临床微生物标本的采集与送检2011.91
微生物培养标本采集与送检
,
目录
确保标本质量
采集标本前，确保无污染
采集标本时，注意无菌操作
采集标本后，立即送检
送检过程中，保持标本的完整性和稳定性
避免交叉感染
微生物培养标本采集的重要性：避免交叉感染，防止疾病传播
采集标本时，应遵循无菌操作原则，防止污染
采集标本后，应立即送检，避免长时间暴露在空气中
送检过程中，应使用密封容器，防Fra bibliotek标本泄漏，造成交叉感染
反馈：微生物培养结果报告需要及时反馈给临床医生，以便医生根据结果制定治疗方案。
结果分析：微生物培养结果报告需要结合临床症状、实验室检查结果等进行综合分析，以便更准确地诊断疾病。
结果追踪：微生物培养结果报告需要追踪患者的治疗效果，以便及时调整治疗方案。
标本质量不佳的原因及解决方法
原因：采集方法不当，如未使用无菌操作、未使用正确的采集工具等
考虑微生物生长环境，选择适宜部位
避免损伤，选择安全部位
掌握采集时间
采集时间：根据微生物的生长周期和特性，选择合适的采集时间
采集频率：根据微生物的生长速度和检测需求，确定采集频率
采集环境：选择合适的采集环境，避免污染和干扰
采集工具：选择合适的采集工具，保证采集的准确性和完整性
严格遵守无菌操作
采集前准备：穿戴无菌手套、口罩、帽子等防护用品
采集后处理：立即放入无菌容器中，密封保存
送检过程中：保持标本的完整性，避免污染和破损
采集过程中：避免接触污染源，如皮肤、衣物等
确保标本新鲜
采集标本后立即送检，避免长时间放置
保持标本的完整性，避免破损和污染
使用合适的保存液，如生理盐水、福尔马林等
送检过程中保持低温，避免高温和阳光直射
临床微生物标本的规范采集和送检
采血套数
➢ CLSI M47-A：每位患者采集2~3套血培养（40~60ml） ➢ 1套：一个穿刺点，通常为1个需氧+1个厌氧 ➢ 成人瓶：8~10ml；儿童瓶： 1~3ml；婴幼儿：<总血量 1% ➢ 明显地提高阳性率 ➢ 判断是否污染 ➢ 指南强调：初期诊断时不允许只采集一套血培养
➢ 如果采血量不足，应优先将血液注入需氧瓶，剩余血液注 入厌氧瓶，因为大部分需氧菌、兼性厌氧菌、酵母菌可以 在需氧瓶中生长
采血量是影响血培养阳性率的独立相关因素
采血量与检出率
% Relative Yield
100
80
60
40
20
0 5
15
25
35
45
55
血培养物每增加m一l 毫升，
成年人菌血症微生物的检出率增加3％
临床微生物标本的规范采集和送检
检验二科 刘 玲
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临床标本微生物检验流程
标本质量
临床信息？ 标本质量？
标本采集
标本检验
临床意义？ 结合临床症状、体征、影像、 其它检查等
检验报告
报告解读
采集部位 采集方法 送检要求
涂片镜检 培养鉴定 药敏试验
涂片报告 培养报告 药敏报告
诊断 治疗 评估
如何提高微生物检验的诊疗价值？
所以要最先采集血培养标本。 污染率的指标是 < 3%
（100份标本里只能有不到3个标本出现污染）
采血前质量保证：培养瓶消毒
选定采血点后，先对培养瓶进行消毒
弃去培养瓶金属盖 75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞,待干60秒
颠倒混匀标本与肉汤，以避免血液凝集。
（儿童采血量少，更应注意颠倒混匀）
临床微生物标本规范化采集和送检
4
严格无菌操作
1.在抗菌药物使用前采集标本。
临床疑似感染的患者, 必须先采集微生物标本送检, 再使用抗菌药物进
行治疗。
2.无菌部位的标本更具有临床价值, 有菌部位采集的标本需要清除正常菌 群和定植细菌才有意义。
应尽量送检无菌部位的标本, 尤其是血培养。有菌部位标本应避免 “正常菌群导致标本的污染”。人体很多部位, 如下呼吸道（痰液标本）、 鼻窦、皮肤伤口等处的正常菌群极易污染标本。因此, 从这些部位采集标 本, 要尽可能降低这些部位正常菌群或定植细菌对标本污染的可能性。有 菌部位的标本不是最理想的微生物标本。
临床微生物标本规范化采集和送检
总则
疾病的正确诊治需要以正确的病原学检测作为指导, 而正确的病原学 检测其前提是采集和送检合格标本。因此, 必须规范微生物标本的采集和运 送, 避免因标本的不合格, 产生错误的病原学检测结果而误导临床治疗。
微生物标本采集 基本原则
1
在抗菌药物使用前采集标本
无菌部位的标本更具有临床价值, 有菌部位采集的标
粪便标本采集法
1.自然排便法
患者在干燥清洁便盆（避免使用坐式 或蹲式马桶）内自然排便后, 挑取有 脓血、黏液部分的粪便2-3g（液体粪 便则取絮状物1-3ml）放入无菌便盒 内送检。若无黏液、脓血, 则在粪便 上多点采集送检。此为常规方法。
