植物多倍体诱导及其观察实验报告

植物多倍体的诱导及其鉴定

一、实验目的

1、通过实验，掌握化学诱导植物多倍体的原理以及方法，学习利用秋水仙素诱导植物多倍体的一般方法及多倍体诱导在植物育种上的意义。

2.学习利用细胞学方法观察鉴定多倍体的特点以及诱导染色体加倍后的细胞学表现，利用染色体分析的方法对多倍体的细胞做出准确判断。

二、实验原理

生物体的细胞核中都有相对稳定的染色体数目，这是物种的基本特征之一。多倍体是细胞中具有3个或3个以上的染色体组的生物体。在植物育种上，利用多倍体可以改良作物的经济性状，同时还可以利用多倍体克服远缘杂交过程中的障碍。

利用一些化学因素诱导植物产生多倍体，秋水仙素是诱导多倍体形成最有效和常用的药品之一，利用秋水仙素处理正在进行有丝分裂的细胞，可以抑制纺锤丝的形成，使细胞有丝分裂中期纺锤丝断裂或纺锤体形成受抑制，有丝分裂后期，复制的染色体无法移向两级，细胞内的染色体加倍，形成多倍体。因此在适宜浓度的秋水仙素作用下，它既可以有效的阻止纺锤体的形成，又不至于对细胞发生较大的毒害，因此，细胞经一定时期后仍可恢复正常，继续分裂，只是染色体数目加倍成为多倍性细胞，并在此基础上进一步发育成为多倍体植物。将秋水仙素处理的植物根尖，制成临时装片，利用显微镜观察根尖分生区细胞中的染色体数目而确定是否形成染色体。

三、实验材料、器具及试剂

1、实验材料：发芽的蚕豆，蚕豆幼苗

2、实验器具：显微镜、解剖针、小试管、刀片、镊子、载玻片、盖玻片、吸水纸、试管、培养皿、烧杯。

3、实验试剂：秋水仙素： 0.1%浓度。

卡诺固定液：3份95％酒精与1份冰醋酸配制而成。

1mol/l盐酸，45%醋酸，改良苯酚品红，70%酒精。

四、实验步骤

1、取材：将种子消毒，并于无菌水中浸泡24小时后，将蚕豆种子（2n=16）培

养在培养皿内的湿滤纸上，室温或28℃发芽，待胚根长达1~2cm时，

取出萌发的种子，用自来水洗2~3次，备用。

2、预处理：将胚根长到1~2cm的蚕豆种子移到盛有0.1%秋水仙素的润湿的的吸

水纸的培养皿内，室温下处理48h,待观察到根部有膨大时取出固

定，与在水中进行培养的蚕豆种子（一般植物生长周期为17~18h）

做对照。同时，将实验组蚕豆根尖的生长情况与对照组的蚕豆根尖

生长情况拍照做对比。

3、固定: 取出秋水仙素处理的蚕豆种子，用清水洗净萌发的蚕豆种子上的秋水

仙素溶液，剪取约0.5cm长的根尖,投入carnoy固定液中固定24h，

清水洗净固定液，再移入70%酒精中保存，对照组的蚕豆根尖也需取

0.5cm长的根尖投入carnoy固定液固定24h,再移至70%的乙醇中保存。

4、解离：将蚕豆根尖放入小试管中，加入1mol/L的盐酸，量没过根尖0.5mm，

在室温下解离8~15min（解离可以使细胞之间的果胶层软化，经解离的

组织可以使压片步骤顺利进行）

5、染色：倒掉解离液，用清水反复冲洗根尖，将根尖置于干净的载玻片上，滴

加改良苯酚品红少许，染色20~30min.

