冷冻电镜

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冷冻电镜安装要求标准

冷冻电镜安装要求标准

冷冻电镜,全称冷冻电子显微镜,是一种在低温下使用透射电子显微镜观察样品的显微技术。

以下是冷冻电镜的安装要求标准:
低温环境:冷冻电镜需要在低温环境下工作,因此需要配备低温系统,包括低温制冷机和低温冷台等设备,以确保样品在低温下保持稳定。

防震设施:冷冻电镜对震动非常敏感,因此需要采取有效的防震措施,如安装防震脚垫等,以减少外部震动对显微镜的影响。

洁净环境:冷冻电镜需要在洁净的环境下工作,以减少尘埃对显微镜的影响。

因此需要安装空气过滤器等设备,并定期进行环境清洁。

电源和接地:冷冻电镜需要稳定的电源和良好的接地,以确保显微镜的正常运行。

其他要求:根据具体的显微镜型号和规格,可能还有其他特定的安装要求,如光学系统、真空系统等。

总之,冷冻电镜的安装要求标准需要考虑到多个方面,包括低温系统、防震设施、洁净环境、电源和接地以及其他特定的安装要求。

只有满足这些要求,才能保证冷冻电镜的正常运行和使用效果。

冷冻电镜简介

冷冻电镜简介

冷冻电镜简介冻电镜和 X 射线晶体学、核磁共振被称作构造生物学研究的三大利器,但不得不认可冷冻电镜是三者中间最弱的一种技术手段,在此刻已分析的一千多种膜蛋白构造中间, 90% 以上都采纳的是 X 射线晶体学方法,核磁共振在小分子量的蛋白构造分析中也发挥了重要的作用,而冷冻电镜在蛋白构造分析中间所起的作用微不足道。

但是 2013 年 12 月 5 日,美国加州大学旧金山分校副教授程亦凡与同事 David Julius两个实验室合作,采纳单电子计数探测器,以近原子分辨率(3.4 埃),确立了在痛苦和热知觉中起中心作用的一种膜蛋白 TRPV1 的构造,这一振奋人心的成就让研究人员们开始从头审察冷冻电镜在构造生物学研究中的所能发挥的作用。

毕竟和 X 射线晶体学方法对比,它所需的样品量极少,也无需生成晶体,这关于一些难结晶的蛋白质的研究带来了新的希望。

蛋白质 TRPV1 构造确实定标记着冷冻电镜正式跨入“原子分辨率”时代。

2.2 冷冻电镜分类当前我们议论的冷冻电镜基本上指的都是冷冻透射电子显微镜,可是假如我们以使用冷冻技术的角度定义冷冻电镜的话,冷冻电镜主要能够分为冷冻透射电子显微镜、冷冻扫描电子显微镜、冷冻蚀刻电子显微镜。

2.2.1 冷冻透射电子显微镜冷冻透射电镜(Cryo-TEM )往常是在一般透射电镜上加装样品冷冻设施,将样品冷却到液氮温度( 77K),用于观察蛋白、生物切片等对温度敏感的样品。

经过对样品的冷冻,能够降低电子束对样品的损害,减小样品的形变,从而获取更为真切的样品容貌。

一台冷冻透射电镜的价钱在600 万美元左右,价钱极其昂贵,它的长处主要表此刻以下几个方面:第一是加快电压高,电子能穿透厚样品;第二是透镜多,光学性能好;第三是样品台稳固;第四是全自动,自动换液氮,自动换样品,自动保持洁净。

图2.1 冷冻透射电镜及冷冻电镜下高分辨病毒的三维重构图2.2.2 冷冻扫描电子显微镜扫描电镜工作者都面对着一个不可以回避的事实,就是全部生命科学以及很多资料科学的样品都含有液体成分。

嗯,这是一篇关于冷冻电镜的干货!

嗯,这是一篇关于冷冻电镜的干货!

