植物氮素营养的生理生态学研究_赵平
氮素营养对园林植物根系生长与生理特性影响的研究

关键词 : 氮素营养; 园林植物 ; 系生长 ; 系生理特性 根 根
中图分类号 :7 5 ¥ 2 文献标识码 : A
元刚 [ 以橡胶树 为材料进 行 了研 究 , I ] 以探讨施 氮量对 植物 根系
的影响研究 相对较
少, 而关 于水稻和小麦 的研究较 多 , 为此本 文以这两种植 物为例
来 说明不同的施氮时期对园林植 物根系生长 的影 响。
从研 究结果来看 , 当土壤施氮质量分数 高于 8 ,g , 0mg( 时 侧 I
度下就发生 一系列的变化 , 但是木本植物反应较 为迟钝 , 需要加
理特 性 的影 响 , 以为合理施 肥 , 促进植 物 的生长 , 提高观 赏价值 提供理论基础 。
1 氮 营养 对 园林植 物根 系生长 的影 响
1 施氮量对 园林植物根 系生长的影响 . 1
大浓度 。张含彬 的研究更是详细地指 出了大豆适宜 的施 氮水平 在 15k /m — 2 gI 3 g 22 5k,m 为宜 。这 对于避免盲 目性使用 氮肥具 h 1
根数 开始 增加 , 当施 氮质量分数达 到 6 0mg【~ 8 ,g , 4 , 120mg( 时 I g l
据研究 , 使用基肥 、 分蘖肥能够显 著地增加水稻拔节期 、 倒
2叶期 、 抽穗期每株植物的不定根数 、 不定 根总长度以及根干重 ,
侧根数达 到最大量 , 高于此浓度侧根数量迅速下降。对于吸收根 干重 、 根系总长度 , 各级侧根平均长度 的影响也有类似规律 , 即土壤
植物生理实验报告

缺氮对植物生长的影响王涛赵为朋河北农业大学,农学院,植物科学与技术0901班摘要:已有的实验结果表明,氮、磷、钾肥不同用量配比对于米的产量、效益有较大影响[1]。
为研究缺氮对玉米生长发育的影响,以沈玉26 CK玉米为材料,在苗期进行缺氮处理。
通过对玉米幼苗生长速度、根冠比、叶片叶绿素含量、地上部和根鲜重等指标进行研究,结果表明:株高在处理后第7天出现明显差异,处理组株高低于对照组2.8cm,仅为对照组的83.33%;对照与处理组间根冠比出现显著差异;对照与处理组间叶绿素含量出现显著差异;地上部和根鲜重出现显著差异。
故上述指标可以作为玉米幼苗缺氮对其生长的影响的指标。
关键词:玉米;氮素;生长状况;根冠比;叶绿素含量;地上部和根鲜重比例随着我国人民生活水平的提高和畜牧业的迅速发展, 玉米在饲料中的地位愈来愈重要。
我国在大部分玉米供作饲料后, 玉米的生物学产量及其饲用营养品质倍受重视。
关于氮素对玉米子粒产量影响的报道较多[ 2-3 ]。
氮素既是植物最重要的结构物质,又是生理代谢中最活跃、无处不在的重要物质——酶的主要成分[ 4]另外作为实验材料玉米幼苗易取得,试验速度快,容易观察。
本文以沈玉26CK为实验材料,旨在研究缺氮对玉米幼苗的生长带来的影响和其表现症状。
杨丽娟〔5〕、黄鑫〔6〕等分别对玉米进行了缺素症状研究何萍研究了氮肥对春玉米叶片衰老的影响[7 ] ;关义新等研究了光氮互作对玉米幼苗叶片光合碳、氮代谢的影响[8 ] 。
结果显示:缺N、P、K、Ca、Mg、Fe 等几种元素.玉米苗地上与地下部分均与对照有显著差异。
1 材料与方法1.1 材料供试玉米品种为沈玉26CK,沈玉26CK玉米的种子及其经过培养的幼苗,本实验采用数据取自3号和6号所培养的沈玉26CK玉米幼苗。
其他:蛭石,塑料盆、盘,标签纸,完全营养液,缺氮营养液,95%的乙醇,洗瓶,研钵(一套),25ml棕色容量瓶(两个),玻璃棒,漏斗(两个),50ml 小烧杯(两个),漏斗架,剪刀,直尺,滤纸,托盘,胶头滴管,1ml玻璃比色杯,电子天平,721E型可见分光光度计1.2 方法1.2.1 播种每组选取6个花盆,装满蛭石后,每3盆放入一个塑料盘内,从沈玉26CK 品种的玉米籽粒中选取试验用种子,在每个塑料盆里种6粒,用自来水浸润,保持湿润,放于向阳的阳台上发芽。
不同铵硝配比对蔬菜和烟草产量及品质影响的整合分析

8 doi:10.11838/sfsc.1673-6257.22363不同铵硝配比对蔬菜和烟草产量及品质影响的整合分析陈嘉涛1,李精华1,2,樊 帆3,阮云泽1,2,李婷玉1,2*(1.海南大学热带作物学院,海南 海口 570208;2.海南大学三亚南繁研究院, 海南 三亚 572000,3.中国农业科学院作物科学研究所,北京 100081)摘 要:氮素是作物所必需的大量营养元素,其形态的不同显著影响作物的吸收与生理代谢过程,从而对作物产量和品质产生影响。
蔬菜和烟草是典型的喜硝作物,但诸多研究发现适当补充一定的铵态氮有助于作物产量和品质的提升,而目前缺乏大样本的广泛验证,导致此尚未形成定论。
共搜集了2000—2022年间发表的77个不同铵硝配比对蔬菜和烟草作物生长影响的实证研究,利用整合分析方法,评估了不同铵硝配比对不同作物产量、品质及光合特性等指标的综合影响,以期为该类型作物群体合理的营养调控提供科学支撑。
结果表明,蔬菜和烟草更偏好于硝态氮,但与纯硝态氮供应相比,适当增加一定比例的铵态氮可以显著提高作物生物量,并以铵态氮占比小于50%为佳,在此铵硝配比下叶菜和茄果作物生物量可分别增加11.3%和8.4%,当铵态氮比例增大到50%以上或纯铵供应时,蔬菜作物的生物量会下降或无显著提质作用;叶菜类中的可溶性蛋白含量在以铵主导(>50∶50)时显著增加42.2%,而茄果类则在硝主导(<50∶50)时增加22.7%;叶菜中维生素C 含量仅当供铵比例≤50%时增加效果显著。
烟草在供应均衡的铵硝(50∶50)时,其产量与生理指标均能达到最佳水平,相比纯硝处理,生物量可增加22.1%。
此外,发现铵硝均衡配比(50∶50)时,蔬菜和烟草中的叶绿素含量均达到最高值。
以上发现有效证实了在蔬菜和烟草生产中,适宜的铵硝配比对作物增产和提质有极大的促进作用,但要保证铵态氮的添加比例不宜超过总氮的50%,以免减产和品质下降。
植物营养生态学分析植物与环境之间的养分循环与生态关系

植物营养生态学分析植物与环境之间的养分循环与生态关系植物营养生态学是研究植物营养与环境之间相互作用的学科。
它关注植物对周围环境中的养分的吸收、利用和释放,以及这些过程对生态系统的影响。
通过对植物与环境之间的养分循环与生态关系的分析,我们能够更好地理解植物的生长发育和生态适应性。
一、背景为了理解植物与环境之间的养分循环与生态关系,我们首先需要了解植物对养分的需求以及其获取途径。
植物生长发育需要一系列元素,包括氮、磷、钾等,这些元素在土壤中以不同形态存在,并随着土壤的物化性质和环境变化而发生转化。
植物通过根系吸收土壤中的养分,进而进行能量合成和代谢活动。
二、植物对养分的吸收与利用植物通过根系吸收土壤中的养分。
不同养分的吸收方式和吸收特点各异。
以氮为例,植物主要通过氮根系吸收硝态氮和铵态氮。
其中,硝态氮是植物吸收的主要形式,但铵态氮对一些特定植物也具有重要意义。
氮的吸收过程受到土壤氮素含量、pH值、温度等环境因子的影响。
植物对养分的利用与植物的生理状态密切相关。
例如,当植物生长速度较快时,对氮的需求也会相应增加。
植物通过氮素转运蛋白、酶等来实现对氮的利用。
同样,磷、钾等养分的利用方式也各不相同。
三、植物与环境中养分的释放植物通过不同途径将吸收的养分释放回环境中。
一方面,植物通过代谢活动释放一部分养分,如通过叶片的凋落、根系的分泌等方式。
另一方面,植物在生长过程中会与环境中的其他生物进行养分交换,如与共生菌根、土壤中的微生物等。
环境因素对植物养分释放也有一定影响。
比如,土壤湿度和温度的变化会影响植物根系的分泌活动,进而影响养分的释放。
此外,土壤中的微生物活动对养分释放也有一定的贡献。
四、养分循环与生态关系植物与环境之间的养分循环与生态关系是生态系统中一个重要的环节。
植物通过吸收、利用和释放养分,不仅满足了自身生长发育的需求,同时也对周围的生物和地理环境产生了影响。
首先,植物的养分循环对土壤的养分供应起着重要作用。
植物氮代谢及其环境调节研究进展

植物氮代谢及其环境调节研究进展3许振柱 周广胜33(中国科学院植物研究所植被数量生态学重点实验室,北京100093)【摘要】 氮代谢是植物的基本生理过程之一,也是参与地球化学循环的重要组成部分.植物氮素同化的主要途径是经过硝酸盐还原为铵后直接参与氨基酸的合成与转化,期间硝酸还原酶(NR )、谷氨酰胺合成酶(GS )、谷氨酰胺合酶(G O G A T )、天冬酰胺转氨酶(AspA T )等关键酶参与了催化和调节.以氨基酸为主要底物在细胞中合成蛋白质,再经过对蛋白质的修饰、分类、转运及储存等,成为植物有机体的组成部分,同时与植物的碳代谢等协调统一,共同成为植物生命活动的基本过程.文中概述了植物氮素同化的途径、几种关键酶的特性和调控机制,简述了氮素代谢的信号传导、植物细胞蛋白质的形成、转运、储存和降解过程.基于水分胁迫等关键生态因子对氮代谢的影响及其调节机制的评述,强调了未来需加强研究的7个方面.关键词 氮代谢 环境调节 水分胁迫 关键酶 途径文章编号 1001-9332(2004)03-0511-06 中图分类号 Q945,Q949 文献标识码 AR esearch advance in nitrogen metabolism of plant and its environmental regulation.XU Zhenzhu ,ZHOU Guangsheng (L aboratory of Quantitative V egetation Ecology ,Institute of Botany ,Chinese Academy of Sci 2ences ,Beijing 100093,China ).2Chin.J.A ppl.Ecol .,2004,15(3):511~516.Nitrogen metabolism is not only one of the basic processes of plant physiology ,but also one of the important parts of global chemical cycle.Plant nitrogen assimilation directly takes part in the synthesis and conversion of amino acid through the reduction of nitrate.During this stage ,some key enzymes ,e.g.,nitrate reductase (NR ),glu 2tamine systhetase (GS ),glutamate dehydrogenase (G DH ),glutamine synthase (G O G A T ),aspargine synthetase (AS ),and aspartate aminotransferase (AspA T )participate these processes.The protein is assimilated in plant cell through amino acid ,and becomes a part of plant organism through modifying ,classifying ,transporting and storing processes ,etc.The nitrogen metabolism is associated with carbonic metabolism through key enzyme regulations and the conversion of products ,which consists of basic life process.Among these amino acids in plant cell ,glutam 2ic acid (G lu ),glutamine (G ln ),aspartic acid (Asp )and asparagines (Asn ),etc.,play a key role ,which regulates their conversion each other and their contents in the plant cell through regulating formation and activity of those key enzymes.Environmental factors also affect the conversion and recycle of the key amino acids through regulat 2ing gene expression of the key enzymes and their activities.Nitrate and light intensity positively regulate the gene transcription of NR ,but ammonium ions and G lu ,G ln do the negative way.Water deficit is a very serious con 2straint on N 2fixation rate and soybean (Glycine m ax Merr.)grain yield ,in which ,ureide accumulation and degradation under water deficit appear to be the key issues of feedback mechanism on nitrogen fixation.Water stress decreases NR activity ,but increases proteinase activity ,and thus ,they regulate plant nitrogen metabolism ,although there are some different effects among species and cultivars.Water stress also decreases plant tissue pro 2tein content ,ratio of protein and amino acid ,and reduces the absorption of amino acid by plant.On the contrary ,soil flooding decreases the content and accumulation amount of root nitrogen in winter wheat by 11.9%from booting to flowering stages and 39.1%during grain filling stage ,and reduces the ratio of carbon and nitrogen by 79.6%.The results misadjust the metabolism between carbon and nitrogen ,and result in the end of the root growth.Elevated CO 2level could decrease plant leaf nitrogen content under well 2watered condition ,but almost maintain stable under water deficit condition.The radiation of UV 2B significantly reduces the partitioning coeffi 2cient and synthetic rate of Rubisco ,which significantly decreases the photosynthetic rate.This paper reviewed the pathway of plant nitrogen assimilation ,characteristics of key enzymes and their regulating mechanisms with pic 2turing the regulating mode of NR ,and described the signal sensing and conduct of plant nitrogen metabolism and the formation ,transportation ,storage and degradation of plant cell protein with picturing the schedule of protein transport of membrane system in plant cell.Seven key tasks are emphasized in this paper in terms of the review on the effects and mechanisms of key ecological factors including water stress on plant nitrogen metabolism.They are :1)the absorption mechanism of plant based on different nitrogen sources and environmental regulations ,2)the localization and compartmentalization of the key enzymes of nitrogen mechanism in plant cell ,3)the gene and environmental regulating model and their relationships in various key enzymes of nitrogen metabolism ,4)the function of main cell organs and their responses to environmental factors in nitrogen metabolism process ,5)phys 2iological and chemical mechanism of nitrogen and the relationship between the mechanism and protein formation during crop grain filling ,6)improving gene structure of special species or cultivars using gene engineering meth 2ods to enhance the resistance to environmental factor stress and the efficiency of absorption and transportation of nitrogen ,and 7)the mechanism of natural nitrogen cycle and its response to human activity disturbance.K ey w ords Nitrogen metabolism ,Environmental regulation ,Water stress ,K ey enzymes ,Pathway.3国家重点基础研究发展规划项目(G1999043407)、国家自然科学基金重点项目(39730110)和中国科学院知识创新工程资助项目(KSCX221207,KZCX12SW 201212).33通讯联系人.E 2mail :zhougs @ 2002-08-07收稿,2002-11-27接受.应用生态学报 2004年3月 第15卷 第3期 CHIN ESE JOURNAL OF APPL IED ECOLO GY ,Mar.2004,15(3)∶511~5161 引 言植物从外界环境获得N主要是通过3条途径,通过NO-3还原把无机氮转化为生命体可用的有机氮,通过固氮菌对N2的固定,直接吸收土壤中的铵或有机氮.有研究者指出,每年经硝酸盐同化的N达10×1010t,而固氮菌固定的N 只有10×108t,前者是后者的100倍.而且硝酸盐还原与C 代谢密切相关,估计光合作用能量的25%用于硝酸盐还原[41].光合碳代谢与NO-2同化都发生在叶绿体内,二者都消耗来自碳同化和光合及电子传递链的有机碳和能量.研究表明在某些组织中N代谢甚至可消耗掉光合作用能量的55%[42].毫无疑问,研究其生理生化过程及其环境调节机制是揭示植物生命活动过程机制的关键.无机氮被吸收还原后,在植物体内经运输、合成、转化及再循环等各种生理活动过程后,与蛋白质代谢共同构成其生命活动的基本过程.2 氮素同化的途径一般认为植物同化的主要途径是[41,46]:NO-3NRNO-2NiRNH+4(NR:NO-3还原酶,NiR:NO-2还原酶).而NH+4同化需要经过一系列酶促反应的复杂过程,Lam等[17]总结了氨同化及其循环的生化反应过程:G lu+NH+4+A TP GSG ln+ADP+PiG ln+α-Oxo+2Fd(red)Fd-GO GAT2G lu+2Fd(Ox)G ln+α-Oxo+NADH NADH-GO GAT2G lu+NADG lu+H2O+NAD/NADP G DHNH+4+α-Oxo+NADH/NADPHG lu+Oxo AspATAsp+α-OxoG lu+Asp+A TP AsAsn+G lu+AMP+PPiAS有另一种作用形式是[4]NH+4+Asp+A TP AsAsn+ADP+Pi其中,GS为谷氨酰胺合成酶;G O G A T为谷氨酰胺合酶;G DH 为谷氨酸脱氢酶;AspA T为天冬氨酸转氨酶;As为天冬酰胺合成酶;α2Oxo为α2酮戊二酸;Pi为磷酸;PPi为焦磷酸.