章激光器及光路校正

7.1 激光器的工作原理

7.2 光路校正

第8章习题答案

序论

学习仪器的最好方法是操作仪器,然而在理解原理的基础上进行仪器操作无疑会起到事半功倍的作用。

本书介绍了流式细胞仪的基本知识,并从不同角度详尽阐述了各种台式机(FACScan TM,FACSort TM,FACSCalibur TM,和BD LSR)与大型机(FACS Vantage TM,FACSVantage TM SE,和FACStar PLUSTM)之间的不同,且附习题及答案。阅读本书有助于增强读者操作仪器的动手能力和经验。

第一章综述

流式细胞术是一项快速检测分析单个粒子多物理特性的高技术,通常指细胞通过激光束时在液流中的特性,即粒子的大小,密度或是内部结构,以及相对的荧光强度。通过光电系统记录细胞的散射光信号和荧光信号可得知细胞特性。

流式细胞仪主要由三部分组成:流动室和液流系统;光路系统以及电系统。其作用如下:

z液流系统:依次传送待测样本中的细胞到激光照射区。

z光路系统:细胞由激光激发,通过光学滤片产生光信号,并传送到相应的探测器。

z电系统:把光信号转换为电信号。对于有分选装置的仪器,电系统可初始化分选条件。

在流式细胞仪中,细胞被传送到液流中的激光照射区。任何存在于悬液中的直径为0.2-150微米的粒子或细胞都适用于流式分析。在实际工作中,用实体组织进行流式细胞分析往往是不可能的,分析之前必须对其进行分解。被液滴包绕的粒子称为细胞液柱,当粒子经过激光照射区时,通过激光激发产生散射光。含有荧光的粒子就会表现出其荧光特性。散射光和荧光由光路系统(相应的透镜,滤片和探测器)收集。分光器和滤光片引导散射光和荧光至相应的探测器,把光信号转换为电信号。

单个粒子通过其表现出的光散射和荧光属性,通过列表模式(List mode)完成数据采集,并对样本中的细胞亚群进行分析。

图1-1 散射光和激发光信号转换成为计算机可处理的充电脉冲

习题:综述

1 流式细胞仪可测量细胞或粒子的哪些属性?

2 大多数流式细胞仪使用何种光源?

3 流式细胞仪的三大系统是什么?

4 哪种类型的生物样本最适于做流式细胞分析?

5 液流包绕细胞形成?

6 带有荧光的细胞通过激光束时,会产生哪两种光信号?

7 由粒子激发的光由收集。

8 所有流式细胞测量是在单个细胞上同时进行吗?(对错)

9 在进行流式分析之前粒子必须是单个细胞悬液吗?(对错)

第二章液流系统

液流系统的作用是依次传送待测样本中的细胞到激光照射区,其理想状态是把细胞传送到激光束的中心。而且在特定时间内,应该只有一个细胞或粒子通过激光束。

因此,必须在流动室内把细胞注入鞘液流。流动室是液流系统的核心部件,台式机中流动室称为样品槽,大型机称之为喷嘴。在流动室内细胞液柱聚焦于鞘液中心,细胞在此与激光相交。

流动室内充满鞘液,根据层流原理,在鞘液的约束下,细胞排成单列出流动室喷嘴口,并被鞘液包绕形成细胞液柱。这种同轴流动的设计,使得样品流和鞘液流形成的流束始终保持着一种分层鞘流的状态,这个过程称为流体聚焦。该原理适用于所有流动室,如图2-1和2-2所示:

图2-1 细胞液柱通过样品槽产生流体聚焦

图2-2 细胞液柱通过喷嘴产生流体聚焦

样本压力和鞘液压力是不同的,且样本压力总是大于鞘液压力。样本压力调节器通过改变样本压力的方法控制样本流速。

z台式机:单个细胞悬液在液流压力作用下从样品管射出,粒子或细胞在流动室内与激光相交(图2-1)。除BD LSR型台式机有样本压力细调旋钮外,大多数台式机都采用固定的样本压力(分低,中,高速)。

z大型机:单个细胞悬液从喷嘴喷出后,粒子或细胞在流动室外与激光相交(图2-2)。且样本压力连续可调。

增加样本压力就是通过加宽液柱的方法增加样本流速。换言之,在特定时间内,允许更多细胞通过液流。当液柱变宽时,一些流经激光束的细胞会偏离中心,光斑也会偏离理想角度,这在一定程度下是允许的。

z高流速适用于定性测量,如免疫表型。样本流变宽,细胞间距

离缩短,这样在单位时间内流经激光照射区的细胞数量增加,可以快速获取数据。

z低流速促使样本流变窄,单个细胞得以依次通过,这样大多数细胞可流经激光束的中心,细胞受激光照射的能量比较均一,因而低流速适用于检测分辨率要求高的实验,如DNA分析。

为确保粒子和细胞完全通过激光束,正确调节样本压力对实验操作是至关重要的。

习题:液流系统

1 流式细胞仪中液流系统的作用是什么?

2 细胞流经激光束时影响激光照射细胞的两个因素是什么?

3 在特定时间内,应该有多少细胞流过激光束?

4 单个细胞悬液在内注入。

5 鞘液环包样品并使之居中的过程称为效应。

6 什么调节器可以控制细胞液柱的宽窄?

7 对于台式机,样本的固定压力是多少。

8 增加样本压力,也就是样本流速和液柱。

9 DNA研究对检测分辨率要求较高,推荐流速为多少。

10 加大流速会降低检测分辨率。(对错)

11 定性检测时可使用高流速。(对错)

第三章散射光信号和荧光信号的检测

上一章我们了解到粒子或细胞是如何依次通过液柱的,本节我们首先学习激光如何照射在单个细胞上的。

3.1 散射光信号

粒子折射激光产生散射光信号。散射光不依赖任何细胞样品的制备技术(如染色),因此被称为细胞的物理特性,即细胞的大小和内部结构。散射光与细胞膜,核膜以及细胞结构的折射性、颗粒性密切相关,细胞形状和表面形貌也对其产生影响。

前向角散射:前向角散射(FSC)光与被测细胞的大小和面积有关,检测的是激光束照射方向与收集散射光信号的光电倍增管轴向方向的散射光信号(见图3-1)。FSC不受细胞荧光染色的影响,常用于免疫表型分析的信号处理。

侧向角散射:侧向角散射(SSC)光与被测细胞的颗粒密度和内部结构有关,对细胞膜、胞质、核膜的折射率更为敏感(见图3-1)。SSC收集与激光束正交90度方向的散射光信号。

图3-1 细胞的光散射特性

上述两种信号都是来自于激光原光束,目前采用这两个参数

组合,可区分不同种类的细胞亚群,同时可获得细胞相关的重要信息,下图(图3-2)为FSC和SSC组成的二维散点图,从图中可以很容易把全血样本中淋巴细胞、单核细胞及粒细胞区分开。

