家兔基础实验操作及注意事项总结
家兔的实验报告
一、实验目的1. 熟悉家兔的解剖结构，掌握家兔的解剖方法。
2. 学习家兔的生理指标检测方法，如呼吸、心跳、体温等。
3. 了解家兔在实验中的生理变化和应激反应。
二、实验材料1. 家兔一只（体重约2kg）。
2. 实验器械：解剖剪、解剖刀、镊子、解剖盘、解剖针、纱布、生理盐水、温度计、血压计等。
3. 实验试剂：0.9%生理盐水、1%盐酸肾上腺素、5%葡萄糖溶液等。
三、实验步骤1. 家兔处死：采用过量麻醉剂（如戊巴比妥钠）注射，使家兔迅速失去意识，然后进行心脏穿刺，注入空气使心脏停止跳动，随后迅速将家兔放入解剖盘中。
2. 解剖部位：家兔的头部、颈部、胸部、腹部、背部、四肢等。
3. 解剖步骤：（1）从颈部向后剪开皮肤，暴露出颈部肌肉和血管。
（2）剪开肌肉，暴露出气管和食管，剪断气管，取出气管和食管。
（3）剪开颈部肌肉，暴露出颈动脉和颈静脉，剪断颈动脉和颈静脉，取出心脏。
（4）剪开胸腔，暴露出心脏、肺脏和肝脏，剪断心脏，取出心脏和肺脏。
（5）剪开腹腔，暴露出胃、肠、脾脏、肾脏等器官，剪断胃和肠，取出胃和肠。
（6）剪开背部肌肉，暴露出脊柱和神经，剪断脊柱，取出脊柱和神经。
（7）剪开四肢肌肉，暴露出四肢骨骼和关节，剪断骨骼和关节，取出四肢骨骼和关节。
4. 生理指标检测：（1）呼吸：观察家兔的胸部起伏，计算呼吸频率。
（2）心跳：触摸家兔的颈动脉或心脏，计算心跳频率。
（3）体温：使用温度计测量家兔的体温。
（4）血压：使用血压计测量家兔的血压。
5. 观察家兔在实验过程中的生理变化和应激反应，如呼吸、心跳、体温、血压等指标的变化。
四、实验结果与分析1. 家兔的解剖结构基本完整，各器官功能正常。
2. 实验过程中，家兔的呼吸频率、心跳频率、体温和血压等生理指标均在正常范围内。
3. 在实验过程中，家兔表现出一定的应激反应，如呼吸加快、心跳加速等。
五、实验结论1. 家兔的解剖结构完整，各器官功能正常。
2. 家兔的生理指标检测方法简便，可适用于实验研究。
家兔基础实验操作及注意事项总结
家兔基础实验操作及注意事项总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1、家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。
【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。
抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。
2、家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。
将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。
压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。
【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。
3、耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。
穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。
若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。
移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
l 注：本实验所用麻醉药乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。
【注意事项】1、进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；2、可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；3、静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
在注射麻醉药物时，可先用麻醉药物总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射，以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡；4、实验动物的固定【实验方法】将动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部伸直，口腔与气管成一直线，保持气管畅通。