植株内所有的无机氮首先被逐步还原,经过再循环后变成有机氮形态[14].3 氮素同化过程中的关键酶及其调节311 硝酸还原酶(NR)NR是植物N代谢关键步骤硝酸盐同化中的限速酶,为了阐明其催化特性、效率及其调节的研究倍受关注[12,41].对各种环境条件下NR调节作用的研究仍较少.图1描绘了NR的调节模型[1,31,41,50].312 谷氨酰胺合成酶(GS)GS有两种同工酶,即分别定位于胞质和叶绿体的GS1图1 硝酸还原酶的调节模型Fig.1Regulating mode of nitrate reductase.和GS2,分别执行不同的生理功能.位于叶绿体中的GS2的主要功能是把叶绿体和光呼吸再合成的NH+4合成为谷氨酰胺(G ln)[23],而处在根中的GS1则主要是参与根部N的合成,但同时GS2也参与了这一过程[24].研究表明,GS2基因表达与光密切相关,受到光敏素的激活[9].同时也受到组织状况、碳水化合物、氨基酸供应和光呼吸的影响[24].GS在植物N代谢中的地位和作用是复杂的,具有不同同工酶表达类型及生物功能[17].313 谷氨酸脱氢酶(G DH) G DH具有两种形式,一种是在线粒体中发现的依赖于NADH的G DH,另一种是叶绿体中发现的依赖于NADPH的G DH[8].G DH在NH+4的合成及G lu的代谢中具有十分独特的作用.它在NH+4的合成和再合成中起初始性作用,并在G lu合成循环中起补充作用,但是它在高等植物中的生理作用仍有争议[17].植物在适应暗环境后积累较多的G DH的mRNA,并会受到光和蔗糖的抑制[17].有证据表明,有2种相互制约的基因参与了光与糖对G DH的调节作用[22].当C代谢受限时,G DH的活性会增加[27].这表明C代谢及其代谢物参与G DH的调节.314 天冬酰胺合成酶(AS)虽然天冬酰胺(Asn)是已在190多年前被分离出来的氨基酸[51],但有关其合成机制最近才被阐明.普遍认为AS是植物合成Asn的主要途径[34].环境条件和代谢信号控制Asn 的水平和AS活性.当需光植物适应于暗环境时,使AS活性升高和Asn含量增加,其中光敏素在起作用[16].也有报告指出光和(或)蔗糖会降低AS的活性[3,7].添加外源氨基酸如谷氨酸(G lu)、G ln、Asn等能免除庶糖的抑制作用.表明无机氮对C的比率可能是其基因表达的最终影响因子.在提供的碳架较多而无机氮源不足的条件下,Asn的合成储存作用则比较显著[16].215应 用 生 态 学 报 15卷315 谷氨酰胺合酶(G O G A T )G O G A T 也有两种形式,一种是以NADH 作为电子供体的NADH —G O G A T ,另一种则是以铁氧还蛋白作为供体的Fd 2G O G A [38].后者在植物叶片中处于主导地位,占全部G O G A T 活性的95%[17].Fd 2G O G A T 存在于叶绿体中,光诱导它的生物合成,并与光合作用和光呼吸有关[38].光诱导使其mRNA 水平升高,而外源蔗糖则能使由于缺乏光照导致的Fd -G O G A T 蛋白的减少得以逆转[17].说明有利光合作用的因素亦有利于Fd 2G O G A T 的表达和合成.316 天冬酰胺转氨酶(AspA T )AspA T 的作用是以G lu 和草酰乙酸为底物,生成Asp 和α2酮戊二酸.它有多种不同形式的同功酶.其在不同环境中的生理生化作用不同[17].在豆科作物苜蓿(M.sativa )中,随着有效根瘤的发育,其叶片中AspA T 的mRNA 水平提高[48].有效氮对胞质和线粒体中的AspA T 的基因转录过程起正效应,而对质体中的基因表达无此效果[47].4 植物细胞蛋白质的形成、转运及储存植物从外界吸收NH +4或NO -3后合成为氨基酸,之后经过相互转化,生成合成蛋白质的各种底物,根据基因的遗传信息,在mRNA 、tRNA 和rRNA 以及氨基酸活化酶等生物功能物质参与下,在核糖核蛋白体上合成肽链,再经过折叠等生化过程最后形成具各种生物功能活性的蛋白质[52].Okita 和Rogers[28]在总结前人工作基础上,描绘出了植物内膜系统蛋白转运模型(图2).图2 植物细胞内膜系统蛋白质转化过程图Fig.2Schedule of protein transport of membrane system in plant cell.AP :自体吞噬路径Autophagic pathway ;CCVs :外套格子小泡Clathrin 2coated vesicle ;CW :细胞壁Cell wall ;;ER :内质网Endoplasmic reticu 2lum ;G olgi :高基体G olgi body ;PM :胞间连丝Plasmodesma ;PSV :贮存蛋白质液泡Protein storage vacuole ;SDVs :光滑小泡Smooth “dense ”vesicles ;V :液泡Vacuolar. 蛋白质在内质网(ER )中合成后分泌于膜腔内,按照细胞内的区域化特定顺序运转:包括从ER 到高尔基体(G ol 2gi )[29](后者分为Cis 2G olgi 网、G olgi 垛和传输G olgi 网[44]).蛋白质在ER 和G olgi 区格化传输过程中被浓缩了200倍[36],这个过程也可能始于ER 的出口[2],蛋白质在ER 内被分类后进入贮存蛋白质的液泡(PSV ),或在G olgi 体内分类后分泌出光滑小泡(SDVs )或外套格子小泡(CCVs )后进入PSV.ER 可通过自体吞噬路径(AP )直接进入液泡形成蛋白质体(PBs ).其间需要一些特殊的相关氨基酸残基,或不具相邻残基折叠成的三维结构[30].其分类决定了蛋白质在细胞内区格化内膜系统的位置.然后,由ER 直接或在液泡[52]内形成大的蛋白质分子,甚至形成蛋白质体,并存在着ER 参与下通过胞间连丝(PM )细胞间的分子水平上的传导[11].在大麦醇溶蛋白的积累过程中,蛋白质体在液泡内积累包装后形成,但也发现由内质网直接形成的蛋白质体,当胚乳发育到较晚阶段后其快速积累的醇溶蛋白几乎全部是在内质网中进行[33].在豆科作物上也得到类似的结果[25].另一种情况是,在蛋白质积累过程中,许多内质网潴泡聚集浓缩,进一步形成蛋白质体[13,18].Robinson 等[35]的研究证实豌豆子叶缺乏核糖体的内质网可能直接形成贮存蛋白质的液胞,并在其周围有嗜锇的蛋白质沉积物.5 氮代谢的信号硝酸钾对植物生长的作用在16世纪已被人们所认识.硝酸根本身就是植物吸收硝酸根和诱导N 代谢的正信号.而其代谢产物铵、合成产物G lu 和G ln 是负信号.基因分析的研究方法也证明了这一点[6].但实际情况较复杂,例如硝酸根可通过抑制淀粉合成关键酶的基因表达使碳架向着用于N 合成的方向转化[37].研究表明,烟草NR 突变体具有低水平的活性,失去了野生型的诱导作用,分离出的相关基因ANRI 在根系扩展中扮演了重要角色[59].基因标记的研究结果表明,野生型烟草和一种NR 缺陷型烟草Nia30(145)相比,前者可在高硝酸根水平条件下合成较多的蛋白质、氨基酸和G ln ,消耗的硝酸根也较多,后者则相反,表明由于基因缺失而导致了硝酸根诱导作用的丧失[37].Wang 等[54]的研究表明,根据硝酸根诱导NR 的mRNA 快慢,可把NR 克隆基因分为两类,一类是对低浓度硝酸根的快速(20min )响应基因,另一类是对高浓度硝酸根的慢速(2h )响应基因.相比而言,以铵及其衍生物氨基酸作为分子信号的证据较少.认为铵及其衍生物氨基酸(G lu/G ln )是硝酸根和铵吸收的负调节物.在分子水平上的证据是,一种铵转运子基因(AM T1)在调节铵信号中起作用,铵及其合成产物G ln 可抑制其表达[54].N 和C 代谢在植物生化代谢途径中紧密相连.C 代谢调节基因介入和CN 代谢调节过程是显而易见的.葡萄糖和蔗糖的比值(G lc/Suc )可影响NR 的活性,而蔗糖能诱导经暗适应的绿色幼苗NR 的产生.在分子信号感知、传递和接受过程中,C 和N 代谢存在着相互制约的关系.光可诱导NR 活性及使mRNA 水平升高,C 代谢产物及引起NR 活性降低的N 代谢产物亦可达到同样的效果[6].6 环境调节611 水分胁迫水分是影响N 生物地球化学循环的关键因子之一.有研3153期 许振柱等:植物氮代谢及其环境调节研究进展 究表明,水分胁迫严重影响了豆科植物(如大豆)对大气中的N2的固定,从而减少了植物对无机氮的利用,最近的实验结果指出,水分胁迫后大豆根部的酰脲含量积累或降解揭示了其对水分亏缺适应的线索.这方面的研究刚刚起步,可望有进一步的成果报道[39,49].以植物的水分关系为例评述环境条件对N代谢的调节过程.Hsiao[15]的报告指出,水分胁迫显著地降低了NR的活性,中度胁迫仅1d便使提取液中的NR活性降低20%,严重或长时间的胁迫降低50%或更多,但此过程是可逆的,复水后24h便能恢复到其对照水平.NR活性的降低也表现在水分胁迫影响了NR的合成过程.最近Y adav等[56]研究结果表明,小麦在PEG轻度胁迫下,NR的活性提高,而在严重胁迫下,NR的活性开始下降.这或许表现出了其对水分胁迫的适应性.而Neeru[26]报道小麦在PEG渗透胁迫下,叶片的NR活性很快下降,并指出在胁迫初期下降的原因主要是活性的失活,不是合成量的减少.蒽玉芹等[55]在大田中的试验结果表明,降低土壤水分导致小麦NR活性急剧下降,提高土壤水分含量后又可显著地提高其活性,当处在孕穗期小麦的土壤水分达18%以上时,NR活性可成倍提高.水分胁迫的影响在品种间差异明显,抗旱品种活性降低速率低于敏感品种.并存在翻译水平上的差异.另一方面,由于干旱抑制光合和呼吸,导致NADH水平降低,而在NO-3的还原过程中需要其NADH提供电子,其水平的降低必会导致NR活性的下降[10,12,60].总之,不同土壤水分条件对植物NR活性的影响有差异,土壤水分条件不同(如干旱方式、长度等)影响机制可能不同,这方面还有待进一步研究.一般认为,水分胁迫使蛋白酶等一系列水解酶的活性增加,促进分解.Srivali[43]研究认为,水分胁迫能促进小麦老化,同时提高内肽酶和外肽酶的活性,从而导致一些蛋白质的水解.最近,陈立松等[5]对荔枝叶片的研究表明,在中度水分胁迫下,蛋白酶活性迅速提高,抗旱性强的品种提高幅度显著超过抗旱性弱的品种.在严重水分胁迫下,活性增大更多,2个供试品种蛋白酶的活性均极显著大于中度水分胁迫下的蛋白酶活性,抗旱性弱的品种增幅更大.经分析,叶片中的总可溶性蛋白质含量与蛋白酶活性呈显著负相关.这表明总可溶性蛋白质含量的下降是由于蛋白酶活性升高引起蛋白质水解所致.