鳕鱼皮胶原蛋白肽铜螯合物的制备条件
鳕鱼皮胶原蛋白酶解液的制备及抗氧化研究

221 总抗氧化 能力 试 验 。 .. 总抗 氧 化能力 测 定原 理 : 机体 中有 许 多抗氧 化物 质 , 能使 F”还原 成 F“ , 者 可 以与 啡 e e 后
安徽农业科学 , u a o A hi g . c 2 1 , ( 4 :12 ,14 J r l f nu A r Si 0 1 3 3 )2 3 8 23 4 on i . 9
责任编辑
李菲菲
责任校对
况玲玲
鳕 鱼皮 胶原 蛋 白酶解液 的 制备及 抗 氧化 研 究
刘 春娥, 刘峰, 李刚杰, 姚旭昌, 李广经 中 农 大 烟 研 院山 烟 26) (国 业 学 台 究 ,东 台 67 40
a t xdn c vt rsac yu igtekt to .『 eut h f c o ahfco nteezmoyi o ecd矗 hsi a y rlss ni ia t t i eerh b s imeh d R sl]T eef t f c t o n y ls ft o s knw sh d yi o ai y n h e e a r h s h o
c s n nes d r i dt c ni aif edvl m n ote e noi n l i ],l t yp v e esi t cbs rh ee p et fh watx at uo u ed h e f i s t o o n i d .
Ke y wor En y ds z me;Co kn;Colg n p pi d si l e e t a de;An o iain i f xd t o
鱼皮胶原蛋白工艺20130413

鱼皮胶原蛋白生产工艺(20130413修改版)1、清洗分拣:到货新鲜鱼皮,如为冷冻鱼皮,则在槽车内加入纯化水充分解冻,手工去掉掺杂在鱼皮中的杂质,碎肉,鱼骨等杂质,使用pH为8—9的NaCO3(没有可以使用NaOH代替)浸泡10—15min,即拣出转入纯化水中浸泡并手工清洗,洗液使用纯化水配制,再次去掉掺杂在鱼皮中的杂质,碎肉,鱼骨等。
2、洗涤:经1步处理的鱼皮,使用纯化水清洗至pH7—7.5。
3、投料:将清洗后的鱼皮投料至水解罐,投料用水为纯化水,料水比保持在1:1.2至1:1.5。
4、水解:使用夹套升温至100摄氏度,并保持20—30min,注意不得使用直通蒸汽,考虑到物料在升温初期流动性差,升温前期升温速度宜慢,控制罐底层与顶层物料温差小于30℃,当罐内物料已可以随搅拌轴充分旋转后,加快升温速度。
温度升温过程中随时探查罐底是否有糊锅情况发生。
如在升温过程中罐内鱼皮已经破碎为小片,且大块的鱼皮达到揉捏即碎,毫无韧性的状态,通知技术部取样并考虑提前终止水解。
5、酶解:使用真空或循环水系统降温至55-60摄氏度,在pH7.5—8.0条件下(调节前取样检测pH,并询问技术部进行pH调节要求),加入0.05%的2#号酶进行水解,水解至无肉眼可见鱼肉鱼皮(鱼鳞不计)即终止,酶解时长控制在2h以内,酶解时如果pH不低于6.0则不需要调节pH值。
6、灭活:酶解结束后即升温至90摄氏度灭活20min。
7、粗滤:使用HCl调节pH至6.0—6.5后(调节前取样检测pH,并询问技术部进行pH调节要求),添加按料液固形物含量0.5%--1%的白土进入板框过滤间进行一次过滤,过滤后的料渣运至冷库保存。
8、精滤:进行一次过滤后的料液,并添加按料液固形物含量0.5%--1%的白土,0.2—0.3%的活性碳,在60℃以上搅拌1h,同样调节pH6.0—6.5(调节前取样检测pH,并询问技术部进行pH调节要求),进行二次板框过滤操作。
鳕鱼皮复合肽螯合钙的制备及抗氧化活性

