低氧工作站功能需求
如何正确选择微好氧和厌氧工作站
如何正确选择微好氧和厌氧工作站用于致病菌检测？近来致病微生物的国标检测中，越来越多的致病菌要求在厌氧或微好氧条件下进行增菌或分离培养基上培养，例如志贺氏菌要求在厌氧条件下增菌、空肠弯曲菌要求在微好氧(5% 氧气、10%二氧化碳和85%氮气)条件下培养、产气荚膜梭菌要求在厌氧条件下培养。
如何选择正确的具备微好氧和厌氧两个功能的工作站或培养箱，现根据本人的经验给大家提供几种选择：(一)高级方案：用真正带有氧气浓度探头和二氧化碳浓度探头的厌氧工作站，如英国的H35和H85低氧工作站，可以精确控制氧气浓度和二氧化碳浓度，还可以控制温度和湿度，提供操作和培养一体化的空间，基于PC级的触摸屏控制，是最新一代的技术。
需要做厌氧时，只要换一瓶无氧混合气体，放入钯催化剂，就可以转换为厌氧工作站。
H85 H35(二)中高级方案：用带比例阀的微好氧工作站，工作站内无氧气和二氧化碳探头，气体的混合完全基于比例阀精确控制进气时间。
如VA500，其接四瓶气体(纯氮气、纯二氧化碳、压缩空气和10%氢气/90%氮气混合气)，通过比例阀控制进气时间，也大致可以达到要求的气体浓度，同样可以控制温度和湿度，提供大的操作和培养空间，以及超大的转移闸。
VA 500低氧工作站(三)中级方案：用厌氧工作站通过更换气瓶的方式达到微好氧和厌氧两个功能，市场上有些厂商用这类产品在混淆概念，用厌氧工作站冒充微好氧工作站。
其原理是做厌氧时连接一瓶无氧混合气(5-10%H2，10CO2，80-85%N2)，做微好氧时连接一瓶按要求配制好的微需氧混合气(如5%O2，10%CO2，85%N2)。
这种微好氧培养的方式存在以下不足：1.气体厂精确配制微需氧混合气有一定难度，配制完成后不知道真实的气体组成到底是多少？需要用气相色谱确定。
如果测得偏差太大不合格，怎么处理是个问题？2.工作站内部的气体组成是不断在变化的，微好氧微生物在生长过程中会消耗一部分氧气，产生一部分二氧化碳及其它气体(如硫化氢，挥发性脂肪酸)，另外操作过程也有可能通过转移舱或样品带入氧气，而由于工作站内没有氧气探头和二氧化碳探头，对于腔体内气体组分的变化，仪器不会做出任何的反应。
CCU中央监护工作站技术参数要求
CCU中央监护工作站技术参数要求（含配套6台多功能心电监护机）：一、中央监护工作站一套1.中央监护仪从床边病人监护仪获取实时监护数据，可监测3/5/12导心电，温度, etCO, 无创血压, 有创血压, 心率, 脉率,心律失常, 呼吸率,2C.O./Tblood, RRa, SpHb, SpOC, SpCO, ST2.接入床位数16床，可升级到接入32床和64床的床边监护，支持有线，无线联网3.可选配双屏，双屏显示情况下，每个屏幕可独立显示不同的监护和报警信息。
4.床位布局支持8页显示，每页显示布局可定制化，支持每页独立显示不同内容。
5.单屏可最多显示16个床位6.重点监护界面下医护人员可将需要重点监护的病人监护数据进行半屏或全屏显示，关注特殊病人更为全面的信息。
7.标配宽屏显示器，显示器≥23寸，分辨率1920*1080。
8.三级声光报警，报警信息自动存储以便回顾。
9.报警事件联动功能将报警事件，可显示报警时刻的全部波形（多达30+波形可选），每个波形20秒波形以及报警发生时的相关参数进行关联并同屏显示，方便医护人员全面快捷了解病人的状态。
10.可直接通过中央站对联网的床旁监护仪NBP模式，自动测量间隔，启动/停止NBP测量等进行控制，提高工作效率，减少工作量。
11.* 中央监护系统可存储所有波形的全息波形数据的存储回顾功能≥240小时12.* 息中央监护系统每个病人可存储3000组所有报警信。
13.中央监护系统每个病人可存储最少240小时趋势表，用户可选择的1秒至2小时的时间间隔，并支持无期限的患者数据存储。
14.中央监护系统每个病人可存储240小时趋势图，分辨率为1秒，15.中央监护系统每个病人可存储最少3000组所有NBP数据，16.支持20秒（前7秒+后13秒）实时数据和波形、存储数据和波形打印，支持打印报警事件列表。
17.打印20秒（前7秒+后13秒）的实时波形，方便医护人员在发现病人异常状况时第一时间对病人信息进行打印归档，减少后续数据和波形检索的麻烦。
低氧活细胞工作站重要性
现今，越来越多的专家学者开始使用低氧工作站来培养细胞，这是对旧的试验方法的革新，也是对科学研究者的一次观念上的革新。
因为只有低氧培养细胞，才能够完全在体外模拟细胞在体内的生存环境，让细胞在一个完全无压力的环境下生长。
首先，我们需要认识两个概念：
1.低氧培养：当细胞或器官中的氧气含量低于空气中的氧气水平时的培
养状态，称为低氧培养。
2.生理正常氧气水平：这取决于是什么细胞或器官，但绝对不是20.9%，
如下图所示。
人体内不同部位的细胞，正常的生理氧气水平不同，如
动脉血为15%，静脉血为5%，脑为2%左右，如果想要在低氧状态下
研究脑细胞，那么氧气水平必须在2%左右，才叫做低氧培养，绝对
不是20.9%。
相同的，人体内其他组织，如肺、肝、肾、脾和心脏等
的正常生理氧气水平都不一样。
所以，我们应该使细胞在正常的生理环境需氧量下培养细胞，才能让细胞在一个完全无压力的环境下生长，才能让细胞的数量和活性都大大提高。
