急性毒性试验设计讲解
急性毒性试验

实验一急性毒性试验(Acute Cytotoxicity Test)一、实验目的:了解生物材料急性毒性的含义,掌握急性毒性试验的基本方法。
二、实验原理:医学上通常指的急性毒性试验是对药物而言的,并以半数致死量(median lethal dose, LD50)来衡量药物急性毒性的大小。
所谓LD50是指某一药物使试验动物总体死亡一半的剂量,由于LD50是剂量反应曲线上最敏感的一点,而且有易测、准确和重复性好的优点,以此作为药物使用的安全指标。
但对于生物材料而言,它与药物在体内的反应机理不同,大多数生物材料不能计算LD50,所以在试验过程中,通过对实验动物进行动物静脉或腹腔注射试验材料或其浸提液来观察实验动物体重在24、48和72h的变化、运动、呼吸状态以及死亡情况作为评价的指标,判定某种生物材料的急性毒性作用。
三、实验对象:小鼠四、实验器材和药品:聚甲基丙烯酸羟乙酯(PHEMA),蒸馏水,生理盐水(0.9%),注射器(1ml),量筒(10ml),小烧杯(50、100ml),高压消毒器。
五、实验步骤:1.浸提液制备:按评价标准裁剪试样,选择适当浸提温度制备浸提液。
2.将10只体重在17~23g间的健康、未做过其他实验的小鼠随机分为实验组和对照组,每组5只。
3.将浸提液按每公斤小鼠体重注射50ml于实验组小鼠尾静脉(50ml/kg),用生理盐水按同样方法作空白对照。
4.记录试样表面积和使用浸提液的容量;记录注射后24h、48h、72h两组小鼠的体重,观察其各种生物学反应情况。
六、评价方法:2.1 在72h观察期内,注射材料浸提液的动物反应不大于对照组动物,则认为该材料符合急性毒性试验要求。
2.2在72h观察期内,注射材料浸提液动物中有2只以上出现轻度毒性症状或仅1只动物出现明显毒性症状死亡,或实验组5只动物的体重均下降,即使无其他中毒症状都要进行重复试验。
2.3 重复试验的动物数量应加倍,即每组需10只小鼠。
急性毒性实验(实验课)

SX50= i× [(Σp-Σp2)/(n-1 ) ]½
注:X50
为lgLD50 SX50为lgLD50的标准误差
如动物不死,可减少稀释倍数,按
0.1ml/10g灌胃给予稀释倍数较低的乌头水 提液取;如动物死亡,可增加稀释倍数, 灌胃给予稀释倍数较高的乌头水提取液。 再观察动物的反应。
按上述方法,探索出可致小鼠大多死亡的
最小剂量及大多小鼠不致死亡的最大剂量。
结果
动物号 体重(g) 给药量 反应 备注
1.LD50实验设计
目的:学习LD50 测定方案设计 材料:乌头水提液(浓度:0.5g/ml)、
注射器、灌胃器。 动物:昆明种小鼠18-22g,雌雄各半。
方法:
取小鼠称重,先用1只按0.1-0.2ml/10g灌胃
给予乌头水提液(0.25g/ml),观察动物反应。 如动物死亡,将溶液稀释一定倍数后,按 0.1ml/10g灌胃给予乌头水提液取稀释液,再 观察动物的反应。
3.574 10 0.9
2810
2110 1590
?
? ?
10
10 10
0.7
0.3 0ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ2
5
1190
?