我国鳕鱼年加工量40~50 万t,其生产过程产 生大量下脚料鱼皮、鱼骨及其附着鱼肉,过去主 要作为饲料甚至直接丢弃。其中鳕鱼皮约占加工 量的7%~8%,目前利用仍处于初级阶段,如将 其加工为动物饲料等 [1] 。鳕鱼皮干物质中50%以 上为胶原蛋白 [2] ,本研究利用木瓜蛋白酶与风味 酶组合成的复合酶对鳕鱼皮蛋白进行酶解,制得 酶解液,提高其生理效价,并在一定条件下加入
Preparation and antioxidant activity evaluation of cod skin peptides chelated calcium
HUANG Wei, DENG Shang-gui, TANG Yan, LI Shu-fang, KONG Qiao-xiang
食品科技
2012年 第 37卷 第 3期 FOOD SCIENCE AND TECHNOLOGY
食品开发
鳕鱼皮复合肽螯合钙的制备及 抗氧化活性研究
黄 薇,邓尚贵,唐 艳,李淑芳,孔巧香 (浙江海洋学院,舟山 316000)
摘要:利用木瓜蛋白酶与风味酶组合成的复合酶对鳕鱼皮蛋白进行酶解,制得酶解液,以氯化 钙为钙源,与多肽酶解液反应制备多肽螯合钙,并对其抗氧化性进行了研究。结果表明,制备 多肽螯合钙的最佳条件是:氯化钙与多肽的质量比为0.3:3,pH值为7.0,反应温度为25 ℃,反 应时间为20 min,在此条件下钙离子的螯合率为58.85%,产物对羟自由基(·OH)和超氧阴离子 自由基(O2-·)均有较强的清除作用。 关键词:多肽;螯合;抗氧化 中图分类号:TS 254.9 文献标志码:A 文章编号:1005-9989(2012)03- 0143-04
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食品开发
食品科技
胶原蛋白肽的制备

胶原蛋白肽的制备胶原蛋白肽是一种重要的蛋白质,它在人体内扮演着十分重要的角色,包括维持皮肤的弹性、保持关节的健康以及促进肌肉的生长等。
胶原蛋白肽的制备十分重要,可以通过不同的方法来获取。
一、从动物皮肤或骨骼中提取胶原蛋白是由动物的皮肤、骨骼和软骨中提取的一种蛋白质,因此从这些组织中提取胶原蛋白是一种常见且较为传统的制备方法。
将动物的皮肤或骨骼进行清洁和处理,然后通过酸、碱或酶的方法来进行提取。
将提取得到的胶原蛋白进行过滤、浓缩和纯化,最终得到胶原蛋白肽。
二、使用发酵技术利用微生物进行发酵生产胶原蛋白肽是一种现代化的制备方法。
选取适当的微生物菌株,并将其培养并发酵。
在发酵过程中,微生物会产生出具有胶原酶活性的酶类物质,这些物质可以有效地降解动物组织中的胶原蛋白,从而获得胶原蛋白肽。
值得注意的是,这一方法可以避免传统提取方法中的一些繁琐步骤,并且具有更高的产量和更好的纯度。
三、化学合成法胶原蛋白肽也可以通过化学合成法来制备。
这种方法主要是利用合成化学的原理和技术,逐步将氨基酸单元进行连接,最终构建出胶原蛋白的肽链。
化学合成法可以根据需要精确地控制肽链的长度和序列,因此具有灵活性和可定制性。
由于胶原蛋白的分子结构较为复杂,因此化学合成法的应用范围较窄。
不论采用哪种方法来制备胶原蛋白肽,都需要在制备过程中要注重一些关键的环节,以确保获得高质量和纯度的产品。
选取原料应当具有高质量和良好的原始资源,如选用新鲜皮肤或骨骼残留;在提取或生产过程中要严格控制温度、pH值和反应时间等关键参数,以保证反应过程的稳定和有效性;在提取得到的胶原蛋白肽进行加工处理时,需要采用适宜的技术和设备,如超滤、离心和凝胶层析等,以获得高纯度的胶原蛋白肽产品。
胶原蛋白肽的制备方法虽然多样,但在实际应用中应根据胶原蛋白肽的用途和特点来选择合适的制备方法。