机能实验学基础操作
机能实验学基础操作1，兔子抓好，放到称量盘时捋一下毛，兔子可以更温顺。
剪毛的时候左手可以绷皮，剪刀防止剪破皮，剪刀平放。
2，打麻醉时一手耳抓朵根部，以控制头部。
一手抓背部。
天冷，血管较细，一定要拔毛，在近心端阻断血管，使血管充盈，15-20s打完麻药前三分之一，进针深度大约6mm。
麻药后三分之二要慢打，且不能连续打，要间断打入。
追加麻药在进腹之后家兔未完全麻醉的情况下，剪皮肤时如果家兔挣扎不用追加麻药。
追加麻药在耳缘静脉2ml即可,肠系膜1-5ml，不需要太多。
3剪皮肤时要快，不要一次剪一点点。
如果麻药打多了家兔出现危急情况，应该使家兔呼吸通畅，松开头部的固定打开嘴巴，并按情况进行心肺复苏。
4，正确分离血管，注意颈静脉与面静脉分辨，不要把面静脉误认为颈静脉。
找颈总动脉一定要找到气管，在其两侧找，可能存在单侧没有颈总动脉。
同时注意动脉插管和静脉插管松动脉夹的顺序稍有不同。
5，结扎肾动脉在左腋前线开腹，输尿管在腹部找不到可以在肾处找。
6，开前腹时一定沿腹白线，找膀胱后，将其向后上拉。
注意与子宫辨别，可能有怀孕的哦！7，腹部切口4-5cm。
助手与主刀夹皮肤要对称，剪筋膜时要避开血管，钝性分离静脉用小止血钳，尽量不要用眼科镊。
小心分支，将其避开分离时，颈静脉分离3cm左右。
手术线如果太短，可用两根同时穿过。
8，颈静脉插管时，松开动脉夹后接着插，根据需要决定深度，插时稍微朝上插，避免静脉插破。
结扎近心端，再次结扎固定远心端。
9，血管一定要分离干净，尤其尤其是是剪口的地方，剪口要靠近远心端结扎处，眼睛不要离开剪口，最好同一人剪和插，否则剪口可能不容易找到。
可以用远心端结扎线拉直血管，可能会容易插一点。
10，若插管后有血渗出，结扎不紧，可能为远心端未结扎好和未分离干净。
手术线用湿的，防滑线和不紧。
11，插管后有回血打要回去。
大出血时用手压，慢慢一个个挪开手指找出血点。
12，若不能描记血压，且不能分辨换能器或系统好坏，捏一下换能器导管，是否有变化，无反应则重启，再捏一捏还无反应则观察屏幕右侧各项如纵横轴是否调好，若还无反应，则拔掉换能器，碰一下插头有无反应。
机能实验之家兔手术操作
机能实验之家兔手术操作1．皮肤切开：动物麻醉固定后，在切口沿线的中点两侧，分别用血管钳向两侧夹起皮肤，用手术剪在两血管钳之间的皮肤上剪一小口，将剪刀伸进切口，贴紧并挑起皮肤撑开剪刀以钝性分离皮下组织，然后小心剪开皮肤。
分离下面的组织避免使用剪刀，以免发生出血，尽可能作钝性分离。
2．家兔颈部手术：颈部手术主要包括气管插管、颈动脉插管、颈外静脉插管和分离颈部神经等。
（1）气管插管：先用水湿润局部毛发，再用粗剪刀剪去颈部手术部位兔毛，在麻*醉情况下沿颈部正中线切开皮肤5－7cm，分离皮下组织，于正中线分开肌肉，暴露气管，分离出气管，剔尽周围组织，于气管下穿线备用，在甲状软骨下约l cm处剪一倒“T”型切口，插入气管插管，并用线扎紧，再将余线绕气管插管的分又处再行结扎，以防滑脱。
（2）颈动脉插管：将上述切口边缘的皮肤及其下方的肌肉组织向外侧拉开，即可见在气管两侧纵行的左、右颈总动脉鞘，在鞘内，颈总动脉与颈静脉、颈迷走神经、降压神经伴行在一起。
可先将颈总动脉鞘分离出来，再从鞘内分离出颈总动脉，剔尽周围结缔组织，游离出长3～4cm的颈总动脉，尽可能向远心端游离，在动脉下穿2根线，用其中一根结扎远心端，用动脉夹夹住其近心端，结扎处与动豚夹夹闭间的颈总动脉长度约需3cm。
用眼科镊柄垫在颈总动脉下方，用眼科剪在远心端结扎线的近心侧0.3cm处的动脉壁上作一斜切口，切口约为管径的一半，然后将准备好的充满肝素溶液的动脉导管（事先在距导管口上方1.5cm处裹贴一白胶布）由切口向心脏方向插入动脉内。
用已穿好的线扎紧插入导管的血管，并将剩余线平行于导管拉直，与远心端结扎线打一死结，以拉住导管防止其滑脱。
使动脉插管与动脉保持在同一直线上，然后将动脉导管作适当固定。
（3）颈外静脉插管：颈部皮肤切开后，用左手拇指和食指捏住颈部左侧缘皮肤切口，其余三指从皮肤外向上顶起外翻，可清晰的看见位于颈部皮下，胸骨乳突肌外缘的颈外静脉。
沿血管走向，用玻璃分针钝性分离颈外静脉二侧的皮下筋膜，仔细分离3~5cm长，在血管的远心端穿丝线，在靠近锁骨端用动脉夹夹闭颈外静脉的近心端，待血管内血液充盈后用手术线结扎颈外静脉的远心端。
家兔实验的实验报告
一、实验目的1. 熟悉家兔的解剖结构，了解其生理功能。
2. 学习实验操作技能，提高实验动手能力。
