地榆根中低聚原花青素的提取工艺

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地榆原花青素抗氧化及稳定性研究的开题报告

地榆原花青素抗氧化及稳定性研究的开题报告一、研究背景及意义花青素是一类广泛存在于植物中的天然色素，具有非常强的抗氧化活性和生物学活性，对维护人体健康有着重要的意义。

地榆原是一种生长在我国西北荒漠地区的植物，具有极强的抗逆性和抗氧化能力，在西北地区的中药材、食品和保健品中有着广泛的应用。

因此，本研究旨在对地榆原花青素的抗氧化及稳定性进行研究，为深入挖掘其抗氧化机制及开发其潜在的药用价值提供理论依据。

二、研究内容及方法1、地榆原花青素的提取：采用乙醇-水溶液为提取剂，对地榆原中的花青素进行提取，采用紫外分光光度法（UV）测定其提取效果。

2、地榆原花青素的抗氧化活性研究：采用自由基清除能力测定法（DPPH法）和还原力测定法（FRAP法），对地榆原花青素的抗氧化活性进行研究，探究其抗氧化机制。

3、地榆原花青素的稳定性研究：对不同储存条件下的地榆原花青素进行分析，研究其稳定性特征，为其应用提供指导。

三、预期成果及贡献1、明确地榆原花青素的提取方法及提取效果，为其实际应用提供技术支持。

2、发掘地榆原花青素的抗氧化活性，研究其抗氧化机制，拓展其应用领域。

3、探究地榆原花青素的稳定性特征，为其在实际应用中做好储存工作提供依据。

四、研究计划及进度安排本研究计划于2022年1月开始，计划用时2年完成，进度安排如下：第一阶段：2022年1月-2022年6月主要工作：地榆原花青素的提取及其物理化学性质分析。

第二阶段：2022年7月-2023年6月主要工作：地榆原花青素的抗氧化活性研究及机制分析。

第三阶段：2023年7月-2024年1月主要工作：地榆原花青素的稳定性研究及其应用前景分析。

五、参考文献1. Jiawei Sun, Xueqin Shi, Yan Su, et al. Analysis of major active components in Caesalpinia sappan L. and its medicinal preparations by HPLC/DAD, high-resolution MS and fluorescence spectroscopy. Journalof Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 2020,183:113160.2. Fangzhou Song, Zhenzhen Wang, Yinan Zhu,et al. Free Radical Scavenging and Antioxidant Activities of Catechin and Epicatechin by DFT and Ontology. International Journal of Molecular Sciences,2019,20:355.3. 史广轩, 张玉峰, 郑明. 地榆药材的化学成分研究[J]. 中国中药杂志, 2015(5): 881-891.。

花青素提取工艺

花青素提取工艺(总3页)本页仅作为文档封面，使用时可以删除This document is for reference only-rar21year.March黑大豆、紫薯花青素一、提取工艺1、黑豆：pH2.0，醇提黑豆为乙醇浓度60%，提取时间80min，提取温度50℃，料液比1:6，得率为84.21%；水提黑豆为提取时间 80min，提取温度60℃，料液比1:8，得率达89.04%。

反复提取5次。

2、紫薯：最佳条件: 物料比为1：20，用85：15 的酸化乙醇，置50℃恒温，提取60 min，重复2 次，提取率可达90% 以上。

二、纯化酸醇提取物真空抽滤后用旋转蒸发器旋蒸去乙醇, 再用石油醚萃取3 次以除去脂类, 最后再真空抽滤保证提取液无颗粒杂质，得到花色苷粗提物。

将经过酸化的花色苷提取物导入Amberlite TM XAD-7 HP 型大孔吸附树脂柱中，流速1 ml/min，树脂完全吸附后用上样液50倍体积的酸化水冲洗，流速2 m l/min，再用80%酸化乙醇洗脱，流速1ml/min，当柱中流出液体不透光时用烧杯接入，直至液体开始透光后停止。

将此溶液旋转蒸发后装入培养皿中，冷藏于- 80℃冰箱，冷冻2 h 后，放入冷冻干燥机冻成干粉。

以矢车菊素-3-葡糖苷为对照，经HPLC确定其纯度。

三、花色苷浓度确定1、最大吸收波长的确定：对黑大豆、紫薯花色苷粗提液在200-600nm之间进行全波长扫描，可得到两种花色苷在可见光区的最大吸收峰，设为530nm左右。