嗯,这是⼀篇关于冷冻电镜的⼲货!1、什么是冷冻电镜冷冻电⼦显微镜技术(cryo-electron microscopy)简称冷冻电镜。

冷冻电镜,是⽤于扫描电镜的超低温冷冻制样及传输技术(Cryo-SEM),可实现直接观察液体、半液体及对电⼦束敏感的样品,如⽣物、⾼分⼦材料等。

样品经过超低温冷冻、断裂、镀膜制样(喷⾦/喷碳)等处理后,通过冷冻传输系统放⼊电镜内的冷台(温度可⾄-185℃)即可进⾏观察。

冷冻电镜中的冷冻技术可以瞬间冷冻样品,并在冷冻状态下保持和转移,使样品最⼤限度保持原来性状,得出的数据更准确,实验成功率才更⾼。

2、冷冻电镜的分类⽬前我们讨论的冷冻电镜基本上指的是冷冻透射电⼦显微镜,但是如果我们可以使⽤冷冻技术的⾓度定义冷冻电镜的话,冷冻电镜主要可以分为冷冻透射电⼦显微镜、冷冻扫描电⼦显微镜、冷冻刻蚀电⼦显微镜。

2.1冷冻透射电⼦显微镜冷冻透射电镜(Cryo-TEM)通常在普通透射电镜上加装样品冷冻台,将样品冷却到液氮温度(77K)。

⽤于观测蛋⽩、⽣物切⽚等对温度敏感的样品。

通过对样品的冷冻,可以降低电⼦束对样品的损伤,减⼩样品的形变,从⽽得到真实的样品形貌。

⼀台冷冻透射电镜的价格在600万美元左右,价格及其昂贵,它的优点主要体现在以下⼏个⽅⾯:第⼀是加速电压⾼,电⼦穿透厚样品;第⼆是透镜多,光学性能好;第三是样品台稳定;第四是全⾃动,⾃动换液氮,⾃动换样品,⾃动维持清洁。