6、压片：用蒸馏水冲洗干净根尖上的染液，置干净载玻片上，滴加45%醋酸，

盖上盖玻片，其上放一片吸水纸，吸干多余染液的水分，左手指压住

吸水纸的左边，右手指从吸水纸的左端向右方轻轻抹去，再用铅笔擦

头从垂直均匀的轻轻敲打盖玻片，将材料压成一层细胞（薄雾状），使

细胞均用散开。

8、镜检：把压好的片子放在显微镜下，先观察细胞分散状况和中期分裂相的多

少，再检查分裂中期细胞中染色体是否完全散开。如若染色体分散不

好而难以分辨和计数，可取下片子，平放桌面上，用手指隔着吸水纸

在盖玻片上稍施压力，如果操作细心，用力适度，便可很容易得到染

色体分散良好的压片标本，然后观察染色体的数目，统计染色体组的

数量，以确定染色体是否加倍。

五、蚕豆幼苗的处理和多倍体间接鉴定

（1）蚕豆幼儿苗的处理：

在蚕豆幼苗的幼芽长到3-5mm时，用解剖刀在芽上作一纵切，然后用一浸有秋水仙素(0.05%浓度)溶液的纱布条包在切口处,纱布条的另端浸在一

个盛有秋水仙素水溶液的小烧杯内, 烧杯的口用封口膜封好以防处

理液蒸发,处理12h.隔天后再处理1次,然后将幼苗洗干净,种到花盆

内或地里。同时种植没有处理过的幼苗作为对照。

（2）形态观察和细胞学鉴定：

比较处理与对照的外部形态有什么差异，将叶面的表皮撕下，在显微

镜下观察，多倍体植物的气孔和花粉粒比二倍体大很多，叶片也比较

肥厚。用根尖压片法制成染色体载玻片标本，在显微镜下认真观察和

计数，与对照进行对比。

六、实验注意事项：

1、要保证植物种子的发芽成功，即要注意室内温度在28°C内，给予适当充足的水分，不能让种子干涸死亡。若发芽条件不适宜，导致种子发芽结果不理想，最终将影响实验的观察结果。

2、取材：取根尖分生区，尽量要小。

3、秋水仙素液的浓度要在0.1%之内，不能过浓或稀，处理时间在24~28小时，若处理时间不够长，则有可能使抑制纺锤体失败，导致不能成功诱导染色体加倍。

4、解离要充分，（最好在50~60°C水浴锅内进行）水洗要彻底，否则不易着色。不宜解离太长时间，以免根尖破碎，下一步处理材料时由于材料过软易丢失。

5、染色时，染色时间应在内，时间不宜过长，否则使染色过深为紫色，不易观

察到染色体，染色师要注意添加染液，不要使染液变干，在吸取多余染液时小心操作不要吸走样品。

6、压片时不要移动盖玻片，不能留有气泡，否则影响镜检的效果，用铅笔擦头从盖玻片上轻轻敲打时，要用力适度，敲打均匀，若用力过猛，则容易将盖玻片压碎，同时使细胞均用散开，若染色体不完全分散开，则镜检时难以分辨和计数。

7、本实验所用的秋水仙素溶液具有强致癌性，请在使用过程中务

必注意安全，尤其是不能乱倒废液。

8、由于本实验涉及的时间较长，应认真记录各时期植物变化情况。

七、实验前要注意思考的问题：

1.什么是多倍体？

答：体细胞中含有三个或三个以上染色体组的整倍体为多倍体。

2.秋水仙素诱导植物染色体加倍的原理是什么？

答：秋水仙素可以抑制纺锤丝的形成，使细胞有丝分裂中期纺锤丝断裂或纺锤体形成受抑制，有丝分裂后期，复制的染色体无法移向两级，细胞内的染色体加倍，形成多倍体。

3、实验中为什么取2~3cm的根尖部分制作装片？

答：因为在2~3cm的根尖部位，是细胞进行有丝分裂的分生区，制成装片易于实验观察。

4、为什么染色时间不能超过30min?

答：因为染色时间过长，细胞核会被染成深紫色，颜色太深不易观察到染色体的具体数目和形态。

八、实验结果

图1：用秋水仙素处理已发根至1~2cm的蚕豆种子48h之后，与未处理的蚕豆种子发根情况对照图。

实验组对照组