兰花组织培养精编版
兰花组织培养

一、兰花无性快速繁殖 二、 快速繁殖的影响因素 三、兰花脱毒植株的鉴定
一、兰花无性快速繁殖
原球茎发生体系是兰花唯一有效的大规模无性繁殖方法。该方法是 1960年法国学者G.Morel开创的,促使了兰花工业的形成,获得巨 大的经济效益。 (一)培养程序 外植体 诱导形成原球茎 原球茎大量增殖 分化为小 植株 生根壮苗培养 温室栽培 室外栽培 (二)取材和处理 兰花茎尖、叶片、花器官、种子等都可作为外植体进行培养,诱 导再生植株。茎尖是细胞分裂最活跃的部分,是较容易诱导,培养 成功率高的部位。在兰花茎尖培养时,首先从生长健壮的植株上切 取10cm长的茎尖,去掉苞叶,用加有适量洗涤剂的自来水洗净, 在超净工作台上用75%酒精消毒数秒,无菌水冲洗4~5次,再用5 %漂白粉消毒约10min或用4~5min,无菌水冲洗4~5次后备用。 在叶片培养中,应选择带有嫩叶的花梗。
三、兰花脱毒植株的鉴定
目前,国内外检测兰花病毒主要采用生物学检测、电 镜检测、血清学检测和分子生物学检测等方法。例如:三 抗夹心酶联免疫吸附法(three antibodies sandwichELISA TAS-ELISA)检测建兰花叶病毒(CymMV)、双抗 夹心酶联免疫吸附法(double antibodies sandwich-ELISA DAS-ELISA)检测齿兰环斑病毒(ORSV);或用抗建兰花 叶病毒(CymMV)的单克隆抗体,建立检测蝴蝶兰病样 的免疫斑点法(dot-ELISA)和组织印迹法(tissue blotELISA)
6.
苗的生长培养
较大的兰花个体才便于移栽,新形成的小苗必须移入较大的培养 容器内,生长到 一定大小时才能移栽,一般是将1cm的幼苗转移 到壮苗培养基上培养到10cm米高,方可移栽。
兰花组织培养完整版本

❖ 2. 清热凉血,养阴润肺,治干咳久嗽, 肺咯血。
❖ 3. 疏肝解郁,调和气血,治头晕目弦, 神经衰弱。
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生物学特性
❖ 1.热带兰不同属的兰花对温度要求不同,分 高温型、稍高温型、低温型三种类型。
❖ 2.地生兰比附生兰要求更多的水分,春夏要 求水分充足。
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外植体(培养部位)
种类
新芽芽尖 休眠芽
茎的隐芽
特点
成功率高,但分离技术高 成活率一般,分离技术简单, 易污染, 难分离,成活率同休眠芽
花梗
繁殖效率差,成本高
兰属植物的组织培养以茎尖为最
常用的材料。 精品课件
采取茎尖
❖ 茎尖是分生组织最为活跃的生长点。 ❖ 选择健壮植株,将外层的叶和鞘叶剥去,把
❖ 同样,再行分割;重新培养。在几个月之内, 就会获得大量的原球体。
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分化培养
❖ 把切割的原球体放在液体培养基中, 放在旋转培养床上进行旋转培养。
❖ 当其小块组织稍为长大后,转接在分 化的培养基上,让它分化根和芽。
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试管苗移植
❖ 当原球体组织分化根和芽,逐渐长大之后, 就成为幼小植株。
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兰 花 欣 赏
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兰 花 欣 赏
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兰花花语
兰花的花语:淡泊,高雅 。 兰花的品种有很多,据不完全统计, 全世界有2万多个兰花的品种,其中比 较出名的有蝴蝶兰、兰花、蕙兰等。 其实,它们各自有各自的花语,但是, 兰花总的花语就是淡泊,高雅