2.2冷冻扫描电⼦显微镜扫描电镜⼯作者都⾯临着⼀个不能回避的事实,就是所有⽣命科学以及许多材料科学的样品都含有液体成分。

很多动植物组织的含⽔量达到98%,这是扫描电镜⼯作者最难对付的样品问题。

冷冻扫描电镜(Cryo-SEM)技术是克服样品含⽔问题的⼀个快速、可靠和有效的⽅法。

这种技术还被⼴泛地⽤于观察⼀些“困难”样品,如那些对电⼦束敏感的具有不稳定性的样品。

各种⾼压模式如VP、LV和ESEM的出现,已允许扫描电镜观察未经冷冻和⼲燥的样品。

冷冻电镜的原理及应用

冷冻电镜的原理及应用

冷冻电镜的原理及应用1. 冷冻电镜的原理冷冻电镜是一种结合了电子显微镜技术和低温技术的先进仪器,主要用于观察生物材料的结构和功能。

它能够在不破坏样品的情况下,将样品冷冻到极低的温度下,并通过电子束来观察样品的微观结构。

冷冻电镜的原理主要包括以下几个方面:1.1 低温冷冻冷冻电镜的核心就是利用低温来冷冻样品,以保持样品的原貌。

常用的低温冷冻方法包括液氮冷冻、冷冻冷冻和快速冷冻等。

通过将样品置于低温介质中,可以抑制细胞组织中的活动,并减少样品的损伤。

1.2 电子显微镜技术冷冻电镜使用的是电子显微镜技术,通过电子束对样品进行成像。

电子显微镜使用的是电子束而不是光束,因此可以获得更高的分辨率。

电子束经过样品时,会产生散射和透射现象,通过检测这些现象并进行成像处理,就可以观察到样品的微观结构。

2. 冷冻电镜的应用冷冻电镜在生物科学领域有着重要的应用价值,主要体现在以下几个方面:2.1 结构生物学研究冷冻电镜可以对生物材料的细胞结构进行高分辨率观察。

通过观察细胞器、膜蛋白、核酸等的微观结构,可以揭示其在生物过程中的功能和作用机制。

例如,冷冻电镜被广泛应用于病毒结构的研究,有助于了解病毒的传播和感染机制,从而为病毒疫苗和抗病毒药物的研发提供重要依据。

2.2 分子生物学研究冷冻电镜可以观察生物材料的分子结构,探索生物分子的三维构象。

通过冷冻电镜的技术手段,可以对蛋白质、核酸等生物大分子进行直接观察,分析其精细的结构、构象变化以及相互作用等。

这对于理解生物大分子的功能机制、相互作用网络以及疾病发生的机制具有重要意义。

2.3 药物研发与评价冷冻电镜在药物研发与评价方面也发挥着重要作用。

通过冷冻电镜的技术手段,可以观察药物分子与靶标分子的结合情况,了解药物在靶标分子上的作用机制。

同时,冷冻电镜还可以对药物输送系统进行观察,在药物传递领域具有广泛的应用前景。

2.4 其他应用领域除了上述应用领域外,冷冻电镜在生物医学工程、纳米材料研究等领域也有着广泛的应用。

冷冻电镜制样流程

冷冻电镜制样流程

冷冻电镜制样流程冷冻电镜(cryo-electron microscopy)是一种用于观察生物分子的高分辨率电镜技术,它可以在冷冻的状态下直接观察生物分子的结构。

相比传统的电镜技术,冷冻电镜能够提供更高的分辨率和更真实的结构信息,因此在生物科学研究中得到了广泛的应用。

1.选择适当的样品:首先,要选择适合进行冷冻电镜观察的样品,通常是蛋白质、蛋白质复合物、病毒或细胞等生物分子。

样品应具有较高的纯度和稳定性,并且能够在低温条件下适当冻结。

2.制备冷冻电镜网格:使用特殊的电子显微镜网格制备样品载体,通常是由碳或氧化硅等材料制成。

这些网格是非常薄的,样品可以被直接放置在其表面。

3.调整制样参数:根据样品的特性和所需要的分辨率,调整各种制样参数。

这些参数包括冷冻速率、冻结液的成分和温度等。

冷冻速率是制样的关键参数之一,它能影响样品的冷冻效果和结构质量。

4.加载样品:将样品溶液滴在电镜网格上,然后迅速从反面用纸吸干多余的液体。

样品的浓度应适当,以避免结构中的过度吸收或散射。

5.冷冻样品:将已加载的样品网格迅速放置在冷冻压制机中,通过控制温度和压力来冷冻样品。

冷冻的目的是快速冻结样品,以保持其原始结构。

6.保存和传输样品:冷冻后的样品应立即封存,通常使用液氮来保存。

在传输或搬运时,需要采取适当的保护措施,确保样品不受到损坏。

7.电镜观察:将冷冻的样品网格放置在冷冻电镜中,然后使用高分辨率电子束来观察样品的结构。

观察过程中需要避免样品的加热和辐射。

8.取得图像和数据处理:通过电子镜的成像系统获得样品图像,然后使用图像处理软件对图像进行修正和重建。

这些步骤包括噪声过滤、对齐和三维重构等。

冷冻电镜名词解释细胞生物学

冷冻电镜名词解释细胞生物学

冷冻电镜名词解释细胞生物学冷冻电镜(Cryo-electron microscopy)是一种在细胞生物学中广泛应用的技术,它通过将生物样品冷冻到极低温度,并使用电子束来观察样品的高分辨率图像。

