生理科学实验常用手术器械和家兔实验基本操作PPT课件
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【医学ppt课件】家兔开胸实验
实验3 家兔开胸实验
1.开胸手术操作 2.心表面电图记录 3.急性心肌缺血和心肌梗塞家兔模型制作 4.起搏及心律失常诱导
人类疾病动物模型指的是为研究人类疾病的 发生机理、预防、诊治 而制作的具有
人类疾病类似表现的实验动物
制作方式有很多种，其中一种是诱发性动物模型, 又称为实验性动物模型， （experimental animal model）
紧 丝线、钳夹聚氯乙烯管以阻断冠脉血流,心脏表面发紫, 松开丝线即可恢复灌流。于胸骨左缘第三肋间,记录胸 导心电图(或按心电图标准Ⅱ导联肢体),以胸导心电图 R波振幅的下降及ST段抬高(大于或等于2mm)表示缺血 的程度，持续记录连续记录缺血前、缺血后心电图 变化.
正常心电
缺血后的心电
实 3）熟悉通过接扎法造成心肌缺血和梗塞的方法及原理 4）起搏及心律失常诱导方法，了解室速、室颤机制
是通过使用物理、化学、生物等手段，人为制造的疾病模型
急性心肌缺血和心肌梗塞家兔模型制作
通常有以下方法： ①电刺激法：用不锈钢钢针定向插入右侧下丘脑
背侧核
②药物法：注射异丙基肾上腺素或麦角新碱。
③冠状动脉阻断法： 开胸结扎冠状动脉法 离体心脏灌注冠状动脉结扎缺氧法 冠状动脉血栓法
然后用眼科小圆针在左冠状动脉左室支的上3/4～4/处 (或左冠脉前降支(LAD)主干中上1/3处),穿绕3～0丝线, 其末端套一直径1.5mm,长约4mm的聚氯乙烯管,通过拉
1.开胸手术操作 2.心表面电图记录 3.急性心肌缺血和心肌梗塞家兔模型制作 4.起搏及心律失常诱导
人类疾病动物模型指的是为研究人类疾病的 发生机理、预防、诊治 而制作的具有
人类疾病类似表现的实验动物
制作方式有很多种，其中一种是诱发性动物模型, 又称为实验性动物模型， （experimental animal model）
紧 丝线、钳夹聚氯乙烯管以阻断冠脉血流,心脏表面发紫, 松开丝线即可恢复灌流。于胸骨左缘第三肋间,记录胸 导心电图(或按心电图标准Ⅱ导联肢体),以胸导心电图 R波振幅的下降及ST段抬高(大于或等于2mm)表示缺血 的程度，持续记录连续记录缺血前、缺血后心电图 变化.
正常心电
缺血后的心电
实 3）熟悉通过接扎法造成心肌缺血和梗塞的方法及原理 4）起搏及心律失常诱导方法，了解室速、室颤机制
是通过使用物理、化学、生物等手段，人为制造的疾病模型
急性心肌缺血和心肌梗塞家兔模型制作
通常有以下方法： ①电刺激法：用不锈钢钢针定向插入右侧下丘脑
背侧核
②药物法：注射异丙基肾上腺素或麦角新碱。
③冠状动脉阻断法： 开胸结扎冠状动脉法 离体心脏灌注冠状动脉结扎缺氧法 冠状动脉血栓法
然后用眼科小圆针在左冠状动脉左室支的上3/4～4/处 (或左冠脉前降支(LAD)主干中上1/3处),穿绕3～0丝线, 其末端套一直径1.5mm,长约4mm的聚氯乙烯管,通过拉
《机能实验学》手术操作(专科)课件(1)
的1/5，且须经一定时间后才能补充。
6、因麻醉药的作用，可使动物体温缓
慢下降，所以，特别是寒冷季节应注意动
物保温。
.
20
【兔仰卧位固定法】P47
--四肢及两只上门牙固定
将缚绳打活结→绑在兔前肢腕关节上部和后肢踝关节
上部→将两后肢分开拉直，用缚绳缠绕固定于手术台
后缘的钩上→将两前肢平直放在两侧，绑两前肢的左
于喉头下方至胸骨
上缘之间作颈正中
切口4-5cm。
.
22
【颈部手术】P62
切口方法及注意事项：
＆根据实验需要确定切口的位置和大小
必要时要作出标志。切口大小以便于手
术操作为宜。
＆用拇指和食指绷紧皮肤，另一手持手
术刀以适当力量一次切开皮肤及皮下组
织，直到肌层。肌层可用组织剪先剪一
小口，再顺肌纤维用组织钳钝性分离。
两环，中指放在无名指的前
外方剪柄上，食指轻压在剪
柄和刀口交界的轴节处。
.
4
动物实验常用的手术器械及使用方法
P60
﹠止血钳
除用于止血外，有齿的用于
提捏皮肤，无齿的分离皮下
组织。蚊式止血钳适于分离
小血管及小神经周围的结缔
组织。执钳方法与持剪方法
相同。关闭止血钳时，两手
动作相同，但打开止血钳时
则是用拇指和食指持住止血
上和向下剪开腹壁3～5cm → 用手将膀胱翻
至体外→在膀胱底部左右侧仔细辨认输尿管
（注意围绕输尿管横向走行的白色管，为输精
管，与膀胱无联系；输尿管略呈粉红色，自膀
胱底部向腹腔深部延伸）→
.
32
【膀胱插管】P65
在输尿管下方穿线→ 将膀胱上翻→结扎尿
《家兔生产实验实习》PPT课件
.实习十 家兔精液的冷冻保存（2学时） 一、目的
实验实习
掌握家兔精液冷冻保存的原理，熟悉家兔精液冷冻保
存的程序和方法。 二、材料1．仪器 2．药品 三、方法与步骤
(一)冲洗涤、洗涤液和保护液的配制
(二)采精及精液品质检查 (三)精液的洗涤与浓缩
(四)稀释与分装
(五)降温与平衡 (六)冷冻 (七)储存
第十三章 家兔生产实验实习
.实习十三 家兔的饲粮配合及营养检查（1学时）
实验实习
一、目的 熟悉家兔的饲养标准及营养需要，掌握家兔 日粮配合方法。 二、方法与步骤 (一)泌乳母兔的日粮配合 1．日粮配合原则 2．日粮配合所需的有关资料 3．日粮配合方法及步骤 4．泌乳母兔日粮配合(作业题) (二)生长兔日粮营养检查
实验实习
一、目的 了解家兔的屠宰技术和屠宰牢的计算方法。
二、材料和用具 三、方法与步骤 (一)兔的屠宰 (二)称重
(三)屠宰率计算.
达职院经管系《家兔生产》
18
第十三章 家兔生产实验实习
.实习十七 参观冻兔肉加工厂（2学时）
实验实习
一、目的
通过参观学习，了解冻兔肉加工的工艺过程
以及贮藏、冷冻、收购、运输等各个环节的生产要求。
二、内容 1．宰杀 2．剥皮
生检验 5．去骨
3．摘除内脏
4．卫
６．整形、加
工 7．包装 ８．速冻和冷藏
达职院经管系《家兔生产》
19
第十三章 家兔生产实验实习
.实习十八 兔毛纤维组织学结构观察（2学时）
实验实习
一、目的
学会兔毛纤维的显微镜检查技术，认识不同兔毛纤维类
型的组织学结构特点、从而加深对各类兔毛纤维理化特性的理解。 二、材料、仪器和药品
实验实习
掌握家兔精液冷冻保存的原理，熟悉家兔精液冷冻保
存的程序和方法。 二、材料1．仪器 2．药品 三、方法与步骤
(一)冲洗涤、洗涤液和保护液的配制
(二)采精及精液品质检查 (三)精液的洗涤与浓缩
(四)稀释与分装
(五)降温与平衡 (六)冷冻 (七)储存
第十三章 家兔生产实验实习
.实习十三 家兔的饲粮配合及营养检查（1学时）
实验实习
一、目的 熟悉家兔的饲养标准及营养需要，掌握家兔 日粮配合方法。 二、方法与步骤 (一)泌乳母兔的日粮配合 1．日粮配合原则 2．日粮配合所需的有关资料 3．日粮配合方法及步骤 4．泌乳母兔日粮配合(作业题) (二)生长兔日粮营养检查
实验实习
一、目的 了解家兔的屠宰技术和屠宰牢的计算方法。
二、材料和用具 三、方法与步骤 (一)兔的屠宰 (二)称重
(三)屠宰率计算.
达职院经管系《家兔生产》
18
第十三章 家兔生产实验实习
.实习十七 参观冻兔肉加工厂（2学时）
实验实习
一、目的
通过参观学习，了解冻兔肉加工的工艺过程
以及贮藏、冷冻、收购、运输等各个环节的生产要求。
二、内容 1．宰杀 2．剥皮
生检验 5．去骨
3．摘除内脏
4．卫
６．整形、加
工 7．包装 ８．速冻和冷藏
达职院经管系《家兔生产》
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第十三章 家兔生产实验实习
.实习十八 兔毛纤维组织学结构观察（2学时）
实验实习
一、目的
学会兔毛纤维的显微镜检查技术，认识不同兔毛纤维类
型的组织学结构特点、从而加深对各类兔毛纤维理化特性的理解。 二、材料、仪器和药品
家兔阑尾切除术(实验课件)..
技能目标
（1）学会切开、止血、结扎、缝合和学会荷包缝合。 （2）学会蚓突切除（模拟阑尾切除术）的常规操作。
素质目标
培养学生-具备高尚医德医风、厚重的人文修养 及强烈职业责任感 。
10:54:03
一：实验用主要器械与物品
止血钳（弯、直） 蚊氏钳 组织钳 组织剪 手术刀 医用综合针、线
持针钳 甲状腺拉钩、 阑尾钳、 线剪 镊子 2.5%碘酒、75%酒精、生理盐水 2.5%戌巴比妥钠
切除蚓突
关闭腹腔
1054:03
• 注意事项 • 1、在切开腹膜时，应用手术镊或弯血管钳将腹膜提起 ，使腹膜与内脏分开，以免切开腹膜的同时损伤内脏 。 • 2、在寻找阑尾困难时，可将动物胃和十二指肠提起， 阑尾即位于十二指肠环内。 • 3、阑尾系膜可作双重结扎或贯穿缝扎，以免出血影响 手术操作。 • 4、荷包缝合的大小以刚好包埋阑尾残端为宜。 • 5、收紧荷包缝线时要求术者和助手密切配合，在助手 将阑尾残端塞入内翻的同时，有术者逐渐收紧荷包缝 线打结。
10:54:03
10:54:03
4、切开腹壁：取下腹正中切口， 长约10cm，依次切开皮肤、皮下组 织，血管钳钳夹或1号丝线结扎止 血。切口两侧分别置布巾，用布巾 钳固定，避免细菌污染切口。 （家兔腹壁较薄，开腹较为简单， 皮下出血较少，可以用手术刀一直 切至腹膜层）。术者和助手用血管 钳沿横轴线对向交替钳夹提起腹膜， 术者用手触摸两钳间的腹膜，确定 无内脏夹住后用手术刀切开一小口， 术者和助手各持一把弯血管钳夹持 对侧腹膜切口边缘，将其提起。用 组织剪纵向剪开腹膜，将左手食指 和中指伸入腹腔，挡开内脏，以免 损伤。
5、显露蚓突：开腹后，暴露 手术野，将小肠和大网膜推 向内侧。术者在右侧腹寻找 阑尾（位于回结肠交界处， 长约10cm，尖端直径约 1.2cm）。找到阑尾后，用血 管钳钳夹阑尾系膜边缘，提 起阑尾，拉出到腹腔外面， 充分暴露整个阑尾及其周围 的结构。周围用盐水纱布盖 好保护组织。 6、分离蚓突系膜：用蚊氏钳 穿通蚓突系膜的无血管区， 再用两把钳子穿过和夹住系 膜。在两钳之间切断系膜， 分别用细线结扎止血。
家兔实验手术ppt课件
家兔动物手术操作
童攒
手术器械介绍
手术刀
注射器
排除气泡
动物的抓取
X X X
家兔的麻醉
（1）注射液剂量 （参考值） 5 ml/kg体重20%氨基甲酸乙酯（乌拉坦） 1g/kg 抽吸麻醉液多吸一部分；剩余麻醉液回收
（2）进针 选择耳缘静脉，从远心端开始 针头扎进1/3至1/2，并用拇指固定住 前1/3 可以快，中1/3慢,后1/3更慢 判断麻醉深度 四肢肌张力、角膜反射、呼吸运动
气管插管
游离一段气管、穿线、剪倒T口
气管插管
头
软骨
心脏
分离迷走神经
翻开气管一侧，迷走神经(1根) 穿线备用
颈总动脉
交感神经
迷走神经 减压神经
动脉插管
压力换能器
压力仓充满液体石蜡，排气泡 插管充满肝素生理盐水动脉插管源自动脉插管游离一段颈动脉
管
结扎远心端、动脉夹近心端、插
头
心脏
胆管插管
腹部手术 腹白线
膀胱插管
插管前插管内应注满生理盐水 在膀胱正中作一荷包缝合,不能穿透膀胱壁！ 在中心剪一小口，插入膀胱套管， 收紧缝线，固定膀胱套管
童攒
手术器械介绍
手术刀
注射器
排除气泡
动物的抓取
X X X
家兔的麻醉
（1）注射液剂量 （参考值） 5 ml/kg体重20%氨基甲酸乙酯（乌拉坦） 1g/kg 抽吸麻醉液多吸一部分；剩余麻醉液回收
（2）进针 选择耳缘静脉，从远心端开始 针头扎进1/3至1/2，并用拇指固定住 前1/3 可以快，中1/3慢,后1/3更慢 判断麻醉深度 四肢肌张力、角膜反射、呼吸运动
气管插管
游离一段气管、穿线、剪倒T口
气管插管
头
软骨
心脏
分离迷走神经
翻开气管一侧，迷走神经(1根) 穿线备用
颈总动脉
交感神经
迷走神经 减压神经
动脉插管
压力换能器
压力仓充满液体石蜡，排气泡 插管充满肝素生理盐水动脉插管源自动脉插管游离一段颈动脉
管
结扎远心端、动脉夹近心端、插
头
心脏
胆管插管
腹部手术 腹白线
膀胱插管
插管前插管内应注满生理盐水 在膀胱正中作一荷包缝合,不能穿透膀胱壁！ 在中心剪一小口，插入膀胱套管， 收紧缝线，固定膀胱套管
实验课件-实验一
几种常用生理盐溶液的配制
• 生理性溶液为代体液，用于维持离体的组织、器官及细胞的正常生命 活动。它必须具备下列条件：⑴渗透压与组织也相等；⑵应含有组织、 器官维持正常机能所必需的比例适宜的各种盐类离子；⑶酸碱度应与 血浆相同，并具有充分的缓冲能力；⑷应含有氧气和营养物质。
• 动物实验中常用的生理盐溶液有生理盐水、任氏（Ringer）溶液、乐 氏（Locke）溶液和台氏（Tyrode）溶液四种，其成分各异，如下表 所示。
• 凝集原（agglutinogen）：红细胞膜上存在着特异的抗原
• 凝集素（agglutinogen）：血液中与红细胞膜上的凝集原起反应的特 异抗体
血型的分类:目前已知人类的RBC除ABO血型系统外, 还有 Rh、P等23个血型系统。ABO血型是根据红细胞表面存在 的凝集原（A或B）决定的，分为A、B、AB、O四型。
实验课件 - 实验一
动物生理学实验 基本操作技术
一、常用手术器械 1. 蛙类实验手术器械：
2. 哺乳动物手术器械：
止血钳
手术刀
手术剪和手术镊
二、手术器械的消毒方法
➢ 煮沸消毒法：水沸3~5min后，将器械放入消毒锅内， 等第二次水沸后15min。
➢ 高压蒸汽灭菌法：高压灭菌锅，蒸汽压15~20lb/in2， 温度121.6~126.6C，30min左右。不宜于橡胶制品 和锐利器械的灭菌。
配血相合：可进行输血 配血不合：不可输血 基本相合：原则同O型血输给其他血型者或AB型血 接受其他型血 3、紧急情况无同型血：少量、缓慢、紧密观察。
实验方法
• 取双凹玻片一块，用干净纱布轻拭使之洁 净，在玻片两端用腊笔标明A及B，并分别 各滴入A及B标准血清一滴。
• 取血：采左手无名指血。70%酒精消毒风 干用一次性针头扎手指滴血（血量： 血清约为1:1用牙签迅速混匀（切勿将两 种血清混到一起）观察结果。
《机能实验学》手术操作(专科)ppt课件
【颈部手术】P62
3、神经和血管的分离
➢迷走神经、颈总动脉的分离（右侧）：
用左手拇指、食指捏住颈部 皮肤切口缘和部分肌肉向外侧 牵拉，中指和无名指从外面将 背侧皮肤向腹侧轻轻顶起，以 显露颈总动脉及伴行的迷走神 经、交感神经和减压神经。 其中迷走神经最粗，交感神经 次之，减压神经最细（细如兔 毛），且常于交感神经或迷走 神经紧贴。
1、准备用品：麻醉药、针筒、头皮针、
﹠ 抽
纱布、静脉夹。 2、持针及抽药方法： 3、排气方法：
取 4、注意事项：
麻 （1）注意对药标（药物名称和浓度）。
醉 （2）注意抽药量。
药 （2）小心拿、放针筒，防止内筒脱出。
（3）手不要触及针筒内筒。
（4）排气时药液不要喷到电脑。
P56 辨清耳缘静脉（耳背薄侧外侧缘）
1、右颈总动脉插管 如有渗血说明结扎不
牢固，应再次用动脉夹 夹闭血管近心端，重新 结扎或加固。
注意动作要轻柔；结 扎要牢固；血管剪口尽 量靠远心端；注意三通 管的开与关（先关后开）.
【血管插管】P63
2、左颈总静脉插管
颈总静脉远心端牢固结扎，近心端
可不夹闭→提起结扎线，用眼科剪于 近结扎处的下侧将颈总静脉剪一小口 →将静脉导管向心脏方向插入颈总静
实验 内容
家兔实验的基本手术操作技术
【实验目的和原理】
机能学实验常用兔子作为实验对象。 我们所要做的几个兔子实验都属于急 性在体实验，即“活体解剖实验方法”。 这类实验要对兔子进行麻醉，并经过 一定的手术，手术的好坏直接影响实 验效果。本实验的目的是进行兔实验 的基本手术操作技术的练习，为后面 几次实验打基础。
P56
﹠
兔 耳 缘 静 脉 注 射 法
实验动物的基本操作和家兔急性手术共36页
END
Байду номын сангаас 16、业余生活要有意义，不要越轨。——华盛顿 17、一个人即使已登上顶峰，也仍要自强不息。——罗素·贝克 18、最大的挑战和突破在于用人，而用人最大的突破在于信任人。——马云 19、自己活着，就是为了使别人过得更美好。——雷锋 20、要掌握书，莫被书掌握；要为生而读，莫为读而生。——布尔沃
实验动物的基本操作和家兔 急性手术
26、机遇对于有准备的头脑有特别的 亲和力 。 27、自信是人格的核心。
28、目标的坚定是性格中最必要的力 量泉源 之一， 也是成 功的利 器之一 。没有 它，天 才也会 在矛盾 无定的 迷径中 ，徒劳 无功。- -查士 德斐尔 爵士。 29、困难就是机遇。--温斯顿．丘吉 尔。 30、我奋斗，所以我快乐。--格林斯 潘。
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11
➢ 给药方法
• 灌胃法 • 皮下注射法：背部或腿部皮下 • 肌内注射法：后肢大腿部 • 腹腔注射法：腹中线左侧1cm • 静脉注射法：
耳缘静脉、颈外静脉、股静脉等
12
耳缘静脉给药法操作要点：
1. 用酒精棉球擦拭或用水湿润局部 2. 左手绷紧皮肤，右手持注射器进针 3. 从远心端平行刺入血管内，顺血管平行方向
17
1. 颈外静脉位于颈部两侧皮下 2. 钝性分离一段静脉（不要绷太紧） 3. 穿2根丝线 4. 先用静脉夹夹住近心端，再丝线结扎远心端 5. 剪开静脉、插管、结扎固定 6. 松开静脉夹
18
1. 备皮（下腹部，耻骨联合上） 2. 切开皮肤（耻骨联合上3~5cm） 3. 沿腹白线剪开腹膜，暴露膀胱 4. 玻璃分针分离出输尿管，穿2根线 5. 结扎近膀胱端，剪开一小口 6. 向肾脏方向插入插管，结扎固定
19
20
21
22
23
24
3
家兔的基本操作
➢ 捉拿方法、秤重
➢ 麻醉、固定 ➢ 给药方法 ➢ 取血方法 ➢ 处死方法
4
家兔各种常用急性手术方法
➢ 颈部手术
切开、分离、止血
• 气管插管
缝合、打结
• 颈总动脉插管
• 颈外静脉插管
5
➢ 腹部手术
• 输尿管插管
• 膈小肌的分离（P86）
6
➢ 股部手术
• 股动脉插管 • 股静脉插管
• 大量放血法
15
1. 家兔麻醉，仰卧固定于手术台上 2. 颈部备皮（剪毛） 3. 切开皮肤（甲状软骨下缘正中线向下切3~5 cm） 4. 血管钳钝性分离筋膜肌肉，暴露气管 5. 气管下穿一棉线备用 6. 第3或4软骨环上切开气管的1/3，倒T切口 7. 向下插入气管插管，结扎固定
16
1. 颈总动脉位于气管旁颈总动脉鞘内（与3神经伴行） 2. 用玻璃分针分离干净足够长的动脉 3. 穿2根丝线备用 4. 结扎远心端动脉，动脉夹夹住近心端动脉 5. 眼科剪在靠近结扎处剪一小口（口径的1/3） 6. 向心插入动脉插管，结扎固定 7. 最后松开动脉夹
9
预习内容
1. 动作电位的产生原理几相关概念 2. 实验中记录到的电位与动作电位的区别 3. 实验标本如何制备？传导速度如何测量？ 4. 实验中记录到的双相动作电位的上下两相
幅值有何不同？为什么？
10
麻醉注意事项Байду номын сангаас
• 先快后慢，前1/3快速，后 2 /3缓慢。 • 观察肌肉紧张度，角膜反射和皮肤夹捏反射。 • 追加麻药时一般追加总量的1/5，不能超过1/3。 • 注意保持呼吸道通畅，保暖
深入1cm，推少许药液证明是否在血管内 4. 左手拇指、食指固定住针头与兔耳，缓慢注
入药液 5. 注射完后注意用干棉球或干纱布止血 6. 注意保护血管
13
➢ 取血方法
• 颈总动脉取血
• 耳缘静脉取血 • 心脏取血：心脏搏动最明显处
第3~4肋间胸骨左缘外3mm
14
➢ 处死方法 • 空气栓塞法：
耳缘静脉快速注入大量空气
股动脉、静脉位于股三角区中的股动脉鞘内， 与股神经伴行，位置较表浅
7
主要练习内容：
1.耳缘静脉注射 2.气管插管 3.颈总动脉插管 4. 颈外静脉插管 5.输尿管插管
8
注意事项
1.注意安全，手术器械不要对着他人或自己 2.皮下组织最好钝性分离 3.导管插入之前一定要先排气（气管插管除外） 4.玻璃分针、丝线等器械在接触组织之前要先 用生理盐水湿润，减少对组织的伤害 5. 动物最后一定要处死，器械要全部取下
第三次实验
生理科学实验常用 手术器械和家兔实验基本操作
1
❖ 生理科学实验常用手术器械 ❖ 家兔的基本操作 ❖ 家兔各种常用急性手术方法
2
生理科学实验常用手术器械
• 手术刀 • 手术剪 • 手术镊 • 血管钳 • 持针钳 • 组织钳 • 缝合针、缝线
• 动、静脉夹 • 玻璃分针、金属探针 • 蛙心夹 • 气管插管 • 血管插管 • 输尿管插管
➢ 给药方法
• 灌胃法 • 皮下注射法：背部或腿部皮下 • 肌内注射法：后肢大腿部 • 腹腔注射法：腹中线左侧1cm • 静脉注射法：
耳缘静脉、颈外静脉、股静脉等
12
耳缘静脉给药法操作要点：
1. 用酒精棉球擦拭或用水湿润局部 2. 左手绷紧皮肤，右手持注射器进针 3. 从远心端平行刺入血管内，顺血管平行方向
17
1. 颈外静脉位于颈部两侧皮下 2. 钝性分离一段静脉（不要绷太紧） 3. 穿2根丝线 4. 先用静脉夹夹住近心端，再丝线结扎远心端 5. 剪开静脉、插管、结扎固定 6. 松开静脉夹
18
1. 备皮（下腹部，耻骨联合上） 2. 切开皮肤（耻骨联合上3~5cm） 3. 沿腹白线剪开腹膜，暴露膀胱 4. 玻璃分针分离出输尿管，穿2根线 5. 结扎近膀胱端，剪开一小口 6. 向肾脏方向插入插管，结扎固定
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3
家兔的基本操作
➢ 捉拿方法、秤重
➢ 麻醉、固定 ➢ 给药方法 ➢ 取血方法 ➢ 处死方法
4
家兔各种常用急性手术方法
➢ 颈部手术
切开、分离、止血
• 气管插管
缝合、打结
• 颈总动脉插管
• 颈外静脉插管
5
➢ 腹部手术
• 输尿管插管
• 膈小肌的分离（P86）
6
➢ 股部手术
• 股动脉插管 • 股静脉插管
• 大量放血法
15
1. 家兔麻醉，仰卧固定于手术台上 2. 颈部备皮（剪毛） 3. 切开皮肤（甲状软骨下缘正中线向下切3~5 cm） 4. 血管钳钝性分离筋膜肌肉，暴露气管 5. 气管下穿一棉线备用 6. 第3或4软骨环上切开气管的1/3，倒T切口 7. 向下插入气管插管，结扎固定
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1. 颈总动脉位于气管旁颈总动脉鞘内（与3神经伴行） 2. 用玻璃分针分离干净足够长的动脉 3. 穿2根丝线备用 4. 结扎远心端动脉，动脉夹夹住近心端动脉 5. 眼科剪在靠近结扎处剪一小口（口径的1/3） 6. 向心插入动脉插管，结扎固定 7. 最后松开动脉夹
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预习内容
1. 动作电位的产生原理几相关概念 2. 实验中记录到的电位与动作电位的区别 3. 实验标本如何制备？传导速度如何测量？ 4. 实验中记录到的双相动作电位的上下两相
幅值有何不同？为什么？
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麻醉注意事项Байду номын сангаас
• 先快后慢，前1/3快速，后 2 /3缓慢。 • 观察肌肉紧张度，角膜反射和皮肤夹捏反射。 • 追加麻药时一般追加总量的1/5，不能超过1/3。 • 注意保持呼吸道通畅，保暖
深入1cm，推少许药液证明是否在血管内 4. 左手拇指、食指固定住针头与兔耳，缓慢注
入药液 5. 注射完后注意用干棉球或干纱布止血 6. 注意保护血管
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➢ 取血方法
• 颈总动脉取血
• 耳缘静脉取血 • 心脏取血：心脏搏动最明显处
第3~4肋间胸骨左缘外3mm
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➢ 处死方法 • 空气栓塞法：
耳缘静脉快速注入大量空气
股动脉、静脉位于股三角区中的股动脉鞘内， 与股神经伴行，位置较表浅
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主要练习内容：
1.耳缘静脉注射 2.气管插管 3.颈总动脉插管 4. 颈外静脉插管 5.输尿管插管
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注意事项
1.注意安全，手术器械不要对着他人或自己 2.皮下组织最好钝性分离 3.导管插入之前一定要先排气（气管插管除外） 4.玻璃分针、丝线等器械在接触组织之前要先 用生理盐水湿润，减少对组织的伤害 5. 动物最后一定要处死，器械要全部取下
第三次实验
生理科学实验常用 手术器械和家兔实验基本操作
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❖ 生理科学实验常用手术器械 ❖ 家兔的基本操作 ❖ 家兔各种常用急性手术方法
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生理科学实验常用手术器械
• 手术刀 • 手术剪 • 手术镊 • 血管钳 • 持针钳 • 组织钳 • 缝合针、缝线
• 动、静脉夹 • 玻璃分针、金属探针 • 蛙心夹 • 气管插管 • 血管插管 • 输尿管插管