图3-2 FSC、SSC二维散点图

习题:散射光信号

1 什么时候会发生光散射现象。

2 光散射信号与细胞的哪些特性有关。

3 与激光束方向相同的光散射称为散射。

4 FSC与细胞的哪些特性相关?

5 与激光束方向呈90度角的光散射称为散射。

6 SSC与细胞的和相关。

7 和双参数的组合可区分不同种类的细胞亚群。

3.2 荧光信号

荧光物质吸收符合其波长范围的光能量,内部电子受激上升到高能级。然后受激电子迅速衰落回基态,释放过剩能量成为光子。这种能量的转换称为荧光。

能够激发荧光物质的波长范围称为激发光谱。因为更多的能量消耗在吸收转换而不是荧光转换中,所以发射光波长要高于激发光波长。荧光物质的发射波长范围叫做发射光谱。

目前的流式细胞仪大多采用氩离子激光器,因为488nm的激光器能够激发一种以上的荧光(详见第7章)。光源的谱线愈接近被激发物质的激发光谱的峰值,所产生的荧光信号愈强。FITC的激发光谱如图3-3所示, 488nm非常接近FITC的激发光谱的峰值,所以FITC被激发时会表现出最强荧光信号,而当FITC被其波谱范围内的其它波长激发时,也会检测到荧光,但信号强度不会这么高。

图3-3 FITC、PE、PerCP、APC染料的激发光谱

如果激发光波长都是488nm,而发射光波长又不是极其接近的话,我们可以同时检测两种以上的荧光。如FITC和PE双染就

符合这种条件。这两种荧光素的发射光谱如图3-4所示。虽然PE 的激发光谱的峰值不是488nm,但也足以检测到荧光。更重要的是,FITC的发射光波长是530nm,PE的发射光波长是570nm。他们的发射光波长足够远,可以使用不同的检测器。被检测到的荧光信号数量与粒子中标记上的分子数量成正比。

图3-4 FITC、PE、PerCP、APC染料的发射光谱

图3-5 荧光标记抗体对细胞表面抗原的特异性结合

对单克隆抗体进行荧光染色,通过分析细胞表面抗原标记确

认细胞类型(见图3-5)。在细胞的混合群体中,我们使用不同的荧光染料区分细胞亚群。每个亚群的染色模式与FSC和SSC数据相结合,用于识别样本中的细胞种类,并可以得到各细胞亚群的百分含量。而且,还可以对感兴趣的细胞进行再分选。

习题:荧光信号

1 当荧光物质吸收激光能量,并释放过剩能量时,会发射。

2 荧光物质能被激光激发出荧光的波长范围称为。

3 由荧光染料发射的波长称为。

4 在流式细胞仪中通常采用什么激光器。

5 能够激发FITC和PE的波长是多少。

6 流式细胞仪最常用的两种荧光素是和。

7 荧光素标记抗体用于检测。

第四章 光学系统

光学系统由光学激发器和光学收集器组成。光学激发器包括激光和透镜,透镜用于形成激光束,并使之聚焦。光学收集器则由若干透镜组成,用于收集粒子发射的光束---激光束相互作用,透镜组和滤片发送激光束至相应的光学探测器。光平台的设计可实现以上功能。

4.1 光平台

流式细胞仪的光平台提供了一个固定平面,将激光源、光学激发器和收集器控制在一个固定的位置。因而台式机的流动室和光路是固定的,能够保证光斑和样本流自始至终保持恒定。图4-1和图4-2分别为台式机 FACS Calibur 和 BD LSR 的光平台系统。

图4-1 台式机 FACS Calibur 光平台系统

图4-2 台式机 BD LSR光平台系统

在大型机中,当液流流过喷嘴时,激光束通过消色差透镜组以最佳角度和位置截取液流。由于光斑和液流位置会发生变化,所以大型机的光路没有台式机稳定,需要每日优化。光路不正有可能导致粒子受激光照射的能量不均一,从而被激发出的荧光强度也不相同,造成测量误差。大型机的光平台系统见图4-3。

图4-3 大型机 FACS Vantage SE 光平台系统

习题:光平台

1 光平台为 的激光器提供了一个固定平面。

2 保证所有细胞受到均一的光照强度的两个必要条件是什么。

3 每次使用大型机时都需要进行光路校正(对 错)。

4 在台式机中,固定的 能够保证激光截取 的位置

是不变的。

4.2 光学滤片

当细胞或粒子流过激光照射区时,SSC和荧光信号很弱,需要使用光电倍增管(PMTs)收集,而FSC信号很强,由光电二极管收集即可。所有信号经由透镜组和滤片组到达相应的检测器。光电倍增管(PMTs)检测到的荧光信号常常是很微弱的。在光电倍增管(PMTs)前设置滤片可以使相当窄的一波长范围内光通过,提高了荧光信号的纯度和强度,因而每个检测器只有一种指定波长的荧光信号进入而被检测,使光谱带宽接近荧光染料的发射峰值。这种滤片称为带通(BP)滤片。如:FITC检测器前的滤片标志为530/30,其含义是光谱发射波长:530±15nm,或者说允许通过的波长范围在515nm和545nm之间。BP 500/50则表示其允许通过波长范围为475nm-525nm。

流式细胞仪中常用的滤片还有长通滤片(LP)和短通滤片(SP),长通滤片使特定波长以上的光通过,特定波长以下的不通过。如LP500滤片,将允许500nm以上的光通过,而500nm以下的光吸收或返回。短通滤片与长通滤片相反,特定波长以下的光通过,特定波长以上的光吸收或返回。(见图4-4)。

分光器的主要作用是完成光的收发。二色性反射镜就是其中一种。560短通二色性反射镜如图4-1所示发射560nm或小于560nm的波长(如图4-1所示)。大于560nm的波长被反射。

图 4-4 光线通过长通滤片、短通滤片及带通滤片的波长范围

习题:光学滤片

1 检测器前放置滤片作用是什么。

2 带通滤片530/30发射的波长范围是到。

3 用于光的收发。

4 滤片允许特定波长及以下的光通过,而滤片

允许特定波长及以上的光通过。

4.3 光电探测器

处在液流中的粒子通过激光束时产生光信号,这些光信号通过光电探测器转换成电信号(电压),然后到相应的通道。BD流式细胞仪有两种类型的光电探测器:光电二极管和光电倍增管(PMTs)。光电倍增管(PMTs)对光信号比光电二极管敏感,所以前者用于检测较弱的SSC信号和荧光信号;后者用于检测较强的FSC信号。

粒子进入照射区开始散射光或荧光时产生充电脉冲,首先光信号或光子由光电倍增管(PMTs)或光电二极管转换成相应的电信号,产生电流,电流经由放大器,转换成充电脉冲。当粒子位于激光束正中时,脉冲最大,荧光最强。当粒子偏离激光束时,脉冲回到基线(如图4-5所示)。

图4-5 充电脉冲的产生

充电脉冲的大小取决于光电倍增管前置放大器获得的光子数量,放大器可设置为线性放大或者对数放大(Lin或Log)。对

数放大(Log)常常用于把阴性信号从微弱的阳性信号中分离出来;而线性放大(Lin)通常用于放大散射光信号和荧光信号。

充电脉冲通过模数转换器把0-1000mV的脉冲转换成为代表0-1,000mV通道的数值。通道数值经由输入输出(GPIO)数据线传送到计算机进行处理显示(见图4-6)。

图4-6 模拟信号到数字信号的转换过程

习题:光电探测器

1 收集FSC光信号。

2 敏感度高的收集SSC光信号和荧光信号。

3 探测器产生电流,经由放大器转换成电压。(对错)

4 模数转换器(ADC)的作用。

【基础科学】BD FACSCALIBUR流式细胞仪操作手册(共27页)