岳艳玲等[57]在小麦叶片上的研究表明,随着水分胁迫时间的延长,小麦叶片水溶性蛋白和非水溶性蛋白含量均显著降低,蛋白酶活性明显升高,并指出多胺参与了对蛋白酶的调控.多数研究者认为,水分胁迫导致蛋白质与氨基酸的比率或蛋白质含量减少[5,15].以甜菜叶片为例,干旱胁迫数天后,单位干重的可溶性蛋白和总蛋白含量都逐渐减少,在小麦叶片上的研究结果也表明,当相对含水量(RWC)降低到60%时,可溶性蛋白的含量显著减少.标记氨基酸渗入蛋白质的试验表明,短期的中度或严重胁迫阻碍了对氨基酸的吸收和渗入,从而影响到蛋白质合成[15].张慧等[58]采用示踪技术测定了渗透胁迫下小麦叶片蛋白质合成的能力,表明胁迫降低了叶片、特别是生长叶片蛋白质固定14CO2及由根系吸收的14C2G ly的掺入率,且抗旱性强的品种降低幅度较小.612 其它环境条件的影响土壤滞水对冬小麦影响的研究结果表明,根系中N含量和N积累量在不同生育时期的反应不同.前期影响较小,扬花后则随着滞水时间的延长逐渐下降,孕穗至扬花期间下降11.9%,灌浆期则下降39.1%,CN比下降79.6%,造成CN 代谢失调,根系走向衰亡[61].大雨会导致土壤N的损失[40].研究指出,在适宜的水分和土壤N供应条件下,高CO2水平降低植物叶片的含N量,原因是高CO2水平增加的生物量的幅度高于N增加的幅度,导致稀释效应的发生[19,21].但在草原上用小麦的研究试验表明,在水分亏缺条件下CO2水平的提高对N吸收和含量的影响不大.而低土壤N降低了叶片含N量,进一步加剧了高CO2浓度的稀释效应[40].UV2B辐射增强使叶N在Rubisco的分配系数明显降低,其合成明显减少,引起光合速率的明显降低.UV2B可能改变香蕉植株对不同氮源的吸收利用能力,从而引起CN比代谢和酸碱代谢调节的变化,导致CN比增高[45].杜仲叶片NR、GS、G DH和谷丙转氨酶(GPT)活性随酸雨p H值降低而降低,可溶性蛋白质和总N含量也呈类似趋势[32].7 结 语尽管近年来人们对植物N的合成途径、利用效率及其植物体内的转化过程展开了大量的研究,取得了一系列新的认识,但研究结果仍较分散,并没有绘制出植物界N代谢的完整过程和途径,许多难点和疑点还有待阐明:1)植物对不同氮源吸收机制及其环境调节;2)N代谢过程中关键酶在细胞内的定位、区域化及其作用,例如定位在不同细胞器中的酶的结构差异性如何,所起作用有何异同等;3)不同N代谢关键酶基因调控和环境调节模型及其相互间的关系;4)N代谢过程中参与的有关细胞器的功能及其环境影响;5)作物籽粒中N生理生化代谢过程及其与蛋白质体形成的关系;6)利用基因工程的手段改善特定植物物种或品种的基因结构,提高植物对N亏缺或富集等胁迫环境下的抗性,最大限度地提高N的吸收、转运效率;7)研究自然界N循环的内在机制及其人类活动的干扰影响,为维护和改善生态环境,促进可持续利用提供策略.相信随着植物生理学、生态学、细胞生物学、生物化学、分子生物学等学科的不断发展和综合交叉,人们对植物N代谢的认识将会进一步深入,从而达到有效控制植物对N的利用、合成和转化及分解过程的目的.参考文献1 Baki GKA,Siefritz F,Man HM,et al.2000.Nitrate reductase in Zea mays L.under salinity.Plant Cell Envi ron,23:515~5212 Balch WE,McCaHery J M,Plutner H,et al.1994.Vesicular stom2 atifies vinls glyco protein is sorted and concentrated during export from the Endoplasmic reticul um.Cell,76:841~8523Brouquisse R,Tames F,Pradet A,et al.1992.Asparagine metabolism and nitrogen distribution during protein degradation in sugar2starved maize root tips.Planta,188:384~395415应 用 生 态 学 报 15卷4 Cedar H,Schwartz J H.1969.The asparagine synthetase of Es2 cherichia coli I.Biosynthetic role the enzyme,purification,and char2 acterization of the reaction products.J Biol Chem,244:4112~4121 5 Chen L2S(陈立松),Liu X2H(刘星辉).1999.Effects of water stress on nitrogen and nucleic acid metabolisms in L itchi(L itchi chi nensis Sonn)leaves and their relations to Drought2resistance.Ac2 ta Phytophysiol Si n(植物生理学报),25(1):49~56(in Chinese) 6Coruzzi G,Bush DR.2001.Nitrogen and carbon nutrient and metabolite signaling in plants.Plant Physiol,125:61~647 Davis KM,K ing GA.1993.Isolation and characterization of a cDNA clone for a harvest induced asparagine synthetase from Asparagusf f ici nalis L.Plant Physiol,102:1337~13408 Dembinski E,Bany S.1991.The amino acid pool of high and low protein rye inbred lines(Scale cereale L.).J Plant Physiol,138: 494~4969 Edwards J W,G oruzzi GM.1989.Photorespiration and light act in concert to regulate the expression of the nuclear gene for chloroplast glutamine synthetase.Plant Cell,1:241~24810 Elrilli IR,Holmes JJ,Weger HG,et al.1988.RuBp limitation of photosynthetic carbon fixation during NH3assimilation,interactions between photosynthesis respiration and ammonium assimilation in N2limited green algae.Plant Physiol,87:395~40111Evers AD,Lindley J.1977.The particle sizedistribution in the wheat endosperm starch.J Sci Food A gric,28:98~10212 Foyer CH,Notor G,Lelandais M,et al.1994.Short2term effects of nitrate,nitrite and ammonium assimilation and amino biosynthesis in maize.Planta,192:211~22013 Hlepler PK,Palevitz BA,Lancelle SA,et al.1990.Cortical endo2 plasmic reticulum in plant.J Cell Sci,96:355~37314 Hoff J,Truong HN,Caboche M.1994.The use of mutants and transgenic plants to study tritrate assimilation.Plant Cell Envi ron, 17:489~50615 Hsiao TC.1973.Plant response to water stress.A nn Rev Plant Py2 siol,24:519~57016 Lam HM,Peng SSY,Coruzzi GM.1994.Metabolic regulation of the gene encoding glutamine2dependent asparagine synthetase in A ra2 bi dopsis thaliana.Plant Physiol,106:1347~135717 Lam HM,Coschigano KT,Oliveira IC,et al.1996.The molecular2 genetics of nitrogen assimilation into amino acids in higher plants.A nn Rev Plant Physiol Plant Mol Biol,47:569~59318 Lee C,Chen LB.1988.Dynamic behavior of endoplasmic renticulum in living cells.Cell,54:37~4619 Li F2S(李伏生),Kang S2Z(康绍忠),Zhang F2C(张富仓).2002.Effect of CO2and temperature increment on crop physiology and e2 cology.Chi n J A ppl Ecol(应用生态学报),13(9):1169~1173(in Chinese)20 Li F2S(李伏生),Kang S2Z(康绍忠),Zhang F2C(张富仓).2003.Effects of CO2enrichment,nitrogen and water on photosynthesis,e2 vapotranspiration and water use efficiency of spring wheat.Chi n JA ppl Ecol(应用生态学报),14(3):387~393(in Chinese)21 Luo Y,Field CB,Mooey HA.1994.Predicting responses of photo2 synthesis and root fraction to elevated CO2:Interactions among car2 