2. 直肠拭子法
用肥皂水将肛门周围洗净, 将占有无 菌生理盐水的棉拭子插入肛门4-5cm （儿童为2-3cm）。棉拭子与直肠粘 膜表面接触, 轻轻旋转拭子, 可明显在 拭子上见到粪便。将带有粪便标本的 棉拭子插入运送培养基, 立即送检。 本方法仅适用于排便困难的患者或婴 幼儿, 不推荐使用拭子做常规标本。
临床微生物标本规范化采集和送检
临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。
在临床诊断和治疗过程中，微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行，以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。
本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。
一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时，应使用无菌采集工具，如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。
采集工具应一次性使用，避免交叉感染。
2. 采集方法（1）棉签采集法：适用于采集分泌物、排泄物等标本。
将无菌棉签蘸取适量标本，轻轻涂抹于无菌培养基表面，注意避免棉签与培养基接触过紧，以免污染。
（2）拭子采集法：适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。
将无菌拭子轻轻擦拭采集部位，将拭子置于无菌培养基中，轻轻按压使标本附着于培养基表面。
（3）注射器采集法：适用于采集深部组织、关节液等标本。
将无菌注射器刺入采集部位，抽取适量标本后，将注射器置于无菌培养基中，拔出活塞使标本流出。
3. 采集注意事项（1）严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
（2）采集标本时，应尽量减少对标本的挤压，避免细胞破裂、毒素释放等现象。
（3）采集标本后，应尽快送检，避免长时间存放导致病原体死亡或变异。
二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后，应尽快送检，一般不超过2小时。
如无法及时送检，应将标本置于4℃冷藏保存，并在24小时内送检。
2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器，避免与其他物品接触。
标本运送过程中，应注意保持容器密封，防止标本污染。
3. 标本接收实验室接收微生物标本时，应详细核对标本信息，包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。
如发现标本不符合要求，应立即与临床工作人员沟通，重新采集标本。
4. 标本处理实验室接收标本后，应按照实验室规程进行对标本的处理，包括开盖、分区、接种、培养等。
在处理过程中，严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
（完整版）临床常见微生物标本的采集与运送
（完整版）临床常见微生物标本的采集与运送临床常见微生物标本的采集与运送唐玉英正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。
一标本采集的一般原则1.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。
2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。
采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。
3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。
4.适当的采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。
5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。
二标本的运送1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。
2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。