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兰花
❖ 兰花属兰科,是单子叶植物,为多年生草本,亦叫 胡姬花。由于地生兰大部分品种原产中国,因此兰 花又称中国兰,绍兴是兰花的故乡。
兰花组培实验报告

兰花组培实验报告1. 实验目的通过组织培养技术,实现兰花的无性繁殖,加速繁殖速度,提高兰花的经济价值。
2. 实验材料与方法2.1 材料- 真兰属兰花种苗- 高葡萄糖培养基- 植物生长调节剂- 消毒酒精、消毒器具2.2 方法1. 准备工作台和培养瓶,对工作台和培养瓶进行消毒处理。
2. 从健康的兰花种苗上剪取茎秆,长度约为2-3厘米。
3. 将茎秆表皮剥去,取内部的茎骨,切成1-2毫米长的组织块。
4. 将组织块置于消毒的高葡萄糖培养基上,加入适量植物生长调节剂。
5. 将培养瓶密封并置于暗处,温度控制在25-28摄氏度,光照强度为2000-3000勒克斯。
6. 观察培养过程,通常在3-4周后,组织块开始呈现出小苗的形态。
7. 将小苗转移到含有较低濃度植物生长调节剂的培养基上,继续培养。
3. 实验结果与分析经过3个月的培养,成功培育出大量的兰花幼苗。
观察发现,这些幼苗生长良好,根系发达,叶片翠绿。
与传统的兰花繁殖方法相比,组织培养技术显著地加快了兰花的繁殖速度。
利用组织培养技术可以同时繁殖多个兰花品种,加大了兰花生产的规模。
4. 实验总结与展望本次实验通过兰花的组织培养技术,成功实现了兰花的无性繁殖。
组织培养技术具有繁殖速度快、突破品种限制、容易获得大批量无病毒种苗等优势。
未来,可以进一步研究优化培养基的配方,进一步提高兰花幼苗的成活率和生长速度。
此外,也可以尝试引入基因工程技术,通过基因转化的方式培育抗病虫害、提高花期持久性等优良特性的兰花品种。
5. 参考文献[1] 王明. 组织培养技术在兰花生产中的应用[J]. 浙江农业科学, 2006(4):79-80.[2] 谢丽. 兰花组织培养技术的研究进展[J]. 南兰科技, 2012(6): 42-43.。
兰花组培(1)

春兰组织培养春兰是地生兰常见的原种,多产于温带,主要分布在中国,是中国的特产。
以江苏、浙江所产春兰为贵,福建、广东、四川、云南、安徽、江西、甘肃、台湾等地亦有出产。
兰花是中国的名花之一,有悠久的栽培历史,多进行盆栽,作为室内观赏用,开花时有特别幽雅的香气,花期2到4月,为室内布置的佳品,其根、叶、花均可入药。
1植物名称春兰(大富贵)2材料带1-2个叶原基的茎原锥(中间部位侧芽成活率也高),茎尖适用于复轴生长类型的兰花3培养条件(1)茎原锥诱导培养基:1/2MS+6-BA 3.0mg/L+NAA0.5mg/L(2)丛生芽诱导及增殖培养基:MS+NAA 0.2mg/L +6-BA2.0 +椰汁100g/L,(3)壮苗培养基:1/2MS培养基+6-BA 0.5+NAA0.05+活性炭2g/L+椰汁100g/L(4)生根培养基:3g/l花宝3号+IBA0.5g/L+2g/l活性炭以上培养基,蔗糖浓度(1),(2),(3)为2.0%,(4)为5.0%,琼脂7.0g/L,PH 5.3,培养温度(26±2)℃,连续光照12h/d,光照度为2000lx。
4生长与分化情况4.1 原球茎诱导培养将大约3cm长且生长健壮的幼芽从母株上采下,自来水冲洗1h,去掉外部叶片,先用75%酒精消毒30s,再用零点0.1%升汞溶液,消毒10min,无菌水冲洗6到8次。
用消毒滤纸吸干表面水分,接种到培养基(1)中。
4.2 丛生芽诱导培养与增殖培养:将获得的原球茎转接入新鲜培养基(2)中培养,20d时由原球茎上长出绿色丛生芽,将从生芽转入新鲜培养基(2)中继续培养,30d为一个继代增殖周期。
4.3 幼苗的生长与生根将丛生芽接到新鲜培养基(3)中,丛生芽逐渐长大成苗,将其切割成单个苗接入培养基(4)中进行生根培养。
最佳切割方式为掰开。