2、标准曲线制作：取矢车菊-3-葡糖苷(cyaniding-3-glucoside，购于sigma，纯度>95%)标准品若干克，用蒸馏水配成0.123、0.108、0.086、0.069、0.049、0.035mg/ml（根据需要自行设定浓度梯度）。

以蒸馏水为空白对照，在530nm波长处测定各提取物吸光度。

以吸光度(A)为纵坐标，标品浓度(mg/mL)为横坐标，绘制标准曲线。

花青素提取工艺流程

花青素提取工艺流程
花青素是一种天然存在于许多植物中的紫色色素，具有很高的抗氧化和抗炎作用，被广泛应用于食品、药物和化妆品等领域。

花青素提取工艺流程是将植物中的花青素有效地提取出来，并获得高纯度的花青素。

首先，在花青素提取工艺流程中，选择合适的植物材料非常重要。

常用的植物材料有紫花苜蓿、蓝莓等。

这些植物中富含花青素，可以作为提取花青素的原料。

其次，花青素提取的第一步是对植物材料进行粉碎处理。

将植物材料研磨成细粉，有利于后续的溶剂提取。

然后，将粉碎后的植物材料与溶剂进行浸提。

常用的溶剂有乙醇、丙酮等，选择合适的溶剂可以提高花青素的提取效率。

浸提的条件包括温度、时间和搅拌速度等，通过合理调节这些条件可以获得较高的提取率。

浸提完成后，利用离心对溶液进行分离。

离心可以将溶液中的固体颗粒与溶液分离出来，使得花青素可以从溶液中得到较好的回收。

接下来，对提取溶液进行过滤，去除杂质。

通常使用滤纸对溶液进行过滤，将溶液中的固体颗粒和杂质过滤掉，得到相对纯净的花青素溶液。

最后，对花青素溶液进行浓缩，得到高纯度的花青素。

常用的
浓缩方法有真空浓缩和喷雾干燥等。

浓缩后的花青素可以作为食品、药物和化妆品等行业的原料使用。

总之，花青素提取工艺流程包括植物材料的粉碎、溶剂提取、离心分离、过滤去杂、溶液浓缩等几个步骤。

通过合理控制每个步骤的条件，可以提高花青素的提取率和纯度。

花青素的提取工艺流程为花青素的应用提供了可靠的技术支持，有助于开发和利用植物资源中的花青素。

植物提取物原花青素提取工艺

植物提取物原花青素提取工艺第一篇：植物提取物原花青素提取工艺--巴科医药植物提取物原花青素提取工艺原花青素可以显著提高机体抗衰老能力，改善心血管功能，预防高血压，增强人体抗突变反应能力，甚至对动脉硬化、胃溃疡、肠癌、白内障、糖尿病、心脏病、关节炎等疾病都有治疗作用。

追本溯源，原花青素最重要、最根本的作用是清除体内多余自由基，其他功能应该说都是它的衍生功能。

葡萄籽愿花青素的提取和分离可采用甲醇、乙醇、丙酮等极性较大的溶剂冷浸，提取物用乙酸乙酯等溶剂萃取，萃取物用柱层析法分离，可采用葡聚糖凝胶柱层析、手性吸附柱层析、高效液相层析等。

在原花青素中，以低聚原花青素(OPC)特别是二聚体抗氧化性最强，因此低聚原花青素在葡萄籽提取物中的含量已成为产品质量的最关键指标。

1．原花青素的提取葡萄籽是葡萄酒的副产品，占整粒葡萄的4%～6%。

葡萄籽壳中原花青素含量比仁中的要高很多。

目前普遍采用先脱脂后提取工艺，脱脂方法对原花青素的提取率和质量会产生影响。

脱脂方法有压榨法、溶剂法和超临界C02萃取法等。

压榨法因其提取率低，浪费大，现已不多见。

溶剂法是目前最常用的方法，所需设备简单，成本低廉，且提取率也可观。

另外，用超临界C02萃取，因为没有光和空气的干扰，可以减少在其他提取方法中遇到的聚合度降低的现象。

Tipsrisukond 等报道，用超临界C02萃取法得到的提取物比用传统方法所得到的抗氧化性高很多，且提取物无须浓缩。

但该法对工艺要求较高，目前还不易于推广。

油脂分离之后，一般采用乙醇或丙酮等有机溶剂来对籽壳进行萃取，得到的壳渣经加热脱除溶剂，溶剂可以循环使用。

萃取液经过滤、喷雾干燥，即可得到原花青素粗品。

2．原花青素的提纯原花青素粗提物的精制可采用溶剂萃取分级、活性炭吸附分离、大孔树脂吸附层析分级等方法。

另外还有醋酸铅沉淀法，聚乙烯毗咯烷酮(PVP)吸附法等精制方法，但前者须脱铅，繁琐费时，脱铅不完全还将影响食用；后者价格昂贵，不经济。

原花青素的分离纯化实验方案(修改)

