细胞悬浮培养研究进展

细胞悬浮培养研究进展
细胞悬浮培养研究进展

细胞悬浮培养研究进展

「摘要」:细胞在培养液中呈悬浮状态生长与增殖的培养技术。是一种通过振荡或转动装置使细胞始终处于分散悬浮于培养液内的培养方法。非贴壁依赖性细胞的一种培养方式。

「关键词」:植物细胞的悬浮培养愈伤组织动物细胞悬浮培养展望

「引言」:植物培养细胞中含有各种特殊的代谢产物,如生物碱、色素、甾体、萜等药

用成分及香精等, 有的含量很高。因此,利用植物细胞培养技术生产药物已成为当代

生物技术的一个重要领域,特别是培养药用植物细胞直接生产天然药物的研究已成热点。动物细胞培养在生物技术和生物医药研究中已得到了广泛的应用,通常动物细胞培养

为病毒疫苗的生产提供培养基质同时也是多种生物药品生产不可缺少的工具包括单克

隆抗体和基因治疗产品等。

(一)植物细胞悬浮培养

植物细胞能合成许多具有重要价值的次级代谢产物,它们可作为农药、杀虫剂、调味剂及香精等。这些产物传统上是从天然植物中直接提取,但天然植物生长周期较长,而且生长还受地域和环境因素的限制,所以采用直接提取具有较大的局限性。化学合成法已用于多种产品的生产,但是有些物质不能通过化学法合成,或虽能合成,却比较困难。植物细胞培养可大规模生产代谢产物,现已成为生产某些高价值产品的重要途径。一般情况下,培养细胞中的次级代谢物含量明显高于原来植物细胞中的含量,而且这种方法还能避免地域和环境的影响。19 0 2年,Haberlandt在营养液中成功地培育了单个植物细胞,尽管未能使其分裂生长但为植物细胞培养翻开了新的一页。此后,许多科学家在植物细胞培养方面进行了研究,特别是近二十年里,植物细胞培养取得了飞速发展,悬浮培养日益完善,固定化培养逐步显示其优势,膜培养技术也已崭露头角。以下介绍有关植物和动物细胞的悬浮培养情况。

1.悬浮培养特点

植物细胞培养与微生物有许多相似的地方,但两者又存在着明显的不同,如植物细胞对剪切力敏感,培养要求小通气量,还需要C仇和光照等条件。

1.1对剪切力敏感:植物细胞的个体大,细胞壁僵脆且具有大的液泡,这些特性

决定了其对剪切十分敏感。细胞形态和聚集状态改变,或影响细胞代谢,降低产率;或使细胞自溶,胞内化合物释放;也可能导致细胞的活性丧失。研究表明,不同细胞系对剪切力敏感性不同,日葵相对不太敏感,对剪切力。

1.2 结团:多数植物细胞有1 0一100um大,呈球形或柱形。除了少数细胞外,绝大多数植物细胞在悬浮培养时是结成直径至10um,大至几毫米的小团.其主要原因是细胞分化后不能很好地分开,外生长后期分泌的多糖类物质也有助于结团。过大细胞团容易下沉,造成混合困难。

1.3 多泡沫:细胞的结团、高浓度大分子、培养过程中分泌的多糖类等物质,造成培养液的粘度增高,起泡严重。在气流的作用下,许多细胞在气液界面聚集,使其脱离发酵液主体,阻碍了培养液的正常循环流动,造成细胞浓度急剧下降。

1.4 流体学特征:研究显示,植物细胞在高浓度培养时培养液为假塑性流体。吴兆亮等[ s ] 采用颗粒状琼脂一水物系代替植物细胞悬浮培养体系,观察到培养液随细胞浓度的增大从牛顿向非牛顿型的转变。他们还研究了两相培养系统的流体特征,结果表明有机溶剂浓度低于 1 0 % 时,对植物细胞悬浮培养体系流变性仅有很小的影响,而且是促使其体系向牛顿型流体靠近。相对而言,粘度小的有机溶剂对细胞浓度较小的植物细胞悬浮培养体系流变特性影响大些,而粘度大的有机溶剂则相反。这对有机溶剂的选择和反应器的设计都有一定的指导意义.

2.植物细胞悬浮培养的应用研究

2.1药用植物细胞悬浮培养的研究概况

2.1.1 药用植物细胞悬浮培养的优点与应用现状

植物细胞悬浮培养是在完全人工控制的条件下进行,具有以下优点:不受地区、季节、土壤及有害生物的影响,可以周年生产且生产周期较短;通过改变培养条件和选择优良培养体系得到超过整株植物产量的代谢产物,例如通过新疆紫草的细胞培养获得了比原植株含量高6倍的紫草素,甘草悬浮

培养细胞中所含的甘草酸铵含量高于其他材料;可利用基因工程或创新的合成路线,对有效成分的合成进行遗传操作,提高所需次生代谢产物含量;也可进行生物反应器细胞培养大规模生产有效的次生代谢产物[1-4]。目前用于细胞培养的药用植物有200多种,可产生500多种有效成分,如培养人参细

胞生产保健药物人参皂甙、紫草植物生产疗伤药物紫草宁、黄连细胞生产抗菌药物小蘖碱、长春花细胞生产阿吗

碱、紫松果菊细胞生产免疫活性多糖、红豆杉细胞生产抗肿瘤药物紫杉醇等。从细胞培养中得到的药用成分有:喜树碱、茛菪碱、小蘖碱、奎宁、地高辛、天仙子胺、胆固醇、利血平、山萆、芥皂疳元、胰岛素等;实现规模化生产的有:中国科学院植物研究所的紫草培养、华中理工大学的红豆杉培养和中国药科大学的人参培养[2]。

2.2 植物细胞悬浮培养的特点及实现规模化生产的限制因素

植物细胞的特点是易于成团聚集,培养前期,年幼的细胞,速分裂形成的新细胞不能及时分开,细胞便积聚在一起;对数生长后期,由于多糖物质及蛋白质的分泌,细胞易相互粘附。聚集的细胞团不利于植物细胞培养,因为在植物细胞悬浮培养时,即使搅拌充分和营养物浓度足够高,氧及营养物也因外围细胞及多糖、蛋白质的阻碍难以扩散至内部细胞。其次,植物细胞生长较缓慢,培养过程较长,长时间保持无菌有一定难度。值得注意的是,液泡占据了植物细胞的大部分体积,使得细胞对渗透压及物理压力变化很敏感,同时对培养中的搅拌因素也非常敏感。如果搅拌方法不适当,常可破坏这种具大液泡的细胞,释放出细胞内积累的有毒物质和胞内某些水解酶类,从而伤害其他培养细胞。因此,药用植物细胞培养只有少数种实现规模生产,原因有二:一是增殖率不高,产物不稳定;二是缺乏适合植物细胞大规模培养的生物反应器[3]。今后研究重点应放在大规模培养技术的研究上,特别是研制出适合植物细胞生长特点的植物细胞反应器。

3药用植物细胞悬浮培养过程

植物细胞规模化培养包括愈伤组织诱导、愈伤组织继代培养和细胞悬浮大量培养。

3.1 药用植物愈伤组织诱导

植物细胞悬浮培养是指将离体的细胞或小细胞团悬浮在液体培养基中进行培养,细胞多来源于愈伤组织,因此,获得生长速度快、疏松型愈伤组织是植物细胞悬浮培养的基础。

3.1.1 外植体

外植体的选择对植物愈伤组织的获得有很大影响。一般用于诱导愈伤组

织的外植体以幼嫩的组织或器官及种子萌发的无菌苗为好[5]。不同植物可选择的外植体差异较大,禾本科的幼穗、成熟胚、成熟种子、花药、胚轴、胚根、芽尖等均可作为外植体诱导愈伤;草坪草以幼穗为外植体往往可获得较成熟种子更高的愈伤诱导率,但材料受季节限制不易获得,通常用成熟种子诱导愈伤组织;节和真叶是黄芩诱导愈伤组织的较好外植体[6]。木本及花卉则往往以叶片、茎尖、芽尖、花药等为外植体[7],但南方红豆杉茎段的愈伤组织诱导率则高于叶片[8];虎杖以叶柄为外植体更容易诱导出疏松的愈伤组织[9];杜仲上胚轴和子叶更容易诱导疏松的愈伤组织[10]。选择合适的外植体才能获得生长快、疏松型的愈伤组织,为进行细胞悬浮培养生产打好基础。