冷冻电镜技术的发展为科学家们提供了一种研究生物体内部结构和功能的强大工具。

在传统的电子显微镜中,样品需要进行化学固定和切片处理,这可能导致样品的形态和结构发生变化。

而冷冻电镜技术则能够在无需进行这些处理的情况下,直接观察样品的原始状态。

这使得科学家们能够更准确地研究细胞和生物分子的结构和功能。

冷冻电镜技术的核心是将生物样品快速冷冻到液氮温度(约-196℃),以防止样品中的水分子形成冰晶,从而保持样品的原始结构。

冷冻过程中,样品通常会被浸泡在含有保护剂的溶液中,以保护样品免受冷冻过程中的损伤。

冷冻完成后,样品被转移到冷冻电镜中进行观察。

在冷冻电镜中,电子束通过样品并与之相互作用,形成电子透射图像。

这些图像被记录下来,并通过计算机处理和重建来生成高分辨率的三维结构模型。

通过观察这些模型,科学家们可以了解细胞和生物分子的内部结构和组织方式。

冷冻电镜技术在细胞生物学中的应用非常广泛。

它可以用来研究细胞器、蛋白质复合物、病毒等生物分子的结构和功能。

例如,科学家们利用冷冻电镜技术成功地解析了许多重要生物分子的结构,如核糖体、ATP合成酶等。

这些研究对于理解生命的基本过程和疾病的发生机制具有重要意义。

除了在细胞生物学领域的应用,冷冻电镜技术还被广泛应用于药物研发和生物医学研究中。

通过观察药物与靶分子之间的相互作用,科学家们可以设计出更有效的药物,并了解药物如何在细胞内起作用。

此外,冷冻电镜技术还可以用于研究蛋白质聚集和与疾病相关的蛋白质异常聚集现象,如阿尔茨海默病、帕金森病等。

尽管冷冻电镜技术在细胞生物学研究中具有重要作用,但它也存在一些挑战和限制。

首先,由于电子束与样品相互作用的方式不同于光束与样品相互作用的方式,因此冷冻电镜技术无法直接观察活体细胞的动态过程。

冷冻电镜

冷冻电镜
10
冷冻电镜在现代生物学中的应用:
4.研究生物大分子复合物的结构 如:病毒-受体复合物的结构 5.研究细胞器甚至是活细胞的结构 如:生物分子在运动过程中的结构和结构的变化
11
谢谢观赏
12
6
三维重构技术的原理:
透射电子显微镜成像过程中, 电子束穿透样品,将样品的三维电势密 度分布函数沿着电子束的传播方向投影至与传播方向垂直的二维平 面上。运用中心截面定理(图2), 从而可以通过三维物体不同角度的 二维投影在计算机内进行三维重构来解析获得物体的三维结构。
图2
中心截面定理
7
冷冻电镜优点:
冷冻电镜与结构生物学
报告者:
冷冻电镜与结构生物学
◆冷冻电镜在结构生物学上应用的历史沿革
◆冷冻电镜的流程与工作原理
◆冷冻电镜优点与局限 ◆冷冻电镜在现代生物学中的应用
冷冻电镜是什么?
冷冻电镜:应用冷冻固定技术,低温下使用透射电子显微镜观
察样品显微技术,从而得到生物大分子的结构
3
历史沿革:
★ 20世纪70年代通过利用冷冻电镜研究病毒分子的结构,从而
◆样品需求量少 ◆更接近生理状态 ◆适用研究对象广泛 ◆可以对不均一样品进行研究 ◆不需要对样品进行特殊化处理 ◆可获得不同构象或中间物的动态快照
8
冷冻电镜局限:
◆设备昂贵 ◆样品的准备困难 ◆样品需冷冻,不是在室温下进行 ◆样品可能被过强的电子束损伤
9
冷冻电镜在现代生物学中的应用:
1.研究那些不适合于应用X-射线晶体学和核磁共 振波谱学的分子及其聚合物的结构 如:Alzhiemer疾病的淀粉状蛋白纤维聚合物的 结构 2.研究生物大分子处于不同功能状态时的结构 如:离子通道开关 3.为X-射线晶体学结构解析提供初始分子置换模 型及初始相位 如:核糖体的三维结构

冷冻电镜简介

冷冻电镜简介

冷冻电镜简介冻电镜和X射线晶体学、核磁共振被称作结构生物学研究的三大利器,但不得不承认冷冻电镜是三者当中最弱的一种技术手段,在现在已解析的一千多种膜蛋白结构当中,90%以上都采用的是X射线晶体学方法,核磁共振在小分子量的蛋白结构解析中也发挥了重要的作用,而冷冻电镜在蛋白结构解析当中所起的作用微乎其微。

然而2013年12月5日,美国加州大学旧金山分校副教授程亦凡与同事David Julius两个实验室合作,采用单电子计数探测器,以近原子分辨率(3.4埃),确定了在疼痛和热知觉中起中心作用的一种膜蛋白TRPV1的结构,这一振奋人心的成果让研究人员们开始重新审视冷冻电镜在结构生物学研究中的所能发挥的作用。

毕竟和X 射线晶体学方法相比,它所需的样品量很少,也无需生成晶体,这对于一些难结晶的蛋白质的研究带来了新的希望。

蛋白质TRPV1结构的确定标志着冷冻电镜正式跨入“原子分辨率”时代。

2.2 冷冻电镜分类目前我们讨论的冷冻电镜基本上指的都是冷冻透射电子显微镜,但是如果我们以使用冷冻技术的角度定义冷冻电镜的话,冷冻电镜主要可以分为冷冻透射电子显微镜、冷冻扫描电子显微镜、冷冻蚀刻电子显微镜。

