实验5 减数分裂观察
植物减数分裂制片观察
汇报人：XX
目录
• 引言 • 植物减数分裂的基本知识 • 制片前的准备工作 • 制片过程详解 • 观察与记录 • 实验结果展示与讨论 • 注意事项与实验技巧
01
引言
Chapter
目的和背景
01
研究植物生殖细胞的发育过程
减数分裂是植物生殖细胞形成过程中的重要环节，通过对减数分裂的观
结果分析与讨论
染色体行为异常与遗传变异
在实验中观察到部分细胞的染色体行为异常，如染色体不分离、落后等，这些异常行为 可能导致遗传变异。
纺锤丝的作用机制
纺锤丝的形成与微管蛋白的聚合有关，其牵引力确保了染色体的正确分离。纺锤丝的异 常可能导致染色体分离错误，进而引发遗传问题。
细胞质分裂与细胞壁形成的调控
1 2
染色体形态和数量变化
在减数分裂过程中，可以观察到染色体经历了浓 缩、配对、交换、分离等一系列形态和数量上的 变化。
纺锤丝的形成与作用
纺锤丝在减数分裂过程中形成，牵引染色体向细 胞两极移动，确保染色体的正确分离。
3
细胞质分裂与细胞壁形成
在减数分裂后期，细胞质分裂，细胞壁在赤道板 位置形成，将母细胞分为两个子细胞。
其他辅助器材
根据实验需求，准备好其他辅助器材，如吸水纸、擦镜纸 、计时器等。
04
制片过程详解
Chapter
取材与固定
选择适当材料
选用分裂旺盛的植物组织，如洋葱根尖、小麦幼穗 等。
固定液选择
常用Carnoy固定液（无水乙醇:冰醋酸=3:1）或FAA 固定液（福尔马林:冰醋酸:50%乙醇=5:5:90）。
观察顺序
02
按照减数分裂的时期顺序进行观察，有助于理解整个分裂过程
减数分裂
0
4条
2对
4
2
2
0
4条
2对
4
减 中期 II
后期
2
0
4条
2对
4
4
0
0
0
4
末期
2
0
0
0
2
DNA数：染色体数=21：1的时期是：
间期 前期 中期 后期
图形的判别方法(二倍体为例)
末期
有丝分裂
减数分裂
图形的判别方法(二倍体为例)
先看细胞质
不均匀—— 雌性减数分裂产生初级卵母细胞 或次级卵母细胞
均匀——有丝分裂、雄性减数分裂细胞 或雌性减数分裂产生极体
细胞图像
减 I 前 精原细胞
积累营养，体积增大，染色体复制
的间期 （原始生殖细胞）
前期
同_源__染__色_体__两两配对，即联会，形成四分体 __四_分__体___的非姐妹染色单体交叉互换
睾 减 中期 丸I
曲
细
后期
精
管
末期
初级精 母细胞
四分体的着丝点排列在赤道板两侧
同源染色体分离 非同源染色体自由组合，并移向两极
2、实验流程：解离→漂洗→染色→制片
判断：高倍显微镜下可在同一个细胞内看到减数分裂的
全过程（X） 原因：解离过程中盐酸和酒精改变了细胞膜的通透性，令细胞失去活性死亡。
视野中，未分裂的细胞数目比减数分裂的细胞多。 在低倍镜下找到各时期细胞，再在高倍镜下观察 染色体的形态、位置和数目。
减数分裂概念： 进行_有__性__生__殖___的生物，在产生成熟的 ____生___殖__细__胞____时进行的染色体数减半的细胞分裂。
二、受精场所：输卵管
蝗虫精巢减数分裂
蝗虫精巢减数分裂观察一、实验目的通过对蝗虫精子形成过程中减数分裂的观察，了解动物生殖细胞形成的一般过程以及染色体在这一过程中的动态变化，从而深刻理解减数分裂的遗传学意义。
掌握压片法制作减数分裂玻片标本的技术。
二、实验原理减数分裂是有性生殖的生物在繁殖过程中的一种特殊的分裂方式。
它与有丝分裂具有根本的差异，但又有一定的联系，生物体通过有丝分裂使得细胞数目增多，分裂后的子细胞得到遗传组分相同的染色体。
生物体在繁殖过程中通过减数分裂使得配子中染色体数目减为体细胞的一半，乘坐单倍体细胞。