3. 掌握家兔生理实验的基本方法。
二、实验材料与仪器1. 家兔一只2. 解剖盘、解剖剪、镊子、解剖针、解剖刀、生理盐水、滴管、试管、酒精灯、烧杯、显微镜等三、实验方法与步骤1. 家兔麻醉与固定将家兔放入麻醉箱内，待其失去意识后，取出并固定于解剖盘上。
2. 家兔皮肤解剖用解剖剪沿腹中线剪开皮肤，暴露腹壁肌肉。
3. 腹腔内脏器官解剖用解剖剪剪开腹壁肌肉，暴露腹腔内脏器官。
依次解剖以下器官：（1）肝脏：位于腹腔右上方，呈红褐色，有胆管与十二指肠相连。
（2）胃：位于腹腔左侧，分为贲门、胃底、胃体、幽门四部分。
（3）小肠：位于腹腔中部，分为十二指肠、空肠、回肠三部分。
（4）大肠：位于腹腔右下方，分为盲肠、结肠、直肠三部分。
（5）脾脏：位于腹腔左上方，呈暗红色，有血管与肝脏相连。
（6）肾脏：位于腹腔两侧，呈红褐色，有血管与心脏相连。
4. 胸腔内脏器官解剖用解剖剪剪开胸腔，暴露胸腔内脏器官。
依次解剖以下器官：（1）心脏：位于胸腔中部，呈红色，有四个腔室：右心房、右心室、左心房、左心室。
（2）肺：位于胸腔两侧，呈粉红色，有气管与喉部相连。
5. 脑血管解剖用解剖剪剪开颅骨，暴露脑血管。
依次解剖以下血管：（1）颈动脉：位于颈部，分为颈内动脉和颈外动脉。
（2）椎动脉：位于颈椎两侧，进入颅腔。
（3）大脑动脉：分为大脑前动脉、大脑中动脉、大脑后动脉。
6. 观察显微镜下的组织切片取肝脏、肾脏、脾脏等组织，制成切片，置于显微镜下观察。
四、实验结果与分析1. 家兔内脏器官结构完整，符合生理学特点。
2. 通过解剖实验，掌握了家兔内脏器官的解剖位置和功能。
3. 实验过程中，操作规范，操作技能得到提高。
五、实验讨论1. 家兔作为实验动物，具有解剖结构简单、生理功能明确、易于饲养等优点，是生理学实验的常用动物。
2. 本实验通过家兔解剖，使学生了解了家兔内脏器官的结构和功能，提高了实验操作技能。
家兔基础实验操作及注意事项总结
基本技能操作经验总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1.家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。
【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。
抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。
2.家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。
将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。
压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。
【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。
3.耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。
穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。
若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。
移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
注：本实验所用麻醉药——乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。
【注意事项】1. 进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；2.可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；3.静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
在注射麻醉药物时，可先用麻醉药物总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射，以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡；4.实验动物的固定【实验方法】将动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部伸直，口腔与气管成一直线，保持气管畅通。