三不同标本的采集，运送（一）血液标本采集，运送1.血培养指针当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。
临床微生物标本采集和送检指南
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
在临床微生物标本采集和送检过程中，可能会遇到以下挑战和问题： 1、如何正确采集微生物标本
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
2、如何妥善保存标本，避免污染和交叉感染 3、如何及时、安全地将标本运送至实验室 4、如何与实验室保持密切，确保检测结果的准确性
三、临床微生物标本采集和送检 的具体方法和步骤
三、标本运送
2、防止污染：在运送过程中，应确保标本不受污染。使用清洁、干燥的容器 存放标本，并封闭容器以防止细菌、病毒等微生物的侵入。
三、标本运送
3、及时送达：标本应在采集后尽快送至实验室进行检测，以确保检测结果的 准确性。如有特殊情况需延迟送检，应告知实验室技术人员并妥善保存标本。
三、标本运送
四、临床微生物标本采集和送检的建议
3、建立有效的沟通渠道，加强与实验室、医生之间的协作和信息共享，及时 调整治疗方案。
四、临床微生物标本采集和送检的建议
4、针对具有传染性的标本，应严格遵守相关规定，确保运输、处理等过程的 安全性。
5、借助信息化手段，如电子病历、远程诊断等，提高临床微生物标本采集和 送检的效率和质量。
4、记录信息：在运送过程中，应记录标本的相关信息，包括采集时间、送检 时间、接收人员等，以便实验室技术人员对标本进行跟踪和管理。
四、常见问题及处理方法
四、常见问题及处理方法
1、采血困难：如遇采血困难，可适当调整采血部位或改变采血方式，如更换 采血针或调整患者体位。如仍无法采血，可咨询医生或实验室技术人员寻求帮助。
四、常见问题及处理方法
4、标识错误：如遇标识错误，应立即纠正并重新标识标本。同时，对可能造 成标识错误的原因进行分析和总结，以避免类似错误再次发生。
临床微生物标本采集与送检规范(试行)
临床微生物标本采集与送检规范(试行)临床微生物标本采集与送检是临床实验室诊断质量保证中的关键环节，影响着感染样本中致病菌的分离培养的阳性率和医院感染病原体监控。
正确的微生物标本送检和检验方法对于合理选用抗菌药物、降低耐药菌的产生、提高感染的治愈率以及预测和及时发现医院感染的暴发流行等都具有十分重要的意义。
因此，希望临床各科能按照本操作规范采样送检。
在医院感染标本的采集和运送中，应遵循以下原则：1.发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于40％。
2.尽量在抗菌药物使用前采集标本。
3.采集标本时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。
4.采集标本后应立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。
5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子，应立即送检。
6.盛标本须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。
7.送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。
常见的医院感染标本送检方法包括：1.血液与骨髓：通常采血部位为肘静脉，但疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。
采血前应严格消毒，每次采血量应控制在一定范围内，采血后应立即送至实验室。
2.尿液：采集中段尿时，女性应先冲洗外阴部及尿道口，男性须翻转包皮冲洗，采集前应用消毒液消毒尿道口。
灭菌纱布擦干后收集标本。
以上是临床微生物标本采集与送检的一些基本规范和方法，希望医务人员能够严格按照操作规范执行，以提高微生物检测的准确性和有效性，为临床诊断和治疗提供更加可靠的依据。
导尿管导尿采样是减少污染的有效方法。
对于留置导尿者，可以用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。
或消毒后解开接口，弃去导尿管前段尿液，留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。
不可从集尿袋的下端管口留取标本。
对于尿厌氧菌培养、婴幼儿中段尿采集困难或培养结果与病情不符的情况，可以经耻骨上皮肤穿刺采集无污染的膀胱内尿液。
浅谈微生物样品的采集及送检