这样再通过雌雄配子的结合又可以在后代细胞中回复正常的染色体数目，从而保持了物种的稳定性，而且同源染色体在染色体配对过程中发生了非姐妹染色体的节段交换，为后代表现得多样性提供了遗传的物质基础，在动物的精巢和卵巢组织中有些细胞经过生长和分化成为精母细胞和卵母细胞，它们经过减数分裂分别形成4个精细胞和1个卵细胞。
与有丝分裂相比，减数分裂过程的前期很长，可以划分为5个时期。
其染色体的变化也比较复杂，要经过一个逐步螺旋、折叠和浓缩的过程。
特别是在偶线期内，同源染色体进行联会，进而在粗线期发生非姐妹染色体的节段交换，因此我们可以在双线期观察到许多交叉图像。
我们可以通过对减数分裂过程中染色体动态变化的观察加深对这一分裂过程的认识，并且为杂种细胞学分析、物种间情缘关系的鉴定等提供可靠地依据。
三、实验材料与试剂1.雄性蝗虫；2.显微镜、解剖针、解剖剪、Carnoy固定液（乙醇：冰乙酸，体积比为3:1）、载玻片、盖玻片、改良苯酚品红染液。
四、实验步骤1.蝗虫的捕捉和固定捕捉雄性蝗虫，直接投入到Carnoy固定液中固定24小时，然后转到体积分数为70%的酒精中保存。
若在4℃冰箱中保存，可以长期使用。
蝗虫的性别区分非常容易雄性蝗虫个体较小，雌性蝗虫较大。
同时由于雌性蝗虫的尾部有产卵瓣，所以从外观上易于区别。
2.蝗虫精巢的剖取解剖蝗虫时，先将翅膀减去，在翅基部的后方，相当于腹部背侧的前端，用解剖剪将其体壁剪开，即可看到在上方两侧各有一块黄色的团块，这边是蝗虫的精巢。
减数分裂观察实验注意事项
减数分裂观察实验注意事项减数分裂是细胞分裂过程中的重要一步，它在生物学研究中有着重要的应用价值。
对于减数分裂的观察实验中，我们需要注意以下几个方面：1. 实验材料的准备：选择适合的实验材料进行减数分裂观察。
比较常用的实验材料有酵母菌、果蝇、线虫、水蛭等。
根据自己的实验目的和研究对象，选择合适的实验模型。
2. 适当处理样本：要对实验材料进行适当的样本处理。
比如使用适当的培养基，控制培养条件，使得实验材料处于最佳状态，以便观察其减数分裂现象。
3. 选择合适的观察方法：根据实验材料的特点和实验目的，选择合适的观察方法。
减数分裂通常使用显微镜观察，可以使用普通显微镜或者荧光显微镜。
对于不同的实验材料，有时还需要使用特殊的染色技术来观察减数分裂过程。
4. 基本的观察过程：进行减数分裂观察时，首先需要找到合适的细胞进行观察。
可以根据细胞的特征，如大小、形状等进行初步筛选。
然后，使用显微镜对选定的细胞进行细致的观察和记录。
可以观察细胞的形态变化、细胞核的形态变化、染色体的核型变化等。
5. 数据分析和结果呈现：观察实验完成后，需要对所得的数据进行分析。
可以根据实验目的，比较不同组的观察结果，寻找规律和差异。
同时，需要合理地呈现实验结果，可以使用图表、图片等形式将结果展示给他人。
6. 注意实验的准确性和可重复性：在进行减数分裂观察实验时，需要注意实验的准确性和可重复性。
要进行多次观察，确保所得结果的可靠性。
同时，要对实验过程中的可能误差进行有效的控制，提高数据的可信度。
7. 注意安全问题：在进行实验时，要注意实验安全。
根据实验材料和操作的要求，采取相应的安全措施，确保自己和他人的安全。
8. 扩展实验内容：减数分裂是一个非常重要的细胞分裂过程，可以从不同的角度来进行研究。
可以探究减数分裂的调控机制、减数分裂异常的影响等方面，进行进一步的实验。
总之，减数分裂观察实验是生物学研究中的重要环节。
在实验过程中，我们需要注意实验材料的准备、适当处理样本、选择合适的观察方法、基本的观察过程等方面。
减数分裂的观察