4.4 炼苗与移栽移栽时特别注意要提前将瓶盖打开。
让组培苗适应一下外界的环境,两天后再将小苗取出,洗净根部琼脂,载入湿润,但拧不出水的水苔中,不需盖膜保湿,保持环境温度20到25摄氏度即可成活率达90%,待新根长出后再浇水。
国兰的组织培养技术

FORESTRY AND ECOLOGY >花美湖南国兰的组织培养技术香独具四清(气清、色清、神清、韵清),具有高洁、清雅的特点。
兰科植物多数生长在温暖、湿润、通风、排水良好、有散射阳光的环境。
中国是兰属分布中心之一,已知的兰属植物有31种,占全球兰属的一半以上,以地生兰为主。
国兰是兰属中观赏价值较高的地生兰,其品种十分丰富,多达上千种,包括春兰、蕙兰、建兰、墨兰、寒兰等。
在20世纪以前,中国兰花主要是靠无性繁殖和到原产地采集野生种植物来供应市场。
目前我国产兰山区的兰花资源受到很大破坏,容易到达的地方兰花基本绝迹,只有在人迹罕到之处的深山才有零星分布。
兰花的繁殖可分为无性繁殖和有性繁殖两类。
无性繁殖又称营养繁殖,包括分株繁殖、扦插繁殖等传统然条件下萌发率极低。
兰花种子以随采收随播种为好。
兰花种子的播种繁殖可分为有菌播种法和无菌播种法两种。
有菌播种法是指兰花种子在自然环境中与兰菌共生也称共生萌发。
真菌能促进种子的萌发,是由于菌丝为种子内的胚和基质构建了一个通道,菌丝吸收营养输送给种子,促进了种子的糖异生及营养物质的积累。
无菌播种法是利用组织培养的方法,为兰花种子提供所需要的营养和适宜的环境,促使其萌发的一种方法。
大部分兰花种子可通过无菌萌发方式发芽,在特定培养基上种子萌发生长。
兰花的组织培养始于20世纪60年代。
1960年, 法国人莫雷尔就利用大花蕙兰的茎尖,将其分生组织诱导形成原球茎并分化成植株,为实现兰花生产的工厂化奠定了基础。
我国在兰花组织培养方面起步较晚,但发展快,不少研究者都有研究组织培养,取得了很多成果。
目前常用组织培养方法批量生产小苗,特别是热带兰花的组织培养快速繁殖比较成功。
植物组织培养技术的应用和推广对其快速繁殖、品种复壮、加快优良品种的培育、挽救珍稀濒危种类等方面起到了重要作用,对国兰的快速繁殖和资源保存均具有重要意义。
下面介绍一下国兰的组织培养技术:外植体的处理。
一般而言,凡是生长健壮、具有活性的细胞组织都可以作为外植体。
兰花组织培养(课堂PPT)

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2)将震荡器或是试管中的花梗取出,置入无菌水中,摇晃瓶身, 可重覆此一动作2~3次,但需取出花梗,置入?有无菌水的新瓶中, 藉此洗净漂白水,洗净后,以镊子取出花梗,以酒精浓度75%的酒 精棉花擦拭花梗,以梗芽生长点向下,酒精棉花擦拭由上而下单一 方向擦拭,切勿以来回的方式擦拭梗芽生长点。
使用花梗生长点来诱发出新芽体,待新芽体诱发出后,将其切
下,移植至含有激素等药物的培养基瓶中,由于移植后的芽体受到 药物的刺激,造成新的芽体从旧芽体被大量的诱发出来,也会有从 被诱发出来的新芽体再配诱发芽体出来,当这些芽体数量多到需要 移植时,就需要进行 母瓶移植至子瓶的操作,由于这些芽体都是相 连的,移植时需以刀子将相连的芽体一个一个切分开来种植, 所以, 也有人将其称为切片苗。
观赏植物 组织培养之兰花
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1
一、兰花组织培养常用于: 1、无性系快速繁殖; 2、茎尖培养脱毒; 3、培育新品种; 4、种质资源的保存; 5、次生代谢产物的生产。。
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2
二、常见组织培养的兰花种类
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3
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三、兰花工业