3.1.2 植物生长调节剂不同的生长调节剂种类和浓度配比对愈伤组织诱导有明显的影响。诱导愈伤组织一般使用基本培养基附加2,4-D和6-BA两种植物生长调节剂组合。2,4-D对于愈伤组织的诱导与改良起很大的作用,能防止愈伤组织褐变[4]。

3.2 继代培养

3.2.1 愈伤组织继代培养愈伤组织的挑选是建立良好悬浮体系的关键。宜挑选质地疏松、易分散、不分泌粘液、颜色淡黄的愈伤颗粒进行继代培养。继代培养时注意保持愈伤组织的极性,即愈伤组织原有的上下面,以利于愈伤组织继代后尽快适应新环境和恢复生长。

3.2.2 细胞悬浮培养及其继代挑选生长力旺盛、表面有颗粒突起、疏松易碎的愈伤组织,并用镊子尽量夹碎后转入液体培养基,液体培养基在摇床(100~120 r/min)上连续振荡培养使细胞分散,得到细胞悬浮液。悬浮培养细胞的生长曲线为S型,元宝草细胞生长分为延滞期(0~4 d),对数生长期(4~10 d)和静止期(10~18 d),元宝草在一个培养周期内细胞鲜质量可增加5倍左右[14]。对数生长期后,由于培养基中的营养物质减少,细胞代谢积累了大量有害物质,使细胞生长环境发生变化,导致细胞生长速度减慢。因此,继代培养应选择在对数生长末期或静止期初进行。悬浮细胞培养周期一般为14~20 d[5]。黄山药悬浮培养20 d左右生长量达到最大[15]。保持新鲜培养基适当的比例也是必要的,继代过程中如接种量大,若养分不足,致使细胞死亡数增多[16]。

3.3植物细胞悬浮培养

在悬浮培养初期,愈伤组织从固体培养转移到液体培养过程中,易出现褐化现象,提高培养基中2,4-D浓度,可起到抑制褐化的作用[6,17]。控制植物细胞培养过程中溶氧浓度对于细胞的生长也具有十分重要的意义,提高摇瓶转速并在一定范围内提高溶氧浓度能加速细胞生长[18]。氧促进某些次生代谢产物的产生。

(二)动物细胞悬浮培养

动物细胞培养在生物技术和生物医药研究中已得到了广泛的应用,通常动物细胞培养为病毒疫苗的生产提供培养基质同时也是多种生物药品生产不可缺少的工具。包括单克隆抗体和基因治疗产品等,另外为了研究体内的生物化学途径病毒产物病理学机制及细胞内或细胞间反应等。动物细胞培养在大量的生物检测体系中也得到了应用。动物细胞与植物细胞和微生物细胞不同动物细胞没有细胞壁因此在培养时对剪切力很敏感要求也更为严格,传统的动物细胞采用方瓶和转瓶来培养这方面的技术已经成熟,但是该方法存在细胞密度低病毒产率低生产成本高劳动强度大等缺点,不能满足现代生物制苗的要求诞生于20世纪60年代的悬浮培养技术可以进行大规模细胞培养能够获得大量的病毒产物和高质量的疫苗产品在国外疫苗生产中普遍应用,该技术是从转瓶的贴壁培养发展来的是在生物反应器中人工条件下高密度大规模培养动物细胞用于生物制品生产的技术,根据细胞是否贴壁分为无载体的悬浮细胞培养和贴壁细胞微载体悬浮培养前者已在内蒙古生药厂口蹄疫生产中广泛使用,悬浮培养技术最大优势是通过更为精确有效的工艺控制手段,在获得最大产量的同时能稳步提高产品的质量。

4细胞悬浮培养的前景

动物细胞悬浮培养技术取得了许多进展但是在细胞的大规模生产中还是存在一些尚待解决的问题:①商品化的微载体虽然很多,但至今没有哪一种微载体适用于培养各种类型的细胞,微载体类型的选择也受诸多因素的制约。②悬浮细胞培养目前大多还是一种单层的培养方式,而在体内组织细胞的生长发育过程是在一定的三维立体的内环境条件下进行的,细胞之间的相互信号传递对于调节细胞的增殖等有着重要的影响.常规的体外单层培养方法不能提供组织正常生长发育所需三维环境条件通常的后果是细胞发生转化现象导致培养的细胞不仅失去了正常的形态而且失去了其生化与功能性质.③由于

细胞对搅拌系统所引起的剪切力的敏感性细胞达到高密度后的营养供给代谢产物的堆积及传代和扩大培养等诸多因素的影响,限制了细胞扩增的效率. 植物培养细胞中含有各种特殊的代谢产物,如生物碱、色素、甾体、萜等药用成分及香精等, 有的含量很高[2]。因此,利用植物细胞培养技术生产药物已成为当代生物技术的一个重要领域,特别是培养药用植物细胞直接生产天然药物的研究已成热点。目前,我国已建立三七、三分三、人参、西洋参、三尖杉、紫草、洋地黄、长春花、丹参、红豆杉、毛地黄、黄连及雷公藤等十几种药用植物的液体培养系统,有效成分达到或超过原植株。总之,植物细胞大规模培养生产新药具有广阔的前景。随着对这一技术的深入研究,必将总结出一套通用的植物细胞工厂化生产药物的技术线路,以保护野生资源匮乏的药用植物,并开发更多有效成分珍贵、临床价值高的新药,如金线莲、冬虫夏草等,更好地造福于人类。

参考文献:

【1】李冬杰,等. 药用植物细胞悬浮培养研究进展[J]. 河北林业科技, 2003(4): 22 -23.

【2】边黎明,等. 植物生物反应器细胞悬浮培养研究进展[J]. 南京林业大学学报(自然科学版),2004,28(4): 101-104.

【3】李晓蕙,等. 植物细胞培养技术的发展与应用[J]. 安徽农学通报, 2006,12(5): 74-75.

【4】陈晓亚,等. 植物生理与分子生物学[M]. 北京: 高等教育出版社, 2007: 128.

【5】方强,等. 黄芩愈伤组织诱导和细胞培养研究进展[J]. 天然产物研究与开发, 2008,20(6): 187-192.

【6】方文娟,等. 植物细胞悬浮培养影响因子研究[J]. 生物技术通报, 2005(5): 11-15.

【7】过琴媛王辉.微载体培养动物细胞技术的研究进展J.微生物学免疫学进展200735173~75.

【8】刘志伟,郭勇,张晨.植物细胞培养生物反应器的研究进展.现代化工,,1999(19)8,14:-16

谭文松戴干策陈因良. 动物细胞培养用生物反应器设计原理J 生物工程学报1996 12 2 152-157.

【9】张前程张凤宝姚康德等. 动物细胞培养生物反应器研究进展J 化工进展2002 21 8 560-563.

【10】谭文松陆健张元兴. 气升式生物反应器在杂交瘤细胞培养中的应用J 生物工程学报1996。12。4 :477-478

【11】商桂敏,等. 剪切应力对红豆杉细胞悬浮培养的影响及CFD模拟研究[J]. 高校化学工程学报, 2002,16(5): 542-548.

【12】刘春朝,等. 剪切力对植物细胞悬浮培养的影响[J]. 化工冶金, 1998,19(4): 379-384.