对于用于化妆品和保健品的胶原蛋白肽,通常要求产品的纯度和活性较高,因此可以优先选择化学合成法或微生物发酵法来制备;而对于用于医药和生物医学领域的胶原蛋白肽,通常要求产品的结构和活性与人体内天然胶原蛋白相似,因此可以优先选择从动物组织中提取的方法。
深海真鳕鱼皮胶原蛋白

胶原蛋白的来源
• 猪皮 、 牛皮等哺乳动物的皮中 • 鱼皮、 鱼鳞
胶原蛋白研究前景
• 在我国水产系列肽的研究还不够深入,以鱼皮胶 原蛋白为原料制备活性胶原肽的工作基本上未开 展。 • 不同原料来源活性肽制品的特性、提取工艺、分 子量和生物需求量与其营养和生理作用之间的关 系,仍然是目前国内外水产品高值化利用研究与 开发的热点。 • 目前国际市场上已有包括胶原肽在内的多种肽类 产品,主要应用于医药、保健食品和美容化妆品 中
• 含量为2‰的硫酸溶液预处理鱼皮可以明显降低 灰分,且用量较少,可避免造成废酸污染。
• 酶解法提取胶原蛋白最适PH 确定
PH 灰分(%)、 5.5 1.12 6.0 0.97 6.5 0.63 7.0 0.64
蛋白含量(g/100ml)
0.98
1.07
1.25
1.27
• 酶解法提取胶原蛋白,控制PH6.5,酶活性较高, 蛋白产率高,且产品的灰分少。
• 量取20粉储备液,每份均为100ml,每五份 一组,分别控制不同温度,时间,PH以及 活性炭用量的条件下进行脱色反应。 • 吸附结束后用纸板过滤除碳,澄清滤液在 420nm处测定吸光度,比较其值大小,选 择合适的时间、温度、PH以及活性炭用量 比。
结果
• 预处理鱼皮硫酸浓度的确定
硫酸含量(‰) 灰分(%) 1 1.07 2 0.74 3 0.77 4 0.73 5 0.76
胶原蛋白的功能
• 在化妆品方面,由于胶原蛋白具有高度的 可溶性、亲水性、乳化性等,可用来生产 美容护肤品。 • 在食品方面,由于胶原蛋白能使人体内的 血管和神经保持韧性和弹性、增加头发的 亮泽,对人体抗衰老和美容有特殊的功效。 • 胶原蛋白具有良好的凝胶性、增稠性、乳 化性及水和性,可作为食品、化妆品的添 加剂,医用代血浆、人工皮肤、放射治疗 肿瘤的辅助剂,导管动脉栓塞术中的栓塞 剂,止血剂,胶囊剂,纳米粒子的载体等。
胶原蛋白肽的制备

胶原蛋白肽的制备胶原蛋白肽是由胶原蛋白分子水解而成的短肽,具有较好的生物活性和生物可利用性。
其制备方法主要包括水解法、酶解法、光化学法和加热法等。
以下是关于胶原蛋白肽的制备方法的详细介绍。
水解法是一种常用的胶原蛋白肽制备方法。
该方法的步骤包括原料准备、酶解反应、酶解停止和胶原蛋白肽的提取。
需要准备好胶原蛋白的原料,如动物骨骼、皮肤或鱼鳞等。
然后,将原料进行预处理,包括去除杂质和清洗等。
接下来,将预处理后的原料与合适的酶进行酶解反应,一般常用的酶有胃蛋白酶、粘附素和溶菌酶等。
在酶解反应中,可以通过控制酶解时间和酶解温度来调节胶原蛋白的酶解程度。
酶解反应结束后,需要进行酶解的停止,一般通过加入酶抑制剂或调节反应条件来达到目的。
通过离心、紫外吸收等方法,将胶原蛋白肽从反应液中提取出来。
酶解法是另一种常用的胶原蛋白肽制备方法。
该方法利用特定的酶,如胃蛋白酶、胶原酶、胶原蛋白酶和胶原三肽酶等,对胶原蛋白进行酶解。
酶解反应的条件和步骤与水解法类似,但在酶的选择上有所不同。
酶解法制备的胶原蛋白肽通常具有较高的纯度和生物活性,但酶解过程相对较长,需要较长的反应时间。
加热法是一种简单易行的胶原蛋白肽制备方法。
该方法通过加热胶原蛋白原料,使其发生水解反应,从而得到胶原蛋白肽。
加热法制备的胶原蛋白肽通常具有较低的纯度和生物活性,但操作简便,设备要求低,因此在一些实际应用中被广泛采用。
胶原蛋白肽的制备主要包括水解法、酶解法、光化学法和加热法等。
不同的制备方法各有优缺点,选择合适的制备方法需要考虑实际应用的需求和经济可行性。
随着科技的不断发展,相信胶原蛋白肽的制备方法也会不断完善和创新。