兰科(Orchidaceae)是单子叶植物中最大的一个科,约有 450个属20000余种,在世界各地均有分布,特别是热带、 亚热带的一些国家和地区。兰花花色鲜艳,形态各异,珍 奇名贵,品位幽雅,价格昂贵,备受人们的喜爱。传统的 兰花栽培方法主要靠分株繁殖,繁殖速度慢。
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• 贮藏和运输困难,易带病毒,严重阻碍了在世界范围内的 流通。用兰花的种子也可以进行繁殖,但发芽率及低,仅 5%左右,很难满足生产需要。组织培养用于兰花的快繁 已取得了快速进展。从20世界60年代开始用茎尖培养方 法繁殖兰花,到70年代就基本解决了兰属组织培养快速 繁殖的关键技术,并很快发展成为从20世界60年代开始 用茎尖培养方法繁殖兰花,到70年代就基本解决了兰属 组织培养快速繁殖的关键技术,并很快发展成为现代化兰 花工业。目前已有进70个属数百种兰花可用组织培养方 法进行繁殖,兰花生产工厂也分布在世界各地。
兰花的组织培养

兰花的组织培养张婷婷20081070175摘要: 对兰花的组织培养进行了综述。
着重阐述了兰花组织培养中组织培养程序、外植体的选择、培养基与激素的选择、培养方式和培养条件的研究进展情况。
关键词: 兰花; 组织培养; 外植体; 培养基兰科(Orchidaceae) 是有花植物中最大的一个科, 约有800 属, 25 000~30 000 种, 广泛分布于全球各地。
兰花是整个兰科植物的总称, 常见的有春兰、蕙兰、建兰、蝴蝶兰、石斛、卡特兰, 文心等, 其花具有极高的欣赏价值和经济价值。
有些种类如天麻等则具有极高的药用价值。
兰花的组织培养始于20世纪60 年代。
Morel[1]采用大花蕙兰的茎尖, 在含有细胞分裂素的KC 培养基上进行培养, 茎尖分生组织膨大形成原球茎, 并分化出根和叶, 首次获得兰花无病毒小植株。
目前大约已有60 余属数百种兰花可以用组织培养的方法进行繁殖。
1 组织培养程序与外植体选择种子、胚形态建成途径用于兰花离体繁殖的外植体材料很多, 通常选择有新芽、幼叶、茎尖等。
茎尖是最早用于兰花快速繁殖的外植体。
大花蕙兰(Cymbidium) 、嘉德丽亚兰(Cattleya) 、石斛兰(Dendrobim) 蝴蝶兰( Phalaeanopsis) 、文心兰(Oncidium) 等首先在茎尖培养中取得成功[2]。
侧芽的应用也很广泛, 一般认为带1~2 个叶原基的茎原椎成活率高, 中间部位侧芽成活率及生长率较高。
但因为有的兰花只生一茎,摘取茎尖就有可能丧失母株, 因此, 人们在更大范围内寻找外植体。
用叶片作外植体可以减轻或避免对母株的伤害。
大多数以叶片为外植体的成功报道是取试管苗的幼叶为培养材料, 从成熟植株上取幼叶为外植体培养成功的报道不多。
有研究指出: 蝴蝶兰试管苗幼叶原球茎发生率可达90%, 而成熟叶对诱导反应极弱[。
这可能是由于成熟植物组织向培养基中释放高浓度的抑制生长物质, 严重影响兰花组织的存活。
兰花组织培养

结语:
目前蝴蝶兰组培快繁大多以植物幼嫩部分为外植体 ,而 采用成苗的器官或组织诱导脱化分化的研究很少、难 度很大 。
现今关于蝴蝶兰的组培快繁和栽培生理的研究较多 ,有 关新品种的选育研究很少 。 我国栽培的蝴蝶兰新品种主要依靠从国外引进 ,市场上 多为陈旧品种。 兰花的组培有很重要的现实意义
兰花幼叶比老叶的诱导率高、叶中部比叶顶和叶基部 的诱导率高,叶片不切割比切割的诱导率高,诱导培养条 件为培养温度25℃、光强500 lx ,每天光照 16h。 黑 暗或低温(20℃ )不能诱导原球茎。
研究认为6 - BA是决定叶片原球茎发生的主要因子,无 附加 6 - BA 则诱导不出原球茎;6 - BA浓度为1~3 mg/ L 时叶片原球茎诱导率低,叶片上出现的原球茎颗 粒少,但个体比较大;随着6 - BA浓度的升高,原球茎诱 导率也升高,但个体较小,其中以6 - BA 5mg/ L 的诱 导效果为佳,浓度太高容易出现玻璃化现象导致原球茎 变褐死亡。