bon,nitrogen,and growth.Plant Cell Envi ron,17:1195~120422 Masclaux2Daubresse C,Valadier MH,Carrayol E,et al.2002.Diur2 nal changes in the expression of glutamate dehydrogenase and nitrate reductase are involved in the C/N balance of tobacco source leaves.Plant Cell Envi ron,25(1):1451~146223 Miflin BJ,Lea PJ.1980.Ammonia assimilation.In:Miflin BJ ed.The Biochemistry of Plants:Amino Acids and Derivatives.New Y ork:Academic Press.169~20224 Miflin BJ.1974.The location of nitrite reductase and other enzymes related to amino acid biosynthesis in the plastids of root and leaves.Plant Physiol,54:550~55525 MossěJ,Pernollet J C.1983.Storage proteins of legume seeds.In: Arora SK ed.Chemistry and Biochemistry of Legume.London:Ed2 ward Arnold.111~19326 Neeru M,Sawhney SK,Veena S.1998.Frricyanide restores nitrate reductase activity in leaf extracts of water stressed wheat seedling.J Plant Physiol,52(4):577~57927 Oaks A,Stulen I,Jones K,et al.1980.Enzymes of nitrogen assimi2 lation in maize roots.Planta,148:477~48428 Okita STW,Rogers J partment of proteins in the en2 domembrane system of plant cells.A nnu Rev Plant Physiol Plant Mot Biol,47:327~35029 Pelham HRB.1995.Sorting and retrieval between the Endoplasmic reticul um and Golgi apparat us.Curr Opi n Cell Biol,7:530~535 30 Penecke J,Botterman J,Deblaere R.1990.Plant secretion in plant cells can occur via a default pathway.Plant Cell,2:251~25931 Poulle M,Oaks A,Bzonek P,et al.1987.Characterization of nitrate reductase from corn leaves and Chlorella v ulgaris.Planta Physiol, 85:375~37832 Qi Z2M(齐泽民),Zhong Z2C(钟章成),Deng J(邓 君).2001.The effects of simulated acid rain on nitrogen metabolism of Eu2 com mia ul moi des leaves.Acta Phytoecol Si n(植物生态学报),25(5):544~548(in Chinese)33 Rechinger K B,Simpson DJ,Svendsen I,et al.1993.A role forγ32 hordein in the transport and targeting of prolamin polypeptide to the vacuole of developing barley endosperm.Plant J,4:841~85334 Richards N G J,Schuster SM.1992.An alternative reaction in as2 paragine synthetase.FEBS L ett,313:98~10235 Robinson D G,Hob B,Hinz G,et al.1995.One vacuole or two vac2 uoles:Do protein storage vacuoles arise de novo during pea cotyledon development?J Plant Physiol,145:654~66436 Salpeter M,Farquhar M G.1981.High resolution autoradiographic analysis of the secretory pathway in mammotrophs of the rat anteri2 or pituitary.J Cell Biol,91:240~26637 Scheible WR,G onzalez2Fontes A,Lauerer M,et al.1997.Nitrate acts as a signal to induce organic acid metabolism and repress starch metabolism in tobacco.Plant Cell,9:783~79838 Sechley KA,Yamaya T,Oaks partment of nitrogen assimilation in higher Plants.Int Rev Cytol,134:85~16339 Serraj R,Vadez V,Denison FR,et al.1999.Involvement of ureides in nitrogen fixation inhibition in soybean.Plant Physiol,119:289~29640 Sinclair TR,Pinter PJ,K imball BAJ r,et al.2000.Leaf nitrogen concentration of wheat subjected to elevated CO2and either water or N deficits.A gric Ecosys Envi ron,79:53~6041 Solomonson L P,Barber MJ.1990.Assimilatory nitrate reductase: Functional properties and regulation.A nnu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol,41:225~25342 Song J2M(宋建民),Tian J2C(田纪春),Zhao S2J(赵世杰).1998.Relationship between photosynthetic carbon and nitrogen metabolism in plants and its regulation.Plant Physiol Com m un(植物生理学通讯),34(3):230~238(in Chinese)43 Srivali B,Renu KC.1998.Drought2induced enhancement of protease activity during monocarpic senescence in wheat.Current Sci,75(11):1174~117644 Staehelin LA,Moore I.1995.The plant G olgi apparatus:Structure, functional organization and trafficking mechanism.A nnu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol,46:261~28845 Sun G2S(孙谷畴),Zhao P(赵 平),Zeng X2P(曾小平),et al.2001.Influence of UV2B radiation on photosynthesis and nitrogen utilization of paradisiaca grown in different nitrogen sources.Acta Phytoecol Si n(植物生态学报),25(3):317~324(in Chinese)46Suzuki A,Cadal P.1982.Clutamate synthase from rice leaves.Plant Physiol,69:848~85247Taniguchi M,K obe M,Sugiyama T.1995.Aspartate aminotrans2 ferase isoenzyme in Panicum miliaceum L.,and NAD2malic en2 zyme2type C4plant:Comparison of enzymatic properties,primary structure,and expression patterns.A rch Biochem Biophys,318:295~32648 Udvardi M K,Kahn ML.1991.Isolation and analysis of a cDNA clone that encodes an afalfa(Meticago sativa)aspartate amino2 trasferase.Mol Gen Genet,231:97~10549 Vadez V,Sinclair TR,Purcell LC.2000.Manganese application alle2 viates the water deficit2induced decline N2fixation.Plant Cell Env2i ron,23:497~50550Vargas MA,Maurino SG,Maldonado J M.1987.Flavinmediated5153期 许振柱等:植物氮代谢及其环境调节研究进展 photoinactivation of spinach leaf nitrate