热水法抽提鳕鱼皮胶原蛋白条件的响应面分析

热水法抽提鳕鱼皮胶原蛋白条件的响应面分析赵睿;王晓丹;祖国仁;赵长新【摘要】The cod's skin was soaked by acid-base to wipe off the fat and hybrid protein and to make the skin puffing sufficiently, and then extracted with hot water to investigate the influence of pH,temperature and hydrolysis time on collagen productivity. The best collagen extraction condition through response surface methodology was pH 5.0, temperature 42 ℃ and hydrolysis time 25.72 h.The extraction efficiency was 83.75%.%以鳕鱼皮为原料,先用酸碱浸泡鱼皮,去除脂肪和杂蛋白,并使鱼皮充分膨胀.再利用热水抽提法,以胶原蛋白的产率为主要指标,考察pH、温度,水解时间的变化对指标的影响,并考察这些因素对指标的交互影响.利用响应面法优化得出的胶原蛋白提取最佳工艺条件是pH 5.0,温度为42℃,提取时间为25.72 h.在最优条件下胶原蛋白的提取率为83.75%.【期刊名称】《大连工业大学学报》【年(卷),期】2011(030)002【总页数】3页(P98-100)【关键词】热水抽提;鳕鱼皮胶原蛋白;响应面分析【作者】赵睿;王晓丹;祖国仁;赵长新【作者单位】大连工业大学,生物工程学院,辽宁,大连,116034;大连工业大学,生物工程学院,辽宁,大连,116034;大连工业大学,生物工程学院,辽宁,大连,116034;大连工业大学,生物工程学院,辽宁,大连,116034【正文语种】中文【中图分类】TS254.1;Q5120 引言胶原蛋白是动物体最重要的蛋白质之一,是结缔组织极重要的结构蛋白质[1]。
鳕鱼皮复合肽的制备工艺研究

第4期文章编号:1008-830X(2011)05-0401-04鳕鱼皮复合肽的制备工艺研究黄薇,邓尚贵,唐艳,李淑芳,孔巧香(浙江海洋学院食品与药学学院,浙江舟山316000)摘要:采用木瓜蛋白酶和风味酶构成的复合酶对鳕鱼皮蛋白进行水解,通过单因素和正交试验确定复合酶水解的最佳条件为:木瓜蛋白酶和风味酶复合比为3:1,加酶量为40000U/g ,水解温度45℃,料液比为1:2,水解pH 为6.5,水解时间为4.5h 。
最佳条件下鳕鱼皮蛋白水解度可达22.45%。
关键词:鳕鱼皮;复合酶;多肽中图分类号:S912文献标识码:APreparation Conditions of Code Skin Peptidesby Compound EnzymeHUANG Wei,DENG Shang-gui,TANG Yan,et al(Food and Pharmacy School of Zhengjiang Ocean University,Zhoushan316000,China )Abstract:Based on the orthogonal experiment and the single factor experiment,the preparation of code skin peptides by compound enzyme of papain and flavorase was stuied.The results showed that the DH reached 22.45%under