低氧工作站的必要性
为什么使用低氧工作站培养细胞？ 现今，越来越多的专家学者开始使用低氧工作站来培养细胞，这是对旧的试验方法的革新，也是对科学研究者的一次观念上的革新。
这是因为只有低氧培养细胞，才能够完全在体外模拟细胞在体内的生存环境，让细胞在一个完全无压力的环境下生长。
首先，我们需要清晰两个概念： 低氧培养：当细胞或器官中的氧气含量低于生理正常氧气水平时的培养状态，称为低氧培养。
生理正常氧气水平：这取决于是什么细胞或器官，但绝对不是２０．９％，如下图所示。
人体内不同部位的细胞，正常的生理氧气水平不同，如动脉血为１５％，静脉血为５％，脑为２％左右，如果想要在低氧状态下研究脑细胞，那么氧气水平必须低于２％，才叫做低氧培养，绝对不是低于２０．９％。
相同的，人体内其他组织，如肺、肝、肾、脾和心脏等的正常生理氧气水平都不一样。
因此，我们必须用细胞正常的生理环境需氧量来培养细胞，才能让细胞在一个完全无压力的环境下生长，才能让细胞的数量和活性都大大提高。
图中数据来自英国基尔大学干细胞生物学副教授，Ｎｉｃｈｏｌａｓ Ｒ． Ｆｏｒｓｙｔｈ ＰｈＤ 干细胞的标志，是他们的自我更新和维持多分化性的能力。
这方面的能力依赖于其自身微环境复杂信号的平衡。
低氧能够维持胚胎干细胞，造血干细胞，间质干细胞，神经干细胞表型的未分化状态，也能够影响细胞的增殖。
所以低氧培养对于干细胞培养具有决定性的意义（Ａｈｍｅｄ Ｍｏｈｙｅｌｄｉｎ． Ｏｘｙｇｅｎ ｉｎ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ： Ａ Ｃｒｉｔｉｃａｌ Ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｎｉｃｈｅ． Ｃｅｌｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ ７， Ａｕｇｕｓｔ ６， ２０１０）。
与低氧工作站相比，传统的普通培养箱已经不能满足实验的需求，因为传统培养箱存在以下问题： １．不能控制氧气的含量，只能控制二氧化碳的含量。
２．不能操作只能培养，需要传代或检测的时候，需要从培养箱中取出，很容易受到污染，而且来来回回经常开培养箱取样品，箱内环境经常大幅度改变，非常不利于培养。
贵州自动制氧机方案
贵州自动制氧机方案在贵州省，由于地势较高，氧气含量较低，给部分居民的生活造成了困扰。
为了改善这一状况，贵州省政府决定引入自动制氧机，以提供高质量的氧气供应。
本文将详细介绍贵州自动制氧机方案的设计与实施。
一、方案背景贵州省地势高，氧气含量相对较低，导致部分居民在高海拔地区面临吸氧困难的问题。
为了解决这一问题，贵州省政府决定引进自动制氧机，为需要氧气治疗或吸氧的居民提供便利的氧气供应。
二、方案设计1. 选址根据贵州省各地区居民的需求和便捷性考虑，计划在省内主要城市以及高海拔地区设立自动制氧机站点。
这些站点将尽可能覆盖较大范围，以方便居民的接触和使用。
2. 供氧机型选择在选择供氧机型时，我们考虑了效率、噪音、能耗等因素。
最终，决定引进高效静音自动制氧机，以确保氧气的稳定供应，降低噪音污染，并提高能耗效率。
3. 设备安装与调试为确保自动制氧机的正常运行，需要进行设备安装与调试工作。
安装人员将根据现场情况合理安排设备的位置与布局，并进行必要的管道连接和电源等操作。
调试工作包括设备性能测试、参数调整等，以确保自动制氧机的正常运行。
4. 运营管理为了保障自动制氧机的长期稳定运行，将建立完善的运营管理体系。
运营团队将负责设备的日常巡检、维护、保养，并及时处理设备故障。
同时，还将建立客户服务中心，解答用户咨询和提供相关氧气使用指导。
三、方案实施1. 方案推广方案实施前将进行方案推广工作，通过各种传媒渠道，宣传自动制氧机的使用好处以及服务覆盖范围。
同时，政府还将与医疗机构和社区组织合作，推广自动制氧机的使用，提高居民的认知度和使用意愿。
2. 设备采购与安装在方案实施的初期，政府将进行设备的采购，在各选址点进行设备安装。
政府还将与相关厂商签订长期合作协议，确保设备的稳定供应和技术支持。
3. 测试与验收在设备安装后，将进行测试与验收工作。
测试工作将检测自动制氧机的运行状态、氧气纯度、供氧流量等参数。
验收工作将由相关专业人员进行，确保设备符合国家标准和技术要求。
利用低氧／厌氧工作站建立H9c2细胞缺氧复氧模型的探讨
利用低氧／厌氧工作站建立H9c2细胞缺氧复氧模型的探讨储倩雯;李伟秋;鲁诗史;黄丹梅;张艳美【摘要】目的：利用低氧／厌氧工作站，结合不同的缺氧条件，探讨建立H9c2细胞缺氧复氧（hypoxia／reoxygenation， H／R）模型的最佳方法。
方法缺氧时将H9c2细胞置于低氧／厌氧工作站中，分别以完全培养基，无糖培养基和酸性缺氧液培养1、2、4、6、8 h，缺氧后换用完全培养基于培养箱中按常规条件培养1 h。
流式细胞仪测定细胞内活性氧（ reactive oxygen species ，ROS）含量，噻唑蓝（methyl thiazolyl tetrazolium，MTT）法检测细胞生存率，倒置显微镜下观察H9c2细胞形态变化。
结果与对照组比较，缺氧时以完全培养基和无糖培养基处理的H9c2细胞H／R后，细胞内ROS含量和细胞存活率随缺氧时间延长无明显改变，且倒置显微镜下未观察到明显的形态变化。