浅谈微生物样品的采集及送检微生物是一类在肉眼下不可见的微小生物体，包括细菌、真菌、病毒等多种类型。
它们广泛存在于自然界中的各个领域，有的对人类和动植物有益，有的则是致病菌。
对微生物的采集和送检工作显得尤为重要。
本文将从微生物样品的采集方法和送检流程两个方面进行探讨。
一、微生物样品的采集方法1. 采集工具的准备在进行微生物样品采集前，首先要准备好必备的采集工具。
一般情况下，可以准备好无细胞毒的采集管、医用消毒纱布、无菌手套、无菌刷子等。
这些工具要预先进行高温高压消毒处理，确保在采集样品时不受到外界污染。
2. 采集样品的环境准备在采集微生物样品的过程中，采集环境的准备十分重要。
首先要保持采集现场的清洁整洁，避免外界杂质的干扰。
要避免出现采集样品的交叉污染，可以对采集器具进行一定的分类和编号，同时严格遵守无菌操作的要求。
3. 采集样品的方法具体的微生物样品采集方法会根据具体情况而有所不同，这里以细菌样品的采集为例进行说明。
在细菌样品的采集过程中，首先要将采集器具置于无菌环境中，然后进行无菌操作，分别用无菌刷子或无菌吸管进行采样。
采集样品后，要及时将样品封存，并标记清晰的采集信息，如采集时间、地点、采集人员等。
4. 采集样品的保存采集好微生物样品后，要及时进行保存。
常用的保存方式有低温冷冻保存和干燥保存等。
需要根据不同样品的特性来选择适当的保存方式，确保样品的保存质量。
二、微生物样品的送检流程1. 送检前的准备工作在进行微生物样品送检前，首先要对样品进行初步的鉴定和分类，明确送检的目的和要求。
要下载填写好送检申请表，并对样品进行详细的描述和记录。
要按照送检单位的要求，准备好相应的包装材料和运输工具，确保送检样品的完整性和稳定性。
2. 选择送检单位选择合适的送检单位是送检流程中非常重要的一步。
要选择具有资质和信誉的送检单位进行合作，确保送检结果的准确性和可信度。
要了解送检单位的具体要求和流程，确保送检样品符合送检标准。
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b.
c.
注意事项
严格进行无菌操作，因为尿液标本的 采集和培养中最大的问题是污染杂菌
通常应取晨起第一次尿液送检
多数药物均通过尿液排泄，因此采集
尿液应在用药前进行
三、粪便标本的采集
收集粪便标本，做实验室
检查，有助于评估病人排泄
功能及准确评估疾病。
粪便标本
采集时间：
1．采样原则 腹泻病人应在急性期采 集（3天以内），以提高检出率，亦最 好在用药之前。
采集脑脊液，最好在用药前采集
采集方法：用腰穿方法采集脑脊液3-5ml，
一般放入3个无菌试管，每个试管1-2ml.如
果用于检测细菌或病毒，应≥1ml，如果用 于检测真菌或抗酸杆菌，应≥2ml
注意事项：
①如果用于检测细菌，收集脑脊液后，最好能
在常温下15-30分钟内接种培养皿。脑脊液标 本不可置冰箱保存，否则会使病原菌死亡，尤 其是脑膜炎奈瑟菌（能产生自溶素迅速自溶）、 肺炎链球菌和嗜血杆菌 。
当骨髓炎时或长期使用抗菌药物患者， 抽取骨髓培养阳性率远高于血液培养
全自动血培养仪BacT/Alert 120
培养基的选择：
普通需氧培养瓶：采血量4ml,用于未使用 抗菌素患者的需氧培养。主要用于小儿。
建 议
不管患者是否使用过抗生素，是 做细菌培养还是真菌培养
成人
小儿
采血量5ml
采血量4ml
注意事项：
1． 2．
采集标本以清晨为佳，以减少口腔正常 做结核分枝杆菌和真菌培养的标本若不
菌群的污染，采集前先用漱口液充分漱口。
能及时送检，应放4℃冰箱保存，以免杂菌生
长。（血培养瓶室温）
3．
作结核分枝杆菌检查，痰量要多或留取
24小时痰液，以提高阳性检出率。
穿刺液标本
脑脊液
采集时间： 怀疑为脑膜炎的病人，应立即
标本采集是指采集患者体内的
一小部分血液、体液、排泄物、分 泌物以及组织细胞等标本进行检验， 以反映机体正常的生理现象和病理 改变。
标 本 采 集
标本采集正确与否与检验结果的 准确性有密切的关系
因此，我们应掌握正确的标本采 集方法。
协助明确疾病诊断
推测病程进展
制定治疗措施
观察病情
遵照医嘱
充分准备 严格查对
注意事项
虽粪便含有多种杂菌，但应尽量采
用无菌容器（一次性无菌平皿）。
为提高检出率，要采集新鲜粪便作 培养，且应挑取其脓血、 粘液部分。
四、痰及上呼吸道标本的采集
采集痰标本作细菌培养，或
涂片后经特殊染色以检查细菌、 真菌或抗酸杆菌等，以助诊断；
从咽部及扁桃体采取分泌物作细
菌培养或病毒分离
痰及上呼吸道标本
注入血标本的方法
注意事项
（1）严禁在输液、输血的针头
处抽取标本，以免影响检验结
果。（最好在对侧采集）
注意事项
（2）若同时抽取几个项目的血标
本，一般注入容器的顺序为： 血培养瓶→抗凝瓶→干燥试管.