the optimum conditions.With the ratio of papain and flavorase at 3:1,enzyme dosage 40000U/g,hydrolysis temperature 45℃,the ratio of solid to liquid at 1:2,pH 6.5and time 4.5h.Key words:code skin;compound enzyme;peptides 鳕鱼Gadous macrocephaius 是海洋深水鱼,为底层冷水性群聚鱼类,在我国主要产于黄海和东海北部,是我国北方沿海出产的海洋经济鱼种之一,一直作为生产鱼片、鱼块及风味鱼糕等的原料[1]。
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鳕鱼皮胶原蛋白肽铜螯合物的制备条件陈晓刚;陈忻【摘要】为提高鳕鱼皮的附加值,采用正交试验法探讨鳕鱼皮胶原蛋白肽与硫酸铜螯合反应条件,制备鳕鱼皮胶原蛋白肽铜。
结果表明:制备鳕鱼皮胶原蛋白肽螯合铜的最佳条件是胶原蛋白肽与硫酸铜的质量比为3.5∶1,pH 7.0,反应温度50℃,反应时间40 min,该条件下铜离子的螯合率为34.35%。
%The preparation conditions of copper chelate from collagen peptide of cod skin were optimized by the orthogonal design to improve addition value of cod skin.The copper chelation rate from collagen peptide of cod skin under the optimum preparation conditions of 3.5:1 of collagenpeptide/copper sulfate ratio,pH 7.0,50℃ and for 40 min can re ach 34.35%.【期刊名称】《贵州农业科学》【年(卷),期】2015(000)001【总页数】5页(P154-158)【关键词】鳕鱼皮;胶原蛋白肽;铜螯合物;制备条件【作者】陈晓刚;陈忻【作者单位】佛山科学技术学院理学院化学与化工系,广东佛山 528000;佛山科学技术学院理学院化学与化工系,广东佛山 528000【正文语种】中文【中图分类】S986.5;TS254铜是动物体所必需的微量元素之一,在动物体内参与血红蛋白的合成和某些氧化酶的合成与激活。
铜的缺乏会影响动物对铁的利用,从而产生贫血[1]。
铜是饲养动物必需的微量元素,有重要的营养生理功能,同时对动物的免疫系统及抗氧化应激也有强烈影响。
但不同铜源的生物利用效率不同[2]。
铜元素的总利用率较低,但其促进幼小动物生长作用明显,故饲料中铜元素超量添加的情况比较普遍,从而造成动物粪便中铜排泄量高,污染环境以及资源浪费等问题[3]。
因此,寻找一种新型的铜源,促进动物的生长,减少资源的浪费,是人们当前关注的重点。
传统观点认为,蛋白质是一类种族特异性很强的大分子,蛋白质实质上就是氨基酸,蛋白质被消化成游离氨基酸后才能被吸收利用。
但早在1921年Boegland就提出了小肽转运的可能性,由于人们受传统蛋白质消化吸收理论的影响,对小肽完整吸收的观点难以接受。
Newey等[4]在肠道静脉中检测到Gly-Gly的存在,首先提出肽可以被完全转运的确切证据。
Hara等[5]指出,蛋白质在消化道中的消化终产物大部分是小肽,且小肽能完整地通过肠粘膜细胞而进入体循环,随后小肽的I型和Ⅱ型载体分别被克隆。
随着研究的不断深入,小肽能被完整吸收的观点逐渐被人们认识和利用。