实验3---悬浮细胞的培养

本科学生实验报告 姓名王冬梅学院_生命科学学院___专业_应用生物教育_班级__08应生A班___实验课程名称___植物组培实验_________指导教师及职称_龙维彪__ 开课学期2010 至_2011 学年_下_学期上课时间2011年3月~ 6月 云南师范大学教务处编印

实验三:胡萝卜细胞的悬浮培养 一、实验目的: 了解植物细胞悬浮培养的基本原理,通过实验掌握植物细胞悬浮培养的方法和技术。并通过实验练习和巩固无菌操作技术 二、基本原理 利用固体琼脂培养基对植物的离体组织进行培养的方法在植物遗传实验中已经得到广泛的应用。但这种方法在某些方面还存在一些缺点,比如在培养过程中,植物的愈伤组织在生长过程中的营养成分、植物组织产生的代谢物质呈现一个梯度分布,而且琼脂本身也有一些不明的物质成分可能对培养物产生影响,从而导致植物组织生长发育过程中代谢的改变而利用液体培养基则可以克服这一缺点,当植物的组织在液体培养基中生长时,我们可以通过薄层震荡培养或向培养基中通气用以改善培养基中氧气的供应。植物细胞的悬浮培养是指将植物细胞或较小的细胞团悬浮在液体培养基中进行培养,在培养过程中能够保持良好的分散状态。这些小的细胞聚合体通常来自植物的愈伤组织。 一般的操作过程是把未分化的愈伤组织转移到液体培养基中进行培养。在培养过程中不断进行旋转震荡,一般可用100~12Or/min 的速度进行。由于液体培养基的旋转和震荡,使得愈伤组织上分裂的细胞不断游离下来。在液体培养基中的培养物是混杂的,既有游离的单个细胞,也有较大的细胞团块,还有接种物的死细胞残渣。 在液体悬浮培养过程中应注意及时进行细胞继代培养,因为当培养物生长到一定时期将进入分裂的静止期。对于多数悬浮培养物来说,细胞在培养到第18~25d 时达到最大的密度,此时应进行第一次继代培养。在继代培养时,应将较大的细胞团块和接种物残渣除去。若从植物器官或组织开始建立细胞悬浮培养体系,就包括愈伤组织的诱导、继代培养、单细胞分离和悬浮培养。目前这项技术已经广泛应用于细胞的形态、生理、遗传、凋亡等研究工作,特别是为基因工程在植物细胞水平上的操作提供了理想的材料和途径。经过转化的植物细胞再经过诱导分化形成植株,即可获得携带有目标基因的个体。 三、器材 超净工作台、高压蒸汽灭菌器、恒温培养箱、恒温空气摇床、镊子、锥形瓶等。 四、操作步骤: 胡萝卜细胞的悬浮培养培养基的配制 配方:MS+RT(0.5mg/l)+2,4-D(1)+LH(100)+C(30g/l) PH:5.8 胡萝卜细胞的悬浮培养 将前面培养好的胡萝卜愈伤组织。如下:

细胞悬浮培养

细胞悬浮培养 摘要: 悬浮培养是非贴壁依赖性细胞的一种培养方式,是一种十分有用的实验体系,在液体状态下便于细胞和营养物质的充分接触和交流,细胞状态可以相对保持一致,因此有利于在细胞水平上进行各种遗传操作和生理生化活动的研究,同时为植物细胞的大规模培养提供前期技术基础。但该技术目前在国内尚未得到广泛应用,生物制品生产仍主要采用病毒产率低、生产成本高、劳动强度大的转瓶细胞培养方式。随着现代生物技术发展,利用细胞悬浮培养技术进行生物制品生产是生物制药行业发展的必然趋势。 关键词:单个细胞细胞悬浮培养愈伤组织同步化

1.细胞悬浮培养的定义 定义1:细胞悬浮培养(cell suspension culture)是指将单个游离细胞或小细胞团在液体培养基中进行培养增殖的技术[1]。 应用学科:细胞生物学(一级学科);细胞培养与细胞工程(二级学科) 定义2:在流动的液体培养基中培养非贴壁的悬浮细胞或小细胞团的细胞或组织的培养方法。细胞附着在微运载体上的培养也是一种悬浮培养。 应用学科:生物化学与分子生物学(一级学科);方法与技术(二级学科)2.单细胞制备的方法 2.1 机械法 早期用机械法分离叶组织单细胞。Ball和joshi(1965)、joshi和noggle(1967),以及joshi和Ball(1968)曾先后用小解剖刀从花生成熟叶片中刮离体细胞,这些离体细胞可直接在液体培养基中培养,很多游离细胞都能成活,并持续地进行分裂。随后,人们用机械法相继从菠菜、大豆和石刁柏等多种植物中分离得到叶肉细胞,并能够分裂和形成愈伤组织。Rossini(1972)指出,只有在薄壁组织排列松散、细胞间接触点很少时,用机械法分离叶肉细胞才能取得成功[2]。 2.2 酶解法 酶解法分离单细胞主要是利用果胶酶将细胞之间的中胶层解离,获得分散的细胞。人们最早用果胶酶处理烟草叶片,分离到大量有代谢活性的叶肉细胞,将这种方法用到了18种其它草木植物上也获得成功。由于果胶酶不仅能降解细胞之间的中胶层,而且还能软化细胞壁,因此在用酶解法分离细胞的时候必须对细胞给予渗透压保护,即在酶液中加入一定浓度的渗透压稳定剂。 酶解法一般利用叶片作为分离细胞的材料,但此法不能分离单子叶作物如小麦、大麦和玉米的叶肉细胞[3]。 2.3 愈伤组织诱导法 以愈伤组织作为细胞悬浮培养的细胞来源,首先必须诱导出适宜的愈伤组织。用于建立悬浮系的愈伤组织必须有较好的松散行,使之在悬浮培养的起始阶段细胞容易打散。同时,愈伤组织还必须具备较强的增殖和再生能力。诱导符合这些要求的愈伤组织,首先,必须选择适宜的植物外植体材料。其次,培养基的附加成分对建立疏松易散的愈伤组织具有较大的影响。

悬浮细胞的传代培养

悬浮细胞的传代培养 关键词:细胞菌株标准物质中心北京标准物网 1)训练目的 熟练掌握悬浮细胞的传代培养法。 2)买验原理 体外培养的原代细胞或细胞株要在体外持续地培养就必须传代,以便获得稳定的细胞株或得到大量的同种细胞,维持细胞种的延续。放平细胞瓶,当发现悬浮细胞长到瓶壁85%~90%时,从容器中取出细胞,以1:2或1:3以上的比率转移到另外的容器中进行培养,即为悬浮细胞的传代培养。 3)实验材料 CO2培养箱、倒置显微镜、超净工作台、培养瓶、试管、移液管、巴斯德吸管、废液缸、75%酒精棉球、酒精灯、悬浮细胞株、完全培养基(RPMLl640或DMEM)。 4)操作步骤 A.热培养用液:把已经配制好的培养液瓶子放人37℃水浴锅内预热。

B.用75%酒精棉球擦拭经过紫外线照射的超净工作台和双手。 C.正确摆放使用的器械:保证足够的操作空间,不仅便于操作而且可减少污染。 D.点燃酒精灯:注意火焰不能太小。 E.超净工作台内拆除已消毒空培养瓶的外包装。 F.取出预热好的培养用液:取出已经预热好的培养用液,用酒精棉球擦拭好后放人超净工作台内。 G.从培养箱内取出悬浮细胞:注意取出细胞时要旋紧瓶盖,用75%酒精棉球擦拭显微镜的台面,再在镜下观察细胞。 H.静置:超净工作台内将需传代的培养瓶直立静置半小时左右,待大部分细胞都沉降到细胞瓶底,轻轻吸出1/2~2/3的旧培养基。 I.分瓶:加入新鲜培养液,按1:2或1:3的比例分装到2或3个培养瓶中,再逐瓶加入新鲜培养基。 若想节约时间,并且离心对细胞影响也不大,可采用离心的方式取代静止分离。将培养瓶中的悬浮细胞从培养箱中取出,超净工作台内将所有含细胞的培养液转入离心管,1000r/min。离心5 min,弃上清。加入定量新鲜培养基重悬后以1:2或1:3的比例分装到2或3个培养瓶中培养。