多 ,萌发越快 ,生长越好。
蝴蝶兰无菌播种培养的培养条件一般为温度22~28 ℃,光照强度1 000~3 000 lx ,每天光照10~18 h。
(2)培养基和激素要求: 采用合适的培养基是蝴蝶兰种子萌发的关键 ,一般MS 培养基即可使种子萌发 ,但萌发所需的时间、萌发率及 小苗长势不同。不同的蝴蝶兰品种对培养基的要求也 不同。 培养基中添加适量的椰子汁、蛋白胨、香蕉汁等营养 物质,对蝴蝶兰种子萌发和生长都有明显的促进作用; 添加适量活性炭可防止褐变,对幼苗成长有利,但对种子 萌发无明显影响。
不定芽增殖研究
通过蝴蝶兰的茎尖、幼苗等外植体直接诱导不定芽的 产生 ,再切割丛生芽进行繁殖是蝴蝶兰快速繁殖的一种 新途径。不定芽增殖率较低 ,但能保持母株性状 ,操作 也比较容易 ,成功率高。 研究报道在较低温度(24 ℃)和较高浓度 6 - BA 中蝴 蝶兰花梗侧芽能诱导产生花葶 ,将花葶切片成 1~2 mm 后接种在 MS +NAA 0. 5 mg/ L + 6 - BA 5 mg/ L 培养基上可诱导不定芽 ,培养基添加的糖浓度 以 15 g/ L 为宜。
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• 初代培养 • 无菌处理
• 继代培养(增殖培养)
壮苗培养
生根培养
炼苗(移栽驯化)
组培中可能出现的问题
• 污染
• 变异
• 玻璃化
• 褐化
• 黄化
蝴 蝶 兰 组 织 培 养
蝴蝶兰花梗生长点组织培养
使用花梗生长点来诱发出新芽体,待新芽体诱发出后,将其切 下,移植至含有激素等药物的培养基瓶中,由于移植后的芽体受到 药物的刺激,造成新的芽体从旧芽体被大量的诱发出来,也会有从 被诱发出来的新芽体再配诱发芽体出来,当这些芽体数量多到需要 移植时,就需要进行 母瓶移植至子瓶的操作,由于这些芽体都是相 连的,移植时需以刀子将相连的芽体一个一个切分开来种植, 所以, 也有人将其称为切片苗。
接种实验
一、接种准备工作 1、超净工作台开紫外灯照射10-20min送风 2、外植体消毒(继代培养采用已建立的无菌培
养物作为材料) 3、工具消毒 二、接种操作 1、用消毒工具、器皿,切取铁皮石斛幼茎段
2cm 2、接种环烧红,沾一下培养基 3、镊取茎段插于培养基中
• 茎段各的时诱期导时的间培在5养~1条1天件之间
IBA
BA
NAA
土豆汁
香蕉汁 IAA
生根培养基的设计 生根培养基
1/2MS+NAA0.2~0.5mg/L+香蕉汁20%+活性炭2.0%【pH值5.2~5.6】
取MS母液: IV25ml,5ml,5ml,5ml, 5ml; 激素母液: NAA2~5ml
蔗糖:30g 琼脂:6.8g 香蕉汁:200ml 活性炭:20g
继代培养基的设计 增殖培养基
MS+BA0.5ml+NAA0.2+土豆汁10%~20% 【pH值5.2~5.6】
取MS母液: IV50ml,5ml,5ml,5ml, 5ml; 激素母液: BA5ml,NAA2ml
蔗糖:30g 琼脂:6.8g 土豆汁150ml
增殖培养将建立的无菌系中的小苗转入增殖培养基中进行增殖 培养。增殖培养基以MS为基本培养基,添加不同浓度的生长 调节剂BA、NAA、IAA、IBA及土豆汁和香蕉汁等附加物。
铁皮石斛的组织培养技术路线 外植体 培养基
丛生芽
生根发育
完整植株
初代培养基的设计 诱导培养基
MS+BA1.0mg/L+NAA0.5mg/L+蔗糖3%+琼脂6.8%【pH值5.2~5.6】
MS母液: I-V50ml,5ml,5ml,5ml 5ml。 激素母液:
BA10ml,NAA5ml
蔗糖:30g 琼脂:6.8g
1)将蝴蝶兰的花梗由植株上剪下,如果已开花的部份可以剪下?弃, 留下未开花的节,再将花梗裁剪适当长度,再将包覆在梗节生长点 外的苞片,小心的剥除,勿伤及生长点,置入超音波震荡器中,以 稀释的漂白水溶液消毒。如无震荡器时,可置入装有稀释过的漂白 水溶液的试管中,手动的大力摇晃试管,也可达到消毒的目的。