BD FACSCalibur流式细胞仪 FACS101 Handbook 本课程介绍「表面抗原流式分析」有关之基础工作原理。如希望进一步了解流式细胞技术应用,请至本公司网站订阅FACSinformation电子报。 如需要本课程手册,欢迎至本公司网站下载。 如需要免疫荧光染色方法,请至本公司网站下载。 一、BD FACSCalibur基本结构 1.1仪器本体: 1. 电源开关:在BD FACSCalibur仪器右侧下方,先启动仪器本体,再打开计算机。 2. 光学系统:BD FACSCalibur 基本配有一支波长488 nm 的氩离子雷射 以BD FACSCalibur 基本型为例 ?FSC Diode 只收488 nm波长散射光 ?SSC PMT 只收488 nm波长散射光 ?FL1 PMT 荧光光谱峰值落在绿色范围(波长515-545 nm) ?FL2 PMT 荧光光谱峰值落在橙红色范围(波长564-606 nm) ?FL3 PMT 荧光光谱峰值落在深红色范围(波长 >650 nm)

3. 仪器面板: 仪器前方面板的右下方有三个流速控制键、及三个功能控制键。 流速控制: LO:样品流速:12 μl /min MED:样品流速:35 μl /min HI: 样品流速:60 μl /min 功能控制: ?RUN:此时上样管加压,使细胞悬液从进样针进入流动室。(正常显示绿色;黄色时表示仪器不正常,请检查是否失压。) ?STANDBY:无样品或暖机时之正常位置,此时鞘液停止流动,雷射功率自动降低。 ?PRIME:去除流动室中的气泡,流动室施以反向压力,将液流从流动室冲入样品管,持续一定时间后,以鞘液回注满流动室。PRIME 结束,仪器 恢复STANDBY状态。 4. 储液箱抽屉: 在主机左下方之储液箱抽屉。可向前拉开,内含鞘流液筒、废液筒、鞘液过滤器Sheath Filter,及空气滤网 Air filter。请注意气路减压阀VENT TOGGLE之位置。

流式细胞仪细胞分选的操作步骤

细胞分选的简要操作步骤 一、上样前的准备 FACSCalibu可以分选细胞进行培养或功能性研究,而这些研究需要清洁环境以保持分选后细胞不受污染继续培养,因此在样本制备,上机检测分选等过程中需严格按无菌技术操作。 1、应用无菌技术制备下列无菌工作液。 3L 70%乙醇(用无菌蒸馏水配制) 5L无菌蒸馏水 5L无菌PBS 2、在干净的鞘液筒中加入3L 70%乙醇。盖紧盖子,振摇鞘液筒,确保桶内壁被乙醇充分洗 涤。安好鞘液筒。 3、将过滤器短接,否则乙醇将破坏滤膜。。 4、用70%乙醇冲洗收集管接口处,并喷洒进样口处的空气。 5、在收集管接口处安装2支BD 50ml收集管(若不使用浓缩器)。 6、放上一支装有70 %乙醇的进样管。 7、设分选门(画一个空门使机器进行分选操作)。 9、从Acquire menu选择SortSetup。在Sort Gate菜单中选择步骤7设定的分选门。按液流控制 键RUN。 10、在Setup 方框中打叉,点击Acquisition Control 菜单中Acquire。。 11、跑乙醇直至2支收集管注满(每管注满需要9min ),点击Pause, Abort。 12、再重复上述步骤2次,共需要1h。 13、断开鞘液筒,在鞘液筒中加入500mL无菌蒸馏水,振摇鞘液筒,倒掉液体,反复操作直 至洗净桶内壁残余乙醇。 14、在鞘液筒中加入3L无菌蒸馏水,盖紧盖子。安好鞘液筒。 15、在收集管接口处安装2支新的收集管。 16、放上一支装有无菌蒸馏水的进样管。 17、点击Acquisition Control 菜单中Acquire。 18、跑无菌蒸馏水直至2支收集管注满(每管注满需要9min),点击Pause Abort。 19、再重复上述步骤2次,共需要1h。 20、断开鞘液筒,在鞘液筒中加入3L无菌PBS盖紧盖子。安好鞘液筒。 21、在收集管接口处安装2支新的收集管。 22、放上一支装有无菌PBS的进样管。 23、点击Acquisition Control 菜单中Acquire。 24、第一支收集管(最左)中收集15 mL PBS后取下,使PBS由左至右流入下一收集管。重复 操作至2个管都收集了15 mL PBS为止。点击Pause, Abort。 25、在收集管接口处安装2支新的收集管。若要分选动物细胞,则应用无菌技术,用无菌 PBS4 % BSA缓冲液过夜包被50mL锥型管,将包被好的锥型管安置于收集接口。 26、按下述分选步骤分选样本 二、分选细胞

BD流式细胞仪原理与典型故障分析

Instrumentation and Equipments 仪器与设备, 2018, 6(3), 95-98 Published Online September 2018 in Hans. https://www.360docs.net/doc/a9951604.html,/journal/iae https://https://www.360docs.net/doc/a9951604.html,/10.12677/iae.2018.63015 BD Flow Cytometer Principle and Typical Malfunction Analysis Xiusheng Qiu*, Caihui Zeng, Liting Zhang The Third Affiliated Hospital of Sun Yat-sen University, Guangzhou Guangdong Received: Aug. 23rd, 2018; accepted: Sep. 11th, 2018; published: Sep. 18th, 2018 Abstract Flow cytometry is a device for automatic cell analysis and cell separation. In this paper, the prin-ciple of BD flow cytometry is introduced, and the common faults of flow cytometry are described. After analysis, the troubleshooting process is described in detail. Flow cytometry instrument equipment failure can be divided into liquid road faults, hardware failure, software failure, and all three cases. Only by accumulating in use can we fast judge the fault, and quickly solve the problem. Keywords Flow Cytometer, Principle, Malfunction Analysis BD流式细胞仪原理与典型故障分析 丘秀生*,曾彩辉,张丽婷 中山大学附属第三医院,广东广州 收稿日期:2018年8月23日;录用日期:2018年9月11日;发布日期:2018年9月18日 摘要 流式细胞仪是对细胞进行自动分析和分选的装置,已经渐渐成为生物科学重要的分析仪器。本文介绍了BD流式细胞仪的原理,并对流式细胞仪常见的典型故障做了阐述,进行分析后,并对故障的排除过程进行了详细的阐述。流式细胞仪维中设备故障可分为液路故障、硬件故障、软件故障和三者兼具的情况,只有在使用过程中不断积累,才能快速判断故障,并迅速的排除。 *通讯作者。

最详细的流式细胞仪实验方法

流式细胞仪实验方法 一、实验准备 1.标本制备: 2.最小化非特异性结合: 二、凋亡 1.凋亡的检测方法:网站和其它 2.PI染色法 3.Annexin V 法 4.TUNNEL法 三、细胞因子 1.激活的细胞因子 2.CBA 四、血小板 1.活化 2.活化检测 3.网织血小板 五、红细胞 1.网织红细胞 2.PNH 3.胎儿红细胞 六、肿瘤学 1.DNA 细胞周期 2.蛋白 3.多药耐药 4.微小残留白血病

第一部分标本处理 一、流式细胞术常规检测时的样品制备 (一)直接免疫荧光标记法 取一定量细胞(约1X106细胞/ml),在每一管中分别加入50μl的HAB,并充分混匀,于室温中静置1分钟以上(),再直接加入连接有荧光素的抗体进行免疫标记反应(如做双标或多标染色,可把几种标记有不同荧光素的抗体同时加入),。孵育20-60分钟后,用PBS(pH7.2—7.4)洗1-2次,加入缓冲液重悬,上机检测。本方法操作简便,结果准确,易于分析,适用于同一细胞群多参数同时测定。虽然直标抗体试剂成本较高,但减少了间接标记法中较强的非特异荧光的干扰,因此更适用于临床标本的检测。 (二)间接免疫荧光标记法 取一定量的细胞悬液(约1X106细胞/ml),先加入特异的第一抗体,待反应完全后洗去未结合抗体,再加入荧光标记的第二抗体,生成抗原—抗体—抗抗体复合物,以FCM检测其上标记的荧光素被激发后发出的荧光。本方法费用较低,二抗应用广泛,多用于科研标本的检测。但由于二抗一般为多克隆抗体,特异性较差,非特异性荧光背景较强,易影响实验结果。所以标本制备时应加入阴性或阳性对照。另外,由于间标法步骤较多,增加了细胞的丢失,不适用测定细胞数较少的标本。 二、最小化非特异性结合的方法 1.荧光标记的抗体的浓度应该合适,如果浓度过高,背景会因为非特异性的相互作用的增加而增加。 2.在使用第一抗体之前,将样品与过量的蛋白一起培育,如小牛血清蛋白(BSA),脱脂干奶酪,或来自于同一寄主的正常血清来作为标记的第二抗体。这个步骤通过阻断第一抗体和细胞表面或胞内结构的非特异性的交互作用来降低背景。 3.在使用第一抗体之后,将样品与5%至10%的来自于同一寄主的正常血清和作为标记的第二抗体一起培育。这个步骤会减少不必要的第二抗体与第一抗体、细胞表面或胞内结构之间的交互作用。 通过用来自于同样的样品的血清稀释标记过的抗体可以略过此步骤。此步骤适用于很多方面,但有时候它也会导致已标记的第二抗体和正常血清中的免疫球蛋白的免疫复合体的形成。这种复合体会优先与一些细胞结构进行结合,或者它们最终会导致期望得到的抗体活性的丢失。 4.使用F(ab’)2片段会使背景决定于第一或第二抗体与FC受体的全分子结合。大多数的第二抗体的F(ab’)2片段容易利用。而第一抗体的F(ab’)2片段一般是不能利用或很难制作。因此,在NaN3存在的条件下,将新鲜组织或

流式细胞仪检测细胞凋亡操作流程 Annexin V 检测细胞凋亡

A n n e x i n V检测细胞凋亡 实验原理 Annexin V 是检测细胞凋亡的灵敏指标之一。它是一种磷脂结合蛋白,可以与早期凋亡细胞的胞膜结合,而细胞质膜的改变是细胞发生凋亡时最早的改变之一。在细胞发生凋亡时,膜磷脂酰丝氨酸(PS) 由质膜内侧翻向外侧。Annexin V 与磷脂酰丝氨酸有高度亲和力,因而与细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸结合。由于在发生凋亡时,磷脂酰丝氨酸外翻的发生早于细胞核的改变,因此,与DNA 碎片检测比较,使用Annexin V 可以更早地检测到凋亡细胞。因为细胞坏死时也会发生磷脂酰丝氨酸外翻,所以Annexin V 常与鉴定细胞死活的核酸染料(如PI 或7-AAD)合并使用,来区分凋亡细胞(Annexin V+/核酸染料-) 与死亡细胞(Annexin V+/核酸染料+)。 实验用品 1. 一次性12?75mm Falcon试管。 2. PBS缓冲液:含0.1%NaN3,过滤后2-8?C保存。 3. 微量加样器和加样头。

4. Annexin V Binding Buffer缓冲液(Cat. No. 66121E):浓度为 10?,使用时,用稀释为1?浓度的应用液。 5. Annexin V试剂与核酸染料: Annexin V 核酸染料 Annexin V-Biotin(Cat. No. 65872X)Streptavidin-FITC(Cat. No. 13024D) PI(Cat. No. 66211E)或7-AAD(Cat. No. 34321X) Annexin V-FITC(Cat. No. 65874X)PI(Cat. No. 66211E)Annexin V-PE(Cat. No. 65875X)7-AAD(Cat. No. 34321X) 6. FACS流式细胞仪:上样检测。 7. CELLQuest软件:获取和分析试验数据。 8. Annexin V检测对照管: Annexin V A-阴性对照B-补偿1 C-补偿2 Biotin SAv-FITC Annexin V-Biotin 和SAv-FITC PI 和SAv-FITC PE 未染色细胞Annexin V-PE 7-AAD FITC 未染色细胞Annexin V-FITC PI 操作步骤 1.取Falcon 试管,按标本顺序编好阴性对照管和标本管号。 2.使用冷的PBS缓冲液洗细胞两次,再用1?Binding Buffer缓冲液制成1?106 细胞/ml的悬液。 3.Falcon试管中加入100 μl细胞悬液。 4.按以下体积加入Annexin V与核酸染料: 1阴性对照-- 2单阳1 AV-FITC - 4样本AV-FITC PI 5.轻轻混匀,室温(20?C ~25?C)避光处放置15分钟。

流式细胞仪操作规程

FACSCalibur流式细胞仪操作规程 一、编号:YQ0606 二、标题:FACSCalibur流式细胞仪操作规程 三、关键词:流式细胞仪操作规程 四、目的:保证流式细胞仪的安全及有效操作 五、背景知识:流式细胞术(Flow CytoMeter,FCM)是一种在功能水平上对单细胞或其他生物粒子进行定量分析和分选的检测手段,它可高速分析上万个细胞,并能同时从一个细胞中测得多个参数,与传统荧光镜检查相比,具有速度快、精度高、准确性好等优点,成为当代最先进的细胞定量分析技术。 六、原理 待测细胞染色后制成单细胞悬液,用一定压力将待测样品压入流动室,不含细胞的磷酸缓冲液在高压下从鞘液管喷出,鞘液管入口方向与待测样品流成一定角度,这样鞘液就能够包绕着样品高速流动,组成一个圆形的流束,待测细胞在鞘液的包被下单行排列,依次通过检测区域。 流式细胞仪通常以激光作为发光源。经过聚焦整形后的光束,垂直照射在样品流上,被荧光染色的细胞在激光束的照射下,产生散射光和激发荧光。这两种信号同时被前向光电二极管和90°方向的光电倍增管接收。光散射信号在前向小角度进行检测,这种信号基本上反映了细胞体积的大小;荧光信号的接受方向与激光束垂直,经过一系列双色性反射镜和带通滤光片的分离,形成多个不同波长的荧光信号。 这些荧光信号的强度代表了所测细胞膜表面抗原的强度或其核内物质的浓度,经光电倍增管接收后可转换为电信号,再通过A/D转换器,将连续的电信号转换为可被计算机识别的数字信号。计算机把所测量到的各种信号进行计算机处理,将分析结果显示在计算机屏幕上,液可以打印出来,还可以数据文件的形式存储在硬盘上以备日后的查询或进一步分析。 检测数据的显示视测量参数的不同由多种形式可供选择。单参数数据以直方图的形式表达,其X轴为测量强度,Y轴为细胞数目。一般来说,流式细胞仪坐标轴的分辨率有512或1024通道数,这视其模数转换器的分辨率而定。对于双