目前,在新型的铜源研究上主要采用氨基酸螯合铜离子。
如张小燕[6]和李亚萍[7]以蛋白粉为复合氨基酸源对复合氨基酸铜螯合物的合成工艺条件进行了初步的探讨;王永秋等[8]以L-天门冬氨酸为原料,合成了L-天门冬氨酸螯合铜,运用正交设计试验对影响L-天门冬氨酸螯合铜反应的条件进行研究;梁柏林等[9]以鸡羽毛为原料,用微波法合成了复合氨基酸铜,在微波功率400 W配位比3∶1条件下反应30 min,得到的复合氨基酸螯合率为93.8%;林娜妹等[10]以甘氨酸为原料,与乙酸铜进行室温固相反应得到水合甘氨酸螯合物,所得产物螯合率为98.27%。
但较少见肽螯合铜离子的报道。
小肽能以完整形式被机体吸收进入循环系统,从而被组织利用合成蛋白质或直接成为生理活性物质。
小肽不仅能被小肠粘膜吸收利用,且其合成分子蛋白的速度远远高于氨基酸。
从天然蛋白源制得的肽-铜离子螯合物可以作为食品添加剂、化妆品添加剂、动物饲料和有机肥料等产品应用到工业化生产中,与一些金属离子补充剂比较,无毒副作用,具有更优良的生物学效价,有很大的商业价值[11]。
目前,影响铜离子与肽进行螯合反应的因素有物料的质量比、pH、温度和反应时间等,不同的螯合工艺所得螯合产物的螯合率和理化性质有所差异[12]。
鳕鱼(Gadous macrocephalus)是大型冷水性重要经济鱼,贵食用鱼。
近年来随着我国贸易的发展,大量鳕鱼被加工成冷冻鱼片、鱼段、块冻鱼排出口,加工过程中产生的下脚料鳕鱼皮占加工量的7%~8%,而鳕鱼皮干物质中有胶原蛋白50%以上,目前在处理方面还处于初级阶段[13-15]。
为提高鳕鱼皮的利用率,试验采用正交试验法探讨鳕鱼皮胶原蛋白肽螯合铜的制备工艺,分析胶原蛋白肽与硫酸铜的质量比、pH值、温度等因素对铜螯合物产率影响的变化规律,为鳕鱼皮胶原蛋白肽铜螯合工艺条件研究提供参考,进一步提高鳕鱼皮的高附加值利用,减少环境污染,获得良好的经济效益与社会效益,促进海洋水产品深加工产业的发展。
1.1 材料与仪器试材:鳕鱼皮胶原蛋白肽,由中国科学院海洋生物资源可持续利用重点实验室提供。
试剂:硫酸铜(分析纯,广州化学试剂厂),1-(2-吡啶偶氮)-2-萘酚(PAN)(分析纯,天津市福晨化学试剂厂,EDTA(分析纯,汕头市化学试剂厂),无水乙醇(分析纯,天津市永大化学试剂有限公司),盐酸(分析纯,广州市花红化工厂),氢氧化钠(分析纯,天津市大茂化学试剂厂)。
仪器:85-2控温磁力搅拌器(江苏医疗仪器厂),KA-100型台式离心机(上海安亭科学仪器厂),HH-2数显恒温水浴锅(金坛市富华仪器有限公司),DELTA320精密pH计(梅特勒-托利多仪器厂),FA2004N电子天平(上海精密科学仪器有限公司),SHZ-82A恒温水浴加热装置(金坛市富华仪器有限公司),722-分光光度计(上海棱光技术有限公司),60目筛网(浙江省上虞市道墟通用纱筛厂)。
1.2 鳕鱼皮胶原蛋白肽铜螯合物的制备鳕鱼皮胶原蛋白肽→溶解→搅拌调节pH→按比例加入铜盐→控制温度、时间→进行螯合→浓缩→无水乙醇提取,析出沉淀→沉淀静置→抽滤→水蒸气干燥→胶原蛋白肽铜螯合物称取一定量的鳕鱼皮胶原蛋白肽和硫酸铜,置于烧杯中,加入100 mL的蒸馏水,充分混合溶解,进行水浴加热;充分反应后,加适量无水乙醇,抽滤,滤渣于100℃水蒸气下烘干,用研钵研磨产物,过60目筛,称重。
用EDTA络合滴定法测定螯合态铜元素的含量。
1.3 溶液的配制EDTA溶液的配制:称取EDTA 3.722 4 g,用热水溶解,稀释定容至500 mL,放置24~48 h后备用。
0.2%PAN指示剂溶液:将0.2 g PAN[1-(2-吡啶偶氮)-2-萘酚],溶于乙醇,用乙醇稀释定容至100 mL。
