动物气管插管
观察气管实验报告
1. 了解气管的结构和功能。
2. 掌握气管插管术的操作方法。
3. 学习气管插管实验中各项指标的观察和记录。
二、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：气管插管、气管插管支架、手术显微镜、手术器械、生理盐水、气管插管导管、呼吸机、心电监护仪等。
3. 实验试剂：1%利多卡因、生理盐水、肾上腺素等。
三、实验方法1. 家兔麻醉：采用吸入麻醉法，将家兔放入麻醉箱内，待家兔麻醉深度适宜后取出。
2. 家兔气管插管术：将家兔仰卧固定于手术台上，剪除颈部被毛，消毒皮肤。
用手术显微镜观察气管位置，找到气管后，用气管插管导管插入气管，插入深度约为气管长度的1/2。
插入导管后，用气管插管支架固定导管，确保导管位置正确。
3. 气管插管术中的观察指标：（1）家兔呼吸频率、深度及节律。
（2）导管插入气管时的阻力。
（3）导管插入气管后，家兔咳嗽反应。
（4）气管插管术后的呼吸困难、声音嘶哑等症状。
4. 呼吸机辅助通气：将家兔与呼吸机连接，设置呼吸频率、潮气量等参数，观察家兔呼吸情况。
5. 心电监护：监测家兔的心率、血压等生命体征。
6. 实验结束：观察家兔气管插管术后的恢复情况，如呼吸困难、声音嘶哑等症状的改善情况。
1. 家兔气管插管术操作顺利，导管插入气管后，阻力适中，家兔咳嗽反应明显。
2. 气管插管术后的观察指标如下：（1）呼吸频率：家兔呼吸频率为60-80次/分钟，呼吸深度适中。
（2）导管插入气管时的阻力：阻力适中，导管插入顺畅。
（3）咳嗽反应：导管插入气管后，家兔出现明显的咳嗽反应。
（4）呼吸困难、声音嘶哑等症状：气管插管术后，家兔出现轻度呼吸困难、声音嘶哑等症状。
3. 呼吸机辅助通气：呼吸机参数设置合理，家兔呼吸平稳，无呼吸困难。
4. 心电监护：家兔心率、血压等生命体征平稳。
5. 实验结束后，家兔气管插管术后的恢复情况良好，呼吸困难、声音嘶哑等症状明显改善。
五、实验分析1. 气管插管术是临床麻醉中常用的操作方法，通过观察气管插管术中的各项指标，可以评估气管插管术的成功与否。
动物手导管法
动物手导管法1、气管插管为便于吸入麻醉药和输氧，将特制的导管经动物口腔插入气管，称气管插管术保持呼吸道通畅，减少解剖死腔，及时清除气管内分泌物，防止吸入性肺炎，也便于过度通气，控制和辅助呼吸，是麻醉和抢救危急动物的一个重要措施。
喉镜气管导管规格用导管周长的mm数来编号，用F表示(F=导管直径×3.1416)。
编号愈大，导管愈粗。
成年犬、猫根据体重选用导管。
导管选好后，再用导管测量鼻端到肩胛骨的长度。
导管应超出鼻端1~2cm，多余者剪除。
套囊一种防漏装置，附着于导管壁，距斜面开口0.5~1.0cm。
套囊充气后，与气管紧密相贴，不漏气，防止胃内容物反流入气管。
2、插管前麻醉动物麻醉前准备及用药。
吸入诱导麻醉常用面罩或诱导麻醉箱吸入诱导，适用于幼犬和猫。
静脉快速诱导麻醉硫喷妥钠，6~25mg/kg；硫戊巴妥钠，16~20mg/kg；甲己炔巴比妥钠，10~12mg/kg。
猫可用氯胺酮诱导麻醉，先肌注10~20mg/kg，3~5min后，缓慢静注1~2mg/kg。
3、气管插管方法动物胸卧保定，头抬起伸直，使下颌与颈呈一直线。
助手打开口腔，拉出舌头，使会厌前移。
麻醉师左手持喉镜插入口腔，其镜片压住舌根和会厌基部，暴露会厌背面、声带和杓状软骨；在直视情况下，右手持涂过润滑剂的气管导管经声门裂插入气管至胸腔入口处。