2.2.1 冷冻透射电子显微镜冷冻透射电镜(Cryo-TEM)通常是在普通透射电镜上加装样品冷冻设备,将样品冷却到液氮温度(77K),用于观测蛋白、生物切片等对温度敏感的样品。

通过对样品的冷冻,可以降低电子束对样品的损伤,减小样品的形变,从而得到更加真实的样品形貌。

一台冷冻透射电镜的价格在600万美元左右,价格极其昂贵,它的优点主要体现在以下几个方面:第一是加速电压高,电子能穿透厚样品;第二是透镜多,光学性能好;第三是样品台稳定;第四是全自动,自动换液氮,自动换样品,自动维持清洁。

图2.1 冷冻透射电镜及冷冻电镜下高分辨病毒的三维重构图2.2.2 冷冻扫描电子显微镜扫描电镜工作者都面临着一个不能回避的事实,就是所有生命科学以及许多材料科学的样品都含有液体成分。

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用的是光子的波动性,而光子的波长大概在500纳米左右。 蛋白质分子大小在1-100nm之间,所以光子的波长比蛋白质分子还要大,因此 光波能绕过蛋白质分子,也就看不到蛋白质了。
2、电子显微镜的原理?
电子的波长是光子波长的十万分之一左右,是一根极细的探针,理论上它 打在蛋白质分子这类生物大分子身上能被反射,这些反射的电子就能产生一张 照片,电子显微镜相当于是用电子替代光线来照射物体,由于电子的波长远低 于光波,它能够看到非常小尺度的结构。
冷冻电镜在2013年的技术革命
冷冻电镜的工作流程:
样品的制备 透射电子显微镜成像 结构解析
图像处理
图1 冷冻电子显微学解析结构基本步骤
冷冻电镜技术的操作过程:
1、样品的制备
• 用于冷冻电镜研究的生物大分子样品必须非常纯净。生物样品是在高 真空的条件下成像的,所以样品的制备既要能够保持本身的结构,又 能抗脱水、电子辐射。 • 一种方法是通过快速冷冻使含水样品中的水处于玻璃态,也就是在亲 水的支持膜上将含水样品包埋在一层较样品略高的薄冰内。该方法有 两个关键步骤:一是将样品在载网上形成一薄层水膜;二是将第一步 获得的含水薄膜样品快速冷冻。 • 另一种方法是通过喷雾冷冻装置(spray-freezing equipment),利用 结合底物混合冰冻技术(spray-freezing),可以把两种溶液(如受体和 配体)在极短的时间内混合起来 (ms量级),然后快速冷冻,将其固定 在某种反应中间状态,这样能对生物大分子在结合底物时或其他生化 反应中的快速的结构变化进行测定,深入了解生物大分子的功能。
冷冻电镜的发明及其在生物学的应用
报告人:XXX
冷冻电镜是什么?
冷冻电子显微镜技术(cryoelectron microscopy) 简称
冷冻电镜:应用冷冻固定技术,低
温下使用透射电子显微镜观察样品的 显微技术,从而得到生物大分子的结 构。
我们或许在不久的将来就能获得生命复杂 机制的原子级分辨率的图片了
冷冻电镜的工作原理:
原理: 样品经过在液氮中的冷冻固定, 使得生物大分子中的H2O分子以玻璃态 的形式存在,保持低温,将样品放入显 微镜,高度相干的电子作为光源从上面 照射下来,透过样品和附近的冰层,受 到散射,利用探测器和透镜系统把散射 的信号成像记录下来,再进行信号处理, 最后利用三维重构的技术得到样品的三 维结构。
核孔复合体不同角度的影像
冷冻电镜提供原子分辨率的 结构信息
冷冻电镜优点:
◆样品需求量少 ◆更接近生理状态 ◆适用研究对象广泛(如:天然的、动态的结构) ◆可以对不均一样品进行研究 ◆不需要对样品进行特殊化处理(如:不需要结晶) ◆可获得不同构象或中间物的动态快照
冷冻电镜局限:
◆设备昂贵 ◆样品的准备困难 ◆样品需冷冻,不是在室温下进行 ◆样品可能被过强的电子束损伤
• 3、电子显微镜观测蛋白质分子有活性的生物大分子遇到的问题?
• 第一个问题是真空问题,电子显微镜的电子只能在真空中飞行的时候才能 保持稳定的动能。而蛋白质这类生物大分子一般处于溶液中,在真空环境下, 溶液会挥发出来,污染电子显微镜。液态水在电子显微镜的真空管里蒸发,会 使得生物大分子瓦解。 • 第二个问题是电子打在蛋白质这类生物大分子上容易把蛋白质打坏了,因 为电子的能量比较高,而生物大分子一般依靠氢键来形成它的空间结构,氢键 的能量很低,电子打上去以后,氢键就被打断了。 • 第三个问题则更加严重,因为蛋白质分子这类生物大分子是有活性的,它 们是运动的,电子打上去反射回来的方向会因为分子的运动而变得杂乱无章。
在1990年,理查德· 亨德森成功地使用电子显 微镜拍摄到原子级分辨率的蛋白质三维图像, 并提出了实现原子级分辨率冷冻电镜技术的 可行性理论。 冷冻电镜的雏形基本建立,总的思路为 1. 样品冷冻(保持蛋白溶液态结构) 2. 冷冻成像(获取二维投影图像) 3. 三维重构(从二维图像通过计算得到三维密 度图)
彼得阿格雷(美)和罗德里克麦金农(美)对细胞 膜中的水通道的发现以及对离子通道的研究, 共同分享了2003年的诺贝尔化学奖。
上世纪80年代初,核磁共振成像技术问世,人们得以对溶液中 和固态的蛋白质进行成像研究,不仅进一步认识了蛋白质的结 构,更获得了蛋白质如何运动及与其他分子相互作用的基本了 解。
分辨率达到原子层面的细菌视紫红质立体图像
基于三位科学家的这些重大发现,电子显微镜自此得到全面优化, 并在2013年,研究者们终于获得了理想的原子级别成像,用以制作 生物分子的三维结构图像。过去几年中,科学文献充满了导致抗生 素耐药性的蛋白质、寨卡(Zika)病毒表面等各种图像,生物化学 正在面临爆炸性的发展。 2014年利用冷冻电镜三维重构技术确定蛋白质TRPV1结构,标志着 冷冻电镜跨入“原子分辨率”时代。
4.研究生物大分子复合物的结构 如:病毒-受体复合物的结构 5.研究细胞器甚至是活细胞的结构 如:生物分子在运动过程中的结构和结构的变化
谢谢观赏
三维重构技术的原理:
• 透射电子显微镜成像过程中, 电子束穿透样品,将样品的 三维电势密度分布函数沿着电子束的传播方向投影至与传 播方向垂直的二维平面上。 • 运用中心截面定理(如图), 从而可以通过三维物体不同角 度的二维投影在计算机内进行三维重构来解析获得物体的 三维结构。
中心截面定理
三维重构原理图
冷冻电镜产生背景
上世纪50年代,利用X射线成像技术解析蛋白质结构,人们 才首次得以拍出蛋白质晶体的螺旋状结构图片。 X射线晶体学是最早用于结构解析的实验方法之一。其中关 键步骤之一即是,为获得可供X射线衍射的单晶,需要将纯 化后的生物样品进行晶体生长。现实情况却是,目前很多 复杂的大分子物质难以获得晶体。
被认为比晶体结构更能够描述生物大分子在细胞内的真实结构,并且能获得氢原 子的结构位置。缺点则在于蛋白质在溶液中往往结构不稳定而难得获取稳定的信 号。
X射线晶体学法和核磁共振技术均对蛋白质的 纯度、结晶性和绝对量有较高的要求,使得图 像分辨率难以提升,更是无法获得蛋白质结构 的动态变化。 因此,无论是X射线晶体学成像还是核磁共振, 都不能让研究者获得高分辨率的大型蛋白复合 体结构,生物结构学领域的发展也因此受困于 成像技术。
冷冻电镜技术获2017诺贝尔化学奖