植物细胞悬浮培养技术

植物细胞悬浮培养技术 一、基本原理 利用固体琼脂培养基对植物的离体组织进行培养的方法在某些方面还存在一些缺点,比如在培养过程中,植物的愈伤组织在生长过程中的营养成分、植物组织产生的代谢物质呈现一个梯度分布,而且琼脂本身也有一些不明的物质成分可能对培养物产生影响,从而导致植物组织生长发育过程中代谢的改变而利用液体培养基则可以克服这一缺点,当植物的组织在液体培养基中生长时,我们可以通过薄层震荡培养或向培养基中通气用以改善培养基中氧气的供应。植物细胞的悬浮培养是指将植物细胞或较小的细胞团悬浮在液体培养基中进行培养,在培养过程中能够保持良好的分散状态。这些小的细胞聚合体通常来自植物的愈伤组织。 一般的操作过程是把未分化的愈伤组织转移到液体培养基中进行培养。在培养过程中不断进行旋转震荡,一般可用100~12Or/min 的速度进行。由于液体培养基的旋转和震荡,使得愈伤组织上分裂的细胞不断游离下来。在液体培养基中的培养物是混杂的,既有游离的单个细胞,也有较大的细胞团块,还有接种物的死细胞残渣。 在液体悬浮培养过程中应注意及时进行细胞继代培养,因为当培养物生长到一定时期将进入分裂的静止期。对于多数悬浮培养物来说,细胞在培养到第18~25d 时达到最大的密度,此时应进行第一次继代培养。在继代培养时,应将较大的细胞团块和接种物残渣除去。若从植物器官或组织开始建立细胞悬浮培养体系,就包括愈伤组织的诱导、继代培养、单细胞分离和悬浮培养。目前这项技术已经广泛应用于细胞的形态、生理、遗传、凋亡等研究工作,特别是为基因工程在植物细胞水平上的操作提供了理想的材料和途径。经过转化的植物细胞再经过诱导分化形成植株,即可获得携带有目标基因的个体。 二、器材 超净工作台、高压蒸汽灭菌器、恒温培养箱、磁力搅拌器、恒温空气摇床、镊子、锥形瓶、水稻种子 三、操作步骤 1.配制培养基 按照培养基配方取各种药品,最后用蒸馏水定容到所需体积。所配制的培养基经高压蒸汽灭菌后备用,固体琼脂培养基分装在250mL 的锥形瓶内,每瓶约分装30mL。 2.水稻种子的消毒 (1)将种子置于无菌的培养皿内,以体积分数95%的酒精消毒1~2min。 (2)取出后用无菌水冲洗2~3 遍。 (3)将种子放入25.0g/L 的次氯酸钠溶液中轻轻摇动后,浸泡60min 。 (4)取出后用无菌水冲洗,将次氯酸钠溶液充分洗净。 3. 接种 在超净工作台内,将灭菌后的水稻种子接到诱导愈伤组织的固体培养基上,每个培养瓶接5~10 粒种子。接种完毕后用封口膜将培养瓶封好,放在26℃的恒温培养箱中进行黑暗培养。 4.悬浮培养的开始: 当得到愈伤组织后,将其转人到AA 液体培养基中。注意愈伤组织块应小于3mm . 若组织块较大可用无菌解剖刀将其分割成小块。液体培养基分装在250mL 的锥形瓶内.接种完毕后将瓶口用封口膜封好,把培养瓶放到恒温摇床上进行震荡培养。调整摇床的旋转速度,使之为120r/min。培养温度为26℃,在黑暗中培养。 5.悬浮培养物的保持 进行悬浮培养后要不断进行观察,由于培养物的继代培养与培养瓶内培养物的密度及细胞

悬浮细胞培养技术课件

悬浮细胞传代及细胞计数 一、细胞传代 实验目的:掌握悬浮细胞传代技术。进一步掌握细胞培养的操作技术。 实验原理: 培养细胞生长一定时间后,需分离再培养,否则细胞因生存空间不够,细胞密度过大,致营养不足而引起细胞衰老、停止生长甚至死亡。为了维持细胞的存活和生长,必须进行再培养,即将原培养瓶内细胞分离、稀释、接种到新培养瓶内继续扩大培养。 实验用品: (一)仪器 净化工作台、离心机、恒温水浴箱、冰箱(4℃、-20℃、-70℃)、倒置相差显微镜、培养箱; (二)玻璃器皿 吸管(弯头、直头)、培养瓶、废液缸、 (三)塑料器皿 吸头、枪头、胶塞、移液管、15ml离心管、离心管架 (四)其他物品 微量加样枪、计数板、记号笔、移液枪 (五)试剂 1640培养液、PBS 操作步骤: 1.准备: 打开培养液,PBS; 取出离心管,拧开管盖,管盖倒放。从吸管筒中依次取出吸管,装上吸 头,插入离心管备用。 2.从培养箱内取出细胞,放在显微镜下观察其生长状态、密度。 3.首先观察培养板孔中培养液量。用吸管分别吸出两个孔中的细胞连同培养液, 转入离心管中。再另取一只吸管吸取PBS,放入培养板孔中,轻轻吹打孔壁,

吸出转入离心管。 4.离心,设置离心机1000转/分,4-5分钟。 5.取出离心管,轻轻吸出上清,倒入废液缸。吸取培养液约7ML放入离心管, 轻轻吹打细胞,使之均匀悬浮。 6.吸取1ML细胞悬液1ML转入EP管中,备计数用。 7.其余的细胞分别放入六个孔中,每孔约1ML。 8.吸取培养液加入板孔中至1/3孔容量。 9.镜下观察细胞是否分布均匀,放入培养箱培养。 二、细胞计数及生长曲线测定 培养细胞生长过程:潜伏期→指数增生期→停滞期 潜伏期(latent phase) 细胞接种后,先经过一个在培养液中呈悬浮状态的悬浮期.此时,细胞质回缩, 胞体呈圆球形.然后细胞贴附于载体表面,称贴壁,悬浮期结束. 细胞贴壁速度与细胞种类, 培养基成分,载体的理化性质等密切相关。一般情况下,原代培养细胞贴壁速度慢,可达10-24 小时或更多, 而传代细胞系贴壁速度快, 通常10-30 分钟即可贴壁。细胞贴壁后还需经过一个潜伏阶段,才进入生长和增殖期.原代培养细胞潜伏期长,约24-96 小时或更长, 连续细胞系和肿瘤细胞潜伏期短,仅需6-24 小时。 (2) 指数增生期(logarithmic growth phase) 这是细胞增殖最旺盛的阶段,分裂相细胞增多。指数增生期细胞分裂相数量可作为判定细胞生长是否旺盛的一个重要标志。通常以细胞分裂相指数(Mitotic index, MI)表示,即细胞群中每1000 个细胞中的分裂相数。一般细胞的分裂指数介于0.1%-0.5%,原代细胞分裂指数较低,而连续细胞和肿瘤细胞分裂相指数可高达3%-5%。指数增生期的细胞活力最好时期,是进行各种实验最佳时期,也是冻存细胞的最好时机。在接种细胞数量适宜情况下,指数增生期持续3-5 天后,随着细胞数量不断增多、生长空间减少,最后细胞相互接触汇合成片。正常细胞相互接触后能抑制细胞运动,这种现象称接触抑制现象(contact