BD FACSCalibur流式细胞仪操作手册

B D F A C S C a l i b u r流式细胞仪 FACS101Handbook 本课程介绍「表面抗原流式分析」有关之基础工作原理。如希望进一步了解流式细胞技术应用,请至本公司网站订阅FACSinformation电子报。 如需要本课程手册,欢迎至本公司网站下载。 如需要免疫荧光染色方法,请至本公司网站下载。 一、BDFACSCalibur基本结构 1.1仪器本体: 1.电源开关:在BDFACSCalibur仪器右侧下方,先启动仪器本体,再打开计算机。 2.光学系统:BDFACSCalibur基本配有一支波长488nm的氩离子雷射 以BDFACSCalibur基本型为例 ?FSCDiode只收488nm波长散射光 ?SSCPMT只收488nm波长散射光 ?FL1PMT荧光光谱峰值落在绿色范围(波长515-545nm) ?FL2PMT荧光光谱峰值落在橙红色范围(波长564-606nm) ?FL3PMT荧光光谱峰值落在深红色范围(波长>650nm) 3.仪器面板: 仪器前方面板的右下方有三个流速控制键、及三个功能控制键。 流速控制: LO:样品流速:12?l/min MED:样品流速:35?l/min HI:样品流速:60?l/min

功能控制: ?RUN:此时上样管加压,使细胞悬液从进样针进入流动室。(正常显示绿色;黄色时表示仪器不正常,请检查是否失压。) ?STANDBY:无样品或暖机时之正常位置,此时鞘液停止流动,雷射功率自动降低。 ?PRIME:去除流动室中的气泡,流动室施以反向压力,将液流从流动室冲入样品管,持续一定时间后,以鞘液回注满流动室。PRIME结束,仪器恢 复STANDBY状态。 4.储液箱抽屉: 在主机左下方之储液箱抽屉。可向前拉开,内含鞘流液筒、废液筒、鞘液过滤器SheathFilter,及空气滤网Airfilter。请注意气路减压阀VENTTOGGLE之位置。 ?鞘液筒:位于抽屉左侧,容积4升。装八分满鞘液筒,仪器可以运行大约3小时。筒上装有液面感应器,鞘液用完时,仪器软件上会有显示。鞘液筒盖 上有金属环扣,保证鞘液筒密闭。 ?废液筒:位于抽屉右侧,容积4升。筒上装有液面感应器,废液盛满时,仪器软件上会有显示。注意废液可能有潜在的生物传染性。 ?鞘液过滤器:0.22?m过滤器,去除鞘液中的杂质,保证进入流动室的鞘液是干净的。 ?气路减压阀:沿箭头方向移动阀门开关,鞘液筒减压,气压恢复正常。在鞘液筒添加鞘液时,需要减压。 ?空气过滤网:用于过滤冷却雷射的空气。 5.上样品区: 上样品区是样本管的上样位置。它包括三个部分,一个是进样针 SampleInjectionTube,将样本输入流动室,还有就是支撑架 TubeSupportArm、和液滴存留系统DropletContainmentSystem。 ?进样针:是一根不锈钢管,将细胞从样本针中吸入流动室。进样管外有一套管,是液滴保留系统的一部分。 ?支撑架:用于支撑样本管、并负责启动液滴存留系统。支撑架有三个位置:位于样本管之下的中位,样本管左侧或右侧。 液滴存留系统:系统由支撑架、真空帮浦和外套管组 成。当支撑架位于左侧或右侧位置时,真空帮浦就会启 动,将液体从外管吸入废液筒内。上样时,须注意将支 撑架位于中位,以避免过多样品被抽吸到废液筒内(当 支撑架位于中位,真空帮浦停止工作)。更换样品时, 让仪器保持RUN的模式,使得进样针可以反冲;切换到 STANDBY模式前,确保液路已冲洗彻底以免碎片沈积到 流动室中。

流式细胞仪操作步骤(FACSCalibur)

一、开机程序: 1.检查鞘液桶和废液桶。确认鞘液充满状态(鞘液为鞘液桶体积的3/4位 置,可以连续工作3个小时左右)、盖紧黑盖、管道畅通、废液桶有足 够空间容纳本批标本排弃的废液。如果要添加鞘液,要先释放鞘液桶中 气压。 2.依次打开流式细胞仪FACSCalibur稳压器、主机开关、电脑开关,打印 机。 3.气压阀置于加压位置,待流式细胞仪处于STANDBY状态,做Prime,以 排除管路中气泡。 二、运行FACSComp软件、检查仪器状况 1.制备三色标准微球样本。一般情况向1ml鞘液(或过滤PBS)中加入 1滴质控小微球,也可以根据实际情况调节浓度。 2.机器预热5 min,打开FACSComp软件,选择保持路径。选择所需校 正内容,如果使用的微球是新一批产品要输入微球的批号。 3.在软件界面左侧Assay Selection选项中选择质控类型,即实验过 程中是否需要清洗样品。 4.上样品,微球溶液上样之前要充分混匀。功能键设置在“RUN”。 5.仪器自动检查,并做电压、补偿等设置。 6.FACSComp软件运行完毕,显示结果通过测试。 7.做Set up。 8.打印校正结果,退出FACSComp程序。 备注:在质控过程中,如果提示收集细胞速度慢可以提高细胞收集速度,但是在调节灵敏度(Sens)时,一定要用“Low”的状态上样,保证仪器灵敏度的准确。在使用仪器过程中要养成好的习惯,在上样品过程中,仪器保持在“Low”“Standby”状态。 三、样品分析软件:CellQuest Pro 软件,选择“联机”。 1.

(2)对实验样本进行命名; (3)对实验通道进行预设(FSC,SSC,FL1-FL4)。 备注:如果界面被关闭,重新调出步骤: 2.调出质控模板。 3.画图 选择画图工具(一般选择散点图),Inspect 界面会自动弹出,对几个常用选项进行设定:将散点图选中(用鼠标点击散点图边框才能够 选中图形),将 更改横纵坐 备注:第一个散点图横坐标为FSC,纵坐标为SSC 。 (1一般获取10000个细胞。 (2 ( 3)将所有补偿调为0 (4)将非 52 (5)FSC和SSC (6 4.上阴性对照 将阴性对照管混匀,上机,功能键设置在“RUN”,散点图出现细胞信 号,第一个图:让细胞信号出现在自己看上去舒服的区域;其他三个 散点图,要将细胞信号调整到阴性区域,即左下角区域。通过移动通

