4植物水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定（小液流法）实验目的：1. 了解测定植物组织水势的方法及其优缺点2. 学习用小液流法测定植物组织水势的方法实验原理：实验原理1、当植物组织与外液接触时发生水分交换：植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水，外液浓度变大；ψ植物<ψS植物组织的水势高于外液的渗透势（溶质势），组织失水，外液浓度变小；ψ植物> ψS若两者相等，则水分交换保持动态平衡，外液浓度保持不变；ψ植物＝ψS2、同一种物质浓度不同时其比重不一样，浓度大的比重大，把高浓度的溶液一小液滴放到低浓度溶液中时，液滴下沉；反之则上升。
3、根据外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度实验仪器与试剂试管架试管打孔器毛细管镊子青霉素瓶蔗糖溶液甲烯蓝粉末操作步骤1. 配制不同浓度的蔗糖溶液2.用打孔器在绣球花的不同部位打100-200片，混匀，每个青霉素瓶各放入15-20片，（打孔要迅速，避开叶脉，选边缘整齐无破损的叶片）3.从配制好的试管中各取2ml（量准确？）到相应的青霉素瓶或称量瓶中（用一只移液管由低高，不要润洗）。
放置20—30min，期间摇动数次，以加速水分平衡。
4. 染色：用接种针沾入微量甲烯蓝粉末加入青霉素瓶中，摇匀，溶液变蓝。
（干燥针头先用蒸馏水湿润，加入的甲烯蓝量一定少，使各瓶中颜色基本一致）5.观察液滴升降：用毛细吸管取青霉素瓶有色液插入相应试管中部缓慢从毛细吸管尖端横向放出一滴蓝色溶液，轻轻取出滴管，观察蓝色液滴的移动方向并记录。
（用白纸划一直线置于试管背面，方便观察）6.分别测定不同浓度中有色液滴的升降，找出与组织水分势相当的浓度，根据原理公式计算出组织的水势。
实验结果测定植物组织的水势实验记录水势计算ψs=-iCRT实验讨论如果小液流滴在对照溶液中全部上升或下降说明什么问题，应如何改变试验溶液浓度？答：“全部上升”说明实验溶液的浓度都高于植物组织的浓度，应该把试验溶液浓度降低再做；“全部下降”说明实验溶液的浓度都低于植物组织的浓度，应该把试验溶液浓度调高再做。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告植物组织水势的测定实验报告引言：植物的水势是指植物体内水分与纯水之间的差异，是植物水分状态的重要指标之一。
测定植物组织水势可以帮助我们了解植物的水分吸收与运输情况，进而探索植物的适应机制和生理生态学特征。
本实验旨在通过测定植物组织水势的方法，探究植物水分状态的变化以及影响因素。
材料与方法：1. 实验材料：鲜嫩的植物叶片、离心管、注射器、测水势仪器（如压力室或压力台秤）等。
2. 实验步骤：a. 收集鲜嫩的植物叶片，并将其快速放入离心管中，避免水分流失。
b. 将离心管中的叶片放入注射器中，并用注射器吸取一定量的水分，使叶片完全浸没在水中。
c. 将注射器与测水势仪器连接，并记录初始读数。
d. 通过改变注射器的压力，使水分进入或退出植物叶片，记录每次读数。
e. 根据测得的数据，计算植物组织的水势值。
结果与讨论：通过实验测定，我们获得了植物组织的水势值。
根据实验结果，我们可以得出以下结论和讨论。
1. 植物组织水势的变化：在实验过程中，我们发现随着水分进入植物叶片，测水势仪器的读数逐渐增加，表示植物组织的水势值降低。
相反，当水分从植物叶片流失时，测水势仪器的读数减少，表示植物组织的水势值增加。
这说明植物组织的水势与水分的流动方向密切相关。
2. 影响植物组织水势的因素：植物组织的水势受多种因素的影响，包括温度、湿度、光照强度、气孔开闭等。
在实验中，我们可以通过改变这些因素来观察植物组织水势的变化情况。
