实验动物的捉拿和给药方法

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药理学动物实验基本方法

药理学动物实验基本方法

右手拿注射器, 针尖的斜面朝 上,将针 头从远心端插 入血管
回抽有血即可
注射,拔针后 用棉球止血
豚鼠可用足 背静脉注射
实验动物的 给药.MPG
二、实验动物的采血
1 尾尖采血
眼眶静脉丛采血
2
断头采血 腹主动腹脉主动采脉血采血 心脏采血 静脉采血
3 4 5 6
1
尾尖采血
方法:固定动物并露出鼠尾,将尾部在45℃的温水中 浸泡数分钟(或以二甲苯棉球涂擦),使尾部血管扩 张。将鼠尾擦干,用锐器切去尾尖0.3~0.5cm,让血 液滴入盛器或直接以血红蛋白吸管吸取。 对象:大、小鼠 特点:小量采血,可以多次采血。
药理学动物实验基本方法
药学院药理学科组
Contents
1 实验动物的捉持与给药 2 实验动物的采血 3 实验动物的编号和分组 4 实验动物的麻醉
一、捉持与给 药
小鼠 大鼠 豚鼠 家兔 犬
•小鼠的捉持
1、用右手拇指 和食指捏住小鼠 尾巴中部将小鼠 提起,放在饲养 合的面罩上。
用左手拇指和 食指迅速、准 确地捏住小鼠 的两耳后及颈 背部的皮肤, 将小鼠提起。
笼或大小鼠固定 器的孔拉出鼠尾 巴
用左手捏住鼠 尾巴中下部, 用75%
酒精棉球反 复擦拭尾部
大鼠亦可用 舌下静脉注

注射时,以左 手拇指和中指 捏住鼠尾两侧, 用食指从下面 托起尾,
右手持4号针 头的注射器, 使针头与
静脉平行 (小于30度角)
•静脉注射给药——犬
前肢皮下头静脉 或后肢小隐静脉 注射 。
用右手食指将 针栓慢慢往下 压,将注射器 中的药液灌入 动物的胃中。
•灌胃给药——兔
将兔放进固 定架
内,灌胃者用左 手拇指和中指挤 压兔两颊,将下 颌挤开使兔被动 张口。

实验一实验动物的捉拿和给药方法

实验一实验动物的捉拿和给药方法

药学 基础兽医
医学 临床兽医
兽医药理学是一门实验性学科
以试验为基础,通过实验熟悉药物的作用、作用原理及应用。
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2
兽医药理学实验安排
授课老 师
郝海红
周别
6 7
实验内容
实验动物给药方法;常用药药制剂的调制 药物的配伍禁忌;药物的反射作用
程古月 8 9
水合氯醛的麻醉作用及氯丙嗪的麻醉增强作用 尼可刹米对呼吸的兴奋作用
兽医药理学实验
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1
兽医药理学的性质和任务:
兽医药理学运用生理学、生物化学、微生物学和免疫学等基础理论, 阐明药物的作用原理、主要适应症(indication)和禁忌症 (contraindication),为临床合理用药提供理论基础。
药理学是一门桥梁学科
理论基础: 生理学 生物化学 病理学 微生物学 免疫学等
尾部有四条静脉很清楚, 用四号细针头,选出较粗静脉注入。
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15
兔子的捉拿及给药方法
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16
兔子的捉拿
捉拿:右手把两耳拿在手心,并抓住颈后部皮肤, 提起家兔,然后用左手托住臀部。
固定:手术时,可将家兔固定在兔实验台上,四肢固定, 门 齿用细绳栓住,固定在实验台的铁柱上。
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17
为防止药液进入血管,在注射药液之前,
应回抽针栓,如无回血,则可给药;
注射完毕后,用手轻轻按摩注射部位,帮
助扩散。
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20
实验动物处理
➢ 小鼠处死(防鼠患):
一手按头,一手拉尾,咔嚓一声。
➢ 家兔处死: 空气针
试验后安排
➢ 班长安排人将动物尸体送兽医院焚烧池 ➢ 各小组清理自己的台面 ➢ 班长安排人打扫卫生

药理学实验指导

药理学实验指导

药理学实验指导(供自学助考班用)实验一药理学实验基础知识与常用动物捉拿、给药【目的】1、学习药理学实验基础知识;2、掌握药理学实验常用动物捉拿、给药方法。

【器材】1ml、5ml、20ml注射器,大、小鼠灌胃针头,4号、6号注射针头,250ml烧杯、鼠笼(或铁丝笼),天平秤、砝码。

【药品】0.9%生理盐水。

【动物】小白鼠、大鼠、家兔。

【内容】一、实验动物的捉拿方法1、蛙和蟾蜍左手握持蛙或蟾蜍,食指和中指夹住左前肢,拇指压住右前肢;右手将双下肢拉直,左手无名指及小指将其压住而固定。

此法用于淋巴囊注射。

毁脑和毁脊髓则用左手食指和中指夹持蛙或蟾蜍的头部,拇指和无名指小指握持双下肢,右手持刺针进行操作。

2、小白鼠可采取双手法和单手法两种形式。

双手法:右手提起鼠尾,放在鼠笼盖或其他粗糙面上,向后方轻拉,小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。

此时迅速用左手拇指和食指捏住小白鼠颈背部皮肤,并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部,固定于手中。

单手法:小白鼠置于笼盖上,先用左手食指与拇指抓住鼠尾,手掌尺侧及小指夹住尾根部,然后用左手拇指与食指捏住颈部皮肤。

3、大白鼠大白鼠容易激怒咬人,捉持时左手应戴防护手套或用厚布盖住大鼠,先用右手抓住鼠尾,再用左手拇指和食指握住头部,其余手指与手掌握住背部和腹部。

不要用力过大,切勿捏其颈部,以免窒息致死。

4、家兔用左手抓住颈背部皮肤(抓的面积越大,其吃重点越分散)。

将兔提起,以左手托住其臀部,使兔呈坐位。

二、实验动物的给药途径与方法1、小白鼠给药途径与方法灌胃(ig):左手固定小鼠,右手持灌胃器,灌胃针头自口角进入口腔,紧贴上腭插入食道。

如遇阻力,将灌胃针头抽回重插,以防损伤。

常用灌胃量为0.1~0.2ml/10g。

皮下注射(ih):可用腹部、背部、腹股沟的皮下,此处皮肤比较松弛,也可由助手协助。

注药量一般为0.1~0.2ml/10g。

肌肉注射(im):一人抓住小鼠头部皮肤和尾巴,另一人持连4号针头的注射器,将针头刺入后腿外侧肌肉。

实验动物的捉拿和给药方法

实验动物的捉拿和给药方法

实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。

【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1.捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起.置于鼠笼上面或其他粗糙面上,向后拉轻鼠尾,迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤,翻转鼠体,使腹部朝上,然后以无名指及小指压往鼠尾,使小鼠完全固定(实验图1).实验图1 小白鼠的捉拿法2.给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后,使口部向上,将颈部拉直,右手持灌胃器自口角插入口腔,沿上颚轻轻进入食管,如动物安静,呼吸元异常、口唇无紫绀现象,即可注入药液(实验图2).灌胃器0.1一O.25ml/10g。

实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后,右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。

针头刺入不宜太深或太近上腹部,以免刺伤内脏,注射量一般为0.1~O.2 ml/10g 。

(3)皮下注射捉鼠方法同前,右手持注射器,将计头刺人背部皮下注人药液。

注射量一般不超过0.25 ml/10g。

(4)肌内注射由两人合作,一人固定小白鼠后,另一入持注射器,将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液,注射量为每腿不超过0.lml。

(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1.捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢,无名指和小指夹住蛙的两下肢,将蛙固定于手中。

2.给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。

多采用腹囊给药。

由于蛙的皮肤弹性差,被针头刺破后,针眼不易闭合会便药波外溢,故注射针头必须通过一层隔膜,再进人皮下淋巴囊。

如腹囊绐药时,针头应自大腿上端刺人,经过大腿肌层入腹壁肌层.再浅出进人腹壁皮下入腹囊。

注射量每只可达0.25—1.Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1.捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起,以右手托住其臀部,使兔呈坐位姿势。

2.给药方法(1)灌胃两人合作,由一人固定兔身,另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开,并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。

家兔基础实验操作及注意事项总结

家兔基础实验操作及注意事项总结

基本技能操作经验总结(一)家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1.家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门,勿使其受惊,随后手伸入笼内,从头前阻拦其跑动,一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛,慢慢提起家兔,然后用另一只手轻轻托住臀部,尽量使兔处在舒适、放松的状态。

【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔,这样不但会损伤家兔的耳朵,而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。

抓取动物时手法不当,动作过激导致家兔惊吓,产生强烈挣扎而长时间处于激动状态,大脑皮层细胞兴奋阈值增加,肾上腺素的释放,大脑中枢电位频率增高,大脑皮层运动区过度兴奋,导致麻醉效果不佳。

2.家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上,去皮。

将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽,盖上兔笼盖,使兔子呈趴伏状,记录数据。

压住兔笼盖和后座,将兔笼转移到操作台准备实验。

【注意事项】兔笼重量提前去皮;尽量避免头尾不对应;时刻注意压住兔笼盖,避免转移途中兔子挣脱。

3.耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作:穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛,轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张,或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。

穿刺手法:左手食指和中指夹住静脉的近端,拇指绷紧静脉的远端,无名指及小指垫在下面,右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。

若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象,说明针头在血管内。

移动拇指于针头上以固定针头,放开食指和中指,将药液缓慢注入,然后拔出针头,用手压迫针眼片刻。

注:本实验所用麻醉药——乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。

【注意事项】1. 进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段,若穿刺失败,可向近心端前移一段再进行穿刺;2.可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张,便于操作;3.静脉注射必须缓慢(大概每分钟推送5ml ),同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时,应立即停止注射。

在注射麻醉药物时,可先用麻醉药物总量的三分之二,密切观察动物生命体征的变化,若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射,以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡;4.实验动物的固定【实验方法】将动物麻醉后,仰卧位固定于手术台上,颈部伸直,口腔与气管成一直线,保持气管畅通。

实验1实验动物的捉持法和给药法

实验1实验动物的捉持法和给药法

实验1 实验动物的捉持法和给药法一、常用实验动物的捉持法1.蛙和蟾蜍通常以左手握持,用食指和中指夹住左前肢,拇指压住右前肢,右手将下肢拉直,左手用无名指及小指夹住(图1)。

图1 蟾蜍捉持法2.小鼠(1)双手法:右手提鼠尾,放在鼠笼盖或其他粗糙面上,向后方轻拉鼠尾,使小鼠前肢固定在粗糙面上。

迅速用左手拇指和食指捏其双耳间颈背部皮肤,无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部,便可将小鼠牢固捉持(图2)。

图2 小鼠双手捉持法(2)单手法:小鼠置于笼盖上,先用左手食指和拇指抓住鼠尾,后手掌尺侧和小指夹住鼠尾,然后左手拇指与食指捏住颈部皮肤(图3)。

图3 小鼠单手捉持法3. 大鼠大鼠容易激怒咬人,捉持时应戴防护手套。

先用右手抓住鼠尾,再用左手拇指和食指握住头部,其余手指与掌部握住背部和腹部。

注意不要捏其颈部,以防用力过大、过久,窒息死亡。

4.家兔一只手抓住兔颈背部皮肤,将兔轻轻提起,另一只手托住臀部,使兔呈蹲坐姿势(图4)。

切不可用手握持双耳提起兔子。

图4 家兔捉持法5.豚鼠豚鼠性情温和,不咬人,用手轻轻握住身体即可抓起。

6. 猫应戴好防护手套。

轻声呼唤,慢慢将手伸入猫笼,轻抚猫头、颈和背部,一只手抓住颈背部皮肤,另一只手抓住腰背部。

性情凶暴的猫可用布袋或网套捉持,操作中应防其利爪和牙齿伤人。

7. 狗驯服的狗可戴上特制嘴套,用绳带固定于耳后颈部;凶暴的狗可用长柄捕狗夹钳住狗的颈部,然后套上嘴套。

狗嘴也可用绳带固定,操作时先将绳带绕过狗嘴的下颌打结,再绕到颈后部打结,以防绳带滑落。

狗麻醉后四肢固定于手术台上,取下嘴套或绳带,将一金属棒经两侧嘴角,穿过口腔压于舌上,再用绳带绕过金属棒绑缚狗嘴,并固定于手术台上。

应将狗舌拉出口腔,以防窒息。

二、常用实验动物给药法1. 经口给药法此法有口服与灌胃两种方法。

适用于小鼠、大鼠、豚鼠、兔、犬等动物。

口服法可将药物放入饲料或溶于饮水中令动物自由摄取。

若为保证剂量准确,可应用灌胃法。

实验动物的捉拿和给药方法

实验动物的捉拿和给药方法

实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。

【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1.捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起.置于鼠笼上面或其他粗糙面上,向后拉轻鼠尾,迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤,翻转鼠体,使腹部朝上,然后以无名指及小指压往鼠尾,使小鼠完全固定(实验图1).实验图1 小白鼠的捉拿法2.给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后,使口部向上,将颈部拉直,右手持灌胃器自口角插入口腔,沿上颚轻轻进入食管,如动物安静,呼吸元异常、口唇无紫绀现象,即可注入药液(实验图2).灌胃器0.1一O.25ml/10g。

实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后,右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。

针头刺入不宜太深或太近上腹部,以免刺伤内脏,注射量一般为0.1~O.2 ml/10g 。

(3)皮下注射捉鼠方法同前,右手持注射器,将计头刺人背部皮下注人药液。

注射量一般不超过0.25 ml/10g。

(4)肌内注射由两人合作,一人固定小白鼠后,另一入持注射器,将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液,注射量为每腿不超过0.lml。

(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1.捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢,无名指和小指夹住蛙的两下肢,将蛙固定于手中。

2.给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。

多采用腹囊给药。

由于蛙的皮肤弹性差,被针头刺破后,针眼不易闭合会便药波外溢,故注射针头必须通过一层隔膜,再进人皮下淋巴囊。

如腹囊绐药时,针头应自大腿上端刺人,经过大腿肌层入腹壁肌层.再浅出进人腹壁皮下入腹囊。

注射量每只可达0.25—1.Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1.捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起,以右手托住其臀部,使兔呈坐位姿势。

2.给药方法(1)灌胃两人合作,由一人固定兔身,另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开,并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。

药理实验

药理实验

实验一常用动物的捉拿与给药方法【实验目的】1、了解小鼠的饲养方法2、练习并掌握小鼠的捉拿与给药方法【实验材料】1、器材:鼠笼、饮水瓶、大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签2、药品:生理盐水、苦味酸溶液、75%酒精3、动物:小白鼠,20~30g【实验方法】1、捉拿与固定:用右手捉住鼠尾,将其提起置于鼠笼或者粗糙平面上,向后轻拉鼠尾,用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳及颈背部皮肤,将小鼠置于左手掌心,以小指夹住小鼠尾巴即可。

2、给药法⑴灌胃:将小鼠固定,口朝上,颈部拉直,右手持灌胃针,先从口角处插入口腔,再沿上颚轻轻插入食管。

一般给药剂量。

⑵腹腔注射:将小鼠固定,右手持注射器自下腹部一侧刺入皮下后,再刺入腹腔,缓慢注入药物。

一般给药剂量。

⑶皮下注射:两人合作,一人左手抓住小鼠头部,右手拉住小鼠尾巴固定小鼠,另外一人用左手提起皮肤,右手持注射器刺入皮下注入药物。

一般给药剂量为肌肉注射:最好两人合作,一人固定小鼠,另外一人将针头迅速垂直刺入后肢外侧肌肉,回抽无回血即可注入药物,一侧给药剂量为。

⑸静脉注射:一般采用尾静脉注射。

将小鼠固定,使尾巴露出来,在50℃热水中浸泡或者用75%酒精擦拭尾巴,使血管扩张,左手拉住鼠尾,右手持注射器,从鼠尾巴末梢开始进针,注入药液。

一般给药剂量为【心得体会】实验二不同给药途径对药物作用的影响【实验目的】观察不同给药途径对药物作用的影响【实验材料】4、器材:大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签少许5、药品:10%硫酸镁溶液、5%氯化钙溶液、苦味酸溶液6、动物:小鼠,18~22g【实验方法】1、取小鼠3只,称重编号,分别放入大烧杯中,观察小鼠的正常活动,记录半个小时内活动、呼吸、粪便情况。

2、给药:一号小鼠灌胃10%硫酸镁溶液10g二号小鼠肌肉注射10%硫酸镁溶液10g三号小鼠静脉注射10%硫酸镁溶液10g3、观察小鼠的反应及活动,记录半小时内小鼠活动、呼吸及粪便变化。

4、当第三只小鼠出现垂头,俯卧时,立即静脉缓慢注射5%氯化钙溶液,直至恢复站立。

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• 对照原则(Reference)
• 组间对照:阴性对照,阳性对照,同因素不同水平对照; • 自身前后对照
• 重复原则(Repeat)
• 实验动物的选择
• 小白鼠、大白鼠:大量动物的实验,药理毒理学常用动物。 • 豚鼠: 对组胺敏感---抗过敏药、平喘药和抗组胺药的实验; 离体心脏、心房、肠管实验;对结核敏感---抗结核病药实验。 • 家兔: 家兔体温变化敏感---体温实验、热原检查; 脑电生理作用;药物对小肠的作用。 • 狗: 狗是记录血压、呼吸最常用的大动物;胃瘘、肠瘘;慢性毒 性实验
捉住小白鼠的尾巴提起、转几圈,放在鼠笼盖铁纱网上,轻 轻向后拉鼠尾,然后用左手的拇指与食指沿其背部向前抓 住其颈部皮肤,使腹部朝上,左手的无名指及小指压住鼠尾, 使小白鼠完全固定。
小白鼠的给药方法
灌胃给药 ig 腹腔注射 ip 皮下注射 ih 肌内注射 im 尾静脉注射 iv
灌胃法
实验一、 实验动物的捉拿和给药方法
目的和要求 练习对实验动物给药方法的常规操作,为药理及毒理 实验打下基础。
材料 注射器:不同型号和规格的选择;针头向上 灌胃针:2支/组 手套:10只/组 方法 小白鼠的捉拿及给药方法 兔子的捉拿及给药方法
小白鼠的捉拿及给药方法
小白鼠的捉拿
表面消毒药
75%为体积/体积比
C1V1= C2V2 95%乙醇 :70ml 蒸馏水:25ml
95%*70=70%*95
实验二、常用药物制剂的配制
5%(g/ml)碘酊的配制
表面消毒药 5%为质量/体积比

碘片 碘化钾 蒸馏水 95%乙醇加至
5.0g ( 5%(g/ml) ) 2.0g ( 2%(g/ml) ) 20mL 100mL
理论基础: 生理学 生物化学 病理学 微生物学 免疫学等
药学 基础兽医
医学 临床兽医
兽医药理学是一门实验性学科
以试验为基础,通过实验熟悉药物的作用、作用原理及应用。
兽医药理学实验安排
授课老 师
郝海红
周别
6 7
实验内容
实验动物给药方法;常用药药制剂的调制 药物的配伍禁忌;药物的反射作用
程古月 8 9
制法: 取100mL量杯1个,先碘化钾,加水溶解; 后加碘片和乙醇, 搅拌溶解; 最后乙醇定容.
实验前:温故知新 实验准备:提前去兽医院领取实验动物。 实验时:科学、严谨、认真。 避免无端浪费。 注意安全操作:防火、电、中毒、感染及咬伤事故。 污物放入污物桶内集中处理;
• 实验设计基本原则(3R)
• 随机原则(Random)
• 每一实验对象都有同等的机会抽到实验组或对照组中。
助扩散。
实验动物处理
小鼠处死(防鼠患):
一手按头,一手拉尾,咔嚓一声。
家兔处死: 空气针
试验后安排
班长安排人将动物尸体送兽医院焚烧池 各小组清理自己的台面 班长安排人打扫卫生
讨论(作业)
实验动物的捉拿和给药方法 操作过程中的注意事项。
实验二、常用药物制剂的配制
75%乙醇溶液的配制
固定→口部朝上,颈部宜 拉直,但不宜过紧,以免 窒息。
右手持连有胃管的注射器, 小心自口角插入口腔内, 将灌胃管自舌背面沿上颚 轻轻进入食道。
腹腔注射法
部位: 左或右侧下腹部 方法: 将针头刺入皮下,沿皮下向前推进3~5mm,
然后使针头与皮肤呈45°角方向穿入腹腔。 针尖进入腹腔有抵抗消失感,此时可轻推药物。
尾部有四条静脉很清楚, 用四号细针头,选出较粗静脉注入。
兔子的捉拿及给药方法
兔子的捉拿
捉拿:右手把两耳拿在手心,并抓住颈后部皮肤, 提起家兔,然后用左手托住臀部。
固定:手术时,可将家兔固定在兔实验台上,四肢固定, 门 齿用细绳栓住,固定在实验台的铁柱上。
兔子的给药方法
耳缘静脉注射 iv 腹腔注射 ip 皮下注射 ih 肌内注射 im
水合氯醛的麻醉作用及氯丙嗪的麻醉增强作用 尼可刹米对呼吸的兴奋作用
局麻药的表面麻醉作用观察 新斯的明及阿托品对唾液分泌及活体肠管的作用
陈品 10 11
药物作用与溶解度的关系;给药途径对药物作用影响 解热镇痛药对发热家兔体温的影响
谢书宇 12 13
利尿药对家兔的利尿作用观察 盐类泻药的泻下机理分析
兽医药理学实验规则
×
肌内注射法 部位:小鼠臀部外侧肌肉。
皮下注射法 部位:背部皮下 方法:轻轻拉起背部皮肤,将注射针头刺入皮下,
稍稍摆动针头,若容易摆动则表明针尖的位置确定在皮下, 拔针时,轻捏针刺部位片刻,以防药液逸出。
尾静脉注射法
部位:尾静脉注射, 方法:将小白鼠装入固定桶内或反转烧杯内,使其尾巴露出。
兔静脉注射
部位:耳缘静脉。 方法:酒精棉球涂擦耳缘静脉部皮肤,
左手食指放在耳下将兔耳垫起, 并以拇指压耳缘部分, 右手持带有针头的注射器, 尽量从血管远端刺入血管, 注射时针头先刺入皮下, 沿皮下向前推进少许,然后刺入血管。 针头刺入血管后再少向前推进, 轻轻推动针栓,若无阻力即可注药。 注射完毕后,用棉球压住针眼,拔去针头。
兽医药理学实验
任课老师: 陈品老师 彭大鹏老师 郝海红老师 程古月老师
兽医药理学的性质和任务:
兽医药理学运用生理学、生物化学、微生物学和免疫学等基础理论, 阐明药物的作用原理、主要适应症(indication)和禁忌症 (contraindication),为临床合理用药提供理论基础。
药理学是一门桥梁学科
兔皮下注射法
部位:背部皮肤、腹内侧皮肤 方法:用左手拇指及中指将家兔的背部皮肤,
并用食指按压皱褶的一端,使成三角体, 增大皮下空隙,
以右手持注射器,自皱褶下刺入, 松开皱褶将药液注入。
兔肌内注射法
部位:两侧臀肌大腿处 方法:右手持注射器,使注射器与肌肉成60°角
再刺入肌肉中; 为防止药液进入血管,在注射药液之前, 应回抽针栓,如无回血,则可给药; 注射完毕后,用手轻轻按摩注射部位,帮
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