原花青素的分离纯化一、实验目的对上一步提取的原花青素进行分离纯化，熟悉实验相关仪器设备及过程二、仪器、材料及试剂原花青素提取液、原花青素标准品、大孔树脂、75%乙醇、60%乙醇（作解吸剂）、50%乙醇（作洗脱剂）、盐酸（磷酸或乙酸）、分析天平、带筛板的玻璃柱（可无筛板，但是要脱脂棉或者用酸式滴定管改装（尝试性），同样需要脱脂棉）、紫外分光光度计（286nm）（可用可见光分光光度计（536nm）代替）、真空干燥箱（用真空泵+密封的抽滤瓶（尝试）代替）、PH计、铁架台、漏斗（小号）、小试管若干（不少于5支）、试管架、烧杯若干（不少于3个）、玻璃棒、滴管、锥形瓶三、实验步骤大孔树脂的预处理：新购树脂含有未聚合单体、致孔剂、分散剂等残留的杂质成分，使用前必须加以处理。

将新购大孔树脂用乙醇浸泡24h，充分溶胀，取一定量湿法装柱，先用适当浓度的乙醇清洗至洗出液加等量蒸馏水无白色浑浊为止，再用蒸馏水洗至无醇味且水液澄清，备用。

通过乙醇(或甲醇)与水交替反复洗脱，可除去树脂中的残留物，一般洗脱溶剂用量为树脂体积的2～3倍，交替洗脱2～3次，最终以水洗脱后即可使用。

大孔树脂动态饱和吸附曲线图的绘制：1、将试验中需要用到的50%乙醇、60%乙醇的PH用盐酸调至5，在波长为286nm（如果采用可见光分光光度计则为536nm）测定原花青素提取液的吸光值（以75%的乙醇溶液为对照）2、取一定量的大孔树脂于烧杯中缓慢倒入50%的乙醇溶液（同时搅拌），搅拌至可流动的糊状，取一支干净的带筛板的玻璃柱，将糊状大孔树脂加入玻璃柱，用手指轻轻敲打玻璃柱，使大孔树脂均匀铺在玻璃柱底部（用烧杯接住此时流出的液体），用50%的乙醇在柱上流动清洗，不时检查流出液，直至与水混合不呈白色浑浊为止（乙醇：水一1：5）。

然后以大量蒸馏水洗去乙醇（必须洗净乙醇，否则将影响吸附效果），待用。

将样品液直接或拌入树脂中加到已处理好的大孔吸附树脂柱柱顶，拌样时样液和树脂的比例为1：（2～3）。

花青素提取工艺试验

花青素提取工艺试验实验仪器材料：仪器：打浆机、干燥箱、粉碎机、超声波震荡器、培养箱、低温超速离心机、旋转蒸发仪、真空干燥箱、水浴锅、pH试纸试剂：80%乙醇、山芋粉、蔗糖、硝酸铵、磷酸二氢钾、硫酸镁、滤纸、石油醚、0.1%稀盐酸材料：枸杞、黑曲霉1.1称取枸杞加入去PH=2离子水中（按比例为1：120g/L），在60℃水浴中浸泡4h，分离样液和样品，（重复2次），样液待用1.2【脱脂处理】将1.1中的样品和样液与石油醚（30-60℃）按1:10g/L混合，浸泡1h后，于旋转蒸发仪中50℃加热回流2h，所得样品溶液，放在打浆机打碎1.3加入微生物培养液中【固液1:5】(培养液配比: 山芋粉3. 7 5%、蔗糖1 5% 、硝酸铵0. 2%、磷酸二氢钾0. 1%和硫酸镁0. 025% ) , 120 ℃条件下灭菌20min,在超净工作台内接种。