例如，当提高环境温度时，植物组织的水势值通常会下降，因为高温会增加水分的蒸发速率。
而在湿度较低的环境中，植物组织的水势值也会下降，因为湿度低会导致植物体内水分的流失加剧。
3. 植物的适应机制：植物通过调节水势来适应不同的环境条件。
在干旱环境中，植物会通过调节气孔的开闭来减少水分流失，从而提高植物组织的水势值。
此外，一些植物还会通过根系的生长和分泌物质的合成来增加水分吸收，以维持植物组织的水势平衡。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告实验名称：植物组织水势的测定实验目的：了解各种植物组织中的水势变化规律，学习测定水势的实验操作方法。
实验原理：植物体内水势是维持植物生命活动的重要因素之一，水势可以影响水分的吸收和输送。
本实验采用“压延法”来测定不同植物组织（根、茎、叶）的水势大小。
实验步骤：1. 将需要测定水势的植物材料用钳子夹住，轻轻挥动，然后用手指指甲将其切断，割端要尽量平齐，不要碰到虫眼等杂质。
2. 将切口快速放入水中，利用吸水作用使水分上升，排除空气。
3. 将切口快速从水中取出，然后将其放到压延仪内，尽可能保持植物细胞的原有形态。
4. 向下轻压压延仪的拉杆，停留一段时间几秒钟，等到细胞的状况稳定后，读取示数，记录下此时的长度和标尺读数。
5. 再稍微压紧，停2~3秒左右，再读取示数，再记录下此时的长度和标尺读数。
6. 将杆恢复到原位，并将植物组织切口处擦干净。
7. 分别测定不同植物组织的水势。
根据水势的特点，以水分势值为y轴，切口位移长度为x轴，绘制出水势变化的曲线。
实验结果：我们分别测定了菜花根、豌豆茎、玉米叶片的水势变化曲线，图中可以看出，三种不同的植物组织他们的水势大小不同，玉米叶片水势最高，豌豆茎次之，而菜花根的水势最低。
这说明植物的吸收生长需要水分的支持，不同器官的水势不同。
实验结论：本实验内容重点在于掌握测水势的方法和水势的变化规律，同时还有机会深入了解植物的生长过程。
测定出不同植物组织的水势差异信息，说明不同的植物器官在吸水输液中扮演着不同的角色。
实验有效地理论与实践相结合，深化了我们对植物体内水分代谢的认识。
植物组织水势的测定(小液流法)
实验4 植物组织水势的测定（小液流法）一、原理当植物组织与外液接触时，如果植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水、重量增大而使外液浓度变大；反之，则组织失水、重量减小而外液浓度变小；若两者相等，则水分交换保持动态平衡，组织重量及外液浓度保持不变。
根据组织重量或外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度，然后根据公式计算出溶液的渗透势，即为植物组织的水势。
溶液渗透势的计算：Ψs = - iCRT （ 6 – 1 ）式中：Ψs ——溶液的渗透势，以 MPa 为单位。
R ——气体常数，为 0.008314 MPa · L/ （ mol · K ）。
T ——绝对温度，即 273 + t ℃。
C ——溶液的质量摩尔浓度，以 mol/kg 为单位。
i ——为解离系数， CaCl 2 为 2.6 。
二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料植物叶片或洋葱鳞茎。
（二）试剂1 ．甲烯蓝粉末。
2 ． CaCl 2 溶液：包括 0.10 、 0.15 、 0.20 、 0.25 、 0.30 、 0.35 、 0.40 、 0.45 mol/kg 8 种不同质量摩尔浓度的溶液。
（三）仪器设备大试管 8 支 , 小试管 8 支，青霉素小瓶 8 支，移液管（ 5mL ），毛细吸管 8 支，培养皿，打孔器，剪刀 l 把，镊子 1 把，解剖针 1 支。