触摸颈部，若触到两个硬质索状物，提示气管导管插入食道，应退出重新插入。
导管后段于切齿后方系上纱布条，固定在上颌上，以防滑脱。
挤压连接套囊上的注气球或用注射器连接套囊上的胶管注入空气，30~45min后再充气一次。
将气管导管与麻醉机上螺形管接头连接，施自主呼吸或辅助呼吸。
对上、下颌骨折或口腔和面部手术的动物，不能经口腔插管，需施咽切开术或气管切开术插管。
小鼠气管插管的注意事项
小鼠气管插管的注意事项小鼠是实验动物中最常用的模型之一，气管插管是进行小鼠呼吸系统相关实验的重要步骤。
正确的气管插管操作可以保证实验的顺利进行，因此在进行小鼠气管插管时需要注意以下几点。
一、实验前的准备工作1. 选择合适的实验小鼠：应选择健康、体重适中的小鼠作为实验对象。
2. 准备插管所需的器械：包括麻醉剂、气管插管针、显微镜、镊子、消毒液、无菌手套、无菌纱布等。
3. 准备麻醉环境：实验室应保持安静，确保麻醉环境良好。
二、麻醉小鼠1. 使用合适的麻醉剂：常用的麻醉剂包括异氟醚、七氟醚等，麻醉剂的选择应根据实验的需要和小鼠的特点进行合理选择。
2. 控制麻醉深度：麻醉深度应适中，过浅会导致小鼠苏醒，过深则可能出现严重的呼吸抑制。
三、气管插管操作1. 术前消毒：使用无菌纱布蘸取适量的消毒液，对小鼠的颈部进行彻底消毒，避免感染发生。
2. 针头选择：选择合适的气管插管针，一般选择直径适中、长度合适的针头。
3. 定位准确：使用显微镜和镊子辅助进行插管，确保插管的准确性。
4. 缓慢插入：将气管插管针缓慢插入小鼠的气管，避免损伤气管壁或其他结构。
5. 确认插管位置：插管后，通过观察气管插管针的位置和小鼠的呼吸情况，确认插管位置是否正确。
四、术后处理1. 保持通气畅顺：插管后，应确保气管通畅，避免气管阻塞或堵塞。
2. 固定插管：使用适当的方法固定气管插管，避免插管松动或脱落。
3. 观察复苏情况：小鼠苏醒后，应密切观察复苏情况，防止出现意外情况。
小鼠气管插管是进行呼吸系统相关实验的重要步骤，正确的操作可以保证实验的顺利进行。
在进行小鼠气管插管时，需要注意麻醉剂的选择和控制麻醉深度，术前进行彻底消毒，插管时使用适当的器械并准确定位，术后保持通气畅顺并观察复苏情况。
只有严格按照操作要求进行，才能提高实验的成功率，得到准确可靠的实验结果。
动物麻醉机分类及应用
动物麻醉机分类及应用动物麻醉机是一种专门用于给动物实施麻醉的医疗设备，它可以帮助兽医以安全、高效和准确的方式给动物进行麻醉操作。
根据不同的分类标准，动物麻醉机可以被划分为不同的类型。
下面将介绍几种主要的动物麻醉机及其应用。
一、动物麻醉机的分类1. 面罩型麻醉机：面罩型麻醉机通过面罩将麻醉药物与氧气混合后经过动物的呼吸道给予麻醉药物。
这种麻醉机适用于大型动物和一些中等体型的动物。
它的操作简单，可以调节麻醉药物的浓度，适应不同动物的需要。
2. 气管插管型麻醉机：气管插管型麻醉机适用于较小的动物，如猫、狗等。
使用这种麻醉机时，首先要将动物的气管插入到气管插管中，然后通过插管给动物提供麻醉药物和氧气混合的气体。
这种麻醉机可以提供更精确的麻醉控制，同时也可以通过气管插管进行呼吸机辅助通气。
3. 无创呼气麻醉机：无创呼气麻醉机是一种相对较新的麻醉设备。
它不需要浓度测定或特殊的呼吸方式，可以通过动物呼出的气体进行麻醉。
这种麻醉机可以准确监测和调节麻醉药物的浓度，同时可以减少一些麻醉过程中的不良反应。
4. 其他类型的麻醉机：还有一些其他类型的麻醉机，如静脉麻醉机、局部麻醉机等。