动作要迅速准确，避免溶血。
血标本的微生物学检查
1.采血时间及次数：一般应在抗生素治疗前， 发热初期或高峰时抽血。
采集标本时必须注意无菌操作，使用密 闭的无菌容器，避免污染杂菌 采集标本后应尽快送检，否则病原菌会 死亡而影响细菌检查的正确性 采集的标本中不得加防腐剂或消毒剂
报告时间
涂片找细菌、真菌、隐球菌、结核 杆菌及白带常规等，一般是当天发 报告。(周末除外) 普通细菌、真菌培养，若为阴性2-3
天发报告，若为阳性4-5天发报告。
注意事项：
②如果只采集了一管脑脊液，应先送细 菌室做细菌培养，再做脑脊液生化、常 规等检查
③腰穿时应严格无菌操作 ④不需要加入防腐剂 ⑤作脑脊液培养时，建议同时作血培养
穿刺液标本
其他穿刺液（胸腹水、心包液、关节液、 鞘膜液等） 采集时间：当怀疑感染存在，应尽早采集 标本，一般在患者使用抗菌药物之前或停 止用药后1-2日采集 采集方法：采用无菌方法用注射器抽取体 内可疑感染部位的液体，注入无菌试管立 即送检
临床微生物标本的采集与送 检
标本采集的意义和原则 标本的运送与拒收原则 血液标本采集 尿标本采集
主 要 内 容
粪便标本采集
痰标本采集
咽拭子标本采集
正确规范的采集和运送标本
正确地选择检查目的和方法
应用良好的检测技术和方法，提供准确的结果或报告
临床感染性疾病的诊断和治疗
标 本 采 集
二、尿液标本的采集
留取尿液标本作物理、 化学、细菌和显微镜等检
查以助诊断和观察疗效。
尿液标本
采集时间： 一般原则 通常应采集晨起第一次
尿液送检。原则上应选择在抗菌药
物应用之前采集尿液。
尿液标本的采集时间
A.
结核分枝杆菌感染 留取晨尿或24小时
尿的沉渣部分10-15ml作涂片检查，若
为培养，患者应停药1-2天后再采样，
伤寒患者应在发热1-2周内抽血 化脓性脑膜炎、鼠疫或野兔热患者应在发热 1-2d内抽血
a. b.
c.
急性败血症应在24小时内抽血3次或更多次， 并可在不同部位，如左、右手臂或颈部
采血时间及次数
d.
e.
f.
不明原因发热应不定期多次、多部位采 样送检。24小时内不超过3次，如培养 阴性应继续采样送检 急性心内膜炎应在治疗前1-2小时内分 别在3个不同部位抽血，分别进行培养。 亚急性心内膜炎及布鲁菌感染的患者， 除在发热采血外，并要多次抽血（24h 内3-4次）和增加抽血量（可增至 10ml）。
以提高阳性率
B.