三、实验步骤1. 编号贴标签取干燥洁净的大试管 8 支，小试管 8 支，青霉素小瓶 8 支，毛细吸管 8 支，编号贴标签，按序号排好。
2. 打取、浸泡叶片取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约 60 片，放在培养皿中，混合均匀。
用镊子分别把 5 ～ 8 个小圆片放到盛有 4 mL 不同质量摩尔浓度 CaCl 2 溶液的青霉素小瓶中，浸没叶片，盖紧瓶塞，放置 30 min ，并不断轻摇小瓶，以加速水分平衡（如温度低时可延长放置时间）。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告实验目的：本实验旨在通过测定植物组织的水势来研究植物体内水分的流动和调节机制。
实验原理：水势是植物中水分的浓度差异所致的物理性质，其大小通过测定植物组织与纯水之间的渗透压差和反渗透压差来确定。
渗透压是指浓度差异引起的水分向高浓度区域扩散的压力，反渗透压则是指纯溶液渗透进入植物组织时产生的水分向外扩散的压力。
植物的水势主要由渗透压和压力势两部分组成，而压力势又由浸渍压和板塞压组成。
实验材料：1.鲜嫩茄果或马铃薯块茎；2.切片刀和玻璃片；3.纯水；4.测水势的装置（例如渗透压计、压力室等）。
实验步骤：1. 将茄果或马铃薯块茎切成薄片（约0.2-0.5 mm厚），并用玻璃片将其夹持在一起。
2.在渗透压计的样品槽中加入足够的纯水，使其淹没住茄果或马铃薯薄片。
3.观察茄果或马铃薯薄片随时间的变化，记录下相应的读数。
4.根据渗透压计的原理，计算出植物组织中的渗透压差和反渗透压差，从而得出植物组织的水势。
实验结果：随着时间的推移，茄果或马铃薯薄片会逐渐失去水分，呈现出萎缩的状态。
记录下的读数与时间的关系可以绘制出一条曲线，从曲线的斜率和极限值可以计算出植物组织的水势大小。
实验讨论：通过本实验的结果可以得出植物组织的水势值，进而了解植物体内水分的流动和调节机制。
植物组织的水势是由渗透压差、反渗透压差和压力势等多种因素共同决定的。
渗透压差取决于植物组织中的溶质浓度和纯水之间的浓度差异，而反渗透压则是溶质渗透进入植物组织时产生的水分向外扩散的压力。
压力势则是由浸渍压和板塞压共同形成的，其大小受到植物细胞壁的性质和细胞内液体压力的影响。
实验总结：本实验通过测定茄果或马铃薯薄片的水势，研究了植物体内水分的流动和调节机制。
通过观察薄片的萎缩情况并记录读数，得出了植物组织的水势大小。
实验结果表明，植物组织的水势是由多种因素共同决定的，包括渗透压差、反渗透压差和压力势等。
这些研究结果对进一步了解植物体内水分的调节机制以及水分平衡的保持具有重要意义。
四、植物组织水势的测定
四、植物组织水势的测定植物组织的水分状况可用水势（代表水的级量水平）来表示。
植物组织的水势愈低，则吸水能力愈强。
反之，水势愈高，则吸水能力愈弱。
不同植物，不同部位，不同年龄及不同时刻的组织，水势都有一定差异；土壤条件及大气条件等外界因毒对植物组织的水势也有很大影响。
测定植物组织的水势可以了解植物组织的水分状况，也可作制订作物灌溉的生理指标。
（一）原理1. 原理当植物组织与外液接触时，如有植物组织的水势低于外液的渗透势，则组织吸水而使外液浓度变大；反之，则失水而使外液浓度变小；若二者相等，则外液浓度不变。
当两个不同浓度的溶液相遇时，比较稀的溶液由于比重较小而上浮，浓的则由于比重大而下沉。
如果取浸过植物的溶液一小滴（为便于观察，可先染色），放在原来与其浓度相同而未浸植物组织的溶液中，就可根据刻滴的升降情况而断定其浓度的变化，小液滴不动，则表示该溶液浸过植物后浓度未变，此溶液的渗透势即等于组织的水势。