这些麻醉机主要用于特定的麻醉操作和特定类型的动物。
二、动物麻醉机的应用1. 动物手术麻醉：动物麻醉机常常被用于动物的手术麻醉。
手术麻醉要求麻醉药物的给予量和浓度能够准确控制，以确保动物在手术过程中处于深度麻醉状态，避免疼痛和不适。
2. 动物检查和诊断：动物在进行检查和诊断之前需要被麻醉，这样可以保证检查的准确性和可靠性。
例如，一些大型动物在进行X线拍摄时需要被麻醉，这样可以使得动物安静并且保持固定的姿势。
3. 动物疾病治疗和康复：一些疾病的治疗和康复需要对动物进行麻醉。
例如，一些小动物在进行牙科手术时需要麻醉，这样可以保证手术操作的顺利进行。
4. 科学实验研究：动物麻醉机在科学实验研究中也发挥着重要作用。
在进行动物实验时，常常需要对动物进行麻醉，使得动物在实验中保持安静并且不受干扰，以确保实验结果的准确性和可靠性。
兔子气管插管实验报告
一、实验目的1. 熟悉并掌握兔子气管插管的技术操作。
2. 观察气管插管对兔子呼吸系统的影响。
3. 学习实验动物手术的基本操作步骤和注意事项。
二、实验对象与材料实验对象：家兔（体重1.9kg）实验材料：1. 哺乳动物手术器械（手术刀、组织剪、止血钳、玻璃分针等）2. 兔手术台3. 生物信号采集处理系统4. 呼吸换能器5. 气管插管6. 20%氨基甲酸乙酯溶液7. 生理盐水8. 橡皮管9. N2气囊10. CO2气囊三、实验方法与步骤1. 麻醉与固定：将家兔称重后，腹腔缓慢注入20%氨基甲酸乙酯溶液10ml进行麻醉。
待家兔麻醉后，仰卧用绳子固定于手术台上。
2. 手术操作：- 剪去颈前部兔毛，颈前正中用手术刀切开皮肤5-7cm，少量出血，用纱布蘸取生理盐水擦拭。
- 分离气管并穿线备用。
- 分离颈部双侧迷走神经，穿线备用。
- 以倒T型剪开气管，有少量出血，止血后用镊子清理其中异物，做气管插管。
3. 实验装置：- 将呼吸换能器与生物信号采集处理系统的相应通道相连接，橡皮管连接气管插管和呼吸换能器。
- 打开计算机，启动生物信号采集处理系统，设置好参数，开始采样。
4. 观察与记录：- 观察家兔气管插管后的呼吸情况，包括呼吸频率、深度和节律。
- 记录实验过程中出现的异常情况，如咳嗽、喘息等。
5. 实验结束：- 实验结束后，拔除气管插管，观察家兔的恢复情况。
- 对实验过程中出现的异常情况进行分析，并提出改进措施。
四、实验结果与分析1. 呼吸情况：气管插管后，家兔的呼吸频率、深度和节律基本保持正常。
2. 异常情况：在实验过程中，部分家兔出现轻微的咳嗽和喘息，但未影响实验结果。
3. 分析与讨论：- 气管插管对家兔的呼吸系统有一定影响，但通过合理操作和观察，可以确保实验的顺利进行。
- 实验过程中出现的轻微咳嗽和喘息可能与气管插管刺激有关，但并未对实验结果造成严重影响。
五、结论1. 本实验成功掌握了兔子气管插管的技术操作，为后续实验奠定了基础。
一种简易的大鼠气管插管导管
有： 盲插法 、 气管切 开插管 、 在直视声门下直接插管 、 直视下 钢 丝 引导插管 、 内窥镜辅助插管 法等 。气 管切开插 管法 …成 功 率高 ， 但 它是一种有创操作 ， 对机体伤 害较大 ， 切 口的大小 、 组
织损伤 的程度 、 手术时的无菌 程度 以及术后 的感染 都会影 响 到术后大 鼠机体 的恢 复 ， 增 加 了非 实验 因素对实验 结果 的影 响。内窥镜辅助插管法 所需 的特殊器械 费用 昂贵 ， 从 而 限制