10
0
Xm=3.574 i=Lg1.3345=0.1253 Σp=? Σp2=? n=10
相关公式
LD50=log-1[Xm-i(Σp-0.5)]
LD50的95%可信限 =lg-1(X50± 1.96 SX50)
组间剂量比值(低剂量/高剂量)
0.65 0.7 0.75 0.8 4组 6- 7组 0.85 4- 5组 0.9 5- 6组
10
5- 6组
急性毒性实验内容课件

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15
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16
染色法
优点: 简单方便,不痛苦,无损伤。
缺点: 时间较长时,染色剂易褪色; 标记容易模糊不清。
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耳缘孔口法:
在耳缘先用针穿孔和用剪刀剪口,再用酒精墨 汁涂抹,使黑色渗入孔口,伤口愈合后不易脱 落,这种标号亦可标号1~99。
适用于大、小鼠。
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• 初步了解动物致死的原因,为研究毒作用的机
制提供线索,进而为制定中毒急救治疗措施提
供依据。
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5
由急性毒性试验可得到两类毒性参数
上限参数 是以死亡为终点的毒性,包 括绝对致死量、半数致死量、最小致 死量、最大耐受量等;
下限参数 是以非致死性急性毒作用 为终点的毒性,包括急性阈剂量和无 作用剂量等。
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实验动物的年龄与体重的关系
动物
大鼠 小鼠 豚鼠 兔 犬 猫
成年年龄(周) 3 2 2 3~4 3~4 3~4
体重(克) 150 15 250 1.5kg 7~15kg 1kg
寿命(年) 2~3 2~3 6~8 4~9 15~20 10~12
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急性毒性试验的动物体重
四 3 11 16 17 20
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随机区组设计
将动物称重,按体重顺序依次排列编号,分成若 干个区组,每一区组的动物体重相近,每一区组的 动物数即为组数。再从随机数字表上任意抄下随机 数字,依次标在每个动物的编号下,如欲将动物分 为4组,则将每一区组动物编号下的随机数字,按 顺序分别用4、3、2、1除之,根据余数大小将 动物分入各组。
7
急性毒性试验设计课件

05
注意事项与伦理考量
实验安全与防护
实验操作安全
确保实验操作符合安全规定,采 取必要的安全措施,如穿戴防护 服、戴手套等,以防止有毒物质
直接接触皮肤或吸入。
实验环境控制
确保实验环境符合标准,如温度 、湿度和空气洁净度等,以确保
实验结果的准确性和可靠性。
废弃物处理
合理处理实验废弃物,遵循环保 规定,防止对环境和人员造成危
04
数据处理与分析
数据整理与统计
准确、客观、完整 科学、合理、有效
对实验数据进行准确的记录和整理,确保数据的客观性 和完整性,是后续数据分析的基础。
采用科学的方法对数据进行统计分析,包括描述性统计 和推断性统计,以揭示数据的内在规律和趋势。
毒性反应分析
01
全面、深入、细致
02
对实验动物的毒性反应进行全面、深入、细致的分析,包括生理、生 化、病理等方面的指标,以评估受试物的毒性作用。
急性毒性试验设计课 件
contents
目录
• 急性毒性试验概述 • 试验前准备 • 试验实施 • 数据处理与分析 • 注意事项与伦理考量
01
急性毒性试验概述
定义与目的
定义
急性毒性试验是一种评估物质在 短时间内(通常为24-96小时) 对生物体产生毒性影响的试验。