reductase involving superox2 ide radical and activating effect of hydrogen peroxide.J Photochem Photobiol Biol,1:195~20151 Vauquelin LN,Robiquet PJ.1806.The discovery of a new plant principle in Asparage sativus.A nn Chi m,57:88~9352 Vitale A,Ceriotti A,Denecke J.1993.The role of the endoplasmic reticulum in protein synthesis,modification and intracellular trans2 port.J Ex p Bot,44:1417~144453 Wallsgrove RM,Turner J C,Hall NP,et al.1987.Barley mutants lacking chloroplast glutamine synthetase2biochemical and genetic analysis.Plant Physiol,83:155~15854 Wang RC,Guegler K,LaBrie ST,et al.2000.G enomic analysis of a nutrient response in Arabidopsis reveals diverse expression patterns and novel metabolic and potential regulatory induced by nitrate.Plant Cell,12:1491~150955 Xi Y2Q(蒽玉琴),Zhang J2W(张金文),Niu J2Y(牛俊义).1996.Effects of62Benzylaminopurine,moisture and temperature on NRA in spring wheat.J Gansu A gric U niv(甘肃农业大学学报),31(3):268~272(in Chinese)56 Yadav RS,Sharwa RL,Pandey U K,et al.1998.Effects of various water potential treatment on nitrogen reductase activity in wheat genotypes.A gric Sci Digest,18(2):73~7557 Yue Y2L(岳艳玲),Li G2M(李广敏),Shang Z2Q(商振清),et al.1997.A study on mechanism of wheat seedling senescence retarda2tion by polyamines under water stress.Acta A gric Boreali2Si n(华北农学报),12(2):71~75(in Chinese)58 Zhang H(张 慧),Wang P2H(汪沛洪).1991.A trace study of protein synthesis and degradation in wheat leaves during osmotic stress.Acta Phytophysiol Si n(植物生理学报),17(3):259~266 (in Chinese)59 Zhang HM,Forde B G.1998.An Arabidopsis MADS box gene that controls nutrient2induced change in root architecture.Science,279: 407~40960 Zhang L2G(张林刚),Deng X2P(邓西平).2000.Advances in stud2 ies on physiology and biochemistry of wheat drought resistance.A2 gric Res A ri d A reas(干旱地区农业研究),18(3):87~92(in Chi2 nese)61 Zhou S2M(周苏玫),Wang C2Y(张重义),Zhang Z2Y(王晨阳),et al.2001.Effect of waterlogging on the growth and nutrient metabolism of the root system of winter wheat.Acta A gron Si n(作物学报),27(5):673~679(in Chinese)作者简介许振柱,男,1965年生,博士,副研究员,主要从事陆地生态系统氮素循环和水分生理生态方面的研究,撰写专著1部(副主编),发表论文15篇.Tel:0102625914312 6289,E2mail:xuzz@致 读 者 ・ 作 者 《应用生态学报》系中国科学院沈阳应用生态研究所和中国生态学会主办的国内外公开发行的学术性期刊,科学出版社出版.国际标准刊号为ISSN100129332.专门刊载有关应用生态学(主要包括森林生态学、农业生态学、草地牧业生态学、渔业生态学、自然资源生态学、景观生态学、全球生态学、城市生态学、污染生态学、化学生态学、生态工程学等)的具有创新性的综合性论文、研究报告和研究简报等. 本刊创刊于1990年,现为月刊,采用国际标准开本(210mm×285mm),176面,每期39万字.本刊系中国自然科学核心期刊,曾荣获全国优秀科技期刊和中国科学院优秀期刊称号.本刊整体质量和水平已达到相当高度,在国内外应用生态学界的影响日益扩大.《中国科学引文索引》、《中国生物学文摘》、美国《生物学文摘》(BA)、美国《化学文摘》(CA)、英国《生态学文摘》(EA)、日本《科学技术文献速报》(CBST)和俄罗斯《文摘杂志》(РЖ)等数十种权威检索刊物均收录本刊的论文摘要(中英文). 据悉,您们正在从事有关生态与环境科学研究项目(如国家基础科学人才培养基金项目、国家杰出青年科学基金项目、国家自然科学基金重大和重点项目、国家攀登计划项目、国家“863”和“973”计划项目、国家重点科技攻关项目、“百人计划”项目、“长江学者计划”项目和国际合作研究项目等),并有望取得重大研究成果和产生一系列创新论文,本刊编辑同仁热切希望您及您的同行们充分利用这一科学园地,竭诚为您们提供优质跟踪服务,本刊将及时发表您们的创新成果论文(或以特刊、专刊及增刊等形式发表,或以专刊形式发表优秀英文创新论文).我们相信这一承诺一定能得到您们的积极响应,愿我们迎着新世纪的曙光,为应用生态学的发展协同奋进! 我们的目的: 读者———广泛订阅这一优秀期刊 作者———充分利用这一科学园地 编者———精心编制这一信息精品《应用生态学报》编辑部615应 用 生 态 学 报 15卷。
施氮水平对松树幼苗生长的影响

施氮水平对松树幼苗生长的影响作者:李钱来源:《绿色科技》2016年第01期摘要:以辽东地区的油松和落叶松树苗为试验对象,研究了在不同供氮条件下对两种松树苗的高度及茎叶生物量积累的影响。
研究结果表明,氮素对松树苗的株高影响显著,但是过低和过量氮素都会对株高产生抑制效果。
油松和落叶松分别在1~16 mmol/L和在1~8 mmol/L 的浓度时氮素作用显著。
生物量积累方面,松树茎生物量积累随着氮素增加呈直线上升趋势,而叶的生物量积累油松和落叶松分别在16 mmol/L和8 mmol/L时积累速度最快。
关键词:辽东;油松;落叶松;氮收稿日期:20151123作者简介:李钱(1983—),男,辽宁铁岭人,主要从事森林保护研究工作。
中图分类号:S72文献标识码:A文章编号:16749944(2016)010098031引言落叶松和油松是我国东北地区最重要的林业资源,而且在当地生态系统中发挥着重要的生态学意义。
目前许多施肥多以氮肥对苗木生长的影响,因为苗木体内氮元素的含量对苗木质量好于其他元素。
辽东地区冬季时间长,并且气温低,减缓了有机物的矿化速度,使林地氮素含量低,成为限制松树生长的因素。
本研究采用采用单一氮元素对松树生长进行研究,以期对辽东地区松树育苗以及林间施肥管理措施提供了理论基础。
2材料与方法2.1试验材料与地点在辽宁省清原县附近一苗圃,选取1年长势良好的油松和落叶松树苗。
2.2试验设计2015年4月1日分别将油松和落叶松苗盆栽于25 cm×30 cm塑料盆中,每个盆栽3各幼苗,每个处理3盆。
移栽后用营养液统一培养30 d,每隔3 d浇相同水量和营养液,2015年5月1日开始进行氮肥处理,设6个处理分别为N1:1 mmol/L,N2:2 mmol/L,N3:4mmol/L,N4:8 mmol/L,N5:16 mmol/L,N6:32 mmol/L,每个处理重复3次。
除了氮元素之外营养液其他成分与之前相同,每3天浇一次,一次200mL。
植物生理生态研究的意义

植物生理生态研究的意义1 植物生理生态研究的概述植物生理生态学是一门研究植物在长期进化过程中,对外界环境因素的响应以及对环境的适应性调节与自身内部物质代谢调节的科学领域。
它是植物学、生态学和生物化学三个学科的交叉领域,是对植物的生命过程及其能力的一个综合研究。
2 植物生理生态研究的目的植物生理生态研究的目的是为了揭示植物的各种适应策略和适应机制,了解植物与环境的相互作用,从而更好地认识和利用植物资源,提高植物的产量和品质,保护和修复生态系统,解决环境问题。
同时,也有助于人们认识到环境变化对植物生长发育的影响,为保护环境提供科学依据。
3 植物生理生态研究在物种保育中的重要性随着生态环境的不断恶化和人类活动的不断扩张,一些宝贵的物种受到了威胁,面临灭绝的风险。
植物生理生态学研究可以帮助我们更好地了解物种的生态特性、繁殖生态学、适应性调节机制,从而制定更为合理的保护措施。
例如,通过植物生理生态研究,人们可以发现濒危物种具有的高适应性机制,并将其应用于保护行动中,例如濒危物种的保护区域的建立、繁殖计划的制定、种子收集和保存等。
4 植物生理生态研究在作物生产中的应用植物生理生态学研究在作物生产中有着广泛的应用。
例如,在育种方面,植物生理生态学可以帮助人们了解植物在不同环境条件下的适应策略和适应机制,以及不同基因型在适应环境方面的差异。
在这个基础上,通过选择适合的育种方法,可以培育具有高产、抗病、抗旱、抗盐能力的作物品种。
另外,植物生理生态学还可以帮助人们优化农业种植结构,提高作物产量和品质,增加农民的收入。
5 植物生理生态研究在生态环境修复中的应用生态环境修复是一项复杂而艰巨的任务。
植物生理生态学研究对于生态环境修复具有重要的指导意义。
例如,在土地修复中,可以通过研究不同植物物种的吸收作用,选择最适合修复土地的植物物种进行种植。
此外,还可以通过研究不同植物的排放作用以及根系分泌物等,促进土壤微生物的活动,从而改善土壤环境,提高植物的适应性,实现土地的快速修复。