黑曲霉与培养液比例为1∶1 000。

接种后放入培养箱中培养。

温度30℃，pH4.5，培养时间72h1.4培养后，在培养液中加入40倍pH3.0的80%乙醇，在超声波水浴中50℃提取3h（过滤后重复1-2次）1.5粗过滤后，低温离心40℃，4000r/min，10min，去沉淀，取离心液1.6 50℃旋转蒸发仪真空浓缩，减压浓缩0.076Mpa1.7 放入真空干燥箱干燥，得粗品1.8上述浓缩液再次离心，加入0.1mol/LHcl溶液调pH=4-4.5，离心分离，再次浓缩烘干精提12.1上述粗品，加入温水中溶解2.2常温下，在微滤机下0.12MPa，进行微滤收集液体2.3所得滤液再次放入超滤机中过滤，0.1MPa，膜流速1500L/h 2.4取0.5g活化湿AB- 8 树脂和20ml液体常温吸附24h，离心2.5滤液加入60%乙醇洗脱，1-3h左右，后60℃，减压真空88kpa 下蒸馏回收乙醇2.6所得液体加入一定量石油醚精致萃取，35℃减压浓缩回收，2.7真空干燥称重方案二1.1称取样品和样液与石油醚（30-60℃）按1:10ml混合，浸泡1h后，于旋转蒸发仪中50℃加热回流2h，所得样品溶液，干燥滤渣用于色素提取1.2以料液比为1：40的PH=3的80%乙醇在50℃下浸泡3后，在超声波为40kHZ下，100W,20min，过滤去沉淀，重复1-2次1.3粗过滤后，低温离心40℃，4000r/min，10min，去沉淀，取离心液1.4 50℃旋转蒸发仪真空浓缩，减压浓缩0.076Mpa1.5 放入真空干燥箱干燥，得粗品1.6上述浓缩液再次离心，加入0.1mol/LHcl溶液调pH=4-4.5，离心分离，再次浓缩烘干精品提取1、称取粗品50g左右加入170ml的pH3.5-4.0的浓盐酸化的95%乙醇，在40-50℃中搅拌提取4h，抽滤2、滤渣用100ml酸性乙醇在同样条件下进行第二次提取3h，抽滤（也可进行重复多次）3、合并滤液，边搅拌边加入浓氨水，并调溶液ph为7.2-7.5，室温静置0.5h，使之完全沉淀，抽滤，在沉淀未干燥前，用适量冰醋酸使之分解成稀糊状，可微微加热，静置1h，抽滤理化因素：A：最大波长的确定：取处理过的枸杞粉末溶于乙醇中浸泡一段时间后利用紫外分光光度计进行光谱扫描，测定最大吸收波长。

原花青素的资源及研究进展

原花青素的资源及研究进展张小军1夏春镗1*吴建铭1谢正荣2（1.同济大学生命科学与技术学院上海 200092;2.昆山市农业局 215300）摘要：原花青素是花青素类物质的缩合物，从不同资源制备的原花青素其组分与结构各不相同，功能也有差异。

本文从分类学角度分析了原花青素资源的分布，并对其中的一些重要资源进行评价和分析，为新的原花青素资源的探索提供了方向，并为原花青素的开发提供参考。

关键词：原花青素；分类学；资源；收率；分布Research and Progress of ProanthocyanidinXiaojun Zhang1Chuntang Xia1*Jianming Wu1Zhengrong Xie2(1.School of Life Science and Technology,Tongji University,Shanghai,200092,China;2.Department ofAgriculture,Kunshan City,215300,China)Abstract：Proanthocyanidin could be seen as the polymer of cyanidin.There are different polymerization degree and molecular structure of proanthocyanidins, and therefore different biological functions in different resources. Our research analysis the distribution of proanthocyanidin resources by the manner of taxonomy. Evaluation for some important resources of proanthocyanidin could be provided as reference for the research and development of proanthocyanidin.Key words：proanthocyanidin；taxonomy；resources；yield; distribution原花青素(proanthocyanidin，PC)可视作花青素（cyanidin）类物质的聚合物，因其在加热的状态下能产生红色的花青素而得名，是一类在植物界广泛存在的多酚化合物。

地榆提取物抗氧化与抗过敏作用研究

地榆提取物抗氧化与抗过敏作用研究前言地榆（scientific name: Sanguisorba officinalis L.）是一种广泛分布于我国北部地区的土壤保持植物。