家兔基本手术操作实验报告
竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔基本手术操作实验报告篇一：家兔解剖实验一、实验目的1.通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察，掌握哺乳类躯体轮廓、消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点2.掌握哺乳纲动物的主要特征，理解其进步性特征3.熟练解剖动物的方法二、实验原理将家兔处死是利用静脉注射空气致死：向静脉注射空气后，进入血液形成空气栓，空气栓随血流回流至右心室，然后被送到肺动脉，造成肺栓塞，大面积的肺栓塞使人体不能进行气体交换，发生严重的缺氧和二氧化碳储留，导致猝死。
三、实验器材活家兔、解剖盘、酒精棉球、注射器、镊子、烧杯、手术刀、手术剪、骨钳、止血钳等四、实验步骤1、外形观察，处死家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。
颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。
前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。
尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。
肛门两侧各有一个无毛区，提起此处皮肤，开口，打开皮肤。
取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。
挣扎一会后死亡。
2、打开皮肤润湿腹部中间的毛，小心用剪刀从泄殖孔稍前方剖一横口，向上剪至颈部，用手术刀使皮肤和肌肉分离，将剥下的皮肤向左右尽可能拉开露出腹部。
3、开腹腔：原位观察膈、胰腺、肝脏、各系统观察，肾脏冠切从泄殖孔的切口处沿腹中线同样左右割开腹壁至胸骨剑突处，暴露腹腔。
先观察各器官的自然位置。
可观察到：胰腺：分散附着于（十二指肠）弯曲处的肠系膜上，为粉红色、分布零散而不规则的腺体。
胃：囊状，横卧于膈肌后面，入口称喷门，出口称幽门。
小肠：肠管长而细，分为十二指肠、空肠和回肠三段。
十二指肠呈“u”形，空肠和回肠界限不易区分。
大肠：分为盲肠、结肠和直肠三段。
盲肠为大肠的起始段，肠管最粗大，相当于一个发酵罐，其末端有蚓突，结肠表面有横褶，直肠细长。
膈肌：呈粉色，上面血多有放射状红色细丝肾脏：移开胃后，可在其下观察到两肾，分布于两侧，其前端内缘各有一小的淡黄色扁圆形为肾上腺，由肾门伸出的一条白色细管为输尿管，与肾血管、神经管相伴行，向后通入膀胱的背侧。
家兔基本手术实验报告
一、实验目的1. 熟悉家兔的基本解剖结构和生理特点；2. 掌握家兔手术的基本操作技术；3. 培养动手能力和实验操作规范。
二、实验原理家兔作为实验动物，具有解剖结构和生理特点与人类相似，因此在家兔上进行手术实验可以帮助我们更好地了解人体手术操作。
本实验通过对家兔进行基本手术操作，使学生掌握手术基本技能。
三、实验器材1. 实验动物：家兔一只；2. 手术器械：手术刀、手术剪、眼科剪、组织钳、止血钳、手术镊、玻璃分针、插管、动脉夹、棉线等；3. 麻醉药品：1%普鲁卡因、3%戊巴比妥钠；4. 其他用品：注射器、酒精棉球、生理盐水、消毒液等。
四、实验步骤1. 家兔抓取、固定和麻醉（1）将家兔放在实验台上，用右手抓住家兔的后颈部皮肤，左手抓住兔的双脚，将家兔倒立；（2）用酒精棉球擦拭家兔的耳缘静脉，使血管充盈；（3）用注射器抽取1%普鲁卡因5ml，进行局部麻醉；（4）将家兔放在手术台上，用手术钳固定四肢。
2. 手术切口（1）用手术刀在颈部正中线切开皮肤，长约5-7cm；（2）用手术剪剪开皮肤，暴露肌肉组织；（3）用止血钳钳夹肌肉组织，用手术刀分离肌肉组织。
3. 神经、血管分离（1）用眼科剪剪开颈动脉鞘，暴露颈总动脉；（2）用组织钳夹住颈总动脉，用手术刀分离颈总动脉；（3）用手术镊分离颈外静脉，用手术刀分离颈外静脉。
4. 插管技术（1）将颈总动脉插入动脉夹，用手术剪剪口大小为颈总动脉直径的1/3-1/2；（2）将动脉导管插入颈总动脉，插入长度约1cm；（3）用动脉夹固定动脉导管。
5. 术后处理（1）用消毒液消毒手术切口；（2）用手术线缝合皮肤；（3）观察家兔术后恢复情况。
五、实验结果与分析1. 实验结果通过本次实验，学生掌握了家兔的基本解剖结构和生理特点，熟悉了家兔手术的基本操作技术，包括抓取、固定、麻醉、切口、分离、插管等。