细胞悬浮培养

植物细胞悬浮培养 一、实验目的及意义 植物悬浮培养的细胞具有生长迅速、代谢均匀一致的特点,同时生长环境易于控制。由于培养的细胞对外界的各种反应比较灵敏,植物悬浮培养细胞已成为代谢、生理生化、分子生物学研究的理想材料,同时还可用于突变体筛选、次生代谢产物的生产等领域。通过学习,使学生了解和掌握植物细胞悬浮培养的原理和操作技术。烟草(Nicotiana tubacum Linn.)为茄科经济作物,同时也是植物分子生理生化研究一种重要的模式植物。丹参(Salvia miltiorrhiza Bunge)为唇形科药用植物,建立悬浮体系,对构建分离纯化其药用物质体系具有重要意义。 二、实验原理 植物细胞悬浮培养(plant cell suspension culture)是将游离的单细胞和小细胞团在不断震荡的液体培养基中进行培养。用于悬浮培养的细胞和细胞团既可来自培养的愈伤组织,也可以通过物理或化学方法从植物的组织或器官中获得。本实验所用的悬浮培养细胞来自疏松的愈伤组织。 植物细胞悬浮培养系统要求:①细胞培养物分散性好,细胞团较小;②细胞形状和细胞团大小均匀一致;③细胞生长迅速。所采用的液体振荡培养具有以下重要作用:①振荡可以对培养液中的细胞团施加一种缓和的流变力,使它们破碎成小细胞团和单细胞;②振荡有利于细胞在培养基中均匀分布,有利于培养基与细胞间的物质交换;③培养液的流动有利于培养基和容器内的空气通过气液界面之间进行气体交换,保证细胞呼吸所需的氧气,使细胞能迅速生长,同时也有利于二氧化碳的排除。 三、实验仪器与药品 超净工作台,恒温振荡器(摇床),高压灭菌锅,培养室(培养箱),封口膜,油性标记笔,无菌蒸馏水 四、实验材料 烟草愈伤组织 五、操作步骤与方法

细胞培养技术问题整理题库

1.细胞培养:用酶消化法讲组织碎块分离成单个细胞,用培养基制成细胞悬液,在体外适 宜的条件下,使细胞生长繁殖,并保留其一定的结构和功能特性。 2.BSS溶液:平衡盐溶液,是人工合成培养基的基础成分,也常用来洗涤组织细胞,其主 要成分是无机盐和葡萄糖,无机盐构成细胞的生命成分,维持细胞渗透压既其生存环境的稳定。葡萄糖供给细胞生存所需的能量。其中含少量酚红作为溶液酸碱度的指示剂。 Hank’s液是常用的BSS液。 3.原代细胞培养:又称为初代细胞培养,从机体去的材料(细胞、组织或器官),在培养 瓶内培养到第一次传代前。 4.传代培养或传代:细胞在培养器皿中生长一定时间后,被分开接种到新的培养器皿中。 5.组织块培养法:将组织块剪切成小块,直接送入培养瓶(皿)中,贴附一段时间后,细 胞从组织块长出,最终形成单层细胞。 6.细胞系:原代细胞首次传代成功后即可成为细胞系 7.细胞株:通过筛选或克隆化,且有特殊性质或特异标记的细胞,这些特性在以后的培养 中必须存在。这些特性包括:具有一定的标记染色体,对某种病毒的敏感性或抗性,以及具有特殊的抗原性等。 8.接触抑制:当一个细胞被其他细胞阻挡而无去处时就停止移动,接触区域的细胞膜皱褶 样活动停止,这样保证了细胞不会重叠生长。 9.密度抑制:正常细胞生长汇合成单层时,细胞密度达到一定程度时,细胞即停止分裂的 现象。 10.合成培养基(synthetic medium)是通过顺序加入准确称量的高纯度化学试剂与蒸 馏水配制而成的,其所含的成分(包括微量元素在内)以及他们的量都是确切可知的。合成培养基一般用于实验室中进行的营养、代谢、遗传、鉴定和生物测定等定量要求较高的研究 11.有丝分裂指数:mitotic index一个细胞群体中正在进行有丝分裂的细胞的百分数。 12.悬浮培养:在流动的液体培养基中培养非贴壁的悬浮细胞或小细胞团的细胞或组织的培 养方法。细胞附着在微运载体上的培养也是一种悬浮培养。 二、细胞培养技术的优缺点? 优点:1.得到的是活细胞:能长时间、直接观察、研究活细胞的形态结构、生命活动 2.可控制:选择对象、性质、调节条件。 3. 应用广,学科多:对象广。各种动物:低等动物--高等动物--人类一种动物:不 同年龄不同组织: 正常或异常(肿瘤) 4.较经济:花钱较少但可得到大量、同时、重复性好的生物学性状相似的实验对象 5. 不易污染环境 缺点:1. 现人工无法完全模拟体内环境a. 失去彼邻关系b.失去神经体液的调节和细胞相互间的影响 2. 细胞趋向单一化 3.失去原有组织结构和细胞形态 4.分化减弱或不显要正确认识体外培养细胞是一种特定条件下生长的细胞群体。 5. 某些类型细胞还很难培养 6.大规模培养难度大

细胞培养技术

细胞培养技术 指的是细胞在体外条件下的生长,在培养的过程中细胞不再形成组织(动物)。 定义 培养物是单个细胞或细胞群。细胞在培养时都要生活在人工环境中,由于环境的改变,细胞的移动或受一些其他因素的影响,培养时间加长,传代导致细胞出现单一化型。 在现代医学和生物科学研究中应用广泛 优点 1.直接观察活细胞的形态结构和生命活动。用于细胞学、遗传学、免疫学、实验医学和肿瘤学等多种学科研究. 2.直接观察细胞的变化可便于摄影。 3.研究细胞种类如低等到高等到人类、胚胎到成体、正常组织到肿瘤。 4.便于使用各种技术:相差、荧光、电镜、组化、同位素标记等方法观察和研究细胞状况。 5.是分子生物学和基因工程学的研究对象,也是其主要的组成部分。 6.易于施用物理、化学生物的实验研究。 7.易于提供大量生物性状相似的实验对象,耗资少比较经济。 8.成为生物制品单克隆抗体生产和基因工程等的材料来源。 缺点 组织和细胞离体后独立生存在人工的培养环境中,虽然模拟体内环境,仍有很大差异。因而利用培养细胞做实验时,不应视为体内细胞完全相同,把实验结果推测体内,轻易做出与体内等同的结论。 细胞类型 细胞类型根据是否附于支持物上生长的特性,分为: 贴附型悬浮型(一)贴附型 细胞贴附在支持物表面生长,只依赖贴附才能生长的细胞叫做贴附型细胞(Anchorrage-dependent cells)这种现象与细胞分化有关。 贴附型细胞的分型 1.成纤维型细胞:(fibroblast) 来自中胚层 特点:与体内成纤维细胞形态相似,胞体梭型或不规则三角形,中央有圆形核,胞质向外伸出2~3个长短不同的突起。细胞在生长时呈放射状,漩涡或火焰状走行。 起源:细胞来自中胚层间充质组织。 除真正的成纤维细胞、心肌、平滑肌、成骨细胞、血管内皮细胞。