实验一减数分裂的观察一、实验目的：通过显微镜观察玉米，小麦，蚕豆等花粉母细胞的减数分裂制片，熟悉减数分裂过程，着重掌握减数分裂过程中染色体的变化规律，为深入理解遗传学基本规律打下良好的基础。
二、实验大原理：减数分裂是性母细胞成熟时配子形成过程中一种特殊的有丝分裂。
它包括连续两的细胞分裂阶段：每一次分裂为染色体数目的减数分裂，第二次分裂为染色体数目的等数分裂。
两次分裂可根据染色钵变化特点各分为前期、中期、后期和末期，由于第一次前期时间较长，染色体变化比较复杂，故其前期又可分为五个时期。
在减数整个过程中，同源当染色体之间发生联会、交换和分离，非同源染色体之间进行自由组合。
最终分裂为染色体数目减半的四个子细胞，从而发育为雌性或雄性配子。
雌雄配子通过受精又结合成为合子，发育为新的个体，这样又恢复了染色体数目。
由于不同雌雄配子染色体的重新组合，产生了大量的遗传变异，有利于生物的适应和进化。
生物的性母细胞成熟时，减数分裂各期染色体变化的特征简述如下：第一次分裂：前期：可分为以下五个时期：细线期：核内染色体呈细长线状，互相缠绕，难以辨别成双的染色体。
偶线期：同源染色体两两配对，成为联会。
这样联会的一对同源染色体，称为二价体。
粗线期：配对后的染色体逐渐缩短变粗，含有两条姐妹染色单体，这样一个二价体中就包含了四条染色单体，故称为四合体。
在此期间各同源染色体的非姐妹染色单体间可能发生片段交换。
双线期：各对同源染色体开始分开，由于在粗线期非姐妹染色单体之间发生了交换，因而同源染色体在一定区段出现交叉结。
此期可清楚地观察到交叉现象。
终变期：染色体更为浓缩粗短，交叉结向二价体的两端移动，核仁和核膜开始消失，此时各二价体分散在核内，适于记数染色体的数目。
中期：核仁和核摸消失，所有二价体排列在赤道板两侧，细胞质里出现纺锤体，每个二价体的两条染色体的着丝点分别趋向纺锤体的两极，此时最适于计数染色体的数目和观察各染色体的形态特征。
减数分裂
7 镜检：先在低倍镜下找到细胞，再换 成高倍镜仔细观察。
实验报告：
1 画出在显微镜下看到的减数分裂各时期 的图像；
2 在显微镜下注意区分花粉母细胞和药壁 细胞，说明它们有什么不同；
3 结合染色体的行为，说明减数分裂过程 中有哪些重要的遗传学事件发生？
实验2 植物细胞减数分裂 及染色体行为的观察
实验目的：
1 学习用植物花药制备减数分裂玻片标本的方 法；
2 了解高等植物减数分裂的细胞学特征，重点 掌握染色体的动态变化过程，为理解遗传学的基本 遗传规律奠定细胞学基础。
实验原理：
高等植物的花粉形成过程中，花药内的某些细 胞分化成小孢子母细胞，小孢子母细胞经过减数分 裂的两次分裂，最终形成4个单倍的小孢子。在适 当的时候采集植物的花蕾，进行固定、染色、压片 等过程，可以在显微镜下看到小孢子母细胞减数分 裂的过程和染色体的变化。
大葱要选取嫩绿饱满、总苞光滑的花蕾。
2 固定：将花序总苞剥去，放入卡诺氏 固定液中，室温下处理3小时后，经95%乙醇 洗后,于70%乙醇中冷藏保存。
3 分离花粉母细胞：冲洗后的花序取上、 中、下部各2个花蕾放在载玻片上，取出花 药，用解剖针反复挤压花药，最后将药壁残 渣去除干净。
4 染色：用改良苯酚品红染液染色 10~15min。
实验材料：
大葱、蚕豆、玉米等都是可以选择的材 料。本实验选用大葱的花药。
实验用品：
用具：显微镜、剪刀、镊子、解剖针、载玻片、 盖玻片、酒精灯、铅笔、吸水纸等。
药品：蒸馏水、卡诺氏固定液、45%醋酸、改 良苯酚品红染液等。
实验步骤：
1 取材：选取适当的花蕾是实验的关键, 不同植物材料的取材时间有所不同。（Why）
育种技术实验