目的
了解受试物质的毒性强度、性质 和可能的靶器官,为后续的毒理 学研究提供基础数据。
确保实验方法科学、可靠,能够准确反映受试物 质的毒性作用。
数据处理的准确性
对实验数据进行准确、客观的处理和分析,避免 数据失真或误导。
结果的可重复性
确保实验结果可重复,以提高实验数据的可靠性 和可信度。
THANKS FOR WATCHING
简述 药物急性毒性试验研究主要设计要点

简述| 药物急性毒性试验研究主要设计要点急性毒性(Acute toxicity)是指药物在单次或24小时内多次给予后一定时间内所产生的毒性反应。
拟用于人体的药物通常需要进行单次给药毒性试验。
单次给药毒性试验对初步阐明药物的毒性作用和了解其毒性靶器官具有重要意义。
单次给药毒性试验所获得的信息对重复给药毒性试验的剂量设计和某些药物临床试验起始剂量的选择具有重要参考价值,并能提供一些与人类药物过量所致急性中毒相关的信息。
实验设计注意事项01受试物受试物应采用工艺相对稳定、纯度和杂质含量能反映临床试验拟用样品和/或上市样品质量和安全性的样品,并注明受试物的名称、来源、批号、含量(或规格)、保存条件及配制方法等,并须有研制单位的COA。
来自于市售的辅料、溶媒等应具有相关的说明和规格。
02实验动物年龄| 试验应使用年轻健康成年的动物,如果是儿童用药,必要时采用幼年动物进行试验。
种属| 可根据药代或药效结果选择合适的动物种属,试验应采用至少两种哺乳动物,从多个方面暴露药物动物毒性,选择一种啮齿类和一种非啮齿类动物,如未采用非啮齿类动物进行动物试验,应该说明理由。
性别| 通常采用雌性和雄性动物进行试验,雌雄各半。
若采用单性别动物进行试验,应阐明其合理性。
动物数| 根据研究目的,选择合适的动物数,比如小动物每组动物10只,大动物每组动物4只。
动物数应符合试验方法及其结果分析评价的需要。
体重| 试验中的啮齿类动物初始给药时的每组平均体重差异不应超过或低于平均体重的20%。
03给药途径通常情况下给药途径应至少包括临床拟用途径,或者增加一种能使药物较为完全进入全身暴露的途径如静脉给药。
急性经口给药前啮齿类动物应禁食一段时间,但禁食时间可能会影响暴露量,受到药物代谢酶的活性和受试物肠道内吸收的影响。
04给药剂量水平常用的试验方法有最大给药量法、最大耐受量法、半数致死量法等。
根据不同的试验方法选择合适的剂量,为了充分暴露毒性,高剂量可选择出现严重毒性的给药剂量或达到最大给药量,低剂量可选择未见毒性剂量,同时设空白和/或溶媒(辅料)对照组。
急性毒性试验

试验目的:急性毒性试验是在24小时内给药1次或2次(间隔6-8小时),观察动物接受过量的受试药物所产生的急性中毒反应,为多次反复给药的毒性试验设计剂量、分析毒性作用的主要靶器官、分析人体过量时可能出现的毒性反应、I期临床的剂量选择和观察指标的设计提供参考信息等。
一、啮齿类动物单次给药的毒性试验(一)试验条件1.动物品系:常用健康的小鼠、大鼠。
选用其他动物应说明原因。
年龄一般为7-9周龄。
同批试验中,小鼠或大鼠的初始体重不应超过或低于所用动物平均体重的20%.实验前至少驯养观察1周,记录动物的行为活动、饮食、体重及精神状况。
2.饲养管理:动物饲料应符合动物的营养标准。
若用自己配制的饲料,应提供配方及营养成分含量的检测报告;若是购买的饲料,应注明生产单位。
应写明动物饲养室内环境因素的控制情况。
3.受试药物:应注明受试药物的名称、批号、来源、纯度、保存条件及配制方法。
(二)试验方法:由于受试药物的化学结构、活性成分的含量、药理、毒理学特点各异,毒性也不同,有的很难观察到毒性反应,实验者可根据受试药物的特点,由下列几种实验方法中选择一种进行急性毒性试验。
1.伴随测定半数致死量(LD50)的急性毒性试验方法。
2.最大耐受剂量(MTD)试验方法:最大耐受剂量,是引起动物出现明显的中毒反应而不产生死亡的剂量。
3.最大受试药物量试验方法:在合理的浓度及合理的容量条件下,用最大的剂量给予实验动物,观察动物的反应。
4.单次口服固定剂量方法(Fixed-dose procedure)。
