病毒的分离纯化
病毒的纯化与保存
连续与不连续PAGE
PAGE按照缓冲液的pH值和凝胶孔径的差 异及有无浓缩效应分为连续系统和不连 续系统两大类,
病毒纯化的一般原则熟悉
1、释放病毒到胞外 1.1 容易释放病毒 培养液/尿囊液
1.2 不容易释放病毒 细胞破碎 2、去除细胞碎块
低速离心,以2000～6000r/min离心30～ 40分钟,可除去90％以上的细胞碎片和杂质
3、病毒悬液浓缩
细胞破碎方法熟悉
超声破碎：密集的小气泡迅速炸裂,破坏细胞 高压匀浆：机械切割力 高速珠磨：玻璃小珠、石英砂、氧化铝等研磨剂 酶溶法：溶菌酶、蛋白酶、葡聚糖酶 化学渗透：渗透压改变使细胞破裂 反复冻融：形成冰晶,使细胞膨胀破裂
每个蛋白标准的分子量对数对它的相对迁 移率作图得标准曲线,量出未知蛋白的迁移 率即可测出其分子量,这样的标难曲线只对 同一块凝胶上的样品的分子量测定才具有 可靠性，
当蛋白质的分子量在15,000－200,000之间时,样品 的迁移率与其分子量的对数呈线性关系,
符合如下方程式：Lg MW =－b m R + K 其中，MW 为蛋白质的分子量，m R 为相对迁移 率，b为斜率，K为截距，当条件一定时，b与K均 为常数
WesternBlot 步骤
3、磷酸缓冲液漂洗,进行膜的脱色 4、膜的封闭
封闭是用高浓度的无关蛋白质封闭膜上未被占据
的表面,使抗体仅仅只能跟特异的蛋白质结合而
不是和膜结合，常用的封闭液有牛血清白蛋白 BSA，脱脂奶粉等，一般用脱脂奶粉， 将膜浸没于封闭液中缓慢摇荡一小时。
病毒的超速离心纯化
病毒的超速离心纯化实验目的超速离心法纯化A型禽流感病毒。
实验原理不同颗粒之间存在沉降系数差时，在一定离心力作用下，颗粒各自以一定速度沉降，在密度梯度不同区域上形成区带的方法。
此法的优点是：（1）分离效果好，可一次获得较纯颗粒；（2）适应范围广，能象差速离心法一样分离具有沉降系数差的颗粒，又能分离有一定浮力密度差的颗粒；（3）颗粒不会挤压变形，能保持颗粒活性，并防止已形成的区带由于对流而引起混合。
实验设备和材料专用的超离管、蔗糖配置管，长注射器（以上器材用酒精浸泡过夜，烘干待用）操作步骤蔗糖密度梯度的配制：用已高压的去离子水配制不同浓度的蔗糖，并用22 um滤器过滤。
蔗糖梯度柱长度一般为12 cm，每个梯度蔗糖层长约3 cm即蔗糖溶液体积为3 mL左右，病毒粒子停留的蔗糖密度层应该适当的增大，每个梯度蔗糖所配总体积为20 mL，不需要100 mL。
30%蔗糖溶液配制：去离子水中加入30 g蔗糖，定容到100 mL即可。
1. 病毒的增殖使用SPF鸡胚接毒，共收集150 mL左右病毒尿囊液。
具体如下：取37 ℃培养的9～11日龄SPF鸡胚15个左右。
向各尿囊腔中接种0.2mL储存的AIV（接种病毒液是否需要稀释，应根据病毒毒力的强弱以及实验需求而定。
此法是为增殖病毒，假若接种强毒，则需要根据毒力稀释相应倍数，以便能增殖更多病毒，于37 ℃下继续孵育，每隔12 h照胚一次，弃掉24 h内死亡鸡胚。
24 h后的死胚放4℃过夜，HA 效价7孔，收集尿囊液，直到96 h后收获剩下鸡胚尿囊液，不同时段收集的尿囊液可混合在一起，暂时存放可放-20℃，长时间存放则放于-40℃或-80℃。
2. 取反复冻融后的病毒液10 mL，在10000 r/min、4℃下离心30min，留上清，并测上清HA。
3. 超离：把已经离心处理好的病毒尿囊液装入超离管（实验室超离管体积为30 mL），超离管内不能有气泡，以免超离过程爆破。
离心转速根据病毒粒子直径而定，新城疫病毒尿囊液以40000 r/min 4℃下离心5 h。
病毒颗粒的分离与纯化技术研究
病毒颗粒的分离与纯化技术研究自从人类意识到病毒的存在以来，对于病毒颗粒的分离与纯化技术的研究就在不断进行中。
作为生物学领域的重要组成部分，对于研究病毒病的发病机制、疫苗的研制以及医学诊断等方面都有着重要的作用。
本文将对病毒颗粒的分离与纯化技术进行介绍和探讨。
一、病毒的基本结构在病毒颗粒的分离与纯化技术研究中，了解病毒的基本结构是至关重要的。