植物生态学重点

植物生态学重点植物生态学是生态学的一个分支,研究植物个体、种群、群落和生态系统在受到物理和生物环境梯度的影响下的变化规律。
以下是植物生态学的重点内容:1、植物种群生态学:研究植物种群的分布、数量、动态和遗传特征。
了解种群生态学有助于理解植物如何适应环境变化,以及如何应对人口增长、气候变化等全球变化。
2、植物群落生态学:研究植物群落的组成、结构、动态和分布。
理解群落生态学可以帮助我们了解植物如何与其环境相互作用,以及如何预测和管理不同环境中的植物群落。
3、生态系统生态学:研究整个生态系统的结构和功能,包括生物部分和非生物部分。
生态系统生态学有助于我们理解整个生态系统的健康和稳定性,以及如何保护和维护生态系统。
4、全球气候变化:全球气候变化对植物生态学有深远的影响。
植物生态学家正在努力了解和预测气候变化如何影响植物生长、繁殖和分布,以及如何采取措施减轻其影响。
5、保护生物学:保护生物学是植物生态学的一个重要领域,专注于保护和维护生物多样性和生态系统。
保护生物学有助于我们了解如何保护濒危物种、生态系统,以及如何合理利用自然资源。
6、环境修复:环境修复是植物生态学的另一个重要领域,包括土壤修复、水体修复和大气修复等。
通过使用植物和微生物修复技术,我们可以有效地减少污染,改善环境质量。
7、入侵生物学:入侵生物学研究入侵物种的生态学和进化过程,以及如何预防和控制入侵物种的扩散。
入侵生物学有助于我们了解如何管理和控制外来物种的入侵,以保护本土生物多样性和生态系统。
8、土壤生态学:土壤生态学研究土壤中生物群落的组成、结构、功能和变化规律,包括土壤微生物、土壤动物、土壤和水的关系等。
了解土壤生态学有助于我们了解土壤的健康和生产力,以及如何保护和维护土壤生态系统。
9、水体生态学:水体生态学研究水生生物群落的组成、结构、功能和变化规律,包括水生植物、水生动物和水体污染等。
了解水体生态学有助于我们了解水体的健康和生产力,以及如何保护和维护水生生态系统。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
第17卷 第2期1998年 12月 生 态 科 学Eco logic ScienceV ol.17 N o.2Dec. 1998植物氮素营养的生理生态学研究赵 平 孙谷畴(中国科学院华南植物研究所,广州510650) 彭少麟(中国科学院广州分院)摘 要 讨论了植物的氮(N)素营养过程与C的消耗关系、光合作用与N投入的关系、水分平衡与植物的N素营养的关系.关键词 N素营养,光合作用,水分平衡,吸收大部分植物对矿质营养的需求与对其他资源——能量和水的需求一样,需要一个平衡的营养状态以维持最理想的生长.氮素是植物需求量最大的矿质营养元素,同时也是植物个体乃至自然生态系统和人工生态系统(包括农业系统)生长最常见的限制因子,为获取尽可能多的、为生长所需的N,植物形成了几种获取N的途径:固定大气中的N、菌根共生、捕食昆虫、根吸收土壤N.大部分的植物主要是借助根吸收土壤中的无机铵离子和硝酸盐而获取N的.N既是植物最重要的结构物质,又是生理代谢中最活跃、无处不在的重要物质——酶的主要成分.有关氮生理生态作用的研究成果非常丰富,这些工作不仅是理论上研究的必要,它能指导生产实践活动,如华南地区的红壤,由于气候上的原因(高雨量、高气温、土壤淋溶和渗流的强度大),N缺乏比较突出,是限制植被生长的主要因子,如何研究其作用机理,提高N利用的有效性,对华南荒坡进行引种绿化和植被恢复具有明显的指导意义.本文着重讨论N的获取对碳的成本消耗的关系,光合作用与N的营养关系以及N营养与植物的水分平衡的关系.1 获取氮与碳的消耗铵和硝酸盐植物通过根吸收无机N的主要来源,大部分的铵盐在植物的根里就已结合成有机化合物,而硝酸盐则可在木质部内运输,或储存在根、茎和其他储存器官细胞的液泡里[1].硝酸盐在液泡里对于调节阳离子和阴离子的平衡和渗透势起重要作用[2].但是,为使硝酸盐转换并结合到有机结构里发挥其植物营养的作用,必须把它还原为铵盐.可以认为这个还原和同化的过程是植物生命中与光合作用的CO2的还原和同化的地位是同等重要的.N获取进入植物一般经历3个过程:吸收,通过吸收将周围环境的N还入植物;转移(运输),将无机N在植物体内进行分配;同化,将无机N转换成有机N.这3个过中国科学院“九五”重大资助项目(K Z951-B1-110)38生 态 科 学1998年程都需要消耗能量,而能量最终源于植物体内的碳水化合物(即能量的转换形式).(1)N的吸收所消费的C主要用于维持吸收器官(一般指根)的生长,用于逆组织液的浓度梯度进行N营养的运输.对于高等植物而言,根系占据整株植物的一半以上的干物质,每产生一个单位根的生物量所需要的C与植物的其他器官相似,因此大部分的生物物质向根的分配意味着消费巨大量的C[3].但是这种投资是必要的,因为土壤的N资源(尤其是土壤的上层)非常有限,根的吸收作用很快就消耗掉其周围的铵或硝酸盐等各种形式的矿质N,唯有不断地扩张根的生长才能保证根获取足够的N营养以满足植物迅速生长之需.(2)N的转移.N转移时所消耗的C取决于N被同化的位置.由于高浓度的铵对植物组织有毒害作用,铵一般在吸收和生产的附近被迅速转换成有机形式,因此,铵被转移到同化的场所可忽略不计.同样地,根所同化的硝酸盐也不必考虑由于输送而耗费的能量,叶内同化硝酸盐时会引起细胞离子浓度的不平衡,因而需要有机酸穿梭体进行缓冲,必然耗费大量的C.据报道,通过该种形式同化的硝酸盐将消耗约3%的总C[4].(3)N的同化.植物的N同化有不同的途径,对C的消耗也有很大的不同.根吸收是植物获取N营养的一般性途径.除此之外还有其他几种途径,而这些途径往往靠消耗更多的C来用于生长和吸收器官的维持,如固氮作用,植物依靠细菌共生生物将气态N 转换成铵,进而需求更多的C用于根瘤的建造,并为细菌共生生物的生长提供生长物质.菌根具小直径的菌丝体,虽然增加了植物根系的吸收表面积,但与同等量的根相比,却要耗费多出10%的物质用于结构的建造;另外,用于菌根的维持同样还要消耗植物总C 的5%~10%[5].菌根向寄主直接以氨基酸的形式提供N,耗能很少;食虫植物则需要将猎物的蛋白质分解成氨基酸,分解过程需要大量的能量供体提供能量;将一个铵转换成氨基酸需要传递2个电子和催化1个ATP分子,硝酸盐的同化则要求10个电子和1个A TP分子,固氮反应每固定一个N原子需4~5个电子和10个AT P分子.由此看来,从菌根和食虫到铵向硝酸盐的转换以致固氮作用,同化N的能量消耗是逐渐增加的.有学者粗略地估计,用于获取N的根生长约占植物生产力的10%,其中分别用于不同方式的N的获取比例是:铵25%~45%、硝酸盐20%~50%、固氮40%~55%、菌根25%~50%.表明N的获取是消耗C的主要生理过程,C的可利用程度必然会制约N 的获取.植物群落演替的早期,生境的特点是光照强,土壤的N资源匮乏,定居于该生境的植物种类常形成固定N的共生体,这是充分利用太阳能和迅速增加生态系统N素的生态策略.随着植物群落进一步演替和发展,系统的铵和硝酸盐逐步增加,加上竞争变得越来越激烈,平均每个种可利用的光资源越来越少,固N的作用逐渐变小.虽然自然界的气态N非常丰富,但通过固氮作用获取这部分N往往耗费大量的C,一旦N成为生长的限制因子时,固氮作用的优越性突显出来.不同的植物种类,会偏爱不同形式的N 源,如酸果蔓只利用铵,而某些植物却不能忍受铵.大部分植物在铵和硝酸盐的混合物中生长最好,两种营养形式获取的速率取决于生境的离子有效性[6].植物对营养方式的偏爱很大程度上取决于植物的C与N的状态,取决于周围环境的能量和N的有效性.如环境的光条件会对植物的N营养形式(铵盐或硝酸盐)产生影响,高光照的条件下,硝酸盐的同化以低的C消耗为成本,因而有利于对硝酸盐的利用;在低光照下,由于低的呼吸消耗而有利于铵的同化.植物对不同的N 营养方式具有明显的适应性,植物的这种灵活性有助于在变动中的环境维持C 和N 的平衡.2 光合作用与N 的关系C 3植物(C 3途径是地球上大部分植物进行光合作用的主要生理代谢途径)的叶片N 元素的75%用于叶绿体,其中大部分投入光合作用(图1).由于N 常常会成为植物生长的限制因子,同时叶子里N 的大部分分配于光合作用的各组分里,因此理解N —光合的关系是解决有关生态学问题的关键.如果通过调节N 可以控制光合作用,那么获取N 的能力将是植物地上部分的主要决定因子.对不同的种、不同的叶龄、不同的N 有效性和光照水平的研究表明,单片叶子在光饱和的条件下,净光合速率与N 的含量成正例比关系[7~10],因此,不难理解,植物叶N 的某一个组成成分或几个成分会直接限制光合的能力.最明显的例子是RuBP 羧化氮化酶(RUBISCO ),它是C 3植物固定CO 2的原初酶和C 4及景天酸循环CO 2最终固定酶[11].但是N 的这种制约作用的程度往往与光和周围CO 2浓度及N 在各组分的分配密切关系,与阳性植物相比,阴性的植物投向RUBISCO 的比例适当减少,更多的是用于光截获,以补偿在阴生环境内相对于CO 2浓度而言更加稀少的光资源[13].图1 C 3植物阳性叶N 的分配比例(引自[13])RU BISCO 含量及其对光合约束的机理在不同的组织水平也受环境因素的影响,如在基因水平,合成RUBISCO 信息RN A 的量受光控制;RUBISCO 的催化激活受CO 2、Mg 和光的调节;植物生长过程中单叶的RUBISCO 的水平取决于N 的有效性,同时也受CO 2、光和水逆境的影响;在植物个体的水平上,部分落叶会增加其他叶片的RUBISO 的含量;在群落水平,不同种之间的RUBISCO 的催化性质则是生态分化的重要组分.尽管39第2期 赵 平等:植物氮素营养的生理生态学研究40生 态 科 学1998年RU BISCO对制约光合作用很重要,但它不是唯一的限制光合速率的N化合物.环境因子对光合的其他制约因子的影响了解得还比较少,但很有可能与控制RU BISCO相协调的.N利用效率是衡量植物利用N营养和合理分配N的能力,是N对植物光合生产力乃至生长产生影响的指标.只有N对植物所有生理过程起同等限制作用时,植物对N的分配才达到最大效率.要使投入光合的N效率达到最大,必须满足所有的光合作用的N 化合物的限制作用必须是均等的;投入光合的N不应超过其他形式的投入所带来的更多产出的那个水平.因此有学者认为光合能力与叶片N素的比率是评价N素投入光合效率的很有用的标准,统称潜在光合N素利用效率(potential pho tosynthetic nitrogen use ef-ficiency,PPNU E),它是N利用效率与固定CO2关系的瞬时测度.N含量低的叶片其PPN U E较低并随N的含量增加而上升,超过一定的阈值,趋势不明显,一些种类甚至会出现下降[13].N含量低的叶片之所以PPNU E较低,原因是相当部分的N投向非光合组分,如核酸和与细胞调节和呼吸有关的蛋白质.