选择5、50、500和2000mg/kg四个固定剂量。
实验动物首选大鼠,给药前禁食6-12小时,给受试药物后再禁食3-4小时。
如无资料证明雄性动物对受药试物更敏感,首先用雌性动物进行预试。
根据受试药物的有关资料,由上述四个剂量中选择一个作初始剂量,若无有关资料作参考,可用500mg/kg作初始剂量进行预试,如无毒性反应,则用2000mg/kg 进行预试,此剂量如无死亡发生即可结束预试。
(完整版)急性毒性试验

试验目的:急性毒性试验是在24小时内给药1次或2次(间隔6-8小时),观察动物接受过量的受试药物所产生的急性中毒反应,为多次反复给药的毒性试验设计剂量、分析毒性作用的主要靶器官、分析人体过量时可能出现的毒性反应、I期临床的剂量选择和观察指标的设计提供参考信息等。
一、啮齿类动物单次给药的毒性试验(一)试验条件1.动物品系:常用健康的小鼠、大鼠。
选用其他动物应说明原因。
年龄一般为7-9周龄。
同批试验中,小鼠或大鼠的初始体重不应超过或低于所用动物平均体重的20%.实验前至少驯养观察1周,记录动物的行为活动、饮食、体重及精神状况。
2.饲养管理:动物饲料应符合动物的营养标准。
若用自己配制的饲料,应提供配方及营养成分含量的检测报告;若是购买的饲料,应注明生产单位。
应写明动物饲养室内环境因素的控制情况。
3.受试药物:应注明受试药物的名称、批号、来源、纯度、保存条件及配制方法。
(二)试验方法:由于受试药物的化学结构、活性成分的含量、药理、毒理学特点各异,毒性也不同,有的很难观察到毒性反应,实验者可根据受试药物的特点,由下列几种实验方法中选择一种进行急性毒性试验。
1.伴随测定半数致死量(LD50)的急性毒性试验方法。
2.最大耐受剂量(MTD)试验方法:最大耐受剂量,是引起动物出现明显的中毒反应而不产生死亡的剂量。
3.最大受试药物量试验方法:在合理的浓度及合理的容量条件下,用最大的剂量给予实验动物,观察动物的反应。
4.单次口服固定剂量方法(Fixed-dose procedure)。
选择5、50、500和2000mg/kg四个固定剂量。
实验动物首选大鼠,给药前禁食6-12小时,给受试药物后再禁食3-4小时。
如无资料证明雄性动物对受药试物更敏感,首先用雌性动物进行预试。
根据受试药物的有关资料,由上述四个剂量中选择一个作初始剂量,若无有关资料作参考,可用500mg/kg作初始剂量进行预试,如无毒性反应,则用2000mg/kg 进行预试,此剂量如无死亡发生即可结束预试。
急性毒性试验设计课件

案例四
总结词
急性毒性试验在食品添加剂安全性评价中具有重要意义,能够评估食品添加剂对 人体健康的潜在风险。
详细描述
急性毒性试验广泛应用于食品添加剂安全性评价中,通过给予实验动物单次或多 次剂量的食品添加剂,观察和记录动物的毒性反应和死亡情况,能够评估食品添 加剂对人体健康的潜在风险,为食品添加剂的安全使用提供科学依据。
数据清洗
去除异常值和缺失值,确保数据质量。
数据分析
采用合适的统计方法对数据进行分析,如均值 、标准差等。
数据可视化
使用图表展示分析结果,如折线图、柱状图等。
结果报告与结论
结果总结
概述试验结果,包括毒性反应类型、剂量效应关系等 。
结论
根据试验结果,得出结论并解释其意义。
建议
根据试验结果提出建议,如进一步研究必要性、安全 使用建议等。
染毒剂量
设置不同剂量组,确保剂量范围涵盖预期毒性反 应。
3
染毒频率
确定染毒频率,如单次或多次给药。
观察与记录
观察时间
设定观察周期,包括给药前、给药后短期、 中期和长期观察。
观察指标
列出需要观察的指标,如行为变化、生理参 数、病理学检查等。
数据记录
详细记录各组动物在各个时间点的数据表现 。
数据处理与分析
观察期的设置
总结词
观察期的设置是急性毒性试验中至关重要的一环,直接 关系到试验结果的完整性和准确性。
详细描述
观察期是指从给予动物受试物开始,直至观察到动物死 亡或恢复正常的这段时间。在试验设计中,应根据受试 物的毒性作用特点、动物的种属特性以及试验目的等因 素来确定合理的观察期。同时,还需根据观察到的症状 和体征以及死亡情况等数据进行详细记录和分析,以评 估受试物的毒性作用及其对动物的影响程度。