ｄ ｏ ｉ ： １ ０ ． ３ ９ ６ ９ ／ ｊ ． ｉ ｓ ｓ ｎ ． １ ０ ０ ９—６ ６ ６ ３ ． ２ ０ １ ３ ． ０ ９ ． ０ ９ １
作者单位 ： １ ． ０ ６ ３ ０ ０ ０ 河北 唐山 ， 唐山市第二医院综合 内科 ，
２ ． ０ ６ ３ ０ ０ ０ 河北 唐山 ， 河北联合大学附属医院呼吸内科
道及血管壁周 围外 ， 肺间隔处也有大量分布 ， 局 部肉芽组织 处 分布更 为明显。
讨
四、 方 法
论
１ ． 分 组
多年来大 鼠气 管插 管的方 法不断改 进 ， 总体遵循 的原则 是减少创伤和应激 ， 改善声门暴露条件 ， 提高插管速度和成 功 率， 减少插管时缺氧 的发 生。现 已报 道的大 鼠气管 插管方 法
产， 药 品进 口注册证号 Ｈ ２ ０ ０ ４ ０ ２ ０ ５ ； Ｍ ￣ｓ ｏ ｎ三色染色试剂盒 由 福州迈新 生物技术开发有限公司提供 。
tvcma 84-2021犬猫气管插管规程
tvcma 84-2021犬猫气管插管规程
T/CVMA 84-2021犬猫气管插管规程详述如下：
1. 范围：本规程规定了犬猫气管内导管的选用、气管插管前需准备的材料、气管插管过程及拔除气管内导管的时机。
本规程适用于动物诊疗机构及其医务人员进行犬猫麻醉时的气管插管操作。
2. 气管内导管的选用：根据犬猫的体重、年龄、体格等特征，选择合适的气管内导管。
对于成年犬和大型犬，应选择型号较大的导管；对于幼犬和体型较小的犬，应选择型号较小的导管。
导管应具有一定的柔软度和弹性，以确保插管过程的顺利进行。
3. 气管插管前的准备：在进行气管插管前，应准备好必要的器械和材料，包括气管内导管、喉镜、麻醉机、吸引器、氧气等。
同时，应对犬猫进行必要的体格检查和评估，了解其呼吸系统状况，以确保插管过程的顺利进行。
4. 气管插管过程：在犬猫麻醉后，将其放置在适当的体位，头部和颈部伸直。
使用喉镜暴露喉部，观察声门的位置和形态。
将气管内导管插入喉部，通过声门，直至到达气管内。
在插管过程中，应注意操作轻柔，避免损伤喉部和气管黏膜。
插入导管后，应确认导管的位置是否正确，并进行必要的调整。
5. 拔除气管内导管：在手术结束后，应适时拔除气管内导管。
拔管前应先停止给氧，将吸引器置于导管内吸引分泌物。
在确认分泌物被完全吸出后，可以逐渐将导管拔出。
拔管时应轻柔操作，避免损伤喉部和气管黏膜。
总之，T/CVMA 84-2021犬猫气管插管规程是为了规范犬猫麻醉时的气管插管操作，提高插管成功率，减少并发症的发生。
在实际操作中，应根据具体情况灵活应用本规程。
【宠物外产科病课件】气管插管技术
水平角的测量
气管插管技术
八、验证气管插管成功与否
1、导管插入气管时动物会有几声轻微的咳嗽，麻醉深时不见。
2、用毛发等絮状物贴近导管出口，检查有无气流。
3、按压宠物胸部，可见与压迫一致的气流。
4、观察透明导管口处的管壁，呼气时可见导管内壁有气雾形成，吸气 时消失。
5、呼吸气囊与自主呼吸一致，导管正确，只有胸腹部起伏，而无气囊 变化，则插入食道。
四、气管插管长度的选择
1、插管远端不超过肩胛骨前缘，近端放置于切齿位置 2、使用纱布绷带固定，猫固定在下颌骨，犬固定在上颌骨 3、猫-使用利多卡因凝胶或0.2ml2%利多卡因喷雾喉头
水平角的测量
气管插管技术
五、咽喉镜
喉镜由喉镜片、喉镜柄和灯泡构成。 根据喉镜片的外形 直型喉镜
弯型喉镜
水平角的测量
气管插管技术 灯泡
气管插管技术
01
02
03
教学目标
教学重点
教学难点