实验一花粉生命力测定目的在经过一段时间储藏的花粉或使用远地花粉时,则必须测定,便于杂交成果的分析与研究。
通过实验, 要求学生掌握花粉生命力测定的方法。
药品及用具测微尺、显微镜、毛笔、载玻片、盖玻片、恒温箱、玻璃铅笔、蔗糖、蒸馏水、硼酸液、联苯胺、苯酚、酒精、碳酸钠、过氧化氢、琼脂。
方法步骤1、方法可分三类: 间接法、直接法、染色法。
2、直接法（1）原理（2）将花粉直接在清洁的同种植物的柱头上, 并且作好隔离工作, 然后观察其雌花之发育, 如果胚珠能够正常发育成种子, 则说明花粉具有生命力,否则, 就没有生命力。
（3）步骤第一步: 将花粉直接授在清洁的同种另一植株花的柱头上, 并作好隔离。
隔1--3天采集已授过粉的柱头, 固定于开水或F.A.A液中。
第二步：染色剂的配置:配置1%苯胺兰溶液、配置0.5%苯胺兰乳酸酚。
A．染色镜检3、花柱固定在开水中, 并于水中煮烂, 而后放在1%苯胺兰水溶液或0.5%苯胺兰乳酚中染色24小时,把花柱撕开,盖上盖玻片,用大姆指轻压。
镜检,若花粉具有生命力,即可观察到花粉管伸入柱头组织,若花粉不具生命力,即无花粉管伸入柱头组织.4、间接法（1）原理（2）借人为创造的特定条件使花粉萌发, 鉴定花粉生命力。
（3）硼酸液培养法配置10、50PPM的硼酸溶液。
用毛笔取少量花粉播入已盛硼酸的清洁小瓶并加盖, 放入恒温箱内培养。
5、取出小瓶充分摇动均匀, 用吸管吸一滴于载玻片凹槽内, 迅速盖上盖玻片固定花粉粒, 然后至于显微镜下观察。
6、观察2-----4个载玻片, 每凹面随机观察5个视野计算发芽率。
7、染色法过氧化物酶测定法（1）原理（2）这是借助于测定花粉内过氧化氢酶活性强弱来确定花粉生命力的方法, 在活的花粉内过氧化氢酶存在, 它可以促进过氧化物放氧分解, 这些刚被放出来的活性氧容易使还原剂氧化, 在本实验中所用的无色的联苯胺和苯酚都是还原剂, 但它们被氧化后确表现红色或玫瑰红色, 如果花粉是活的, 那么这个反应很快, 则花粉都被染成红色或玫瑰红色, 如果花粉是死的, 则这一反应迟迟不能进行, 花粉也就保持原色。
减数分裂的观察
减数分裂的观察121140083 朱琪璋一实验目的1通过对植物花粉母细胞的制片和观察，了解高等植物小孢子的形成过程以及减数分裂中染色体的变化情况2进一步掌握细胞染色体制片的基本技能。
二实验原理1减数分裂是一种特殊方式的细胞分裂，仅在配子形成过程中发生.2减数分裂的特点是：连续进行两次分裂，而染色体只复制一次，结果形成4个子核，每个子核只含单倍体的染色体，即染色体数减少一半，所以叫做减少分裂。
另外一个特点是前期特别长，而且形态和行为变化复杂，包括同源染色体的配对、交换与分离等。
3植物花粉形成过程：在植物花粉形成过程中，花药内的一些细胞分化成小孢子母细胞（2n），每个小孢子母细胞进行2次连续的细胞分裂（第一次减数分裂和第二次减数分裂）。
每一个小孢子母细胞产生4个子细胞，每个子细胞就是1个小孢子。
小孢子内的染色体数目是体细胞的一半（如下图）三实验器材与材料材料：蚕豆小花序将新鲜采取的材料投入3：1乙醇冰醋酸固定液中固定3～24小时，再投入75%酒精中保存，若保存时间较久，可放在70%酒精一份，甘油一份的溶液中。
器材：镊子，解剖针，盖玻片，载玻片，显微镜，醋酸洋红染液，吸水纸。
四实验步骤①自保存液中取出蚕豆幼小花序，水洗几次，用解剖针分开花蕾，按花蕾大小排在载玻片上。
②先取中等大小的花蕾，用解剖针取出花药，放在载玻片上。
③加一滴醋酸洋红放在花药上。
初步镜检，看取材是否合适，若不合，调换合适的花蕾。
④用解剖针轻轻剥开花药，可在酒精灯上微微加热。
染色20～30分钟。