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性别:雌雄各半 年龄:成年动物
实验动物的预检 实验动物的给药 前禁食处理。
健康动物标志
发育正常、体态丰满、外观无畸形; 被毛浓密、贴顺有光泽、不蓬乱; 胸阔宽阔、脊柱不弓不弯; 眼睛明亮; 表皮无溃疡、无结痂(注意尾巴); 各天然孔干净、无分泌物; 行动灵活、反应敏捷。
受试物的配制方法 (2)受试化学物的稀释
等浓度,不同剂量组实验动物单 位体重所给受试物的体积不同,剂量越高,所用的 体积越大;剂量越低,所用的体积越小。比如某受 试物的试验剂量分别为100、200、400和 800mg/kg,受试物配制成10 mg/ml,每组动物 每10g体重分别给与0.1、0.2、0.4和0.8 ml。
量对数等差时,用下述基本公式计算LD50:
LD50 log [X m i(
1
p 0.5)]
当不含0%和100%死亡率时,用下式计算LD50:
LD50 log [X m i(
1
S x 50 i
pq
n
3 Pm Pn p )] 4
以上各式中:i—组距,即相邻两组剂量对数剂量之差
根据公比(r)计算各组剂量 各组剂量分别为 第一组:a 第二组:a r 第三组:a r2 第四组:a r3 第五组:a r4 第六组:a r5
随机化分组
将实验动物编号,从随机数字表上任意横 行或纵行的任意数字开始,顺序取下数字, 标于每个动物号下,然后用计划组数去除 随机数字,所得余数即为所属组别。
预实验:
总的原则是先用少量动物,以较大的剂 量间距染毒,求出粗略的致死剂量范围, 即确定受试动物全部致死的最小剂量(b) 和全部不致死的最大剂量(a),即求出 待测化学物0 %~100 %的大致致死剂 量范围,然后在这个剂量范围内按几何 级数的间距设计5~7个剂量组,组间剂 量呈等比级数(r),其比值为1.2~1.5。 进行正式实验。
2、 实验动物的年龄与体重
动 物 大鼠
3
小鼠
2
豚鼠
2
兔
3~4
犬
3~4
猫
3~4
成年年龄(周)
体重(克)
寿命(年)
150
2~3
15
2~3
250
6~8
1.5kg 7~15kg 1kg
4~9 15~20 10~12
3、实验动物的一般要求
动物数量:动
物6组,1-5组为 实验组,6组为 蒸馏水对照组
生理与健康状况:
实验方法
1、实验动物的选择 2、剂量设计及随机化分组 3、受试物的配制 4、染毒途径的选择 5、毒性反应的观察与LD50的计算 6、急性毒性的评价
一、 实验动物选择
1、物种和品系
对外源化学物毒性反应与人近似易于饲养管理 方便实验 操作易于获得 繁殖生育力强 数量较大能够保障 品系纯化,价格低廉。
注意
急性毒性试验不等于LD50测定
可用少量动物测定ALD,并进行临床观 察、化验检查和病理学检查 当口服剂量大于5g/kg或注射剂量大于 2g/kg时,不产生急性毒性或死亡,则不 必准确的测定LD50
急性毒性评价
外源化学物相对毒性分级标准
急性毒性分级(WHO)
谢 谢 !
通过预试,找出受试化学物引起动物死亡 的大致剂量范围,以此为依据设计正式试验的剂量和 分组。 按下式设计剂量组:
r
n 1
b a
式中:r—相邻两组剂量的比值,一般为1.2~ 1.5, b—最低全致死剂量量, a—最高不致死剂量, n—设计的组数。 分组恰当与否也是确保实验结果准确的条件之 一。因为组数过多,需要消耗较多的动物,还可 能出现较大剂量组动物死亡率低于较小剂量组; 组数过少,不能较精确求出LD50。
等容量稀释法
将受试物配制成不同浓度,不同剂量组实验动物单位 体重所给受试物的体积相同,剂量越大,受试化学物 配制的浓度越高。上例中,若实验动物按0.2ml/10g b.w容量灌胃,则应配制成4个不同浓度,即5mg/ml、 10mg/ml、20mg/ml和40mg/ml。
染毒途径的选择