也有些N含量高而PPN UE较低的情况,很有可能是用于储存器官的形成或限制光合作用的非N化合物的增加所引起的.与光合有关的N大致可分为两类,一是以RuBP羧化酶为主的可溶性蛋白,另一类由其它卡尔文循环的叶绿体酶、线粒体和过氧化酶体的光呼吸酶、碳酸酐酶和核糖体构成的剩余的叶片可溶性蛋白.二是蛋白位于叶绿体的类囊体膜上,含有色素蛋白复合体,电子传递链的组分和耦联因子,两类蛋白在功能上分别代表了光合的暗反应和光反应.在光照充足的情况下,叶片的N与光合能力成正相关,这种关系已被许多实验所证实并为大多数学者所接受,是植物固有的生理生态特性且适合于大多数种类[14],其最直接的原因是卡尔文循环和类囊体所含的蛋白质占据叶蛋白质的绝大部分,叶片的N比例的增加也会相应增加RuBP羧化酶的含量,后者又与CO2的同化速率成正相关.低光照的条件下,随着N的含量上升,光合的增量却很有限[10],高N叶子用于维持的需要较大,它们的暗呼吸因此比低N叶子高,并消耗更多的C.这样,低光条件下的叶子在N增加时光合的收益很微弱,因此阴生环境的植物叶子含N量低,这就是为什么阴生叶子一般形成薄的叶片以减少N和构造上的消耗.就单株植物而言,树冠上方的叶子接收较强的光照,而树冠底部的叶片往往处于阴生的环境,树冠内环境的不一致性使N素的分布成为整个树冠光合的决定因素.可以设想,对于有限的N资源,要使树冠的光合达到最大,树冠顶部叶子的含N量要高同时树冠底部的叶含N量少.所以树冠生境的变异越大,有效N的分布的重要性随之提高.3 N素营养与水分平衡有些植物叶N含量高,但光合的产出小或净光合几乎等于0的情况也会出现,说明叶片含N量高并非总是优点,尤其是植物遇到其它资源亏缺时(如水),这一特性尤其重要.植物的水分平衡与N素营养之间的关系主要表现在根吸收的铵盐和硝酸盐借助木质部的水分运输将N素输送到地上部分的各个器官,植物各组织器官的渗透势、气孔的气体变换牵涉到CO2和水分的扩散,N的投入与CO2的固定关系密切,同时气孔的行为受制于气孔细胞的水分(渗透势)状况,N投入与水分平衡由此发生联系[15].固定CO2的潜在的生物化学能力和CO2通过气孔扩散的速率是植物光合的制约因素,因为叶片气孔是CO 2由外向内、同时又是水由内向外的扩散途径,植物不可能通过增加气孔导度来减少CO 2向内扩散的限制,同时又不损失水分.CO 2和水分交换过程的耦合极大地影响了N 的投入和水利用的模式.由于水分紧张而迫使植物在低的气孔导度下进行运作,叶片的N 增加并未使光合作用带来明显的产出,从而使气孔成为光合作用的主导限制因素.在此条件下,低N 含量的叶片一旦有丰富N 投入才可能使光合的产出大于消耗.尽管水的有效性直接影响N 的投入,水利用和N 利用的细微差异却是共同生长的种类生态分化的重要组分.当气孔部分的关闭时,消耗每单位的水所进行的光合会增加,但总光合减少,因而也减少每单位N 的光合量.不提高传导率而增加叶的N 会引起光合上升和水分利用效率,但由于气孔限制的增大会导致每单位N 的光合量下降.因此,在某一生境,不同水分利用格局的植物之所以能成功地生活在一起,一个很重要的条件是这种格局的不一致能被N 投入的差异性所平衡.土壤中N 缺乏会刺激根的生长,扩大营养吸收范围的同时也增加了水资源利用的空间;当土壤的可利用N 较丰富,尤其是根际附近的N 有效性高时,会改变植物生长的形态,枝条的生长比地下根的生长明显要快,根的延长往往会受到制约,这种转变不利于对N 的利用,并由此影响以后根对水分的吸收.参考文献1 M arschner H .Mineral nutritio n in higher plants .Academic Pr ess ,1986.1972 Smir no ff N ,Stew ar t G R .Nitra te a ssimila tio n and tr ansloca tion by higher pla nts :Co mpa rativ ephy siolog y and eco lo gica l co nsequences.Phy siol Plant,1985,64:133~1403 Lamberss H,Sza nia wski R K,DeVisser R.Respira tion fo r gr ow th,maintenance and io n up-ta ke.An ev alua tion of concepts,methods,v alues,a nd their sig nificance.Phy siol Plant,1983,58:557~5634 Rav en J R,Smith F A.Nitr og en assimilatio n and t ranspo r t in v ascular land plants in r ela tion to intracellular pH r eg ula tio n.N ew Ph yto l,1976,76:415~4315 Clar kso n D T.Facto r s affecting mineral nutrient acquisition by plants.Annual Rev iew of PlantPhsiolog y ,1985,36:77~1156 Bloo m A J .W ild and cultiv a ted bar ley s sho w simila r affinties fo r mineral nit rog en .O eco lo gia ,1985,65:555~5577 M oo ney H A,Field C,Gulmo n S L ,et al.Pho tosy nthe tic capacity in relatio n to leaf po sitio n indeser t v er sus o ld -field a nnuals .Oeco lo gia ,1981,50:109~1128 Field C .Allocating lea f nitr og en for the max imiza tio n of car bo n gain :leaf ag e as a contr ol o nth e a llocation pro gr am.Oecologia ,1989,56:341~3479 Field C,M o oney H A.Leaf ag e and seasonal effects on lig ht,w ater ,and nitr og en use effciencyin a ca lifo r nia sh rub .O eco lo gia ,1983,56:348~35510 Gulmo n S L ,Ch u C C .The effects of lig ht and nitr og en o n pho tosy nth esis ,lea f cha racteris-tics,a nd dry matter alloca tion in the cha pa rra l shrub,Diplacus aurantiacus .Oeco log ia ,1981,49:207~21241第2期 赵 平等:植物氮素营养的生理生态学研究42生 态 科 学1998年11 Caemmer er S,Fa rquhar G D.Some r ela tio ns between the biochemist ry o f pho tosynthesis and the g as exchange o f leav es.Pla nta,1981,153:376~38612 Bjo erkman O.Responses to differ ent qua ntum flux densities.In:Lange O L,et a l eds.Phy si-o log ical Pla nt Ecolog yⅠ.Respo nse to the Physical Enviro nment.Ber lin:Spring er-V er lag, 1981.57~1013 Ev ans J R.N itrog en a nd pho tosy nthesis in the flag leaf of wh ea t(Triticum aestivum L.).Plant Ph ysio lo gy,1983,72:297~30214 Eva ns J R.Pho to synthesis and nitr og en rela tio nships in leav es o f C3plants.Oeco lo gia,1989, 78:9~1915 Field C,M erino J,M o oney H A.Co mpro mises betw een w ater-use efficiency a nd nitr og en-use efficiency in fiv e species of califo rnia ev erg r eens.O ecologia,1983,60:384~389Ecoph ysiological Research o n Nitrogen N utrition of PlantZhao Ping1) Sun Guchou1) Peng Shaolin2)(1)South China Institute of Botany,Academia Sinica,Gua ng zho u510650;2)Academia Sinica,Guang zhou Bra nch)Abstract Plants exhibit po tential to com pensate fo r imbalance in the av ailability of ni-trog en.They achiev e nitrog en acquisition by sev eral way s.As N enters pla nt(absorp-tion,tra nslocation,assimilatio n),it co sts co nsiderable energ y of pla nt,in w hich the carbo n serv es as energ y source.In o rder to transloca te N efficiently w ithin plant and m aximize gro w th,the relatio nship betw een nitrogen nutrition and the cost of C,pho to-synthesis,and wa ter equilibrium w ere discussed.Keywords nitrog en nutritio n,pho tosynthesis,wa ter equilibrium,absorptio n。