细胞培养的基本方法-细胞分离技术

细胞培养的基本方法-细胞分离技术 细胞分离技术 一、从原代组织中分离细胞将组织块分离(散)成细胞悬液的方法有多种,最常用的是机 械解离细胞法、酶学解离细胞法以及螯合剂解离细胞法。 从原代组织中获得单细胞悬液的一般方法是酶解聚。细胞暴露在酶中的时间要尽可能的短, 以保持最大的活性。下列步骤可以解聚整个组织,获得较高产量的有活性细胞。 1. 胰蛋白酶(Trypsin) ?在去除不需要的组织后,使用无菌的解剖刀和剪子把剩余的组织切成3~4mn小片,通过悬 浮在无钙镁的平衡盐溶液中清洗组织碎片。让组织碎片沉淀,去除上清液。重复清洗2到3次。 ?将盛有组织碎片的容器置于冰上,去除残留的上清液。加入0.25 %溶解在无钙镁的平衡盐 溶液中的胰蛋白酶(100mg组织加入1ml胰蛋白酶)。 ?在4C孵育6到18小时,使几乎没有胰蛋白酶活性的酶尽可能渗透进去。 ?移弃组织碎片中的胰蛋白酶,在37C孵育包含残留胰蛋白酶的组织碎片20到30分钟。 ?在组织碎片加入热的完全培养基,用移液管轻轻地分散组织。如果使用无血清培养基,要 加入大豆胰蛋白酶抑制剂。 ?通过无菌不锈钢丝网(100?200mm过滤,分散所有剩余组织。计数和接种细胞,进行培养。 2. 胶原酶(Collagenase) ?用无菌解剖刀和剪子把剩余组织切成3~4mm」、片,用Hanks'平衡液(HBSS清洗组织碎片 几次。 ?加入胶原酶(50?200单位/ml,溶解在HBSS中)。 ?在37C孵育4到18小时。加入3mM CaCI2增加解离效率。 ?通过无菌不锈钢丝网或尼龙网过滤细胞悬液,以分离分散细胞、组织碎片和较大的碎片。 如果需要进一步的解聚,在碎片中加入新鲜的胶原酶。 ?通过离心在HBSS中清洗悬液几次。 ?再一次在培养基中悬浮细胞,计数和接种细胞,进行培养。 3. Dis pase ?用无菌解剖刀和剪子把剩余组织切成3~4mn小片,用不含钙镁的平衡盐溶液清洗组织碎片 几次。 ?加入Dispase (0.6?2.4单位/ml溶解在无钙镁的平衡盐溶液) ?在37C孵育20分钟到几个小时。 ?通过无菌不锈钢丝网或尼龙网过滤细胞悬液,以分离分散细胞、组织碎片和较大的碎片。如果需要进一步的

植物细胞的悬浮培养技术

毕业论文(设计) 中国·武汉 二○一二年四月

目录 摘要 (3) 关键词 (3) Abstract (3) Key words (3) 前言 (4) 1.细胞悬浮培养的定义 (4) 2.单细胞制备的方法 (4) 2.1 机械法 (4) 2.2酶解法 (4) 2.3 愈伤组织诱导法 (4) 3.悬浮培养的条件 (5) 4.细胞初始培养 (5) 5.细胞悬浮培养的类型 (5) 5.1分批培养 (5) 5.2连续培养 (6) 6.悬浮培养细胞的同步化 (6) 6.1 物理方法 (6) 6.1.1 体积选择法 (6) 6.1.2低温处理法 (6) 6.2 化学方法 (6) 6.2.1 饥饿法 (6) 6.2.2抑制法 (6) 7.规模化培养 (7) 8.存在问题与前景展望 (7) 8.1植物细胞与动物细胞,微生物比较存在的优势 (7) 8.2植物细胞培养过程中存在的困难 (7) 8.3前景展望 (7) 参考文献 (8) 致谢 (8)

植物细胞的悬浮培养技术 摘要 悬浮培养是非贴壁依赖性细胞的一种培养方式,是一种十分有用的实验体系,在液体状态下便于细胞和营养物质的充分接触和交流,细胞状态可以相对保持一致,因此有利于在细胞水平上进行各种遗传操作和生理生化活动的研究,同时为植物细胞的大规模培养提供前期技术基础。但该技术目前在国内尚未得到广泛的应用,生物制品生产仍主要采用病毒产率低,生产成本高,劳动强度大的转瓶细胞培养方式。随着现在生物技术发展,利用细胞悬浮培养技术进行生物制品生产是生物制药行业发展的必然趋势。 关键词 植物细胞;悬浮培养;细胞分裂;细胞学 Plant cell suspension culture technology Abstract Because plant cells are gathered together for the characteristic, therefore, in postmitotic, often cannot be like bacterial cells as separate, but mostly with cell clusters form, still cannot cultivate is completely single cell suspensions. To single cell culture or selection of cell clones to yarn, need for plate culture, micro chamber training and nursing culture. In this experiment, only the introduction of the most common suspension culture technology Key words .Plant cells;Suspension culture;Cell division;Cytology

悬浮细胞培养技术讲义

细胞培养技术相关知识简介 一.培养细胞生长过程:潜伏期→指数增生期→停滞期 1.1 潜伏期(latent phase) 细胞接种后,先经过一个在培养液中呈悬浮状态的悬浮期.此时,细胞质回缩, 胞体呈圆球形.然后细胞贴附于载体表面,称贴壁,悬浮期结束. 细胞贴壁速度与细胞种类, 培养基成分,载体的理化性质等密切相关。一般情况下,原代培养细胞贴壁速度慢,可达10-24 小时或更多, 而传代细胞系贴壁速度快, 通常10-30 分钟即可贴壁。细胞贴壁后还需经过一个潜伏阶段,才进入生长和增殖期.原代培养细胞潜伏期长,约24-96 小时或更长, 连续细胞系和肿瘤细胞潜伏期短,仅需6-24 小时。 1.2 指数增生期(logarithmic growth phase) 这是细胞增殖最旺盛的阶段,分裂相细胞增多。指数增生期细胞分裂相数量可作为判定细胞生长是否旺盛的一个重要标志。通常以细胞分裂相指数(Mitotic index, MI)表示,即细胞群中每1000 个细胞中的分裂相数。一般细胞的分裂指数介于0.1%-0.5%,原代细胞分裂指数较低,而连续细胞和肿瘤细胞分裂相指数可高达3%-5%。指数增生期的细胞活力最好时期,是进行各种实验最佳时期,也是冻存细胞的最好时机。在接种细胞数量适宜情况下,指数增生期持续3-5 天后,随着细胞数量不断增多、生长空间减少,最后细胞相互接触汇合成片。正常细胞相互接触后能抑制细胞运动,这种现象称接触抑制现象(contact inhibition)。而恶性肿瘤细胞无接触抑制现象,能继续移动和增殖,导致细胞向三维空间扩展,使细胞发生堆积(piled up)。细胞接触汇合成片后,虽然发生接触抑制,但只要营养充分,细胞仍能进行增殖分裂,因此细胞数仍然在增多。但是,当细胞密度进一步增大,培养液中营养成分减少,代谢产物增多时,细胞因营养枯竭和代谢产物的影响,导致细胞分裂停止,这种现象称密度抑制现象(Density Inhibition)。 1.3 停滞期(Stagnate phase) 细胞数量达到饱和密度后,如不及时进行传代,细胞就会停止增殖,进入停止期。此时细胞数持平,故也称平台期(Plateau phase)。停滞期细胞虽不增殖,但仍有代谢活动。如不进行分离传代,细胞会因培养液中营养耗尽、代谢产物积聚、pH 下降等因素中毒,出现形态改变,贴壁细胞会脱落,严重的会发生死亡。 为了维持细胞的存活和生长,必须进行再培养,即将原培养瓶内细胞分离、稀释、接种到新培养瓶内继续扩大培养。

