家兔基础实验操作及注意事项总结
兔子注射实验报告
一、实验目的1. 掌握兔子注射的基本操作方法。
2. 了解不同注射部位的特点及注射剂量的计算。
3. 观察兔子注射后的反应，分析注射效果。
二、实验对象实验动物：家兔（体重2.0-3.0kg）三、实验器材1. 注射器：1ml、2ml、5ml2. 针头：不同型号3. 注射针筒4. 酒精棉球5. 消毒棉签6. 纱布7. 生理盐水8. 实验记录表四、实验方法1. 准备工作：将兔子固定在实验台上，用酒精棉球消毒兔子注射部位。
2. 注射部位选择：根据实验目的选择合适的注射部位，如肌肉注射、皮内注射、皮下注射、静脉注射等。
3. 注射剂量计算：根据兔子体重和药物说明书计算注射剂量。
4. 注射操作：a. 肌肉注射：选择肌肉丰满的部位，如大腿内侧或外侧臀部。
将针头垂直刺入肌肉内，轻轻回抽注射器活塞，看有无回血，再将药液缓慢注入。
b. 皮下注射：选择皮肤松弛的部位，如两耳根后面的颈部上方。
将针头刺入皮下，将药液注入皮肤和肌肉之间。
c. 静脉注射：选择兔子耳朵耳廓背面边缘的两条耳静脉的下三分之一处进针。
将针头刺入血管，随即将针头平行送入血管内约1厘米，放开左手食指与中指，此时注射器内应有回血，迅即用拇指，食指与中指将针头牢牢固定，严防针头滑出血管，此时再将药液缓慢推入到血管中。
5. 注射后观察：观察兔子注射后的反应，如活动是否减弱、呼吸是否平稳、是否有异常分泌物等。
五、实验结果与分析1. 注射部位：本次实验选择了肌肉注射、皮下注射和静脉注射三种注射部位。
2. 注射剂量：根据兔子体重和药物说明书计算注射剂量，肌肉注射和皮下注射剂量为0.1ml/kg，静脉注射剂量为0.05ml/kg。
3. 注射效果：a. 肌肉注射：兔子注射后活动减弱，呼吸平稳，无异常分泌物。
b. 皮下注射：兔子注射后活动减弱，呼吸平稳，无异常分泌物。
c. 静脉注射：兔子注射后活动减弱，呼吸平稳，无异常分泌物。
4. 注射反应：兔子注射后均出现不同程度的注射反应，如注射部位出现红肿、疼痛等。
家兔基本手术操作实验报告
竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔基本手术操作实验报告篇一：家兔解剖实验一、实验目的1.通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察，掌握哺乳类躯体轮廓、消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点2.掌握哺乳纲动物的主要特征，理解其进步性特征3.熟练解剖动物的方法二、实验原理将家兔处死是利用静脉注射空气致死：向静脉注射空气后，进入血液形成空气栓，空气栓随血流回流至右心室，然后被送到肺动脉，造成肺栓塞，大面积的肺栓塞使人体不能进行气体交换，发生严重的缺氧和二氧化碳储留，导致猝死。
三、实验器材活家兔、解剖盘、酒精棉球、注射器、镊子、烧杯、手术刀、手术剪、骨钳、止血钳等四、实验步骤1、外形观察，处死家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。
颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。
前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。
尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。
肛门两侧各有一个无毛区，提起此处皮肤，开口，打开皮肤。
取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。
挣扎一会后死亡。
2、打开皮肤润湿腹部中间的毛，小心用剪刀从泄殖孔稍前方剖一横口，向上剪至颈部，用手术刀使皮肤和肌肉分离，将剥下的皮肤向左右尽可能拉开露出腹部。
3、开腹腔：原位观察膈、胰腺、肝脏、各系统观察，肾脏冠切从泄殖孔的切口处沿腹中线同样左右割开腹壁至胸骨剑突处，暴露腹腔。
先观察各器官的自然位置。
可观察到：胰腺：分散附着于（十二指肠）弯曲处的肠系膜上，为粉红色、分布零散而不规则的腺体。
胃：囊状，横卧于膈肌后面，入口称喷门，出口称幽门。
小肠：肠管长而细，分为十二指肠、空肠和回肠三段。
十二指肠呈“u”形，空肠和回肠界限不易区分。
大肠：分为盲肠、结肠和直肠三段。
盲肠为大肠的起始段，肠管最粗大，相当于一个发酵罐，其末端有蚓突，结肠表面有横褶，直肠细长。
膈肌：呈粉色，上面血多有放射状红色细丝肾脏：移开胃后，可在其下观察到两肾，分布于两侧，其前端内缘各有一小的淡黄色扁圆形为肾上腺，由肾门伸出的一条白色细管为输尿管，与肾血管、神经管相伴行，向后通入膀胱的背侧。
家兔内部组织实验报告
一、实验目的1. 观察家兔内部组织结构，了解哺乳动物内脏器官的基本形态和功能。
2. 掌握解剖技术，提高动手操作能力。
3. 加深对哺乳动物内部结构特点的理解。
二、实验原理家兔作为一种常见的实验动物，其内部组织结构具有典型性，通过解剖实验可以了解哺乳动物内脏器官的基本形态和功能。
实验过程中，需要掌握解剖技术，以便准确、安全地获取所需组织。
三、实验器材1. 家兔（实验动物）2. 解剖盘3. 注射器4. 镊子5. 手术刀6. 手术剪7. 纱布8. 生理盐水9. 记录纸及笔四、实验步骤及实验过程1. 家兔解剖（1）将家兔固定在解剖盘上，观察家兔外部形态，了解其头部、颈部、躯干、四肢、尾部等部位的构造。
（2）用手术刀在腹部正中线切开皮肤，剪断肌肉，暴露腹腔。
（3）观察腹腔内脏器官，包括胃、小肠、大肠、肝脏、脾脏、肾脏、生殖器官等。
2. 内部组织观察（1）胃：观察胃的形态、大小、位置等，了解胃壁的层次结构，包括黏膜层、黏膜下层、肌层和浆膜层。
（2）小肠：观察小肠的形态、大小、位置等，了解小肠壁的层次结构，包括黏膜层、黏膜下层、肌层和浆膜层。
（3）大肠：观察大肠的形态、大小、位置等，了解大肠壁的层次结构，包括黏膜层、黏膜下层、肌层和浆膜层。
（4）肝脏：观察肝脏的形态、大小、位置等，了解肝脏的结构特点，包括外被膜、实质、血管、胆管等。
（5）脾脏：观察脾脏的形态、大小、位置等，了解脾脏的结构特点，包括被膜、实质、血管等。
（6）肾脏：观察肾脏的形态、大小、位置等，了解肾脏的结构特点，包括皮质、髓质、肾盂、血管等。
（7）生殖器官：观察雄性生殖器官（睾丸、附睾、输精管、阴茎等）和雌性生殖器官（卵巢、输卵管、子宫、阴道等）的形态、大小、位置等，了解其结构特点。
3. 实验记录（1）记录每个器官的形态、大小、位置等。
（2）描述每个器官的结构特点。
（3）总结家兔内部组织结构的规律。
五、实验结果与分析1. 家兔的内部组织结构具有典型的哺乳动物特征，如胃、小肠、大肠、肝脏、脾脏、肾脏、生殖器官等。
家兔基础实验操作及注意事项总结
基本技能操作经验总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1.家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。
【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。
抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。
2.家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。
将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。
压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。
【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。
3.耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。
穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。
若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。
移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
注：本实验所用麻醉药——乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。
【注意事项】1. 进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；2.可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；3.静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
在注射麻醉药物时，可先用麻醉药物总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射，以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡；4.实验动物的固定【实验方法】将动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部伸直，口腔与气管成一直线，保持气管畅通。
机能实验之家兔手术操作
机能实验之家兔手术操作1．皮肤切开：动物麻醉固定后，在切口沿线的中点两侧，分别用血管钳向两侧夹起皮肤，用手术剪在两血管钳之间的皮肤上剪一小口，将剪刀伸进切口，贴紧并挑起皮肤撑开剪刀以钝性分离皮下组织，然后小心剪开皮肤。
分离下面的组织避免使用剪刀，以免发生出血，尽可能作钝性分离。
2．家兔颈部手术：颈部手术主要包括气管插管、颈动脉插管、颈外静脉插管和分离颈部神经等。
（1）气管插管：先用水湿润局部毛发，再用粗剪刀剪去颈部手术部位兔毛，在麻*醉情况下沿颈部正中线切开皮肤5－7cm，分离皮下组织，于正中线分开肌肉，暴露气管，分离出气管，剔尽周围组织，于气管下穿线备用，在甲状软骨下约l cm处剪一倒“T”型切口，插入气管插管，并用线扎紧，再将余线绕气管插管的分又处再行结扎，以防滑脱。
（2）颈动脉插管：将上述切口边缘的皮肤及其下方的肌肉组织向外侧拉开，即可见在气管两侧纵行的左、右颈总动脉鞘，在鞘内，颈总动脉与颈静脉、颈迷走神经、降压神经伴行在一起。
可先将颈总动脉鞘分离出来，再从鞘内分离出颈总动脉，剔尽周围结缔组织，游离出长3～4cm的颈总动脉，尽可能向远心端游离，在动脉下穿2根线，用其中一根结扎远心端，用动脉夹夹住其近心端，结扎处与动豚夹夹闭间的颈总动脉长度约需3cm。
用眼科镊柄垫在颈总动脉下方，用眼科剪在远心端结扎线的近心侧处的动脉壁上作一斜切口，切口约为管径的一半，然后将准备好的充满肝素溶液的动脉导管（事先在距导管口上方处裹贴一白胶布）由切口向心脏方向插入动脉内。
用已穿好的线扎紧插入导管的血管，并将剩余线平行于导管拉直，与远心端结扎线打一死结，以拉住导管防止其滑脱。
使动脉插管与动脉保持在同一直线上，然后将动脉导管作适当固定。
（3）颈外静脉插管：颈部皮肤切开后，用左手拇指和食指捏住颈部左侧缘皮肤切口，其余三指从皮肤外向上顶起外翻，可清晰的看见位于颈部皮下，胸骨乳突肌外缘的颈外静脉。
沿血管走向，用玻璃分针钝性分离颈外静脉二侧的皮下筋膜，仔细分离3~5cm长，在血管的远心端穿丝线，在靠近锁骨端用动脉夹夹闭颈外静脉的近心端，待血管内血液充盈后用手术线结扎颈外静脉的远心端。
家兔基本手术实验报告
家兔基本手术实验报告家兔基本手术实验报告概述：基本手术对于家兔的健康和生活质量至关重要。
本次实验旨在探讨家兔基本手术的操作过程、术后护理以及手术对家兔的影响。
通过实验，我们希望能够为兽医学领域提供有益的参考和指导。
实验方法：在实验中，我们选取了10只健康的家兔作为研究对象。
首先，我们对这些家兔进行了全面的体检，确保它们适合进行手术。
接下来，我们采用了常见的家兔手术技术，包括腹腔镜手术、去势术和结扎术等。
在手术过程中，我们严格遵循了无菌操作的原则，以确保手术的安全和有效性。
实验结果：通过实验，我们观察到家兔在手术后的恢复过程中表现出了不同的反应。
一些家兔在手术后很快恢复了正常的饮食和活动能力，而另一些家兔则需要更长的时间来适应手术后的变化。
此外，我们还观察到一些家兔在手术后出现了一定程度的疼痛和不适，但随着时间的推移，它们逐渐恢复了正常状态。
术后护理：术后护理对于家兔的康复至关重要。
我们为每只家兔提供了适当的休息环境，并根据需要给予了镇痛药物和抗生素。
此外，我们还密切观察了家兔的饮食和排便情况，确保它们正常恢复。
在术后的几天里，我们给予了家兔额外的关注和照顾，以确保它们的健康和安全。
手术对家兔的影响：通过实验，我们发现手术对家兔的影响是多方面的。
首先，手术可以有效地控制家兔的生育能力，防止过多的繁殖导致的问题。
其次，手术还可以改善家兔的行为和社交性，减少攻击和争斗的行为。
此外，手术还可以预防某些疾病的发生，提高家兔的寿命和生活质量。
伦理考量：在进行实验时，我们始终遵守了伦理原则。
我们确保家兔在手术前和术后都得到了适当的护理和关注。
此外，我们还确保了实验过程中的无痛苦和无痛苦的原则，在手术中使用了适当的麻醉和镇痛药物。
我们尽最大努力减少实验对家兔的不适和伤害。
结论：通过本次实验，我们深入了解了家兔基本手术的操作过程、术后护理以及手术对家兔的影响。
手术对于家兔的健康和生活质量有着积极的影响，但也需要在伦理和道德的框架下进行。
家兔基本手术操作实验报告
竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔基本手术操作实验报告篇一：家兔解剖实验一、实验目的1.通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察，掌握哺乳类躯体轮廓、消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点2.掌握哺乳纲动物的主要特征，理解其进步性特征3.熟练解剖动物的方法二、实验原理将家兔处死是利用静脉注射空气致死：向静脉注射空气后，进入血液形成空气栓，空气栓随血流回流至右心室，然后被送到肺动脉，造成肺栓塞，大面积的肺栓塞使人体不能进行气体交换，发生严重的缺氧和二氧化碳储留，导致猝死。
三、实验器材活家兔、解剖盘、酒精棉球、注射器、镊子、烧杯、手术刀、手术剪、骨钳、止血钳等四、实验步骤1、外形观察，处死家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。
颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。
前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。
尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。
肛门两侧各有一个无毛区，提起此处皮肤，开口，打开皮肤。
取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。
挣扎一会后死亡。
2、打开皮肤润湿腹部中间的毛，小心用剪刀从泄殖孔稍前方剖一横口，向上剪至颈部，用手术刀使皮肤和肌肉分离，将剥下的皮肤向左右尽可能拉开露出腹部。
3、开腹腔：原位观察膈、胰腺、肝脏、各系统观察，肾脏冠切从泄殖孔的切口处沿腹中线同样左右割开腹壁至胸骨剑突处，暴露腹腔。
先观察各器官的自然位置。
可观察到：胰腺：分散附着于（十二指肠）弯曲处的肠系膜上，为粉红色、分布零散而不规则的腺体。
胃：囊状，横卧于膈肌后面，入口称喷门，出口称幽门。
小肠：肠管长而细，分为十二指肠、空肠和回肠三段。
十二指肠呈“u”形，空肠和回肠界限不易区分。
大肠：分为盲肠、结肠和直肠三段。
盲肠为大肠的起始段，肠管最粗大，相当于一个发酵罐，其末端有蚓突，结肠表面有横褶，直肠细长。
膈肌：呈粉色，上面血多有放射状红色细丝肾脏：移开胃后，可在其下观察到两肾，分布于两侧，其前端内缘各有一小的淡黄色扁圆形为肾上腺，由肾门伸出的一条白色细管为输尿管，与肾血管、神经管相伴行，向后通入膀胱的背侧。
机能学实验基本操作实验总结
两次基本技能操作的经验总结一、动物的捉拿注意事项及防护措施1、家兔捉拿时，应一手抓颈部的皮肤，另一手托住兔臀部，呈坐位。
2、捉拿前可以从背部轻轻抚摸，以安抚家兔，切忌捉拿兔子的耳朵。
3、小鼠捉拿时应提起尾巴，后脚将要离地，从背部向颈部推，然后捉住颈部皮肤，捉的深一点，防止小鼠回头。
4、一般情况下戴普通的手套即可，小鼠灌胃时应戴橡胶手套，防止咬伤。
如果不小心被咬，可以去打狂犬疫苗。
二、麻醉（全麻、局麻）注意事项1、全麻，应先称量家兔体重，根据体重计算需要的麻醉剂剂量。
2、找到家兔耳缘静脉，拔下静脉附近兔毛以刺激血管，也可擦涂酒精使静脉更加明显，易于识别。
3、由家兔耳缘静脉远端缓慢注射，注射时观察家兔的状态，反射活动等。
4、由于我们的麻醉药问题，按计算出的剂量给药似乎有点少，手术过程中家兔会剧烈挣扎，所以可以多注射1-2ml。
5、注射麻醉药时，最好有人摁住家兔的头部，防止因为针扎刺激，家兔头部挣扎影响注射，同时也可以防止被家兔咬伤。
6、局麻，实验过程中，密切观察家兔状态，若某一部位手术时家兔出现挣扎反应，应适时适量给予局部麻醉药，直接皮下注射，一边注射一边将针头拔出。
刺激这一部位家兔不再出现反应时可继续手术。
若家兔挣扎剧烈，可以耳缘静脉注射适量全麻麻醉剂。
三、组织分离注意事项1、组织分离时切忌使用剪刀，必要时可用剪刀剪一小口，之后用止血钳分离组织，以减少手术野的出血。
2、组织最好一层一层剥离，可以两人合作一纵一横，用止血钳分离。
3、沿正常组织间隙分离。
这样易于分离，且出血少，视野干净、清楚。
4、肌肉的分离应顺肌纤维方向作钝性分离。
若需要横行切断分离，应在切断处上下端先夹两把血管钳，切断后结扎两断端以防止肌肉中血管出血。
5、神经、血管的分离应顺其平行方向分离。
要求动作轻，柔，细心操作，不可避暴，切忌横向过分拉扯，以防断裂。
四、气管分离注意事项1、游离气管，莫损伤气管周围血管神经。
2、在气管两软骨环之间做T形切口，T形的一竖应在兔头一边。
实验报告_家兔
一、实验目的1. 观察家兔的心脏结构及心脏搏动规律。
2. 学习家兔的呼吸系统构造及呼吸过程。
3. 了解家兔消化系统的组成和消化过程。
4. 掌握家兔循环系统、呼吸系统、消化系统的解剖方法。
二、实验材料与仪器1. 家兔一只（成年、健康、体重约2kg）2. 实验解剖台3. 剪刀、解剖刀、镊子、解剖针、解剖剪等解剖工具4. 生理盐水、纱布、酒精、碘伏等消毒用品5. 气球、注射器、血压计等生理学实验仪器三、实验步骤1. 家兔处死与解剖（1）将家兔置于实验解剖台上，用酒精棉球消毒家兔颈部。
（2）用剪刀沿家兔颈部正中线剪开皮肤，暴露肌肉。
（3）用镊子提起肌肉，用解剖刀沿肌肉与骨骼之间的缝隙切开肌肉，暴露颈椎和胸椎。
（4）用剪刀剪断颈椎和胸椎之间的椎间盘，使家兔身体与头部分离。
（5）将家兔身体翻转，用同样的方法暴露腰椎和尾椎。
（6）剪断腰椎和尾椎之间的椎间盘，使家兔身体与尾部分离。
2. 心脏解剖（1）用解剖剪剪开心脏周围的组织，暴露心脏。
（2）观察心脏的结构，包括心房、心室、瓣膜等。
（3）用解剖刀沿心脏纵轴切开，观察心脏内部结构。
（4）观察心脏搏动规律，记录心率和心律。
3. 呼吸系统解剖（1）剪开心肺之间的胸膜，暴露肺部。
（2）观察肺部的结构，包括肺泡、支气管等。
（3）用解剖剪剪开肺部，观察肺泡的结构。
（4）观察呼吸过程，记录呼吸频率和呼吸深度。
4. 消化系统解剖（1）剪开腹部皮肤，暴露腹部器官。
（2）观察消化系统的组成，包括胃、肠、肝脏等。
（3）剪开胃和肠，观察消化过程。
（4）观察消化器官的形态和功能。
四、实验结果与分析1. 心脏解剖结果：家兔心脏由四个腔室组成，包括左心房、左心室、右心房和右心室。
心房与心室之间有瓣膜，保证血液单向流动。
2. 呼吸系统解剖结果：家兔呼吸系统由鼻腔、气管、支气管和肺组成。
肺泡是气体交换的场所。
3. 消化系统解剖结果：家兔消化系统包括口腔、食管、胃、小肠、大肠、肝脏和胰腺。
消化器官形态和功能各异，共同完成食物的消化和吸收。
兔实验技术操作
一、兔的抓取及保定1.准备的物品、器械：固定器2.简要：（1）徒手抓取（2）保定3.解说操作：3.1徒手抓取用一只手将颈部的被毛和皮肤一起抓住提起，另一只手托住臀部。
（如图1）。
也可一手抓住兔肩胛部的皮肤，另一手托住其臀部并将兔的头部放置于臂弯中，再用前臂支撑兔体。
3.2 保定3.2.1将兔放在操作台上，用一只手抓住颈背部皮肤（包括兔耳），另一只手压住腰部（或后肢）加以保定，可用于肌肉注射、灌胃等操作。
3.2.2 将兔放在操作台上，用左手抓住颈背部皮肤，使兔下半身固定在操作者左臂下方，用右手环抱兔前肢，适用于孕兔灌胃等操作。
如图2。
3.2.3盒式保定法：将兔放入兔保定盒内，盖上盖，使兔头露在盒外，便可进行采血或注射给药等操作。
3.2.4保定板保定：将兔仰卧或俯卧在保定板上，用布带保定，四肢和头部也用布带保定，即可进行心电图检查、注射给药、采血等操作。
4.注意事项4.1 盖兔盒时必须要轻，不能用力压，否则兔脊椎骨很容易骨折，造成下肢瘫痪。
4.2 将家兔放回兔笼时，先将臀部及后肢放入笼内。
4.3 抓取时禁止抓提兔耳。
4.4 抓取要稳、准、柔、快，不可过分用力抓捏腰腹部。
二、兔的采血方法1.准备的物品、器械：注射器、采血管、止血带、酒精棉球、干棉球、保定架等2.简要：耳静脉采血、耳动脉采血、后肢静脉采血、心脏采血3.解说操作3.1耳缘静脉或耳动脉采血3.1.1 将兔保定于保定器内，用酒精棉球擦拭消毒。
3.1.2助手固定兔耳，并压迫耳缘静脉根部，使血管充盈；操作者手持注射器，针头沿耳缘静脉平行刺入血管，慢慢抽取血液。
3.1.3 助手固定兔耳，操作者手持注射器，在耳中央动脉末端，使针头沿血管平行方向刺入动脉，血液即可流入注射器内。
3.1.4 采血完毕后立即用消毒干棉球压迫止血。
3.2后肢静脉采血3.2.1 兔固定于兔保定架上，剪去胫部被毛，股部扎上止血带，使胫外侧皮下静脉充盈。
3.2.2 固定静脉，用左手两指固定好静脉，右手取带有针头的注射器内皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器，表示针头已刺入血管，即可取血。
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家兔基础实验操作及注意事项总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1、家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。
【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。
抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。
2、家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。
将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。
压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。
【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。
3、耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。
穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。
若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。
移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
l 注：本实验所用麻醉药乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。
【注意事项】1、进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；2、可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；3、静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
在注射麻醉药物时，可先用麻醉药物总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射，以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡；4、实验动物的固定【实验方法】将动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部伸直，口腔与气管成一直线，保持气管畅通。
用粗麻绳打类蝴蝶结固定家兔四肢，用棉麻线套住家兔上切牙固定在兔台头端，使家兔四肢和头部伸展并固定。
【注意事项】1、打结最好打利于捆缚的结，避免家兔挣脱。
2、尽量使颈部抻直，避免扭曲。
5、清理兔毛【实验方法】使用弯头兔毛剪剪掉实验部位兔毛。
【注意事项】1、左手捏住要剪的兔毛，方便剪掉后及时清理。
注意不要将兔毛掕起，这样容易剪到皮肤和皮下神经，引起兔子的强烈挣扎。
2、尽量清理干净，并且避免兔毛乱飞，可在废物桶中加水防止兔毛乱飘。
6、组织切开【实验方法】1、组织切开的一般原则 (1)根据实验目的要求确定手术切口的部位和大小。
如肾切除取左背部斜切口，肠切除取腹正中切口。
(2)根据不同部位的切口采用不同的执刀方法，常用的执刀方法有三种，如图1。
【注意事项】(1)切开前，应先将切口部位的皮肤(或其他组织)拉紧，使其平坦紧张而固定。
(2)刀刃与切开的组织垂直，以一次切开为佳。
(3)组织要逐层切开，并以按皮肤纹理或各组织的纤维方向切开为佳。
图1执刀方法和组织切开方法(4)组织的切开处应选择无重要血管及神经横贯的地方，以免将其损伤。
(5)选择切口时，应注意选择易于敷料或导管包扎和固定的部位。
避免术后动物活动时被碰撞、磨擦而脱落。
7、组织分离【实验方法】分离目的在于充分显露深层的组织或血管，便于手术操作。
1、组织分离的一般原则 (1)根据不同部位手术的需要采用不同的分离方法。
常用的分离方法有两种：①用刀或剪作锐性分离，用剪割的方式将组织分离。
该方法常用于致密组织，如皮肤、韧带、筋膜等的分离。
②用止血钳、手指或刀柄等将组织推开或牵拉开的钝性分离。
该法多用于皮下组织、肌肉筋膜间隙等疏松组织的分离。
(2)沿正常组织间隙分离。
这样易于分离，且出血少，视野干净、清楚。
【注意事项】(1)肌肉的分离应顺肌纤维方向作钝性分离。
若需要横行切断分离，应在切断处上下端先夹两把血管钳，切断后结扎两断端以防止肌肉中血管出血。
(2)神经、血管的分离应顺其平行方向分离。
要求动作轻，柔，细心操作，不可避暴，切忌横向过分拉扯，以防断裂。
8、气管内插管【实验操作】气管插管的目的主要是为了辅助呼吸、测定气道压力、通气量以及描记呼吸曲线等。
⑴ 气管的暴露和分离切开皮肤后，对肌肉、气管、血管和神经的分离应用止血钳进行钝性分离。
钝性分离皮下组织，暴露颈部肌肉，分开颈部正中肌群即可看到气管。
在甲状腺下1～1、5cm处，用止血钳将气管后的软组织稍加分离，在气管下穿二条较粗的结扎线，准备结扎固定气管插管之用。
⑵ 气管插管在甲状腺以下约1～2 cm处，用手术剪将气管软骨环剪一倒“T”型切口，剪开气管口径约一半以上，用棉签向肺方向擦净气管内分泌物，然后再向肺方向插入气管插管。
用已穿好的粗线扎紧后，再在插管的侧管上打结，以防插管脱出。
【注意事项】1、切忌粗暴操作，小心勿伤及甲状腺及气管两侧后方的静脉；2、不要在软骨环之间的气管组织切开，因此处血管较多，如仍有出血，可用温湿纱布压拨迫片刻，同时将兔台后部抬高，使兔头位置低下，以防止血液流入气管造成窒息，出血停止后再做插管；3、插管前注意检查气管内有无内分泌物，有的话先清理气管后插管；插管后，若气管内分泌物或血液较多，可用一细塑料管从插管的侧管处将液体吸出。
4、用已穿好的粗线扎紧后，再在插管的侧管上打结，以防插管脱出；5、气管插管的过程中应随时注意观察动物的呼吸变化。
最好隔一段时间放开被夹闭的Y型管软管，避免人为性呼衰。
9、颈总动脉的分离及插管【实验操作】沿胸锁乳突肌前缘分离胸骨舌骨肌与胸骨甲状肌之间的结缔组织，在肌缝下找到呈粉红色较粗血管，用手指触之有搏动感，即为颈总动脉。
分离颈总动脉时应选在距甲状腺以下较远地方开始，防止将甲状腺前动脉切断，用玻璃分针轻轻分离该动脉与神经之间结缔组织，切勿损伤血管和神经。
在分离好的颈总动脉下面穿过两根结扎线，先结扎远心端，再用动脉夹夹闭血管近心端。
于远心端结扎线前用眼科剪呈45角做V型切口，剪开血管管径的1/3～1/2。
将准备就绪的动脉导管插入血管2cm～3cm，用备用线将导管与血管牢固结扎并与远心端结扎线连接扎紧，以防导管滑脱出血管。
取下动脉夹，可见导管中有动脉回血，并随心跳而搏动。
用少许肝素将回血推回血管内，实时观察血压。
【注意事项】1、分离颈总动脉时应选在距甲状腺以下较远地方开始，防止将甲状腺前动脉切断，并且切勿损伤血管和神经。
伴行血管的一束神经包括：迷走神经最粗且明亮；交感神经次之，光泽较暗；最细的是减压神经；2、为了便于动脉插管，颈总动脉应尽量分离得长一些。
一般家兔4cm～5cm，豚鼠和大鼠2c m～3cm；3、结缔组织尽量分离干净，否则插管时容易插到膜内；4、两根结扎线可通过一根线对折穿过动脉下后剪断获得。
远心端结扎线和备用结扎线一定要结扎紧，避免出血；5、动脉夹操作时一定要小心避免磨破动脉，最好将动脉夹深入颈总动脉下于动脉夹中段夹闭血管，以防夹闭不完全；6、插入血管内插管尽量长，此时易于固定。
但是一定不要插到动脉夹夹闭处，因为插管和动脉夹都是硬性材料，两厢触碰易使动脉管破裂；7、喷血时，应迅速找到出血口，并及时夹闭近心端血管，并用棉球清理创面；若还是出血不止，则考虑是否是远心端结扎线未扎紧，这时夹闭远心端；若各种措施都不起效，则可以考虑完全结扎实验侧颈总动脉；8、若是少量出血，则可能只是毛细血管受到损伤，这是可用棉球轻轻压迫创面即可止血。
10、输尿管插管【实验方法】下腹部剪毛，普鲁卡因局麻，在耻骨联合向上沿中线做长约4cm的切口，沿腹白线切开腹膜，暴露出膀胱，并将膀胱翻向体外，在膀胱底部找到并分离两侧输尿管，在输尿管靠近膀胱处用线结扎，略等片刻，待输尿管略充盈后，用眼科剪剪一小口，向肾脏方向插入一根细塑料管，结扎，收集尿液。
【注意事项】1、家兔膀胱分脆弱，分离时应用镊子探查，避免直接用手术刀或剪刀粗暴分离；2、输尿管位置较深，分离和插管时需一人协助拨开肠子和拉扯膀胱，此时需注意用力大小，用力过大时膀胱会因尿液排出而迅速缩小（并不影响实验）；3、如果可以，分离输尿管时避免损伤伴行血管，否则会大出血影响视线；4、输尿管近膀胱处结扎后，可略等片刻，待输尿管略充盈后在剪口插管，会容易很多；5、插管的管子剪口需有一定锐度，但锐度过高易损伤输尿管；插管时，可转动插管，使斜面向下，否则易撕裂输尿管。
11、处死【实验方法】空气栓塞法【注意事项】判断家兔死亡的标准可以是呼吸停止，这是可能生物电还存在波动，可能原因是心脏自律细胞还在活动，但此时心脏功能细胞其实已经停止工作，故可以判定为死亡。
12、其他注意事项1、创面长时间开放时，可撒些生理盐水或用生理盐水浸润的纱布覆盖，以防组织风干；2、切开皮肤前，可少量多点注射局麻，避免家兔因损伤皮神经而剧烈反抗。
13、整体动物体征的观察及应对1、兔耳耷拉，表示家兔饮水不足，这时需及时给家兔补充水分，否则会影响实验结果；2、家兔呼吸急促并伴有鸣声，表示家兔呼吸系统有问题，气管插管时应注意清理气管，并在不需要呼吸频率数据的时段打开Y 型管软管，使呼吸通畅。
时刻注意呼吸频率的变化。
3、当血压降低时，可能是失血过多，此时家兔可能已经休克。