⑤加上盖玻片，用吸水纸垫上后用拇指适力压一下，使材料分开。
⑥在显微镜下观察，镜检，观察减数分裂各时期。
五实验结果①照片展示减数分裂过程细线期偶线期粗线期双线期终变期中期Ⅰ后期Ⅰ末期Ⅰ间期前期‖中期‖后期‖末期‖四分孢子期②实验过程中观察到的2个时期①减速第二次分裂后期②四分孢子时期（如图清晰可见4个减数分裂产生的细胞）六问题讨论1实验过程中要注意哪些问题答：选取的材料不能太老，不能减数分裂早已完成，观察不到染色体的形态变化。
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连续分裂两次，结果形成的生殖细胞染色体
减半，称为减数分裂。减数分裂是生物遗传
与变异的细胞学基础。
2018/12/2
3
二、实验原理
在植物的花粉形成过程中，花药内的一些
细胞分化为小孢子母细胞（2n），每个小孢子
母细胞经减数分裂产生4个小孢子（n）。在适 当的时期采集植物的花药，经固定、染色、压 片等操作程序后，就可以在显微镜下看到细胞 减数分裂过程中染色体的动态变化。
2018/12/2
1
实验 5
减数分裂的观察
一、实验目的
了解高等植物小孢子母细胞减数分裂的过程，观察减 数分裂中染色体的动态变化，学习并掌握植物细胞减数分 裂染色体标本的制作方法。
2018/12/2
2
二、实验原理
减数分裂（meiosis）是高等生物个体在 形成生殖细胞过程中发生的一种特殊的分裂 方式。在这个过程中，DNA复制一次，细胞
2018/12/2
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三、实验用品
1．器材：解剖器材，盖玻片，培养皿，
吸管。
2．试剂：1N HCl溶液，Carnoy固定液；
改良苯酚品红染液。
3．实验材料：花蕾
2018/12/2
5
四、实验步骤
预处理
• 取未绽放的花蕾，投入Carnoy固定液中固 定1~2小时，也可将材料置于70%的酒精 中长期保存。 • 制片的方法同根尖染色体的制备方法。
花药太过破碎；将挤出花粉母细胞(呈半透明胶状)小范围
内涂成薄层。
2018/12/2
7
四、实验步骤
压片法制备植物减数分裂装片
(4) 染色 在涂好的载玻片上滴加一滴或半滴染液，稍后 用镊子把所有可见花药壁残渣清除干净。 (5) 初检与压片 染色后置于低倍显微镜下初步检查，若 花粉母细胞正处于分裂期，即可压片。 (6) 镜检观察 在低倍镜下寻找适当视野，并正确区分处 于减数分裂各个时期的花粉母细胞、二分体、四分体以及 花粉粒、花药壁残留组织与细胞。
2018/12/2
6
四、实验步骤
压片法制备植物减数分裂装片
(1) 取材 获得处于适当减数分裂期的材料是制片成败的 关键因素，而最适的时期又因实验主要目的不同而异。 (2) 固定 最常用的固定液是卡诺氏固定液。经过固定处 理的材料更易于染色、分色和保存。 (3) 涂抹 用镊子直接从固定液或保存液中取出材料(花蕾、 花序、幼穗等)，用洁净的刀片或镊子压在小孢子囊或花 药上向一端轻轻抹去，将花粉母细胞压挤出来，注意勿使
2018/12/2
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五、实验结果
减数分裂前期I
2018/12/2
9
五、实验结果
减数分裂中期I 减数分裂后期I
2018/12/2
10
五、实验结果
减数分裂后期I 减数分裂末期I
2018/12/2
11
六、实验报告
• 在取材过程中需要注意的问题有哪些？
• 减数分裂制片通常可以采用哪些方法？ • 绘图表示植物细胞减数分裂的各个时期。