细胞培养技术练习题

细胞培养技术练习题 选择题1.接种工具灭菌常采用(A) A.灼烧 B.高压 C.过滤 D.熏蒸 2.具有促进愈伤组织生产的物质是(B ) A.维生素PP B.维生素B1 C.维生素B6 D.甘氨酸 3.微量元素母液的配制浓度( B )A.10倍 B.100倍 C.1mg/ml D.10mg/ml 4.配制10倍大量元素母液,所需硝酸铵(C )mg A.9000 B.3700 C.16500 D.4400 5.配制100倍有机物母液时,所需维生素B1( B )mg A.0.4 B.10 C.100 D.0.1 6.下列哪种不是组织培养常用的维生素(A)A.维生素B2 B.维生素B1 C.维生素B6 D.维生素C 7.下列哪种激素不属于生长素类( C )A.IAA B.IBA C.6-BA D.NAA 8.下面哪种是MS培养基大量元素所用药剂(A)A.硫酸镁 B.硫酸亚铁 C.硫酸锌 D.硫酸铜填空:1、组织块的分离方法有机械分散法、剪切分离法、消化分离法。 2、目前,较常用的消化试剂有胰蛋白酶、胶原酶、EDTA消化液。 3、接种培养瓶的细胞数量一般为5×105-1×106/ml 。 4、培养细胞的污染一般包括微生物污染、细胞交叉污染、化学物质的污染。 5、细胞冻存时DMSO常用的浓度为10%的浓度。 1. 体外培养的动物细胞其生长方式主要贴壁生长和悬浮生长两种,分别称为贴壁型细胞和悬浮型细胞。体外培养的动物细胞其生长方式以贴附生长为主。 2. 贴壁生长的体外培养动物细胞,按形态来分,大体分为成纤维细胞型、上皮细胞型、游走细胞型、多形细胞型四种类型,最常见的为前两种。 3. 细胞在体外生长时具有一些特点,其中主要是贴附生长、接触抑制和密度依赖性。 4. 培养细胞生命期可分为原代培养期、传代培养期、衰退期三个阶段。 名词解释1、原代培养:原代培养也叫初代培养,是从供体进行细胞分离之后至第一次传代之前的细胞培养阶段。 2、组织块培养法:组织块培养是将组织剪切成小块后,接种于培养瓶进行培养。组织块培养法是常用的,简便易行的以及成功率较高的原代培养方法。 3、消化培养法:消化培养法是采用组织消化分散法将细胞间质包括基质、纤维等妨碍细胞生长的物质去除,使细胞分散,形成悬液,从而易于外界吸收养分和排出代谢产物. 4、细胞生长曲线:细胞生长曲线是测定细胞绝对生长数的常用方法,也是判定细胞活力的重要指标,是培养细胞生物学特性的基本参数之一。以培养时间为横轴,细胞浓度为纵轴作图,即得生长曲线。 5、传代:细胞由原培养瓶内分离稀释后传到新的培养瓶的过程称之为传代。 问答题:1、如何得到单细胞无性系?在细胞培养中,常由分散性较好的愈伤组织或悬浮培养物来制备单细胞,也可以用纤维素酶和果胶酸酶从植物不同组织直接制备单细胞。由分离的单细胞经看护培养法、微室培养法或平板培养法,即可得到单细胞无性系 2、单细胞培养有哪些方法?各有何含义及特点单细胞培养:看护培养;微室培养;平板培养 (1)看护培养法是指用一块活跃生长的愈伤组织块来看护单个细胞,并使其生长和增殖的方法。 特点:①简便易行。②效果好,易于成功。③不能在显微镜下直接观察细胞生长过程。 (2)微室培养:即将细胞培养在很少量的培养基中。 特点:在培养过程中可连续进行显微观察,将一个细胞的生长、分裂和形成细胞团的全部过程记录下来。 (3)平板培养法是把单细胞悬浮液与融化的琼脂培养基均匀混合,平铺一薄层在培养基底上的培养方法。 特点:可以定点观察;分离单细胞系比液体浅层培养容易;培养细胞气体交换不畅。 3、说明每一种单细胞培养方法的要点? (1)看护培养:①小三角瓶中加1cm厚的固体培养基,灭菌②将1cm大小的愈伤组织块放在培养基中央。③在愈伤组织块上放1cm2无菌滤纸片,培养室中过夜④将单个细胞接种在滤纸上面⑤培养室培养f1个月可见愈伤组织小块,2-3个月得到单细胞无性繁殖系。(2)微室培养:①载玻片和盖玻片火焰上消毒②在载玻片上涂一圈四环素眼膏,放一小段毛细管。滴一小滴细胞悬浮液于凹穴中③盖上盖玻片,使之与悬浮液接触(3)平板培养:①制备单细胞悬浮液:用酶法或机械震荡法将组织器官游离出单细胞。经过滤后的滤液即是。②悬浮液密度的调制:a通过显微镜,观察记数板凹槽中的悬浮液细胞数,并计算其密度。b一般平板培养要求细胞密度为1′103-1′105。③培养基的配制:1)1.4%琼脂培养基; 2)0.7%琼脂的条件培养基。④平板制作:按1:2或1:4混合,制成3mm厚的平板。⑤培养:26°C暗培养21d,计算细胞团数,计算植板率 4、什么是细胞悬浮培养?简述成批培养和连续培养的的特点?细胞悬浮培养:是使离体的植物细胞悬浮在液体培养基中进行的无菌培养。(1)成批培养的特点:①细胞生长在固定体积的培养基上,直至养分耗尽②用搅拌的方法使细胞团和细胞均匀分布③细胞数目呈现慢—快—慢—停止生长的变化d必须更换新鲜培养基才能进行下一批培养(2)连续培养的特点:①由于不断加入新鲜培养基,保证了养分的充分供应,不会出现悬浮培养物发生营养不足的现象②可在培养期间使细胞保持在对数生长期中。细胞增殖速度快③适于大规模工业化生产

细胞悬浮培养研究进展

细胞悬浮培养研究进展 「摘要」:细胞在培养液中呈悬浮状态生长与增殖的培养技术。是一种通过振荡或转动装置使细胞始终处于分散悬浮于培养液内的培养方法。非贴壁依赖性细胞的一种培养方式。 「关键词」:植物细胞的悬浮培养愈伤组织动物细胞悬浮培养展望 「引言」:植物培养细胞中含有各种特殊的代谢产物,如生物碱、色素、甾体、萜等药 用成分及香精等, 有的含量很高。因此,利用植物细胞培养技术生产药物已成为当代 生物技术的一个重要领域,特别是培养药用植物细胞直接生产天然药物的研究已成热点。动物细胞培养在生物技术和生物医药研究中已得到了广泛的应用,通常动物细胞培养 为病毒疫苗的生产提供培养基质同时也是多种生物药品生产不可缺少的工具包括单克 隆抗体和基因治疗产品等。 (一)植物细胞悬浮培养 植物细胞能合成许多具有重要价值的次级代谢产物,它们可作为农药、杀虫剂、调味剂及香精等。这些产物传统上是从天然植物中直接提取,但天然植物生长周期较长,而且生长还受地域和环境因素的限制,所以采用直接提取具有较大的局限性。化学合成法已用于多种产品的生产,但是有些物质不能通过化学法合成,或虽能合成,却比较困难。植物细胞培养可大规模生产代谢产物,现已成为生产某些高价值产品的重要途径。一般情况下,培养细胞中的次级代谢物含量明显高于原来植物细胞中的含量,而且这种方法还能避免地域和环境的影响。19 0 2年,Haberlandt在营养液中成功地培育了单个植物细胞,尽管未能使其分裂生长但为植物细胞培养翻开了新的一页。此后,许多科学家在植物细胞培养方面进行了研究,特别是近二十年里,植物细胞培养取得了飞速发展,悬浮培养日益完善,固定化培养逐步显示其优势,膜培养技术也已崭露头角。以下介绍有关植物和动物细胞的悬浮培养情况。 1.悬浮培养特点 植物细胞培养与微生物有许多相似的地方,但两者又存在着明显的不同,如植物细胞对剪切力敏感,培养要求小通气量,还需要C仇和光照等条件。 1.1对剪切力敏感:植物细胞的个体大,细胞壁僵脆且具有大的液泡,这些特性