2017年10月4日下午5点45分许,诺贝尔奖评委会主席格荣·汉森 (Goran Hansson)宣布,因发明用于生物分子的高分辨率结构测 定的冷冻电子显微镜(cryo-electron microscopy),瑞士洛桑大 学的雅克·杜波切特(Jacques Dubochet)、美国哥伦比亚大学的 乔基姆·弗兰克(Joachim Frank)和英国剑桥大学的理查德·亨 德森(Richard Henderson)获得2017年度诺贝尔化学奖。 诺贝尔奖官方称为“使得生物化学进入一个新时代”
3、图像处理和三维重构
• 数据处理的最终目的是为了获得生物样品的三维质量密度图。由于冷冻电镜获 得图像信躁比低,结构信息常常淹没在躁声中而难辨认。只有通过大量拍摄生 物样品的同一个图像,然后用某种方法加以平均来消除躁声。由二维图像推知 三维结构的方法即三维重构。
冷 冻 电 镜 数 据 分 析 处 理 流 程
在1980年代初,雅克· 杜伯切特成功将水玻璃态化,他将水快速冷却,在生物 样本周围以液态形式固化,使生物分子即使在真空中也能维持天然形态。 雅克· 杜伯切特(Jacques Dubochet)的重要贡献则是在真空环境下使生物分 子保持自然形状。
一般情况下,通过氢键的相互作用,水分子 会在凝固过程中形成有序排列,形成晶体。 而迪波什想到的即是在水分子相互作用之前 就让其凝固,将生物样品浸入事先经液氮冷 却的乙烷中,就能使水迅速冷却、在数毫秒 之内完全凝固,这种方式得到的就不是晶体 而是无定形态,而玻璃也是处于无定形态, 玻璃化名称由此而来。生物样品嵌在无定形 冰中,堪称留下了真实的一瞬间。 1982年,迪波什开发出真正成熟可用的快 速投入冷冻制样技术制作不形成冰晶体的玻 璃态冰包埋样品。
1981年,弗兰克完成了单颗粒三维重构算 法及软件Spider,利用计算机识别图像把 相同蛋白质的不同影子收集起来,并且将 轮廓相似的图像进行分类对比,通过分析 不同的重复模式将图片拟合成更加清晰的 2D图像。在此基础上,通过数学方法,在 同一种蛋白质的不同2D图像之间建立联系, 以此为基础拟合出3D结构图像。弗兰克的 图形拟合程序被认为是冷冻电镜发展的基 础。
样品在液氮中冷冻
2、数据采集
• 冷冻的样品通过专门的设备——冷冻输送器转移到电镜的样品室。在照相之前, 必须观察样品中的水是否处于玻璃态,如果不是则应重新制备样品。由于生物 样品对高能电子的辐射敏感,照相时必须使用最小曝光技术(minimal exposure technic)。要得到高分辨率的电镜图像,照相时累积的电子剂量不 能超过临界剂量1000到2000e-nm-2;中等分辨率的电镜图像图像不能超过临 界剂量 10000e-nm-2。
冷冻电镜的诞生
1975年,亨德森利用电子显微镜的方法,发表出来第一个非常粗糙的视 紫红质蛋白结构,图片上可以看出七个跨膜蛋白链。证明了电子显微镜 在生物领域的适用性。这也是历史上第一张膜蛋白领域的三维结构。
细菌视紫红质较为粗糙 的三维立体结构图像
亨德森将未脱离细胞膜的细菌视紫红质直接放置在电子显微镜下进行 观察,借助表面覆盖的葡萄糖防止真空干涸,并采用强度更低的电 子束流,得出细菌视紫红质在细胞膜上是规整排列且朝向一致。之后, 在前述Aron Klug等人提出的三维重构技术的基础上,亨德森和同事 获得了细菌视紫红质较为粗糙的三维立体结构图像。 亨德森所发展出来的方法也具有其局限性,这是因为他所研究的蛋白 本身的特性让研究者能够采用所谓“冷冻电子断层成像术”来测定其 结构。简单来说,研究人员要转动细胞膜,从不同角度对蛋白拍照, 最终构建出蛋白的三维结构。这种方法只适用于排列有一定规律的蛋 白——如果它们是杂乱无章的,这种方法就难以奏效了。
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