2. 实验分析（1）在手术过程中，应严格遵守无菌操作原则，避免手术感染；（2）在分离神经、血管时，要轻柔操作，避免损伤神经、血管；（3）在插管过程中，要掌握好插管深度，避免插管过深或过浅；（4）术后观察家兔恢复情况，确保手术成功。
兔实验技术操作
一、兔的抓取及保定1.准备的物品、器械：固定器2.简要：（1）徒手抓取（2）保定3.解说操作：3.1徒手抓取用一只手将颈部的被毛和皮肤一起抓住提起，另一只手托住臀部。
（如图1）。
也可一手抓住兔肩胛部的皮肤，另一手托住其臀部并将兔的头部放置于臂弯中，再用前臂支撑兔体。
3.2 保定3.2.1将兔放在操作台上，用一只手抓住颈背部皮肤（包括兔耳），另一只手压住腰部（或后肢）加以保定，可用于肌肉注射、灌胃等操作。
3.2.2 将兔放在操作台上，用左手抓住颈背部皮肤，使兔下半身固定在操作者左臂下方，用右手环抱兔前肢，适用于孕兔灌胃等操作。
如图2。
3.2.3盒式保定法：将兔放入兔保定盒内，盖上盖，使兔头露在盒外，便可进行采血或注射给药等操作。
3.2.4保定板保定：将兔仰卧或俯卧在保定板上，用布带保定，四肢和头部也用布带保定，即可进行心电图检查、注射给药、采血等操作。
4.注意事项4.1 盖兔盒时必须要轻，不能用力压，否则兔脊椎骨很容易骨折，造成下肢瘫痪。
4.2 将家兔放回兔笼时，先将臀部及后肢放入笼内。
4.3 抓取时禁止抓提兔耳。
4.4 抓取要稳、准、柔、快，不可过分用力抓捏腰腹部。
二、兔的采血方法1.准备的物品、器械：注射器、采血管、止血带、酒精棉球、干棉球、保定架等2.简要：耳静脉采血、耳动脉采血、后肢静脉采血、心脏采血3.解说操作3.1耳缘静脉或耳动脉采血3.1.1 将兔保定于保定器内，用酒精棉球擦拭消毒。
3.1.2助手固定兔耳，并压迫耳缘静脉根部，使血管充盈；操作者手持注射器，针头沿耳缘静脉平行刺入血管，慢慢抽取血液。
3.1.3 助手固定兔耳，操作者手持注射器，在耳中央动脉末端，使针头沿血管平行方向刺入动脉，血液即可流入注射器内。
3.1.4 采血完毕后立即用消毒干棉球压迫止血。
3.2后肢静脉采血3.2.1 兔固定于兔保定架上，剪去胫部被毛，股部扎上止血带，使胫外侧皮下静脉充盈。
3.2.2 固定静脉，用左手两指固定好静脉，右手取带有针头的注射器内皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器，表示针头已刺入血管，即可取血。
机能学实验实验报告家兔
一、实验目的1. 了解家兔的基本生理结构和功能；2. 观察和记录家兔在不同生理状态下各器官系统的变化；3. 掌握实验操作技能，提高实验分析能力。
二、实验原理家兔是常用的实验动物，其生理结构和功能与人类相似。
通过对家兔进行实验，可以了解动物机体各器官系统的基本生理功能，为医学、生物学等领域的科学研究提供基础。
三、实验材料1. 家兔一只；2. 实验器材：解剖显微镜、手术刀、镊子、剪刀、针筒、注射器、生理盐水、棉球、酒精棉球等；3. 实验试剂：10%甲醛溶液、0.9%生理盐水、0.1%肾上腺素等。
四、实验方法与步骤1. 家兔麻醉：用20%氨基甲酸乙酯进行耳缘静脉注射，剂量为1g/kg体重，使家兔进入麻醉状态。
2. 解剖观察：（1）观察家兔的体表结构，包括头部、颈部、躯干、四肢等；（2）解剖观察家兔的消化系统，包括口腔、咽、食管、胃、小肠、大肠、肛门等；（3）解剖观察家兔的呼吸系统，包括鼻腔、咽、气管、支气管、肺等；（4）解剖观察家兔的循环系统，包括心脏、血管、淋巴系统等；（5）解剖观察家兔的泌尿系统，包括肾脏、输尿管、膀胱、尿道等；（6）解剖观察家兔的生殖系统，包括生殖腺、生殖管道等。
3. 实验操作：（1）心脏采血：将家兔心脏暴露，用针筒抽取心腔内血液，观察血液颜色、粘稠度等；（2）血管观察：观察家兔心脏周围血管的分布、形态、颜色等；（3）呼吸观察：观察家兔呼吸运动、呼吸频率、呼吸幅度等；（4）消化观察：观察家兔消化道的蠕动、消化液分泌等；（5）泌尿观察：观察家兔肾脏的形态、颜色、大小等；（6）生殖观察：观察家兔生殖腺的形态、颜色、大小等。
4. 实验数据记录与分析：（1）记录家兔各器官系统的形态、颜色、大小等；（2）分析家兔各器官系统的生理功能；（3）比较家兔各器官系统的生理功能与人类相似之处。
五、实验结果与分析1. 家兔的体表结构、消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统均与人类相似，具有一定的生物学意义。
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家兔基础实验操作及注意事项总结
基本技能操作经验总结
（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用
1.家兔的捉拿
【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。
【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。
抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。
2.家兔的称重与放置
【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。
将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。
压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。
【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。
3.耳缘静脉麻醉
【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精
棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。
穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。
若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。
移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
注：本实验所用麻醉药——乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。
【注意事项】1. 进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；
2.可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；
3. 静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
在注射麻醉药物时，可先用麻醉药物总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射，以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡；
4.实验动物的固定
【实验方法】将动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部伸直，口腔与气管成一直线，保持气管畅通。
用粗麻绳打类蝴蝶结固定家兔四肢，用棉麻线套住家兔上切牙固定在兔台头端，使家兔四肢和头部伸展并固定。
【注意事项】1.打结最好打利于捆缚的结，避免家兔挣脱。
2.尽量使颈部抻直，避免扭曲。
5.清理兔毛
【实验方法】使用弯头兔毛剪剪掉实验部位兔毛。
【注意事项】1.左手捏住要剪的兔毛，方便剪掉后及时清理。
注意不要将兔毛掕起，这样容易剪到皮肤和皮下神经，引起兔子的强烈挣扎。
2.尽量清理干净，而且避免兔毛乱飞，可在废物桶中加水防止兔毛乱飘。
6.组织切开
【实验方法】1．组织切开的一般原则
(1)根据实验目的要求确定手术切口的部位和大小。
如肾切除取左背部斜切口，肠切除取腹正中切口。
(2)根据不同部位的切口采用不同的执刀方法，常见的执刀方法有三种，如图1。
【注意事项】
(1)切开前，应先将切口部位的皮肤(或其它组织)拉紧，使其平坦紧张而固定。
(2)刀刃与切开的组织垂直，以一次切开为佳。
(3)组织要逐层切开，并以按皮肤纹理或各组织的纤维方向切开为佳。
图1执刀方法和组织切开方法
(4)组织的切开处应选择无重要血管及神经横贯的地方，以免将其损伤。
(5)选择切口时，应注意选择易于敷料或导管包扎和固定的部位。
避免术后动物活动时被碰撞、磨擦而脱落。
7.组织分离
【实验方法】分离目的在于充分显露深层的组织或血管，便于手术操作。
1．组织分离的一般原则
(1)根据不同部位手术的需要采用不同的分离方法。
常见的分离方法有两种：①用刀或剪作锐性分离，用剪割的方式将组织分离。
该方法常见于致密组织，如皮肤、韧带、筋膜等的分离。
②用止血钳、手指或刀柄等将组织推开或牵拉开的钝性分离。
该法多用于皮下组织、肌肉筋膜间隙等疏松组织的分离。