沙门菌、钩端螺旋体感染 左右采集
感染后2周
采集方法
中段尿采集方法 （最常用）
集尿法 结核分枝杆菌检查时，可用一清
洁容器，留24小时尿取其沉渣10-15ml送
检
导尿法、肾盂尿采集法、膀胱穿刺采集
法
中段尿采集方法
a.
女性：成年女性外阴部先以肥皂水清洗， 再以无菌水冲洗，然后排尿弃去前段尿， 留取中段尿10ml左右于无菌试管内送检 男性：先用肥皂水清洗尿道口，后用清水 冲洗，留取中段尿 儿童、婴儿：先以无菌生理盐水清洗外阴 部或外生殖器，将无菌试管对准尿道口， 待尿排出后送检
血培养标本
静脉血采集操作步骤及要点
携用物至床边，核对床号、姓名、解释
戴手套，选择静脉，常规系止血带、
消毒皮肤，嘱患者握拳
行静脉穿刺、取血、松止血带、
嘱患者松拳、按压针眼、迅速拔针
穿刺点按压2～3min
血液注入标本瓶内方法 血清标本： 取下针头，将血液顺试管 壁缓慢注入干燥试管（最常
用）内。
时间不应超过24h，最好2h内能送检，
越快越好，以保证结果的准确性。
标本的运送原则
①所有的标本都必须立即送往实验室，最 好在2h内,保存时间不应超过24h. ②最佳的临床标本送检首先取决于所获取 标本的量.量少的标本应在采集后15-30min 内送检. ③对环境敏感的微生物如志贺菌、奈瑟氏 菌和流感嗜血杆菌（对低温敏感）应立即 处理，禁止冷藏脊髓液和生殖道、眼部、 内耳道标本。
注意事项
①严格做好患者抽血部位的无菌操作。严 禁在输液、输血的针头处抽取标本，以 免影响检验结果（要在对侧采集）。 ②注入标本后的血培养瓶务必立即送至临 床细菌室，如因某种原因不能立即送检 时，应将已接种样本的培养瓶放在室温， 切勿放冰箱存放。
注意事项
③每次领培养瓶不宜过多，以防过期，未 使用的培养瓶亦应室温保存（15-30℃）， 切勿放冰箱保存。
注意事项：
由于烧伤的早期创面是无菌的，通过12 小时才可出现大量细菌，因此在烧伤后 12小时内，勿采集创面的标本，否则不 能获得阳性结果
不能立即送检的标本，应放4℃保存；培 养淋球菌、脑膜炎奈瑟菌的标本除外 用药前采集标本，严格无菌采样
细菌培养标本采集注意事项：
采集标本最好能在用药前采样，以提高 阳性率
采集时间:
痰：一般以晨痰为好；支气管扩张症患者， 清晨起床后进行体位引流，可采集大量 痰标本。 咽拭标本：时间上虽无严格限制，但应于 抗菌药物治疗前为好。咽部又是呼吸和 食物的通路，因此亦以晨起后采集为宜
采集方法：
痰液标本： 自然咳痰法：患者清晨起床后，先用朵 贝尔氏液（复方硼砂溶液）漱口，再以 开水或生理盐水漱口，以减少口腔常居 菌群的污染，然后用力自气管深部咳出 第一口痰于无菌痰怀内送检
血标本检验的意义
血液是临床最常见的检验项目
它可以反映血液系统本身的病变
还可判断病人病情进展程度
为治疗疾病提供参考。
血标本采集方法
（一）静脉血标本（最常用） （二）动脉血标本(血气分析)
（三）毛细血管标本（血常规）
静脉血标本分类及目的
血沉、血常规、
全血标本
凝血机制检测等
血清标本
血清酶、脂类、 电解质、肝功能 血中的致病 菌
标本的拒收原则
无标签
不检测，并与送检的医生和 不接收，提醒送检者，要 不接收，告知
护士联系。
送检延误
求重新采集。
送检容器不当或渗漏
送检者，要求重新采集。
标本的拒收原则
标本不符合要求 不接收，联系送检者， 指出不符合要求之处，要求重新采集符 合试验要求的标本.