病毒在基本结构上分为两部分：外壳和内核。
外壳，也称包膜，是由糖蛋白复合物组成的。
不同种类的病毒外壳的成分不同，有的是单层膜，有的是双层膜。
外壳的主要作用是保护病毒和在寄主细胞中实现侵染。
内核由核酸和蛋白质组成，核酸在内核中是紧密包裹在蛋白质中的。
不同种类的病毒核酸的形态、数量和长度各不相同。
二、病毒颗粒的分离技术1、细胞培养病毒实验分离的过程中，需要一种可供病毒复制和扩增的细胞系。
现如今，在市场上已有多种适用于病毒分离和传代的细胞系，例如Hela、MDCK、Vero等。
2、离心法离心法是最常用的病毒颗粒分离技术之一。
离心法依靠对分子量大于小于病毒的物质的密度分离。
病毒和病毒感染的细胞机体通过高速离心后，会分成不同的层次，其中含有病毒的层可以被收集用于之后的纯化工作。
3、凝胶层析凝胶层析是基于分子大小的原理进行病毒分离的技术。
在凝胶层析过程中，样品通过固相填料（玻璃珠、琼脂等），分子大小不同的病毒会被填料区分开来，从而实现病毒分离。
三、病毒颗粒的纯化技术在经过分离之后，病毒的颗粒虽然已经被获得，但是其中仍然存在着大量的杂质，这时就需要使用纯化技术进行进一步的强化和精确纯化。
1、超速离心超速离心是分离和纯化大分子生物学分子的基础技术之一。
病毒分离后，使用超速离心能够有效地将病毒颗粒、残余细胞碎片等异种蛋白分离，从而获得高纯度的病毒制品。
2、薄层电泳薄层电泳是实现病毒纯化和分析的重要技术手段。
其原理是依靠对病毒颗粒电荷和分子量的区别进行分离。
具体操作是将样品加在电泳板上，使之随着电场移动。
病毒的分离培养标准操作规程
病毒的分离培养标准操作规程1．目的：规范病毒分离及鉴定培养操作流程，保证试验结果的重复性和稳定性。
2．术语：EID50/0.1ml，ELD50/0.1ml，TCID50/0.1ml，CPE3．操作程序与方法：3.1 采样：对于病死或剖杀动物，采集病毒主要聚集组织部位，一般为淋巴结、脾脏、肺脏、血液等；对于活体动物，可用无菌棉拭子采集含病毒量最多部位（口腔、鼻腔、生殖道、肛门等）的分泌液。
采集样品如不能立即处理，应冻存与-20℃备用。
长途运输应用冰盒或4℃低温保存。
3.2 样品处理：组织块可用剪刀剪碎并研磨，加入10倍体积含300-500UI/ml青、链霉素的生理盐水（PBS），反复冻融2-3次。
棉拭子可直接混于3-5倍体积含300-500UI/ml 青、链霉素的生理盐水（PBS），反复冻融2-3次。
8000rpm离心15min，取上清液用0.22μm滤膜过滤，透过液即为病毒原液，收集保存，短期保存4℃，长期保存用液氮。
3.3接种培养：将病毒原液接种与特定细胞单层中，连续盲传4-6代，观察细胞是否产生特异性CPE，并计算及TCID50/0.1ml。
禽源类病毒可接适当日龄鸡胚或鸡胚成纤维细胞进行扩增和鉴定，并计算及EID50/0.1ml和ELD50/0.1ml。
3.4 病毒纯化：采用“有限梯度稀释法”结合“噬斑纯化法”对病毒进行纯化；3.5 动物回归实验：分离培养并纯化好的病毒回归接种动物，观察动物病变是否为该病毒引起及病变特征是否典型。
3.6分子生物学鉴定：基因组提取并设计特异性引物，对分离病毒保守区基因片段进行特异性扩增，并测序，从分子水平对其进行鉴定。
3.7血清学鉴定：用标准阳性血清与分离病毒作用一段时间后再次接种特异性细胞或鸡胚验证病毒特异性。
或者用荧光标记抗体与病毒作用后荧光显微镜下观察其特异性。
4.注意事项4.1采样过程应做好自身防护，烈性病不得随意分离。
4.2 实验动物应及时焚烧或深埋等处理，避免病毒扩散到环境中。
新冠疫苗的灭活工艺
新冠疫苗的灭活工艺新冠疫苗的灭活工艺是一种制备疫苗的方法，通过将新冠病毒进行灭活处理，使其失去活性但仍能激发免疫系统产生抗体，达到预防感染的目的。
一般来说，制备新冠疫苗的灭活工艺主要分为以下几个步骤：1. 病毒培养：首先需要选取适宜的细胞系作为病毒培养基质，毕竟病毒需要寄生在细胞内才能生存和繁殖。