经消化道染毒:经口灌胃法 采用专用小鼠灌胃针。 左手抓住动物双耳后至背部的皮肤,将动物固定成垂 直体位,腹部面向操作。 右手持注射器,将针头由动物口腔侧插入,避牙齿, 沿咽后壁缓缓滑人食管。若遇阻力,可轻轻上下滑动探索, 一旦感觉阻力消失,即深人至胃部。 如遇动物挣扎,应停止进针或将针拔出,千万不能强 行插入,以免穿破食,甚至误入气管,导致动物 立即死亡。
观察指标
中毒症状:确定靶器官 ① 行动:不安定、多动、发声;
② 神经系统反应:举尾、振颤、痉挛、运动失 调、姿态异常;
③ 自主神经系统反应:眼球突出、流涎、流泪、 排尿、下泻、竖毛、皮肤变色、呼吸。
死亡和死亡时间 病理学检查及其他指标
LD50的计算(改良寇氏法)
当急性毒性试验的最大剂量死亡率为100%,最小剂量的 死亡率为0%;各组动物数相等;各剂量组的组距等比或剂
实验动物的标记
染色法
编号方法:小鼠头部为1号,顺时 针编号,用苦味酸编个位数,用 伊红编十位数。
染色法
优点:
简单方便,不痛苦,无损伤。 缺点: 时间较长时,染色剂易褪色; 标记容易模糊不清。
剂量选择及分组
剂量选择
广泛查阅文献资料,估计毒性中值
预试,求出待测化学物0 %~100 %或
10 %~90 %的大致致死剂量范围 设计正式试验的剂量和分组
二
三
四
一
二
三
一
二
一
三
四
一
二
二
三
四
四
三
三
二
完全随机分配后各组所属动物号
组别 动物编号
一
二
4
1
7
5
9
8
12
13 20 14
三
四
2
3
6
11
10
16
15
17
18
19
20只动物完全随机分配的结果
组别 动物编号
一
二 三 四
4
1 2 3
7
5 6 11
9
8 10 16
12
13 15 17
19
14 18 20
受试物的配制方法
(1)受试化学物的量取:
固体受试物用称量法,液体受试物用称量法或吸量法。
称量法:取一定量的受试物放入已知重量的容器内,称重, 定容,计算浓度mg/ml,备用。
吸量法:依设计剂量计算出应吸取液态受试物的容积,加入
容量瓶中,用溶剂加至刻度。
吸量法,计算公式为:X=
A· V
d×1000
式中: X——应吸取受试物的容积; A——设计要求的受试物浓度( mg/ml ); V——容量瓶容积(ml); d——受试化学物比重;
p
Xm—最大剂量对数 P—各剂量组死亡率 Pm—最高死亡率 q—各组剂量存活率,q=1-
Pn—最低死亡率 ∑p—各剂量组死亡率之和 n—各组动物数
LD50的局限性
消耗动物量大
获得的信息有限
动物死亡和观察的症状不足以反应生理学、
血液学和其它化验检查所提供的毒性信息
有许多因素影响LD50值的测定,实际上测得 的LD50是近似值
急性毒性试验设计
组员:程旺、高思杰、后若兰 高阳、陈刚
一、急性毒性
急性毒性指人或动物一次或 24 h
之内多次接触外源化学物后,在短
期内所发生的毒性效应,包括致死 效应。
一次:指瞬间给实验动物染毒,如经
口、经静脉注射染毒。
24 h之内多次:指外源化学物毒性过 低,需给予动物较大剂量。
急性毒性效应出现的快慢和毒性反应的强 度与外源化学物的性质和染毒剂量的大小 有关。
以20只动物的完全随机分配为例
动物编号 随即数字 除4后余数 所属组别 1 54 2 2 83 3 3 80 0 4 53 1 5 90 2 6 75 3 7 53 1 8 78 2 9 93 1 10 47 3 11 72 0 12 09 1 13 54 2 14 66 2 15 95 3 16 44 0 17 68 0 18 67 3 19 67 3 20 86 2
如:丙烯腈,过氧化二碳酸二环己酯
丙烯腈经口急性毒性试验设计
实验目的
评价丙烯腈的毒性作用,求出半数致死 量LD50,并根据LD50进行急性毒性分级, 掌握实验动物随机分组的方法和经口灌 胃的技术。 观察丙烯腈急性中毒症状;为后续试验 提供依据;为毒理学机制研究提供线索。
器材与试剂
1、实验动物 ICR小鼠(健康成年小鼠) 2、实验器材 灌胃针、注射器、吸管、 容量瓶、烧杯、滴管、电子天平、动物 体重秤、外科剪刀、镊子 3、实验试剂 丙烯腈、苦味酸酒精饱和 液、伊红染液