性控冻精使用技术手册

第一部分性控技术和性控冻精的概况 一、性控技术的概念和在畜牧业生产中的重要意义 性别控制:通过人为的干预使雌性动物繁殖出人们所期望的性别后代的一种繁殖新技术。奶牛XY精子分离技术是指将公牛的精液根据精子自身X染色体和Y染色体的DNA含量不同,把这两种类型的精子通过物理方法、计算机技术等进行有效的分离,将X精子分装冷冻后,用于牛的人工授精,使母牛怀孕的技术,母牛率可以达到90%以上;根据精子自身X、Y染色体中DNA含量的不同而有效分离的冻精就叫性控冻精。从经济效益来讲,该技术的应用将直接为奶农带来更多的获得良种母牛机会,增加了奶农的收入。 其重要意义在于: 1、产母犊效益提高良种母犊出生数量,使良种奶牛的繁育数量呈几何速度增长,加速牛群改良和更新,迅速达到良种化规模养殖,增加规模效益。 2、充分利用现有优质种公牛和高产奶牛的遗传潜力母牛一生能产6~7胎,平均可以留下3头母牛,采用性控冻精使高产奶牛一生可以产6~7头优质母牛。 3、提高生产性能加速低产奶牛的改良步伐,迅速扩大良种奶牛群,产奶性能得到快速提升,产奶效益不断增加。 以上三点都说明在使用性控冻精后可以显著的提高奶牛养殖的经济效益,同时与胚胎工程技术的结合可以使奶牛的品种改良一步到位。 二、性控冻精在我国应用的重要性和在国内的应用及效果 由于我国奶牛的品种质量较差,平均单产达不到 3500公斤/头,远低于世界平均单产5500公斤/头的水平,更达不到以色列、美国等奶业发达国家奶牛单产的一半。因此从我国实际情况分析,全国各地对良种牛的需求量非常大。奶牛是单胎动物,自然状态下,一头母牛一年只能繁殖一胎,终生平均也只能提供3头左右的母牛后代。由于奶牛自然繁殖率低,繁殖速度慢,年增长速度仅为15%,使得国内现有高产、良种奶牛扩繁速度受到很大限制;若从国外大批引进良种奶牛不但成本高,而且受到国外牛源和国家检疫的限制;因此,高产纯种奶牛的缺乏成为目前我国奶业快速发展的主要瓶颈。奶牛XY精子分离技术是目前最先进、最经济的良种繁育技术,X精子分离纯度已达到90%以上,分离后受胎率和常规冻精相当;这样意味着如果得到一头良种母牛犊,采用传统的冻精配种,则需要4剂精液,花费二年的时间;而采用性控冻精,只需要2剂,花费一年的时间。XY精子分离技术不论从繁育的成本还是从良种扩繁速度上考虑,都是畜牧业良种繁殖改良技术上的一场革命。 该产品已经在全国22个省市进行了广泛的推广和使用,以可信的质量和受胎率、母牛率在同类产品中最好(下表为部分抽样统计结果)得到了各级政府部门和养殖户(场)的称赞和认可。

流式细胞仪操作方法

一、样品制备 1、取样(大约1×106 cells),离心弃上清,以PBS洗两遍,逐滴加入1ml 70%的冷乙醇固定细胞,﹣20℃冻存过夜。分析时,离心弃上清,以PBS洗两遍,加入100μl的Rnase(GenScript试剂A),37℃水浴30min,然后再加入400μl的PI染液(GenScript试剂B),在4℃避光条件下孵育30min后即可上FCM检测。每个样品至少获取2×104cells, 二、上流式测细胞 1.1、打开液流抽屉,确认气压阀处于减压状态;打开金属挡板;取出鞘液桶,倒掉废液,将鞘液桶加至2/3满(一般可用三蒸水,做分选必须用PBS或FACSFLow),拧紧鞘液桶盖,安上金属挡板,保证管路畅通无扭曲。检查废液桶,将废液桶的气路和液路的快速连接阀打开,倒掉废液(加鞘液一定要倒废液)向废液桶中倒入400ml浓度为10%的次氯酸钠溶液,合上压力阀。确实盖紧桶盖,检查所有管路是否妥善安置。 1.2、依此接通电源、打开稳压器电源(指示灯由bypass变Ac putput)、变压器电源,稳定5分钟。将FACSCalibur开关打开,此时仪器功能控制钮的显示应是STANDBY。如果需要打印,打开打印机电源。打开电脑(密码:BDIS),等待屏幕显示出标准的苹果标志(先开仪器,后开电脑主机)。 1.3、将压力阀置于加压位置,轻拍过滤器,使气泡位于滤器的上方,打开管路开关,将过滤器中的气泡排除,关闭管路开关。若滤器管路中有气泡,打开连接头,挤出鞘液,以排除气泡。关闭液流抽屉。执行仪器PRIME功能一次,以排除Flowcell中的气泡(反向压力使鞘液从进样针中流出)。结束后自动STANDBY,5分钟后即可进行试验。 2.1、从苹果画面中选取CELLQuest,最大化,选散点图标,打开,Plot type选择Acq-analysis,X参数和Y参数分别取FSC-H、SSC-H(选择散点图主要是确定所需细胞的细胞群)。选择单参数图标,打开,Plot type选择Acq-analysis,X参数选择FL2-H 1024(此属于荧光,根据荧光染料的波长范围选择不同的荧光,本实验使用PI作为荧光染料,故选择FL2-H)

流式细胞仪操作方法

—、样品制备 1、取样(大约lx cells),离心弃上清,以PBS洗两遍,逐滴加入1 ml 70%的冷乙醇固定细胞,-20°C冻存过夜。分析时,离心弃上清,以PBS洗两遍,加入100|j 啲Rnase (GenScript试剂A), 37°C水浴30min,然后再加入400』的PI染液(GenScript试剂B),在4°C避光条件下孵ff30min后即可上FCM检测。每个样品至少获取2xl04cells, 二、上流式测细胞 1」、打开液流抽屉,确认气压阀处于减压状态;打开金属扌当板;取出鞘液桶,倒掉废液,将鞘液桶加至2/3满(一般可用三蒸水,做分选必须用PBS或FACSFLow),拧紧鞘液桶盖,安上金属扌当板,保证管路畅通无扭曲。检查废液桶,将废液桶的气路和液路的快速连接阀打开,倒掉废液(加鞘液一定要倒废液)向废液桶中倒入400ml浓度为10%的次氯酸钠溶液,合上压力阀。确实盖紧桶盖, 检查所有管路是否妥善安責。 1.2、依此接通电源、打开稳压器电源(指示灯由bypass变Ac putput)、变压器电源,稳定5分钟。将FACSCalibur开关打开,此时仪器功能控制钮的显示应是STANDBYo如果需要打印,打开打印机电源。打开电脑(密码:BDIS),等待屏幕显示出标准的苹果标志(先开仪器,后开电脑主机)。 1.3、将压力阀責于加压位置,轻拍过滤器,使气泡位于滤器的上方,打开管路开关,将过滤器中的气泡排除,关闭管路开关。若滤器管路中有气泡,打开连接头,挤出鞘液,以排除气泡。关闭液流抽屉。执行仪器PRIME功能一次,以排除Flowce呻的气泡(反向压力使鞘液从进样针中流岀)。结束后自动STANDBY, 5分钟后即可进行试验。 2.1、从苹果画面中选取CELLQuest,最大化,选散点图标,打开,Plot type选择Acq-analysis, X参数和丫参数分别取FSC-H、SSC-H (选择散点图主要是确定所需细胞的细胞群)。选择单参数图标,打开,Plot type选择Acq-onalysis, X 参数选择FL2-H 1024(此属于荧光,根据荧光染料的波长范围选择不同的荧光,本实验使用PI作为荧光染料,故选择FL2-H) Y Parameter Plot Source: |< Select File... X Parameter Mie:| Acquisition

《细胞实验》13 流式细胞仪检测细胞凋亡操作流程

流式检测细胞凋亡 Annexin V 检测细胞凋亡 (2) 实验原理 (2) 实验用品 (2) 操作步骤 (3) Annexin V Blocking (5) 凋亡细胞的DNA 断裂片段分析 (7) 实验原理 (7) 实验用品 (8) 操作步骤 (9) BrdU Flow Kits 检测细胞增殖 (12) 实验原理 (12) BrdU Flow Kits 试剂盒 (12) 结果分析 (17) 流式仪器设置指南 (18) 线粒体膜电位变化检测细胞凋亡 (22) 实验原理 (22) 实验用品 (22) 样本制备 (23) 结果分析 (24) 注意事项 (24) Active Caspase-3 检测细胞凋亡 (26) 实验原理 (26) 实验步骤 (27) 结果分析 (28)