目前制备新冠疫苗的灭活工艺主要采用的是Vero 细胞系（绿猴肾细胞）或其他哺乳动物细胞系。
2. 病毒分离：从感染新冠病毒的患者样本中，如痰液、咽拭子等，分离出并纯化出新冠病毒。
病毒的纯化过程主要通过超速离心、滤过、浓缩等技术实现。
3. 病毒灭活：在病毒分离和纯化完毕后，需要使用灭活剂将病毒失去活性。
常用的灭活剂包括β-普鲁阿拉宁（β-propiolactone）和二甲亚砜（dimethyl sulfoxide，DMSO）。
这些灭活剂能够与病毒的核酸或蛋白质结合，破坏其功能和结构。
4. 病毒检验：经过灭活处理后的病毒需要进行检验，确保病毒已经完全失去活性。
常用的检验方法包括免疫荧光法、电子显微镜观察等，以确保病毒完全灭活，不再具有传染性。
5. 制备疫苗：灭活的新冠病毒经过检验合格后，可以进一步进行制备疫苗。
研究人员将灭活的病毒进行分装、稀释等操作，制备出疫苗剂型，如注射液、冻干粉等。
6. 免疫接种：制备好的新冠疫苗剂型可以用于临床免疫接种。
接种后，疫苗中的灭活病毒能够刺激人体免疫系统产生特异性的抗体，并形成免疫记忆，为日后遇到真实的新冠病毒感染提供保护。
总体来说，灭活工艺是一种传统而成熟的制备疫苗的方法。
然而，灭活疫苗的制备工艺相对较复杂，需要掌握病毒培养和灭活技术，确保病毒彻底失去活性，同时也需要进行严格的质量控制和病毒检验。
此外，灭活疫苗可能存在较高的副作用风险，比如接种后可能出现发热、局部不适等不良反应。
因此，在灭活疫苗的制备和使用过程中，要做好充分的安全性评估和监测工作，以确保疫苗的有效性和安全性。
病毒的浓缩和纯化
病毒的浓缩和纯化
收集发病鹅的脾脏、肝脏和肾脏，均浆用1:5稀释(Wt/vol)buffer A (10 Mm Tris-HCl ,100mM EDTA PH=7.2)离心10000 转，30分钟。
再加上双抗（10000LU/ML）青霉素和链霉素(1mg/ml)。
病毒浓缩的方法用的是蔗糖梯度离心方法。
首先，10000转离心30分钟，收集上清液，用三氯三氟代乙烷纯化两次为了除去脂层。
蔗糖溶液用在下一步的操作中，提前准备buffer A。
上清放于30％的蔗糖的溶液中超速离心。
上清重新用buffer A悬浮，放于25％－60％的不间断的蔗糖溶液中，超速离心120000转，16小时。
离心完后，收集密度差别的液体。
测定病毒的浮力的密度。
最后，分离的液体带再用1：3 buffer A稀释，离心2小时，120000转。
病毒小颗粒用悬200微升水。
病毒纯化密度梯度离心法
病毒纯化，即应用各种物理、化学方法，以不使病毒受损伤和失活为前提，去除宿主细胞组分等非病毒杂质，提取出高纯度浓缩的病毒样品。
病毒提纯是病毒学研究的重要前提，病毒微细形态结构的研究、病毒抗原蛋白的分离提纯、病毒化学成分及其遗传物质－DNA或RNA的详细研究都需要高纯度的病毒样品。
病毒纯度只是一个相对的概念，很难有绝对的标准，通常以下几点可以作为判定依据。
物理均一性：测定病毒样品的物理均一性，是证明其纯度的常用方法，包括电镜检查、病毒粒子沉降系数和扩散常数及其在凝胶电泳、等电聚焦中的迁移率等。
病毒滴度与蛋白含量的比例：测定病毒材料的感染力或其血清学反应、滴度与其蛋白含量的比例，也是一种通常采用的纯度测定方法。
病毒滴度对蛋白含量的比例越高，说明病毒的纯度越高。
免疫学反应：免疫反应单一而无非特意反应，则说明病毒材料比较纯净。
结晶形成：病毒粒子在十分纯净的情况下，经常可以形成结晶，但少数混有杂质的病毒样品亦可形成结晶，所以这也只是一个相对标准。
病毒纯化方法:1 超速离心法，其中的平衡梯度密度离心是常用的方法，在该溶液里加入少量大分子溶液，则溶液内比溶剂密度大的部分就产生大分子沉降，比溶剂密度小的部分就会上浮，最后在重力和浮力平衡的位置，集聚形成大分子带状物。
因为病毒颗粒跟其他生物分子大小不一样，所以病毒在梯度离心过程中形成独特的条带，从而达到分离纯化的效果。
但此法对仪器的要求很高，转速至少30000rpm/min，在这个转速下要求离心时间7-8小时。