1.4 鳕鱼皮胶原蛋白肽铜螯合物制备的单因素试验1.4.1 最适pH的选择称取8 g鳕鱼皮胶原蛋白肽粉末与2 g的硫酸铜粉末,固定反应温度50℃,反应30 min,控制pH 1~12,设定每一个pH为一个反应控制单元,每个单元反应结束后,于最大吸收波长下测吸光度。
1.4.2 反应温度称取8 g鳕鱼皮胶原蛋白肽粉末与2 g的硫酸铜粉末,固定反应时间30 min和pH 7,控制温度分别为20℃、30℃、40℃、50℃、60℃、70℃和80℃,反应结束后,在最大吸收波长下测定吸光度。
1.4.3 反应时间称取8 g鳕鱼皮胶原蛋白肽粉末与2 g的硫酸铜粉末,固定反应温度50℃和pH 7,控制反应时间从10 min开始,每隔10 min设定一个反应单元。
每个单元反应结束后,在最大吸收波长下测定吸光度。
1.4.4 鳕鱼皮胶原蛋白肽和硫酸铜质量比称取2 g的硫酸铜粉末,分别按照质量比1∶4,1∶3,1∶2,1∶1,2∶1,3∶1,4∶1称取鳕鱼皮胶原蛋白肽粉末,固定反应温度50℃,反应时间30 min和pH 7,每一个质量比为一个反应单元,每个单元反应结束后,在最大吸收波长下测定产物的吸光度。
1.5 鳕鱼皮铜螯合物制备的正交试验在单因素试验结果的基础上,以铜离子的螯合率作为试验评价的首要指标,以产物的吸光度作为试验评价的次要指标,以反应的pH、反应物的质量比、反应温度、反应时间为考察因素(表1),每个因素4水平,以L16(44)正交表进行试验。
1.6 鳕鱼皮胶原蛋白肽铜螯合物最大吸收波长的确定[16]称取0.1 g的鳕鱼皮胶原蛋白肽铜螯合物,溶于10 mL的蒸馏水中。
采用紫外可见分光光度法,在可见紫外光区400~680 nm扫描,找出最大吸收波长,测量肽铜螯合物的最大吸收波长。
1.7 鳕鱼皮胶原蛋白肽铜螯合物得率的测定[17]准确称取0.30 g鳌合物粉末于250 mL锥形瓶中,加入50 mL水,滴加2~3滴PAN指示剂,用0.02 mol/L EDTA标准溶液滴定,溶液颜色由紫红变为淡黄色即为滴定终点。
铜离子螯合率计算:螯合率螯合率螯合率式中,C为标准EDTA溶液的浓度,mol/L;V为滴定螯合态微量元素所消耗的EDTA溶液体积mL;M为硫酸铜的摩尔质量,g/mol;m为反应物硫酸铜的质量,g。
2.1 鳕鱼皮胶原蛋白肽铜螯合物的最大吸收波长由图1可知,鳕鱼皮胶原蛋白肽铜螯合物的最大吸收波长约为620 nm,反应过程中产物最大吸收波长变化不大,故试验选取620 nm为最大吸收波长。
2.2 不同因素对鳕鱼皮胶原蛋白肽铜螯合物的影响2.2.1 pH 从图2可知,当pH为6.0~8.0时,曲线出现转折点,由此反映在pH 6.0~8.0时螯合反应速度最快。
螯合反应在pH较低的酸性条件下,氢离子与金属离子争夺供电子基团,不利于鳕鱼皮胶原蛋白铜螯合物的形成;在pH值较高的碱性条件下,羟基与供电子基团争夺金属离子而形成氢氧化物沉淀,试验结果与文献[6]描述一致。
因此,鳕鱼皮鳕鱼皮胶原蛋白肽与铜螯合反应的pH宜在6.0~8.0。
2.2.2 反应温度由图2看出,反应温度在50~70℃,螯合反应的效果较好。
这是因为鳕鱼皮胶原蛋白肽与金属离子的螯合反应为吸热反应。
理论上,反应温度越高对反应越有利,但若反应温度太高,反应时间过短将导致反应不彻底,且温度太高容易破坏蛋白肽及其螯合物;若反应温度太低,则螯合反应速度较慢,螯合率较低[18]。
2.2.3 反应时间由图2看出,时间变化对鳕鱼皮胶原蛋白铜螯合反应的影响不如温度和pH明显,表明螯合反应的速度较快。
同时反应时间在30~50 min的吸光度变化不大,因此,反应时间维持在30~50 min的效果较好。
2.2.4 鳕鱼皮胶原蛋白肽和硫酸铜质量比从图2可看出,随着鳕鱼皮胶原蛋白肽质量的增大,螯合率不断增大,但当鳕鱼皮胶原蛋白肽与硫酸铜的质量比为3∶1~4∶1时,螯合率的变化缓慢,相差不大。