将切面为45度端插入培养基中
塞子消毒后塞住瓶口 瓶口处再以酒精灯消毒,覆盖上铝箔纸避免感染
成功长出新株体
消毒不彻底瓶内发霉
铁皮石斛的组织培养
铁皮石斛,为兰科多年生附生草本植物。生于海拔 达1600米的山地半阴湿的岩石上,喜温暖湿润气 候和半阴半阳的环境,不耐寒。一般均能耐- 5℃的低温。石斛可分为黄草、金钗、马鞭等数 十种,铁皮石斛为石斛之极品,它因表皮呈铁绿 色而得名。
生根培养将丛生芽无菌操作切下单株放在 生根培养基中于适宜条件下培养,约1~2 周后即生根,以长成完整植株。
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外植体的选择
优选1年生铁皮石斛植株上生长健壮的茎段
1 接种小芽苗多易于在苗基部形成丛生芽。 2 苗的高度为1~2cm时,丛生芽增殖倍数最高数。 3 生长发育健壮苗优先
观赏植物 组织培养之兰花
一、兰花组织培养常用于: 1、无性系快速繁殖; 2、茎尖培养脱毒; 3、培育新品种; 4、种质资源的保存; 5、次生代谢产物的生产。。
二、常见组织培养的兰花种类
三、兰花工业
兰科(Orchidaceae)是单子叶植物中最大的一个科,约有 450个属20000余种,在世界各地均有分布,特别是热带、 亚热带的一些国家和地区。兰花花色鲜艳,形态各异,珍 奇名贵,品位幽雅,价格昂贵,备受人们的喜爱。传统的 兰花栽培方法主要靠分株繁殖,繁殖速度慢。
外植体的处理
Text 1
摘去叶片和 膜质叶鞘, 剪成约2cm 长带节的小 段。
Text 2
用洗洁剂 清洗后置 流水下冲 20~30 min。
Text 3
在超净工作台上 用75%的酒精消 30s0.1%HgCl2 灭菌5min后,用 无菌水冲洗5~6 次,放入垫有干 无菌滤纸的培养 皿中,以吸去多 余水分,茎段两 端各切 0.2~0.3cm。
兰花组培的外植体
• 种子
• 茎尖
• 茎段
• 叶片
•根
兰花组培的途径
• 原球茎ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ径
种子萌发时先是胚的膨大,种皮破裂,40天时肉眼可见浅 黄色的原胚呈球状,称为原球茎.。兰花茎尖等外植体在 组培中也可诱导产生原球茎,并且原球茎还可以切割成 若干小块,分别形成新的若干原球茎丛。
兰花的组织培养过程
• 贮藏和运输困难,易带病毒,严重阻碍了在世界范围内的 流通。用兰花的种子也可以进行繁殖,但发芽率及低,仅 5%左右,很难满足生产需要。组织培养用于兰花的快繁 已取得了快速进展。从20世界60年代开始用茎尖培养方 法繁殖兰花,到70年代就基本解决了兰属组织培养快速繁 殖的关键技术,并很快发展成为从20世界60年代开始用 茎尖培养方法繁殖兰花,到70年代就基本解决了兰属组织 培养快速繁殖的关键技术,并很快发展成为现代化兰花工 业。目前已有进70个属数百种兰花可用组织培养方法进行 繁殖,兰花生产工厂也分布在世界各地。
2)将震荡器或是试管中的花梗取出,置入无菌水中,摇晃瓶身, 可重覆此一动作2~3次,但需取出花梗,置入?有无菌水的新瓶中, 藉此洗净漂白水,洗净后,以镊子取出花梗,以酒精浓度75%的酒 精棉花擦拭花梗,以梗芽生长点向下,酒精棉花擦拭由上而下单一 方向擦拭,切勿以来回的方式擦拭梗芽生长点。
(3)将花梗两端切除 芽尖端切90度另一端则呈45度斜切
一般来说,以花梗生长点来进行组织培养,分生数量约在20棵 以上,称之为花梗苗,若是以花梗生长点来进行组织培养,分生数 量在20棵以上,就称为分生苗。而花梗苗与分生苗这两者它们都是 属于无性繁殖。在理论上,遗传的特性与原植株的特性是一样的, 但是却因为培养基的比例调配或是药物的刺激,常常会发生整批分 生的植株 在形态上与原植株不同的情况。 花梗生长点组织培养具体操作: