蛋白质的表达纯化
生物医药中的蛋白质表达与纯化
生物医药中的蛋白质表达与纯化蛋白质是生命体中最重要的有机物之一，它们参与了几乎所有的生命相关过程，包括代谢、细胞信号转导、免疫防御等。
因此，在许多生物医药研究领域中，研究蛋白质表达和纯化已经成为当今的热门研究方向之一。
一、蛋白质表达技术蛋白质表达是指在细胞中合成蛋白质的过程，其主要方法是利用表达载体将目标蛋白质基因导入宿主细胞中，使其能够大规模表达出来。
其中最常用的表达系统是大肠杆菌表达系统和哺乳动物细胞表达系统。
1、大肠杆菌表达系统大肠杆菌通常被用作表达外源蛋白质的宿主细胞，因为其细胞生长快速且易于操作。
该表达系统通常利用大肠杆菌基因组的一部分来连接目标蛋白质基因并实现蛋白质表达。
遗憾的是，大肠杆菌常常会形成蛋白质的不溶性体，这是由于你的质量比较大，难以被合适地折叠成稳定的构象。
因此，提取可溶性蛋白质是这一表达系统的主要问题之一。
2、哺乳动物细胞表达系统与大肠杆菌表达系统不同，哺乳动物细胞表达系统可用于表达复杂的蛋白质，如具有复杂糖基化模式的蛋白质。
这种表达系统通常是通过将目标蛋白质基因导入哺乳动物细胞中，使其在细胞内表达目标蛋白质。
二、蛋白质纯化技术蛋白质纯化是指将目标蛋白质从复杂的生物混合物中分离出来的过程。
该过程是一系列分离和纯化步骤的组合，其中包括固定化金属离子亲和层析、凝胶过滤层析和离子交换层析等技术。
1、固定化金属离子亲和层析固定化金属离子亲和层析（IMAC）是目前蛋白质纯化的一种最常用技术。
该技术利用一种含有带有金属离子配体分子的树脂（如Ni2+或Zn2+），并利用这些金属离子与蛋白质中暴露的组氨酸或半胱氨酸结合的特性来实现目标蛋白质的分离纯化。
2、凝胶过滤层析凝胶过滤层析（gel filtration chromatography）也称为大小排除层析，将会把分子根据大小过滤排除，这是一种基于分子大小差异原理的蛋白质纯化技术。
通过大小排除层析，低分子量目标蛋白质可以快速流过呈大小孔隙的树脂颗粒，而高分子量物质则在树脂颗粒中保留更长时间，以实现目标蛋白质与其他分子的分离。
蛋白质的表达纯化
06
蛋白质的表达与纯化的挑战与 展望
高表达量和高纯度蛋白质的获得
表达量
优化基因克隆、宿主菌选择和培养条件，以提高蛋白质的表达量。
操作条件
操作过程中需要注意pH值、离子强度等参数的调节，以适 应不同蛋白质的分离需求。
亲和色谱法
1 2
原理
亲和色谱法利用生物分子之间的特异性亲和力进 行分离，如抗原-抗体、酶-底物等。
常用亲和剂
常用的亲和剂包括酶的抑制剂、免疫球蛋白、生 物素等。
3
操作条件
操作过程中需要注意亲和剂的再生和循环使用， 以提高分离效率。
生物学活性检测
通过生物学实验检测蛋白质的生物学活性，如酶活性、配体结合能 力等。
04
蛋白质的表达与纯化的影响因 素
基因的拷贝数和启动子强度
基因拷贝数
基因的拷贝数越多，蛋白质的表 达量越高。但过高的拷贝数可能 导致细胞死亡或蛋白质表达抑制 。
启动子强度
启动子是RNA聚合酶识别和结合 位点，启动子强度决定了蛋白质 的表达水平。选择合适的启动子 是蛋白质表达的关键。
蛋白质的表达纯化
目 录
• 蛋白质表达系统 • 蛋白质纯化方法 • 蛋白质的表达与纯化流程 • 蛋白质的表达与纯化的影响因素 • 蛋白质的表达与纯化的应用 • 蛋白质的表达与纯化的挑战与展望
01
蛋白质表达系统
原核表达系统
01
02
03
表达量高
原核表达系统如大肠杆菌 表达系统能够高效表达外 源基因，产生大量的重组 蛋白质。
分离纯化蛋白质的方法
分离纯化蛋白质的方法蛋白质是生命体内最基本的分子，它们参与了生命体内的许多重要生物学过程，如代谢、信号转导、免疫防御等。
因此，对蛋白质的研究具有重要的科学意义。
但是，蛋白质在生物体内的含量很少，且与其他成分相混合，因此需要通过分离纯化的方法来获取纯净的蛋白质样品。
本文将介绍几种常用的分离纯化蛋白质的方法。
1. 溶液层析法溶液层析法是一种常用的蛋白质分离纯化方法。
它基于蛋白质在不同的化学性质和结构特征下在固定相中的不同亲和力，通过不同的溶液组成、pH值、离子强度等条件来分离纯化蛋白质。
溶液层析法的操作简单、效果好，可以分离出高纯度的蛋白质。
但是，它需要对分离材料的性质和蛋白质的性质有深入的了解，以便选择合适的分离条件。
此外，溶液层析法需要大量的分离材料和实验室设备，成本较高。
2. 凝胶层析法凝胶层析法是一种基于蛋白质分子大小、形状和电荷等性质的分离纯化方法。
它利用凝胶作为分离材料，通过分子筛效应、凝胶孔道大小和分子电荷等因素来分离不同大小和电荷的蛋白质。
凝胶层析法具有操作简单、分离效果好、成本低等优点。
但是，它需要长时间的分离过程，而且凝胶的孔径大小和材料的性质会影响分离效果。
此外，凝胶层析法只能分离相对较小的蛋白质，对大分子蛋白质的分离效果较差。
3. 电泳法电泳法是一种通过电场作用将不同电荷的蛋白质分离的方法。
它利用电泳移动速度与蛋白质质量和电荷密度之间的关系，将蛋白质分离纯化。
电泳法具有操作简单、分离效果好、成本低等优点。
但是，它需要专业的电泳设备和实验技能，而且对蛋白质的性质和电泳条件有较高的要求。
此外，电泳法只能分离相对较小的蛋白质，对大分子蛋白质的分离效果较差。
4. 亲和层析法亲和层析法是一种基于蛋白质与其配体之间的亲和作用来分离纯化蛋白质的方法。
它利用配体与蛋白质的特异性结合来分离纯化目标蛋白质。
亲和层析法具有分离效果好、选择性高、可重复使用等优点。
但是，它需要高纯度的配体和专业的实验技能，而且对蛋白质的性质和配体的选择有较高的要求。
蛋白表达纯化流程
第一章蛋白表达纯化一、诱导表达分析1) 把测序正确的表达质粒转化到合适的表达宿主菌中并涂布在相应抗性的LB 平板上培养过夜;2) 分别挑两个单克隆于3ml含抗生素的LB培养基中培养过夜;3) 按1%接种过夜培养的菌液于4ml含抗生素LB培养基中37度培养2-3小时;4) 加入终浓度为0.1mM的IPTG诱导表达3个小时左右，取样做蛋白电泳分析目标蛋白的表达情况。
二、蛋白纯化2.1重组蛋白的提取2.1.1 提取缓冲液20 mM Tris-HCl (pH8.0) 或者其他推荐使用的缓冲体系。
如需溶解难溶蛋白或者包涵体还可加入8 M urea 或 6 M guanidine hydrochloride 。
Note: 处理(His)6融合蛋白时可以加入5–50 mM imidazole 以减少上柱时的非特异性吸附。
2.1.2 方法1)发酵液离心收集菌体(at 7 000–8 000 g for 10 minutes or 1 000–1 500 g for 30minutes at +4 °C)。
2)弃去上清液，加入适当的20 mM Tris-HCl (pH8.0)，重悬；3)离心收集菌体同上，弃去上清液，将装有菌体的离心管置于冰中。
4)每ml菌体加入50ul冰冷的提取缓冲液重悬菌体。
5)冰浴中超声裂解菌体(超声2秒，停止6秒)，之后取样进行SDS-PAGE电泳分析。
Note:超声破菌应尽量使用最短的时间，长时间的进行可能会破坏蛋白功能。
还应避免产生泡沫，因为这样会使蛋白变性和导致宿主蛋白与融合蛋白协同纯化。
6)离心使细胞碎片沉降(at 12 000 g for 10 minutes at +4 °C)。
7)小心将上清液移到干净的容器中，并取样进行SDS-PAGE电泳分析。
Note:含有8 M urea的样品可以直接电泳上样，但含有6 M guanidine hydrochloride的样品必须换成8 M urea才可上样。
蛋白质的表达和纯化技术
蛋白质的表达和纯化技术概述蛋白质是生命体内最基本的组成部分之一，它们扮演着各种不同的角色，如催化酶、参与信号转导等。
了解蛋白质的结构和功能，能够帮助科学家研究生命过程和疾病发生的机制。
因此，蛋白质表达和纯化技术是现代生物学研究中的重要环节。
蛋白质表达技术蛋白质表达技术是指将目标蛋白质基因导入到宿主细胞中，使其能够在细胞内大量表达目标蛋白质的过程。
根据目标蛋白质的性质和功能需求，可以选择不同的表达系统，如大肠杆菌、酵母、哺乳动物细胞等。
大肠杆菌是最常用的表达系统之一。
其具有成本低、表达量高等优点，同时易于培养和操作。
但是，大肠杆菌的表达系统在表达复杂蛋白质时存在很多问题，如蛋白毒性、折叠错误等。
因此，针对不同类型的目标蛋白质，需要选择不同的表达系统，并优化其表达条件。
蛋白质纯化技术蛋白质纯化技术是指从混合物中纯化目标蛋白质的过程，包括初级纯化、中级纯化和高级纯化等步骤。
初级纯化包括离心、过滤和电泳等方法，主要是为了去除大分子和杂质。
中级纯化主要使用柱层析和凝胶电泳等技术，分离目标蛋白质和杂质。
最后，高级纯化主要通过高效液相色谱（HPLC）等手段，获得高纯度的目标蛋白质。
在进行蛋白质纯化时，需要考虑目标蛋白质的性质，如分子量、电荷性、亲和力等。
根据这些属性，可以选择合适的纯化方法，并进行优化。
同时，需要注意纯化过程的选择和条件设置，以确保目标蛋白质的活性和稳定性。
结论蛋白质表达和纯化技术对于生物学研究和生物制药等领域具有重要的意义。
在不同的研究领域中，选择合适的表达和纯化技术是确保研究成功的关键之一。
因此，对蛋白质表达和纯化技术的理解和掌握，有助于推动生物科技的发展。
重组蛋白质的表达纯化和结构鉴定
重组蛋白质的表达纯化和结构鉴定在生物医学领域中，重组蛋白质凭借其广泛的应用前景成为了研究热点。
然而，要想获得高纯度的重组蛋白质，并对其结构进行准确的鉴定，需要经历一系列复杂而细致的实验步骤。
本文将从表达、纯化和结构鉴定三个方面介绍重组蛋白质的研究过程。
一、表达重组蛋白质的表达是研究重组蛋白质最初的关键步骤之一。
通常采用大肠杆菌（Escherichia coli）作为表达宿主。
首先，需要将目标基因克隆至表达载体中，确保其与启动子、转录因子等相互配合，并携带一定的标签，如His 标签、GST 标签等。
接着，将修饰好的表达载体转化至大肠杆菌中，采用选择性培养基筛选出目标菌株。
最后，将筛选得到的菌株进行大规模培养，促使目标基因在细胞内表达。
二、纯化获得表达目标蛋白的菌株后，需要将蛋白从细胞中纯化出来。
首先，采用超声波或高压颠破细胞壁，释放出蛋白质。
接着，通过离心等手段将蛋白质与其他细胞组分分离。
此时，可以利用目标蛋白质特异性的亲和层析柱，如镍柱、葡聚糖柱等，吸附目标蛋白质，并通过逆向洗脱等方法，得到高纯度的目标蛋白质。
三、结构鉴定获得纯度较高的重组蛋白质后，需要对其结构进行进一步的鉴定。
常用的结构鉴定方法包括X射线晶体学、核磁共振（NMR）、电子显微镜等。
X射线晶体学是目前应用最广泛的方法，通过将蛋白质结晶并进行X射线衍射实验，得到蛋白质的高分辨率结构。
NMR则通过测量蛋白质中核自旋的相对位置和相互作用关系，获取蛋白质的三维结构信息。
电子显微镜是一种能够获得蛋白质高分辨率结构的技术，主要应用于研究大分子复合物和纤维形态的蛋白质。
除了上述常用技术外，近年来还涌现出一些新的结构鉴定方法，如质谱联用技术、光学显微镜成像、负染电镜等。
这些方法的出现，为蛋白质结构鉴定提供了更多的选择和便利。
由于篇幅所限，本文仅对重组蛋白质的表达、纯化和结构鉴定进行了简要介绍。
事实上，研究重组蛋白质的过程还包括目标基因的设计与合成、蛋白质的功能分析等环节。
常用的蛋白质纯化方法和原理
常用的蛋白质纯化方法和原理蛋白质的纯化是生物化学研究中非常重要的一步，纯化蛋白质可以用于结构解析、功能研究、动态过程研究等各种生物学实验。
常用的蛋白质纯化方法有盐析法、凝胶过滤法、离子交换色谱法、亲和色谱法、逆渗透法和层析法等。
下面将对这些方法的原理和步骤进行详细阐述。
1. 盐析法盐析法是根据蛋白质在溶液中的溶解性随盐浓度的变化而变化的原理进行蛋白质的纯化。
该方法是利用蛋白质在高盐浓度下与水结合能力降低，使其从溶液中沉淀出来。
应用盐析法时，需要先调节溶液的盐浓度使蛋白质溶解，然后逐渐加入盐使其过饱和，蛋白质便会析出。
最后通过离心将蛋白质的沉淀物分离，得到纯化的蛋白质。
2. 凝胶过滤法凝胶过滤法是利用凝胶的pores 来分离蛋白质的一种方法。
凝胶通常是聚丙烯酰胺（也称作Polyacrylamide）或琼脂糖。
研究者将蛋白质样品加入到过滤膜上，较小的蛋白质能够通过pores，较大的分子则被排出。
通过选择不同大小的凝胶孔径，可以根据蛋白质的大小来选择合适数目的过滤膜。
凝胶过滤法需要进行缓冲液体积的连续换流，将蛋白质与其他杂质分离开来。
3. 离子交换色谱法离子交换色谱法是利用蛋白质与离子交换基质之间静电吸引力的不同而分离的方法。
离子交换基质通常是富含正离子或负离子的高分子材料。
在离子交换色谱法中，样品溶液在特定的pH 下流经离子交换基质，带有不同电荷的蛋白质能够与基质发生反应，吸附在基质上。
为了获得纯化蛋白质，需要通过梯度洗脱，逐渐改变缓冲液pH 或离子浓度，使吸附在离子交换基质上的蛋白质逐渐释放出来。
4. 亲和色谱法亲和色谱法是利用蛋白质与特定的配体相互作用特异性进行分离的方法。
配体可以是天然物质，如金属离子、辅酶或抗体，也可以是人工合成的结构。
在亲和色谱法中，样品溶液经过含有配体的固定相，与配体发生特异性相互作用，蛋白质与其它组分分离。
然后可以通过改变某些条件（如pH、温度或离子浓度）来洗脱纯化的蛋白质。
蛋白质表达纯化概述
昆虫表达系统的优缺点
• 1，组蛋白具有完整的生物学功能，如蛋白的正确 折叠、二硫键的搭配
•
2，蛋白翻译后的加工修饰；
•
3，表达水平高，可达总蛋白量的50%；
•
4，可容纳大分子的插入片段；
•
5，能同时表达多个基因。主要缺点是外源蛋
白表达处于极晚期病毒启动子的调控之下，这时
由于病毒感染，细胞开始死亡。
2.3 采用什么培养基进行表达？LB,TB,SOB,SOC等等。 2.4 客户是否有Protocol、essay等参考文献 • 客户是否指定用某种纯化工艺：亲和层析、排阻层析、反向层析、疏水层析、离子交
换 2.5 表达前是否要做小量实验（预表达/预实验/小试）。是否要做表达条件的优化筛选？
如果有，需要做温度、IPTG浓度、诱导OD、抗生素浓度（不常用）、诱导时间中的哪 些优化筛选。 2.3 蛋白纯度要求、浓度要求（蛋白定量方法:分光光度法、旋光光度法等）、蛋白总量 要求。是否要去热源（又叫内毒素，常用于抗原抗体的制备以及药物的筛选。）是否 要去除RNA，是否要去除核酸，是否要去除DNA。 2.4 蛋白活性要求（如果用于抗体的制备可以不需要活性。） 2.6 蛋白WB检测：常用于真核细胞表达检测。
2.1是否需要蛋白标签 GST（常用，增加蛋白溶解性）、His（最常用，用于易表达纯化， 性质稳定的蛋白）、Strep（有I、II两种!!实验方法不同。）、Flag （Flag是一种抗体， 特异性高，表达量相对较低，常用于昆虫、哺乳动物细胞的表达）等
2.2 如果有标签，是在3‘端还是在5’端（或者是蛋白标签在N端还是C端）。需不需要 酶切位点（用于后续纯化中去除标签）。是否要进行基因突变，突变位点在哪里？
• 昆虫表达系统是一类应用广泛的真核表达系统，它具有同大多数高等 真核生物相似的翻译后修饰加工以及转移外源蛋白的能力。昆虫杆状 病毒表达系统是目前国内外十分推崇的真核表达系统。利用杆状病毒 结构基因中多角体蛋白的强启动子构建的表达载体，可使很多真核目 的基因得到有效甚至高水平的表达。它具有真核表达系统的翻译后加 工功能，如二硫键的形成、糖基化及磷酸化等，使重组蛋白在结构和 功能上更接近天然蛋白；其最高表达量可达昆虫细胞蛋白总量的50%； 可表达非常大的外源性基因(一200kD)；具有在同一个感染昆虫细胞 内同时表达多个外源基因的能力；对脊椎动物是安全的。由于病毒多 角体蛋白在病毒总蛋白中的含量非常高，至今已有很多外源基因在此 蛋白的强大启动子作用下获得高效表达。。常用的杆状病毒包括苜蓿 银纹夜蛾核型多角体病毒(AcNPV)和家蚕型多角体病毒(BmNPV)，常 用的宿主细胞则来源于草地夜蛾Sf9细胞，用于表达外源基因的质粒 来源于PUC系列，其含有一个多克隆位点和多角体蛋白启动子。
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1.将红色玻璃夹子底座朝 下、卡口打开呈直角状， 放入厚薄两片玻璃，薄玻 璃朝向自己。注意厚玻璃 箭头向上，旁边两条小玻 璃条与薄玻璃接触，使之 形成一个间隙。
2.在平整的桌面上放下玻 璃与夹子，使玻璃和夹子 的底面完全对齐，向外扳 动塑料卡口，关紧夹子。
3.将做好的玻璃夹放在制胶架 4.取出制好的玻璃（连带胶），将玻璃放入电 上，注意薄玻璃朝向自己，厚 极架（卡在底面的卡口上），注意薄玻璃朝向 玻璃上的箭头向上。按弹簧夹，电极架，厚玻璃的箭头朝上，玻璃与红色橡胶 将玻璃夹卡入制胶架。在玻璃 条必须完全紧贴。（需同时放置两块制好的胶， 的间隙内灌胶，放上梳子，待 如只使用一块则另一面须用提供的塑料板代替， 胶凝固。 注意塑料板上的提示，必须使塑料板与橡胶条 完全紧贴。）正常安装则会形成一个密闭的容 器。
实验八 蛋白质的表达、分离、纯化和鉴定
(1)了解重组蛋白表达的方法和意义。 (2)了解亲和层析分离纯化的方法。
实验原理
克隆基因在细胞中表达对理论研究和实验应用都具有 重要的意义。通过表达能探索和研究基因的功能以及基 因表达调控的机理，同时克隆基因表达出所编码的蛋白 质可供作结构与功能的研究。大肠杆菌是目前应用最广 泛的蛋白质表达系统，其表达外源基因产物的水平远高 于其它基因表达系统，表达的目的蛋白量甚至能超过细 菌总蛋白量的80%。
注意事项
(1) Acr和Bis均为神经毒剂，对皮肤有刺激作用， 操作时应戴手套和口罩。 (2) 玻璃板表面应光滑洁净，否则在电泳时会造成 凝胶板与玻璃板之间产生气泡。 (3) 样品槽模板梳齿应平整光滑。 (4) 灌凝胶时不能有气泡，以免影响电泳时电流的 通过。 (5) 切勿破坏加样凹槽底部的平整，以免电泳后区 带扭曲。 （6）电泳时应选用合适的电流、电压，过高或者过 低都会影响电泳效果。 (7) 稀释5×SDS/电泳缓冲液至1×浓度灌入电泳槽， 需800毫升。
本实验中，携带有目标蛋白基因的质粒在大肠杆 菌BL21中，在37℃，IPTG诱导下，超量表达携带有 6个连续组氨酸残基的重组氯霉素酰基转移酶蛋白， 该蛋白可用一种通过共价偶连的次氨基三乙酸 （ NTA ）使镍离子（ Ni2+ ）固相化的层析介质加以 提纯，实为金属熬合亲和层析（ MCAC ）。蛋白质 的纯化程度可通过聚丙烯酰胺凝胶电泳进行分析。
• 1．装配制胶用的玻璃板（由助教演示）。 • 2．制分离胶：按所需的浓度配制12.5％分离胶。 30%Acr- Tris-HCl H2O Bis pH 8.8 5ml 3ml 4ml 10%AP 120ul TEMED 20ul
灌完分离胶后在胶面上小心加水封（注意不要冲坏胶 面），等胶自然凝聚后（这时候在胶面与水封之间可以看 见清晰的界限）
• 二、氯霉素酰基转移酶重组蛋白的分离，纯化
• 1.重组蛋白的变性裂解：在冰浴中冻融50ml菌体沉淀，加入 5mL上样缓冲液GLB, 用吸管抽吸重悬, 4 ℃ 12000rpm 离心 30 min, 将上清（总蛋白细胞裂解液）吸至一个干净的容器中， 并弃沉淀。 • 2. NTA层析柱的准备：在层析柱中加入1mL NTA介质，并分 别用8mL 去离子水，8mL上样缓冲液GLB洗涤。(调速0.5ml/3 分钟 ) 。 • 3. 细胞裂解液3mL以10-15mL/h 流速上Ni2+-NTA柱，收集流 出液。 • 4.洗脱杂蛋白：用50mL洗涤缓冲液UWB以10-15mL/h流速洗柱， 分别取10ul洗涤开始与结束时的样品用于SDS-PAGE 分析。 • 5.洗脱目标蛋白：用10mL洗脱缓冲液洗柱，每管0.5－1 mL， 共收集6－10管，分别取10ul样品用于SDS-PAGE 分析。
• 5．加样：取大肠杆菌和BSA蛋白样品加样，每个 加样孔加样不宜过多，一般每孔加样10L。 • 6．电泳：先恒压80V，待样品进入分离胶后，调 电压为120V（恒压）。当溴酚蓝移动到离底部约 0.5cm时，停止电泳。
7．翘开玻璃板，将浓缩胶切掉, 剥下凝胶，准备染色。
8． 凝胶染色：使用考马斯亮蓝R250染色。两块胶（小 盒子）或四块胶（大盒子）同步染色脱色。盖上盖子 用微波炉加热约15-20秒，摇床振荡15分钟，回收染液 至指定容器。清水漂洗后加入脱色液（25%乙醇，75% 乙酸）脱色，用量和步骤与染色相同，脱色两次，每 次10分钟。
材料与试剂
• • • • 试剂 [1] LB液体培养基：Trytone 10g, yeast extract 5g, NaCl 10g, 用蒸馏水配至1000mL. [2] 氨苄青霉素：100mg/mL [3] 上样缓冲液(GLB)：100 mM NaH2PO4, 10 mM Tris, 8M Urea, 10 mM 2-ME, pH8.0 [4] Washing Buffer（UWB）： 100 mM NaH2PO4, 10 mM Tris, 8 M Urea, pH6.3 [5] Elution Buffer(洗脱): 100 mM NaH2PO4, 10 mMTris, 8M Urea, 500 mM Imidazole, pH8.0 [6] IPTG
• 3．制浓缩胶：按所需的浓度配制4%的浓缩胶，配
方如下：
30%Arc- Tris-HCl H2O Bis pH 6.7 400ul 750ul 1800ul
10%AP 50ul
TEMED 10ul
4. 灌完浓缩胶，插入梳子。等到浓缩胶自然 凝聚后，将装置放入电泳槽内,加入电泳缓冲 液,小心地拔出梳子，如果拔出梳子后加样孔 之间的间隔发生扭曲，可以用注射器针头小心 地加以整理。Biblioteka ••实验步骤
• 一、氯霉素酰基转移酶重组蛋白的诱导 • 1. 接种含有重组氯霉素酰基转移酶蛋白的大肠杆菌 BL21菌株于5mL LB液体培养基中 （含100ug/mL 氨苄 青霉素），37℃震荡培养过夜。 • 2. 转接1mL过夜培养物于100mL（含100ug/mL 氨苄青霉 素）LB液体培养基中，37℃震荡培养至OD600 = 0.6 0.8。取10ul 样品用于SDS-PAGE 分析。 • 3. 加入IPTG至终浓度0.5 mmol/l, 37℃继续培养1-3h. • 4. 12，000rpm 离心10 min, 弃上清，菌体沉淀保存于20℃或-70℃冰箱中。