掌握气管插管的操作技巧。 掌握气管导管型号的选择，掌握 咽喉镜的使用，掌握气管插管的 操作技术，了解常见的气管插管 的并发症。
如何控制气管导管套囊的 压力，如何顺利地将导管 插入犬气管内。
气管插管技术
气管插管的目的
1、确保动物呼吸道通畅 2、减少气道阻力 3、氧气供给与气体麻醉 4、便于急救 5、避免吸入性肺炎 6、防止气体麻醉废气污染
水平角的测量
气管插管技术
七、操作步骤
7、将插管用纱布条打结敷住并将其绑于上颌或下颌，或耳后。 8、将插管之接头连接到麻醉机或氧气供应器上。 9、要经常查看气管插管是否弯折或有过多水分。
水平角的测量
气管插管技术 杓状软骨 会厌软骨
喉镜镜片压住舌根部
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急性动物实验中经常使用的手术方法之宇文皓月创作急性动物实验中常以血压、呼吸等为指标，以静脉注射、放血等为实验方法。
需要曝露气管、颈总动脉，颈外静脉，股动脉，股静脉，并做相应的插管，以及分离迷走神经，减压神经及股神经等。
因此手术主要颈部及股部进行，现分述如下：
（一）兔、狗颈部手术
颈部手术的目的在于流露气管、颈部血管并作相应的插管以及分离神经等。
颈部手术成败的关键在于熟悉动物颈部及手术要领，防止损伤血管和神经（图1）现以兔为例，说明如下：
图1 家兔颈部血管神经解剖位置示意图
1.家兔背位固定于兔台上，颈部剪毛。
2.动物麻醉一般作局部浸润麻醉，在颈部正中线皮下注1%普鲁卡因，亦可选用20%乌拉坦作全身麻醉。
3.气管及颈部血管神经分离术
⑴气管流露术：用手术刀沿颈部正中线从甲状软骨处向下靠近胸骨上缘作一切口（兔长约4～6cm，狗的长约10cm）；因
兔颈部皮肤较松驰亦可用手术剪沿正中线剪开。
切开皮肤后，以气管为标记从正中线用止血钳钝性分离正中的肌群和筋膜即可流露气管，分离食道与气管，在气管下穿过一条粗线备用。
⑵颈总动脉分离术：正中切开皮肤及皮下筋膜，流露肌肉。
将肌肉层与皮下组织分开。
此时清楚可见在颈中部位有两层肌肉。
一层与气管平行，复于气管上，为胸骨舌骨肌。
其上又有一层肌肉呈V字形走行向左右两侧分开。
此层为胸锁乳突肌。
用镊子轻轻夹住一侧的胸锁乳突肌，用止血钳在两层肌肉的交接处（即V形沟内）将它分开（注意，切勿在肌肉中分，以防出血）。
在沟底部即可见到有搏动的颈总动鞘。
用眼科镊子（或纹式止血钳）细心剥开鞘膜，避开鞘膜内神经，分离出长约3-4cm的颈总动脉，左其下穿两根线备用。
颈动脉窦分离术：在剥离两侧颈总动脉基础上，继续小心地沿两侧上方深处剥离，直至颈总动脉分叉处膨大部分，即为颈动脉窦，剥离时勿损伤附近的血管神经。
⑶颈部迷走、交感、减压神经分离术：于家兔颈部，在找到颈动脉鞘以后，将颈总动脉附近的结缔组织薄膜镊住，并轻拉向外侧使薄膜张开，即可见薄膜上数条神经，根据各条神经的形态、位置和走向等特点来识别，迷走神经最粗，外观最白，位于颈总动脉外侧，易于识别。
交感神经比迷走神经细，位于颈总动脉的内侧，呈浅灰色；减压神经细如头发，位于迷
走神经和交感神经之间，在家兔为一独立的神经，沿交感神经外侧后行走，但在人、狗此神经其实不单独行走，而是行走于迷走、交感干或迷走神经中。
将神经细心分离出2-3cm长即可，然后各穿细线备用。
⑷颈外静脉流露术颈外静脉浅，位于颈部皮下，其属支外腭静脉和内腭静脉，颈部正中切口后，用手指从皮肤外将一侧部组织顶起，在胸锁突乳肌外缘，即可见很粗而明显的颈外静脉。