由于地榆的根茎及根部富含高含量的鞣质，被广泛用于中药和化妆品等领域。

近年来，地榆的生物活性成分及其药理作用引起了人们广泛关注。

抗氧化和抗过敏作用一直是研究中的重要方向。

利用中草药和天然植物提取物来进行治疗已成为对现代医学的补充和扩展，因此地榆以其天然清凉，防止风热上火，能够治疗身体的虚热，火热等等功效而备受追捧。

本文旨在探讨地榆提取物的抗氧化和抗过敏的药理作用。

地榆提取物及其成分地榆提取物来源于地榆的根茎和根部，其提取方法一般有水提、乙醇提、水/醇提等。

地榆提取物的主要活性成分有：多酚、鞣质、花青素、黄酮类、萜类、皂甙、烷基酮及维生素等。

其中，多酚类化合物是地榆提取物的主要活性成分之一，并具有较强的抗氧化和抗过敏作用。

地榆提取物的抗氧化活性近年来，人们逐渐重视了身体的保健，抗氧化成为了人们关注的一个方向。

地榆提取物中多酚类化合物是其主要的抗氧化成分。

多酚类化合物具有强的自由基清除能力，可抑制脂质过氧化反应，阻止细胞膜的脂化与氧化，从而保护细胞免受氧化损伤。

研究显示，地榆提取物中多酚类化合物的抗氧化活性强于维生素CE等单一化合物。

Hsieh等在其研究中发现，地榆提取物可以通过增加抗氧化酵素活性和减少自由基产生的方法，来延缓脂质氧化的发生，从而起到抗氧化的作用。

地榆提取物的抗过敏作用过敏反应是一种免疫反应，特别是对过敏原的敏感性增加，导致机体感到不适，出现各种过敏症状。

经过研究发现，地榆提取物具有重要的抗过敏作用。

地榆提取物中花青素和多酚类化合物具有信号转导和免疫调节作用，可以抑制机体对过程原的反应，从而减轻炎症反应。

另外，地榆提取物的黄酮类化合物具有抑制组胺和脂肪酸合成的作用，可以显著减轻花粉症等过敏症状。

结论综上所述，地榆提取物具有很强的抗氧化和抗过敏作用。

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地榆根中低聚原花青素的提取工艺
姜贵全
（华大学，北吉林，３０３１２１）
方桂珍
（北林业大学）东
摘要考察了溶剂浓度、原料粒度、料液比、浸提温度、浸提时间、浸提次数等６个因素对地榆根低聚原花青素提取率的影响，立了地榆根低聚原花青素的较佳提取条件为：６％乙醇水溶液为提取刺，料粒度为４６目，确以０原０～０料液比１１，：２浸提温度５ ℃ ，０浸提４次，次１。浸提浓缩液加入一定量饱和ＮＣ溶液，温离心过滤后，２倍量每ｈａ１低用乙酸乙酯萃取３次，纯化后提取物中低聚原花青素质量分数达５．６，６８％低聚原花青素得率为绝干原料的３４％。．２关键词地榆；聚原花青素；取工艺低提分类号Ｑ４．５．９９７１８
Ｅｔｃｏｆｏｌ０ｒｃａｉｉｓｆｏｔｅＲｏｆＳｎｕｓｒａｏｃｎｌ．ＪｎｕｑａＦｒｔｏｅｅｏｘｒｔｎｏ王ｐｏｙｎｄｎｒｍｈｏｔｏａｇｉｂｆｉａｉＬ／ｉｇＧｌｕｎ（ｏｓｙＣｌｇｆａｉｇｏｉｆｓａｅｒｌＢｉｌｅｉ，ｉ３０３Ｐ．Ｃｉ）ＦｎｕｚｎＮｒｅｓＦｒｓｙｎｅｓｙ／ＪｕｎｌｆｏｈａｔｏｅｔｅｌＵｉｉｔＪｉ１２１，．Ｒｈｎ；ａｇＧｉｒ（ｏｈａｔｏｔｉｒｔ）／ｏｒａｏｒｅｓＦｒｓｙｌｌｎｓｙｌａｖｎａｌａｔｅｒＵｖｉＮｔＪＵｉｒｔ．２０，６１．４～２ｎｖｓｙ一０８３（）一１４ｅｉ
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第３６卷第１期
２００８年１月
东
北
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业
大
学
学
报 Hale Waihona Puke Ｖ０－ｌ３６Ｎｏ．１
ＪＯＵＲＮＡＬＯＦＮＯＲ１ＥＡＴＦＥＳＲＹＵＮ［ＲＩＹＴｔＳＯＲＴＶＥＳＦ
Ｊｎ０８ａ．２０
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