Annexin V 检测细胞凋亡 实验原理 Annexin V 是检测细胞凋亡的灵敏指标之一。它是一种磷脂结合蛋白,可以与早期凋亡细胞的胞膜结合,而细胞质膜的改变是细胞发生凋亡时最早的改变之一。在细胞发生凋亡时,膜磷脂酰丝氨酸(PS) 由质膜内侧翻向外侧。Annexin V 与磷脂酰丝氨酸有高度亲和力,因而与细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸结合。由于在发生凋亡时,磷脂酰丝氨酸外翻的发生早于细胞核的改变,因此,与DNA 碎片检测比较,使用Annexin V 可以更早地检测到凋亡细胞。因为细胞坏死时也会发生磷脂酰丝氨酸外翻,所以Annexin V 常与鉴定细胞死活的核酸染料(如PI 或7-AAD)合并使用,来区分凋亡细胞(Annexin V+/核酸染料-) 与死亡细胞(Annexin V+/核酸染料+)。 实验用品 1. 一次性12×75mm Falcon试管。 2. PBS缓冲液:含0.1%NaN ,过滤后2-8°C保存。 3 3. 微量加样器和加样头。

流式细胞仪使用方法

流式细胞仪的使用方法及相关资料 仪器名称:流式细胞仪 生产厂家:美国贝克曼库尔特有限公司 使用方法: 一.开机程序 1.检查稳压器电源,打开电源,稳定5分钟。 2.打开储液箱,倒掉废液, 并在废液桶中加入400ml漂白水原液。打开压力阀,取出鞘液桶,将鞘液桶加至4/5满(一般可用三蒸水,做分选必须用PBS或FACSFlow),合上压力阀。确实盖紧桶盖,检查所有管路是否妥善安置。 3.将FACSCalibur开关打开,此时仪器功能控制钮的显示应是STANDBY,预热5-10分钟。排出过滤器内的气泡。 4.如果需要打印,打开打印机电源。 5.打开电脑,等待屏幕显示出标准的苹果标志。 6.执行仪器PRIME功能一次,以排除Flow cell中的气泡。 7.分析样品时,先用FACAFlow 或PBS进行HIGH RUN约2分钟。 做过分选后,每次开机后需冲洗管道:向分选装置上装上两个50ml离心管,不接通浓缩系统,摁下右下角白色按钮开始冲洗。待自动停止后接通浓缩装置,同上法冲洗一次。 二.预设获取模式文件(Acquisition Template Files) 1.从苹果标志中选择CELLQuest见一个新视窗,可利用此视窗编辑一个获取模式文件。 2.选取屏幕左列绘图工具中的Dot plot,绘出一个或多个Dot Plots(点图)。从Dot Plot对话框中选取Acquisition作为图形资料来源,并确定适当的x轴和y轴参数。 3.选取屏幕左列绘图工具中的Histogram,同上法可绘出Histogram(直方图)。4.将此视窗命名后储存于FACStation G3\BD Applications \CELLQuest Folder \EXP文件夹中,下次进行相同实验时可直接调用。 本计算机中已设定两个模式文件:ACQ和EXP,储存于FACStation G3\BD Applications \CELLQuest \EXP文件夹中,ACQ用于细胞DNA检测,EXP用于细胞表面标志分析。 三.用CELLQuest进行仪器的设定和调整 1.从苹果画面中选取CELLQuest,进入CELLQuest后在File指令栏中打开合适的获取模式文件。 2.从屏幕上方Acquire指令栏中,选取Connect to Cytometer(快捷键:+B)进行电脑和仪器的连机。将出现的Acquisiton Control对话框移至合适位置。3.从Cytometer指令栏中,开启Detectors/Amps、Threshold、Compensation、Status 等四个对话框,并将它们移至屏幕右方,以便获取数据时随时调整获取条件。也可以用+1,2,3,4获得此四个对话框。 4.在Detectors/Amps对话框中,先为每个参数选择适当的倍增模式(amplifier mode):线性模式Lin或对数模式Log。一般进行细胞表面抗原分析如分析外周

8. Attune NxT流式细胞仪标准操作规程

Attune NxT流式细胞仪标准操作规程 一、启动Attune NxT流式细胞仪 1、依次打开电脑主机电源、显示器及仪器电源。电脑用户名为INSTR-ADMIN, 密码为INSTR-ADMIN(全部大写)。 2、双击Attune软件图标,用户名为admin,密码为password1(全部小写)。 3、检查仪器内四个液体容器,清空“waste”桶中的废液,确认“Focusing fluid”、 “Wash solution”和“Shutdown solution”三个桶中的液体量是否满足实验要求(液面较高)。 4、点击startup,等待机器启动,整个过程大约需要3分钟。仪器指示灯显示为 绿色,软件左下角出现绿色对勾即为启动完成。 5、点击performance test,在2mL鞘液中滴入3滴performance tracking beads, 混匀后上机,点击Run Performance test。Performance test每天运行1次。这个过程大约耗时3分钟。 二、检测样品 1、点击new experiment新建一个实验,选择tube或plate实验,输入实验名称, 采用默认的Workspace和仪器设置参数,输入Tube Groups和Tube Samples 的数量,点击OK。 2、双击软件右侧Experiment下的Compensation,在弹出的对话框中选择相应的 荧光通道,点击OK。 3、双击UC后上样,点击Run,并调节电压,电压调好后点击Record,依次将 每个单染色的样本上样,并点击Record记录其荧光信号。 4、荧光补偿调好之后双击sample,上样后点击Run即可得到样本的荧光信号。 根据需要建立散点图并建门。 三、关闭Attune NxT流式细胞仪 1、确认”wash solution”和”shutdown solution”桶中液面高度至少在桶高的一半以 上,清空“waste”桶。 2、点击shutdown,选择Quick、Standard或Full,样品管内加入3ml 10% bleach 液,点击next启动关机程序,此时请勿关闭软件或者终止shutdown过程,关

BD_FACSCalibur流式细胞仪操作手册

BD FACSCalibur流式细胞仪 一、BD FACSCalibur基本结构 1.1仪器本体: 1. 电源开关:在BD FACSCalibur仪器右侧下方,先启动仪器本体,再打开计算机。 2. 光学系统:BD FACSCalibur 基本配有一支波长488 nm 的氩离子雷射 以BD FACSCalibur 基本型为例 FSC Diode 只收488 nm波长散射光 SSC PMT 只收488 nm波长散射光 FL1 PMT 荧光光谱峰值落在绿色范围(波长515-545 nm) FL2 PMT 荧光光谱峰值落在橙红色范围(波长564-606 nm) FL3 PMT 荧光光谱峰值落在深红色范围(波长 >650 nm)