2 现在开发出各种亲和树脂，能有效地吸附病毒粒子，从而达到病毒纯化的目的。
Biomiga公司所开发的病毒纯化系列试剂盒，采用新型材料，能有效吸附腺病毒、腺相关病毒、慢病毒等，加入适当浓度的离子溶液将病毒粒子解离回收，最后对病毒进行脱盐处理，所得病毒纯度高，整个操作简便，极大地缩短了纯化时间，针对需要纯化大量病毒的客户提供大量提取试剂盒，满足客户不同需要。
密度梯度离心法英文名称： density gradient centrifugation method〔1〕亦称平衡密度梯度离心法。
病毒的分离培养方法
病毒的分离培养方法病毒的分离培养是研究病毒性疾病、病毒结构和功能、病毒生物学特性的重要手段。
病毒是一种非细胞微生物，无法在无细胞环境中生长和繁殖，必须依赖于寄主细胞来完成其生命周期。
因此，病毒的分离培养方法主要是利用其对特定细胞的感染能力，通过培养和增殖来获取纯净的病毒制备。
首先，病毒的分离培养需要获得感染病毒的组织或细胞，这些组织或细胞通常是患者的血液、组织样本或培养细胞。
在获得样本后，需要进行样本的处理和制备。
通常的处理方法包括离心、滤过、稀释等步骤，以去除细胞碎片、细菌等杂质，获得纯净的病毒颗粒。
其次，病毒的分离培养需要选择合适的寄主细胞进行培养。
不同的病毒对细胞有不同的选择性，因此需要根据病毒的特性选择合适的细胞系。
常用的细胞系包括Vero细胞、MDCK细胞、A549细胞等。
将处理后的样本接种到寄主细胞上，让病毒感染细胞并进行增殖。
接着，病毒的分离培养需要进行病毒的纯化和扩增。
通过离心、超速离心、密度梯度离心等方法，可以将病毒颗粒从细胞碎片、蛋白质等杂质中分离出来，获得纯净的病毒制备。
然后，将纯净的病毒制备接种到新的寄主细胞中，进行扩增和增殖。
最后，病毒的分离培养需要对病毒进行鉴定和检测。
通过电镜观察病毒的形态特征，利用免疫学方法检测病毒的抗原，进行核酸检测等手段，可以对病毒进行鉴定和检测，确定其种属和特性。
总之，病毒的分离培养是一项复杂而重要的实验技术，对于病毒学研究和病毒性疾病的防控具有重要意义。
掌握病毒的分离培养方法，可以为病毒学研究提供纯净的病毒制备，为病毒性疾病的诊断和防控提供重要的实验支持。
希望本文介绍的病毒的分离培养方法对您有所帮助。
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病毒的分离纯化
我设计了一套方案，请大家批评指正：
1. 新鲜病叶200g，-70℃冰冻30分钟，以2倍体积0.2mol/L磷酸缓冲液（PH7.5，含0.1%巯基乙醇,2%TritionX-100,0.01mol/LEDTA）。
组织捣碎机捣碎，双层纱布过滤。
2. 滤液中加入等体积的氯仿，冰浴激烈搅拌15分钟，充分乳化后2000 g离心15分钟
3. 上清液中加入6%聚乙二醇-6000，3%Nacl,0.5%TritionX-100（W/V）。
冰浴搅拌，4℃下过夜，次日取出10000g离心20分钟。
4. 沉淀悬浮于0.02mol/L磷酸缓冲液（PH7.2，2%TritionX-100, 0.1%巯基乙醇，1mol/L尿素），2小时后，2000g离心10分钟。
5. 上清液中加入6%聚乙二醇-6000，3%Nacl,0.5%TritionX-100（W/V）。
冰浴搅拌4小时，10000g离心30分钟。
6. 沉淀悬浮于0.02mol/L磷酸缓冲液（PH
7.2，2%TritionX-100,0.01mol/LEDTA，1mol/L尿素），4℃下4小时后，10000g离心10分钟。
7. 上清用10%～40%蔗糖密度梯度离心(30000r/min,1.5h)，收集病毒带，用0.02mol/L磷酸缓冲液（PH7.2，2%TritionX-100, 0.1%巯基乙醇，1mol/L尿素）稀释，123000g离心2小时。
8.沉淀用0.02mol/L磷酸缓冲液（PH7.2，2%TritionX-100, 0.1%巯基乙醇，1mol/L尿素）悬浮，5000g离心15分钟，上清即为提纯病毒制品。
lf_12345。