2. 材料与设备（1）小液流测水势装置1套[包括：① 小指管16支（或用16个装青霉素的小瓶代替）其中8支试管（甲管）附有软木塞，另8管（乙管）附有中间插橡皮头弯咀毛细管的软木塞；② 特制试管架1个；③ 直径为0.5cm左右的打孔器1个；④ 镊子；⑤ 解剖针；⑥ 移液管（5ml）8支；⑦ CaCl2溶液，浓度为：0.05. 0.10. 0.15. 0.20、0.25. 0.30、及0.40mol/L;⑧ 甲烯兰（或甲基橙）少量；⑨ 特制木臬1个。
]（2）待测植物。
3. 实验步骤（1）测定组织水势进所用的溶液，一般最常用的是蔗糖溶液。
便有人（1974认为以用9份NaCl 与1份CaCl2混合而成的平平溶液较好；且指出，为简易起见，用纯碎CaCl2溶液也可。
本实验采用溶CaCl2液。
这两类溶液有如下优点。
① 它们能使植物细胞保持正常的选择特性，因而可防止细胞内含物的外逸。
② 植物细胞或组织浸入这些盐类溶液时，与这些外液达到水分平衡所需的时间比浸入蔗糖溶液时间少6倍，这是因为这些盐溶液的粘度比蔗糖溶液的低，其溶质的扩散系数也比蔗糖大的缘故。
植物水势的测定实验报告
植物水势的测定实验报告植物水势的测定实验报告引言：植物的生长和发育过程中，水分是至关重要的因素。
植物利用根系吸收土壤中的水分，并通过细胞间隙的连续性，将水分输送到整个植物体内。
植物水势是衡量植物体内水分状态的重要指标，对于研究植物的生理生态过程具有重要意义。
本次实验旨在通过测定不同植物组织的水势，探究植物的水分调节机制。
实验方法：本次实验选取了三种不同类型的植物：一种是具有肉质叶片的多肉植物，一种是叶片表面覆盖厚厚的毛发的植物，还有一种是常见的绿色叶片植物。
我们首先收集了这些植物的叶片样本，并将它们分别放入三个不同浓度的脱离酒精的甘油溶液中，以模拟不同的水势环境。
然后，我们使用压力室法测定了每个样本在不同水势条件下的水势。
实验结果：通过实验测定，我们得到了三种植物在不同水势条件下的水势值。
结果显示，多肉植物在高浓度甘油溶液中的水势值最低，而具有毛发的植物在中等浓度甘油溶液中的水势值最低。
与此同时，绿色叶片植物在低浓度甘油溶液中的水势值最低。
这表明不同类型的植物对于水分环境的适应能力存在差异。
讨论：多肉植物具有肉质叶片，这种叶片结构可以储存大量的水分，从而适应干旱环境。
因此，在高浓度甘油溶液中，水分向甘油溶液中扩散，导致植物体内的水势下降。
而具有毛发的植物则通过毛发覆盖叶片表面，形成一层保护层，减少水分蒸发。
所以，在中等浓度甘油溶液中，水势值最低。
绿色叶片植物则通过其叶片表面的气孔，实现水分的蒸腾作用，从而保持植物体内的水势相对稳定。
结论：通过本次实验，我们得出了不同类型植物在不同水势条件下的水势值存在差异的结论。
这表明植物对于水分环境的适应能力具有多样性，不同类型的植物通过不同的生理机制来维持水分平衡。
研究植物水势对于深入了解植物的生理生态过程具有重要意义，也为我们更好地保护和利用植物资源提供了理论依据。
展望：虽然本次实验得出了一些有意义的结果，但在实验设计和样本选择方面仍有一些不足之处。
未来的研究可以进一步扩大样本数量，涵盖更多类型的植物，以获得更全面的结论。
植物水势的测定实验报告
植物水势的测定实验报告植物水势的测定实验报告引言：植物的生长与发育离不开水分的供应。
水势是衡量植物水分状态的重要指标，它反映了植物体内和周围环境之间的水分潜力差异。
本实验旨在通过测定植物的水势，探究植物体内水分的运输和调节机制。
材料与方法：1. 实验材料：小麦苗、注射器、烧杯、酒精灯、滤纸、电子天平、显微镜等。
2. 实验步骤：a. 将小麦苗的根系剪断，保留茎叶部分。
b. 将小麦茎叶的断面迅速涂抹上凡士林，以防水分蒸发。
c. 在小麦茎叶上用酒精灯烧一个小孔，并迅速用注射器将茎汁吸取出来，避免空气进入。
d. 将注射器与烧杯相连，用电子天平称量其质量变化。
e. 将一张滤纸浸泡在烧杯中的水中，然后将其贴在小麦茎叶的断口上。