3. 仪器面板: 仪器前方面板的右下方有三个流速控制键、及三个功能控制键。 流速控制: LO:样品流速:12 μl /min MED:样品流速:35 μl /min HI: 样品流速:60 μl /min 功能控制: ?RUN:此时上样管加压,使细胞悬液从进样针进入流动室。(正常显示绿色;黄色时表示仪器不正常,请检查是否失压。) ?STANDBY:无样品或暖机时之正常位置,此时鞘液停止流动,雷射功率自动降低。 ?PRIME:去除流动室中的气泡,流动室施以反向压力,将液流从流动室冲入样品管,持续一定时间后,以鞘液回注满流动室。PRIME 结束,仪器 恢复STANDBY状态。 4. 储液箱抽屉: 在主机左下方之储液箱抽屉。可向前拉开,内含鞘流液筒、废液筒、鞘液过滤器Sheath Filter,及空气滤网 Air filter。请注意气路减压阀VENT TOGGLE之位置。

流式细胞仪操作方法

一、样品制备 1、取样(大约1×106cells ),离心弃上清,以PBS洗两遍,逐滴加入1ml 70%的冷乙醇固定细胞,﹣20℃冻存过夜。分析时,离心弃上清,以PBS洗两遍,加入100μl 的Rnase(GenScript 试剂A),37℃水浴30min,然后再加入400μl 的PI染液(GenScript 试剂B),在4℃避光条件下孵育30min后即可上FCM检测。每个样品至少获取2×104cells , 二、上流式测细胞 1.1、打开液流抽屉,确认气压阀处于减压状态;打开金属挡板;取出鞘液桶,倒掉废液,将鞘液桶加至2/3 满(一般可用三蒸水,做分选必须用PBS或FACSFLo)w,拧紧鞘液桶盖,安上金属挡板,保证管路畅通无扭曲。检查废液桶,将废液桶的气路和液路的快速连接阀打开,倒掉废液(加鞘液一定要倒废液)向废液桶中倒入400ml浓度为10%的次氯酸钠溶液,合上压力阀。确实盖紧桶盖,检查所有管路是否妥善安置。 1.2、依此接通电源、打开稳压器电源(指示灯由bypass变Ac putput )、变压器电源,稳定5分钟。将FACSCalibur 开关打开,此时仪器功能控制钮的显示应是STANDB。Y如果需要打印,打开打印机电源。打开电脑(密码:BDIS),等待屏幕显示出标准的苹果标志(先开仪器,后开电脑主机)。 1.3、将压力阀置于加压位置,轻拍过滤器,使气泡位于滤器的上方,打开管路开关,将过滤器中的气泡排除,关闭管路开关。若滤器管路中有气泡,打开连接头,挤出鞘液,以排除气泡。关闭液流抽屉。执行仪器PRIME功能一次,以排除Flowcell 中的气泡(反向压力使鞘液从进样针中流出)。结束后自动STANDB,Y 5 分钟后即可进行试验。 2.1、从苹果画面中选取CELLQues,t 最大化,选散点图标,打开,Plot type 选择Acq-analysis ,X参数和Y参数分别取FSC-H、SSC-H (选择散点图主要是确定所需细胞的细胞群)。选择单参数图标,打开,Plot type 选择Acq-analysis ,X参数选择FL2-H 1024(此属于荧光,根据荧光染料的波长范围选择不同的荧光,本实 验使用PI作为荧光染料,故选择FL2-H)

流式细胞仪上机培训手册

流式细胞仪上机操作培训手册 一、样本处理 以PBMC表面抗原的流式检测步骤为例 1)取样。取新鲜提取或冻存后复苏的PBMC; 2)编号。根据实验设计,标记好流式管,如每份PBMC设两管: a)1号管:相应同型对照; b)2号管:CD3,CD4,CD8,CD56四标管; 3)加样。用移液器取100ul细胞/管(约1×106个细胞/管),分别加到已经标记 好的流式管底部; 4)洗涤。加入1ml PBS/管,涡旋1600rpm/min,离心6min; 5)染色。弃上清,加入100 μl PBS/管涡旋混匀细胞,并根据实验设计,向各流 式管中加入相应的荧光素标记抗体,混匀,室温避光孵育30min(操作尽量保持在避光条件下进行。) 6)洗涤。加入1ml PBS/管,涡旋1600rpm/min,离心6min; 7)重悬。弃上清,加入0.5ml PBS/管,混匀,上机检测(可选择BD FACSCanto II或BD Accuri C6)。 (注:若不能及时上机,应加入4%多聚甲醛固定,并于4℃避光保存。)8)试验结果分析。(注:实验过程中如果进行多色标记,需要调节荧光补偿)。参考值:

二、上机检测 BD FACSCanto II简要操作流程启动流式细胞仪 1 打开流式细胞仪电源 2 启动计算机,打开软件登录 3 确保软件连接到流式细胞仪 必要时,点击Cytometer > connect 检查液体水平 1 启动流式细胞仪后,检查液体水平 低液面水平或者废液桶满都用红色指示。

2 如果液流车未自动开启,选择Cytometer > Fluidics Startup。 3 当液流启动完成后,点击OK关闭对话框。 检查气泡 1 在检查完液体水平后,开启流动室门,检查流动室中是否有气泡。 2 如果没有看到气泡,进行第5步。如果看到气泡,点击Cytometer > Cleaning

流式细胞仪操作流程

查看文章 流式细胞仪-细胞凋亡检测Ⅰ 2008-11-01 10:20 一PI单染色法 基本原理 其原理主要是根据细胞凋亡时在细胞、亚细胞和分子水平上所发生的特征性改变。这些改变包括细胞核的改变、细胞器的改变、细胞膜成分的改变和细胞形态的改变等,其中细胞核的改变最具特征性,主要包括以下几个方面: 1. 细胞核的改变:由于凋亡细胞核的改变,造成各种染色体荧光染料对凋亡细胞DNA可染性发生改变。研究表明,用各种染色体荧光染料对经固定的凋亡细胞进行染色,其DNA可染性降低。许多学者把这种DNA可染性的降低认为是凋亡细胞的标志之一。 2. 光散射特性:凋亡细胞形态上的改变影响它们的光散射特性。在流式细胞仪上,前散射光与细胞的大小有关,而侧散射光反映的是光在细胞内的折射作用,与细胞内的颗粒多少有关。在细胞凋亡时,细胞固缩,体积变小,故前散射光降低,这一特性往往被认为是凋亡细胞的特点之一。此外细胞凋亡时由于染色体降解,核破裂形成,细胞内颗粒往往增多,故凋亡细胞侧散射光常增加。细胞坏死时,由于细胞肿胀,其前散射光增大;侧散射光在细胞坏死时也增大,因此可根据前散射光和侧散射光区别凋亡细胞和坏死细胞。但需要注意的是,根据前散射光和侧散射光判断凋亡细胞的可靠性受被检测细胞形态上的均一性和核胞浆比率影响很大。因此在某些淋巴细胞凋亡中,用光散射特性检测凋亡的可靠性较好,而在肿瘤细胞凋亡中,其可靠性就较差。根据光散射特性检测凋亡细胞最主要的优点是可以将光散射特性与细胞的表面免疫荧光分析结合起来,用以区别经这些特殊处理发生选择性凋亡的淋巴细胞亚型。也可用于活细胞的分类。 试剂与仪器 l PBS溶液(配制方法见附录); l PI染液:将PI溶于PBS(pH7.4)中,终浓度为100ug/ml。用棕色瓶4℃避光保存。 l 70%乙醇 l 400目筛网 l 流式细胞仪 实验步骤 1. 收集细胞{数目约(1~ 5)×106个/mL},500 ~ 1000 r/min离心5min,弃去

相关文档
最新文档