仔细分离长约3-4cm的颈外静脉，穿两线备用。
4.气管及颈部血管插管术
在前述分离术的基础上，按需要选作下列插管术。
⑴气管插管术：流露气管后在气管中段，于两软骨环之间，剪开气管口径之半，在向头端作一小纵切口呈倒“T”形。
用镊子夹住T形切口的一角，将适当口径的气管套管由切口向心端拔出气管腔内，用粗线扎紧，再将结扎线固定于“Y”形气管插管分叉处，以防气管套管脱出。
⑵颈总动脉插管术：颈总动脉主要用于丈量颈动脉压。
为此，在插管前需使动物肝素化，并将口径适宜的充满抗凝液体（也可用生理盐水）的动脉套管（也可用塑料管）准备好，将颈总动脉离心端结扎线之间。
插管时以左手拇指及中指拉住离心端结扎线头，食指从血管面前轻扶血管。
右手持锐利的眼科
剪，使与血管呈45度角，在紧靠离心端结扎线处向心一剪，剪开动脉壁之周径1/3左右（若重复数剪易造成切缘不齐，当插管时易造成动脉内膜内卷或拔出层间而失败），然后持动脉套管，以其尖端余面与动脉平均地向心方向拔出动脉内，用细线扎紧并在套管分叉处打结固定。
最后将动脉套管作适当固定，以包管测压时血液进出套管之通畅。
⑶颈外静脉插管术：颈外静脉可用于注射、输液和中尽静脉压之丈量。
血管套管拔出方法与股静脉相似，现将用于中心静脉压丈量的插和作一简介：
在插管前先将兔肝素化，并将联接静脉压检压计的细塑料管导管充盈含肝素之生理盐水。
在导管上作一长5-8cm的记号，导管准备好后，先将静脉远心端结扎，靠近结扎点的向心端作一剪口，将导管拔出剪口，然后一边拉结扎线头使颈外静脉与颈矢状面、冠状面各呈45度角，一边轻柔地向心端缓慢拔出，遇有阻抗即退回改变角度重插，切不成硬插（易插破静脉进入胸腔）一般达导管上记号为止，此时可达右心房入口处。
若导管插管成功，则可见静脉压检压计水面或漂浮于中心静脉压数值附近随呼吸而上下动摇。
（二）兔、狗股部手术
股部手术目的在于分离股神经、股动、静脉及进行股动、静脉插管，以备放血、输血输液、注射药物等用。
狗肌部神经、血管解剖特点见图2。
图2 狗股部神经、血管解剖特点
狗、兔等动物手术方法基底细同。
现以兔为例其基本步调如下：
1.动物背位固定于兔台上，腹股沟部剪毛。
2.用手指触摸股动脉搏动，辨明动脉走向，在该处作局部麻醉并作方向一致长约4-5cm的切口。
用止血钳小心分离肌肉及深部筋膜，便清楚地流露出股三角区。
骨三角区上界为鼠蹊韧带，内界为缝匠肌，外界为内收长肌。
肌动脉及神经即由此三角区通过。
股神经位于外侧，股静脉位于内侧，肌动脉位于中间偏后。
3.用止血钳细心将股神经首先分出，然后分离股动、静脉间的结缔组织，清楚地流露股静脉，如作插管可分离出一段静脉（约2-2.5cm）。
穿两根细线备用。
再仔细分离股动脉，将股动脉与其部的组织分离开，长约2-2.5cm。
切勿伤及股动脉分支。
动脉下方穿两根细线备用。
4.在动物行肝素化后作股动、静脉插管。
狗的血管粗大，插管较易。
家兔血管细，插管较难；因此要细致耐心和掌握要领。
（1）股动脉插管术：于肌动脉近心端用动脉夹夹住，近心端用细线结扎，牵引此线在贴近远心端结扎处剪开血管向心拔出动脉套针或塑料管，结扎固定后备放血或注射用。
（2）股静脉插管术：股静脉插管术，除不需用动脉夹外，基本与股动脉插管相同。
但因静脉于远心端结扎后静脉塌陷呈细线状，较难插管，因此可试用静脉充盈插管法。
即：在股静脉近心端用血管夹夹住（也可用线提起），活动肢体使股静脉充盈，股静脉远心端结扎线打一活扣，待手术者剪口拔出套针后，再由助手迅速结扎紧。
摘自《医用实验动物学》。