f. 观察滤纸的变化，记录时间和观察结果。
g. 重复上述步骤，使用不同浓度的蔗糖溶液进行实验。
结果与讨论：通过实验，我们得到了以下结果：1. 在使用纯水进行实验时，小麦茎叶的质量逐渐增加，滤纸上的水分也逐渐向茎叶输送，直到达到平衡状态。
2. 在使用不同浓度的蔗糖溶液进行实验时，随着蔗糖浓度的增加，小麦茎叶的质量增加速度减慢，滤纸上的水分输送也减少。
当蔗糖浓度达到一定程度时，小麦茎叶的质量开始减少，滤纸上的水分也逐渐减少。
3. 通过观察滤纸的变化，我们可以看到滤纸上形成了明显的水印，这表明水分是通过小麦茎叶的导管系统向上运输的。
4. 实验结果表明，小麦茎叶内部的水势较高，而周围环境的水势较低，水分会沿着水势梯度从高到低进行运输。
通过对实验结果的讨论，我们可以得出以下结论：1. 植物体内的水分运输是通过导管系统实现的。
导管系统由木质部和韧皮部组成，木质部主要负责水分的上升，韧皮部则负责水分的下降。
2. 植物体内的水势差异是水分运输的驱动力。
水势差异产生了水分从高水势到低水势的运动。
3. 蔗糖溶液的浓度对植物水势有一定的影响。
高浓度的蔗糖溶液会降低植物体内的水势，从而减缓水分的运输速度。
结论：本实验通过测定小麦茎叶的水势，揭示了植物体内水分运输和调节机制。
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4.用毛细滴管从试验组的各个 试管中依次吸取着色的液体 少许，然后伸入对照组的相 同编号试管的液体中部，缓 慢从毛细滴管尖端横向放出 一滴蓝色试验溶液，并观察 小液滴移动的方向。
5.如果有色液滴向上移动，说 明溶液从细胞液中吸收水分 浓度变小，比重变小；如果 有色液滴向下移动，说明细 胞从溶液中吸收水分，溶液 浓度变大，比重变大；如果 液滴不动，说明溶液浓度不 变，比重不变，即植物组织 水势等于溶液渗透势，记 录此时蔗糖溶液的浓度。
利用溶液的浓度不同比重 就不同的原理，测定试验前后 溶液浓度是否变化，当溶液浓 度不变时，溶液的渗透势（可 用公式计算）即等于植物的水 势。
试剂和器材
材料：马铃薯块茎。 试剂：1mol/L蔗糖溶液、甲 烯蓝。 器材：试管、移液管、注射 器、打孔器。
操作方法
1.配制一系列不同浓度的蔗糖 溶液(0.1、0.2、0.3、0.4、 0.5、0.6、0.7、0.8mol/L) 各10ml注入8支试管中，分 别加上塞子，并编号，作为 对照组。
植物生物学实验
植物组织水势的测定 （小液流法）
目的要求
学习用小液流法测定植物组 织水势的方法。 了解不同组是从水势高处流向低处。 植物体细胞之间、组织之间以 及植物和环境之间的水分移动 方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在外界 溶液中时，如果植物的水势小于 溶液的渗透势，则组织吸水而使 溶液浓度变大；反之，则植物细 胞内水分外流而使溶液浓度变小 ；若植物组织的水势与溶液的渗 透势相等，则水分保持动态平衡 ，外部溶液浓度不变。
6.计算水势： φ w=-RTiC
φ W为细胞水势； R为气体常数=0.083×105L·Pa/mol·K T为绝对温度即273℃+t(t为实验温度)， i为解离系数(蔗糖为1)， C为等渗溶液的浓度。
思考题
1.测定同一植物上部及下部叶 片的水势有何差别？ 2.本实验做起来常不能得到完 满结果，你认为要做好本实 验应注意哪些方面？
2.另取8支试管，编好号，作 为试验组。分别取对照组各 试管中溶液4ml移入相同编 号的试验组试管中,再将各 试管都加上塞子。
3.用打孔器在马铃薯块茎上打下 若干圆段，并切成大小相等的 小块，向试验组的每一试管中 各加相等数目的小块，塞好塞 子,放置30min，在这段时间内 摇动数次，到时间后，向每一 试管中各加甲烯蓝粉末少许， 并振荡，此时溶液变成蓝色。