细胞分离与细胞悬浮培养

实验六、细胞分离与细胞悬浮培养(3学时) 一、目的要求 了解细胞分离与细胞悬浮培养的全过程,学会整个细胞培养程序的实验方法和操作技术。 二、材料、仪器与试剂 1、材料:水稻种子; 2、仪器:超净工作台、带相机设备及相同设备个光学显微镜、可变速离心机、玻璃过滤器、血细胞计数器、目镜及物镜测微尺、计数器、酸度计; 3、试剂: (1)培养基(MS、B5、N6) (2)植物激素(2,4-D、NAA、KT)、二醋酸荧光素、酚藏红花或伊文思蓝等燃料。 三、方法步骤 1、愈伤组织的诱导、继代培养 (1)外植体的表面消毒挑选籽粒饱满的水稻种子,人工去掉谷壳,用70%酒精表面消毒2min,然后用2.5%次氯酸钠水溶液浸泡30min,期间用玻璃棒搅动,无菌水冲洗3次。 (2)接种培养基表面将消毒后的种子按每瓶3粒接种于琼脂培养基表面,置于暗条件下培养。 (3)切割愈伤组织3周后将形成的愈伤组织切割,并转移继代培养。 (4)疏松愈伤组织诱导形成的愈伤组织,其质地和物理性状有明显的差异,有的很坚实,有的很松散,需进行继代筛选。同时应考虑基本培养基中铵态氮与硝态氮的比例培养基中激素的含量及不同激素的比例,以及某些天然有机附加物对愈伤组织生长和形态的影响。培养基中加入酵母提取物(3~5g/L),将获得生长好、质地疏松的愈伤组织。 (5)愈伤组织继代培养由于愈伤组织的生理状态将直接影响以后的细胞悬浮培养,故应及时挑选幼嫩的部分接种转移。一般继代培养的间隔以2周为宜。 2、单细胞的分离 (1)愈伤组织细胞的计数用于分离单细胞的愈伤组织每克鲜重含若干细胞,可预先计数。称取1g幼嫩新鲜的愈伤组织,加入0.1%果胶酶(用培养液或0.6mol甘露醇作溶剂。配制后,用200g离心5min,取上清液,调节pH值为3.5),放在25℃的培养室中12~16h,再用电磁拖泥带水搅拌器低速搅动3min即可获得细胞悬浮液,然后用细胞计数板技术。 (2)单细胞的分离参照所测得的愈伤组织细胞数,称取适量的愈伤组织,放入含适量液体培养基的125mL三角瓶,置于110r/min旋转式摇床上振荡,暗培养,室温25~28℃。 (3)悬浮液的过滤连续振荡3周后,用148μm尼龙网过滤,以除去愈伤组织碎片及较大的细胞聚集体。经过滤后,可获得95%左右的单个游离细胞。 单细胞的收集。过滤液用200g离心5min,收集单个细胞及小的聚集体。 3、细胞悬浮培养 (1)计算细胞起始密度离心后将约2/3的上清液倒掉,剩下的1/3的大部分移入一预先消毒的125mL三角瓶中待用。离心管中最后剩余1mL上清液,摇动离心管,使沉淀悬浮。吸取1滴于血细胞计数板上,以游离单细胞为基数计算细胞的密度。 细胞计数方法:以上海医用光学仪器厂生产的血细胞计为例,吸取1小滴细胞悬浮液滴于记数板上,将盖玻片轻轻由一边向另一边盖下,轻压盖玻片使之与计数板完全密合,以

悬浮细胞培养

悬浮细胞培养 (颜秋生、张雪琴) 悬浮细胞培养是指已建立的愈伤组织或离体的植物细胞,转移到液体培养基中进行无菌振荡培养。用这种培养方法所得的细胞,较为均匀一致,它不仅为研究细胞的生长和分化提供了一个独特的实验系统,而且细胞增殖速度快,适于进行大规模培养,在植物产品工业化生产上有巨大的应用潜力。 1仪器设备 超净工作台、高压灭菌器、旋转摇床、台式离心机、荧光显微镜、刻度离心管(15ml)、三角瓶(300ml)、吸移管等。 2操作方法 2.1悬浮细胞的培养 2.1.1愈伤组织的诱导:经过表面清毒的植物外植体,置于含有适当激素的固体培养基上,即可建立起组织培养物。通常使用的激素包括生长素和细胞分裂素。在这种培养基上,外植体愈伤组织化,这个过程一般是由切口开始,逐渐扩展到接种组织的整个表面。把愈伤组织由外植体上剥离,转移到成分相同的新鲜培养基上,这个过程称做继代。通过反复地在琼脂培养基上继代,不但可使愈伤组织不断增殖,扩大数量,而且还能提高愈伤组织的松散性,这对于在液体培养基中建立充分分散的细胞悬浮培养物是非常必要的。 2.1.2分批悬浮培养一般技术:把已建立的外观松散、生长快、浅黄色的愈伤组织转移到含有液体培养基的三角瓶中,然后置于旋转摇床上不断振荡,由此得到的培养物叫做“悬浮细胞培养物”。在培养过程中,除了气体和挥发性代谢产物可以同外界空气交换外,一切都是密闭的。培养所用的容器一般是100-250ml三角瓶,每瓶中装有20-50ml培养基。摇床的转速是可控的,对于大多数植物组织来说,以转速30-150转/分为宜,冲程范围应在2-3cm左右。转速过高或冲程过大会造成细胞的破裂。当培养基中的主要营养物质耗尽时,细胞的分裂和生长即行停止。为了使培养的细胞能不断增殖,必须进行继代,方法是取出培养瓶中一

细胞悬浮培养技术在兽用疫苗领域的应用

细胞悬浮培养技术在兽用疫苗领域的应用 细胞悬浮培养是利用生物反应器大规模培养动物细胞生产生物制品的核心技术,是当前国际上生物制品生产的主流模式,其最大优势是通过更为精确有效的工艺控制手段,在获得最大产量的同时能稳步提高产品的质量。但该技术目前在国内尚未得到广泛应用,生物制品生产仍主要采用病毒产率低、生产成本高、劳动强度大的转瓶细胞培养方式。随着现代生物技术发展,利用细胞悬浮培养技术进行生物制品生产是生物制药行业发展的必然趋势。 1、悬浮培养技术在生物制药中的应用历史和现状 1962年,Capstick等率先对BHK21细胞驯化实现悬浮培养,并用于兽用疫苗生产。1967年,Van Wezel又开发了微载体并实现在生物反应器中大规模培养贴壁细胞。到20世纪80年代,CHO细胞实现悬浮培养,治疗性抗体生产技术的发展极大地推动着生物反应器在生物制药行业中的应用,到20世纪末已进入万升级规模。2000年以后,随着流加培养、灌注培养、个性化细胞培养基等技术的发展,作为大规模培养主要设备的生物反应器规模也趋向大型化和简单化。现在,全球10000L 及以上体积的反应器达一百多台,最大已达25000L,且几乎都是可以放大的机械搅拌式反应器,主要为Genetech、Amgen、BoehringerIngelheim 和Lonza等公司所拥有。2007年全球销售额最高的6大类生物技术药物中,有5类是经哺乳动物细胞表达生产的。纵观国内,人用和兽用疫苗生产企业已超过110家,应用反应器悬浮培养技术生产疫苗的仅4家。一般兽用疫苗企业采用国内自主开发的650 L和1200 L反应器生产口蹄疫疫苗。 2、悬浮培养工艺中的关键技术 悬浮培养技术主要包括高表达细胞株的获得、个性化培养基的研发、动物细胞反应器及配套设施的完善及生产工艺的优化等四个方面。 2.1 细胞与毒株的驯化 为提高生物制品的产率和安全有效性,在生物反应器中繁殖的病毒与细胞需要进行相互适应选择,针对不同的毒株及其表达量筛选适合的宿主细胞对于细胞大规模生产具有重要意义。 为实现驯化的稳定,通常由高密度细胞培养转向低密度细胞培养,由高浓度血清培养逐渐降低血清浓度进行培养。细胞驯化时应该注意保持细胞活力应90%以上,测定细胞增殖能力的和表达分泌能力进行,避免驯化后的细胞表达特性发生变化。驯化后细胞的增殖能力、活力及生产能力要能够满足工业大规模生产的需要。由于特定细胞的营养需求不同,实现其驯化的难易程度也不同,在驯化时需要选用合适

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