缺氧时以酸性缺氧液处理的H9c2细胞，随H／R时程的延长，细胞内ROS含量不断增加（P＜0.01），且细胞存活率逐渐降低（P＜0.01），倒置显微镜下观察到细胞H砄1 h／R：1 h后开始出现部分细胞皱缩，少量坏死细胞漂浮，随时间延长损伤加重；缺氧8h后，细胞皱缩成圆形，大量坏死细胞漂浮，复氧1h后可见细胞膜表面不平滑，复氧液中仍有少量坏死细胞漂浮。
结论采用低氧／厌氧工作站，并结合酸性缺氧液，可成功建立重现性非常好的H9 c2细胞H／R模型。
%Objective To investigate optimal method of establishing hypoxia/reoxygenation(H/R) model ofH9c2 cell by using hypoxia/anoxic workstation under different conditionsin hypoxia.Methods H9c2 cell was placed into hypoxia/anoxic workstation and simultaneously cultured with complete medium, glucose-free DMEM and acidic hypoxic solution for 1,2,4,6 and 8 h respectively, and then reoxygenated with complete medium for 1 h in normoxic incubator.Thelevel of ROS was measured by flow cytometry.The cell viability was detected by MTT assay.The cellular morphology was observed by inverted microscope.Results With the extension of cell hypoxia time, there were no significant differences in the ROS level and cell viability in complete medium-and glucose-free DMEM-treated H/R groups compared with control group(P<0.05).There was no obvious morphologic change observed with inverted microscope, either.Nevertheless, when H9c2 cells were treated with acidic hypoxic solution in hypoxia, the ROS level continuously increased and the cell viability decreased with the extension of cell hypoxia time ( P<0.01 ).Since H:1 h/R:1 h, some of the cells shrunk and a few necrotic cells floated in the media under the inverted microscope , and the damage was aggravated with the extension of hypoxia time.After the cells were exposed in hypoxia for 8 h, they wrinkled to be round and a large number of floating necrotic cells were observed.When the cells were reoxygenated for 1 h, the cytomembrane was not smooth and there were still a few necrotic cells floating in culture dish .Conclusion The H9c2 cell H/R model with good repeatability can be established successfully by using hypoxia/anoxic workstation combining with acidic hypoxic solution.【期刊名称】《中国生化药物杂志》【年(卷),期】2015(000)011【总页数】4页(P11-14)【关键词】低氧/厌氧工作站;H9 c2细胞;缺氧复氧模型【作者】储倩雯;李伟秋;鲁诗史;黄丹梅;张艳美【作者单位】汕头大学医学院药理教研室，广东汕头 515041;汕头大学医学院分析细胞实验室，广东汕头 515041;汕头大学医学院第一附属医院药剂科，广东汕头 515041;汕头大学医学院药理教研室，广东汕头 515041;汕头大学医学院药理教研室，广东汕头 515041【正文语种】中文【中图分类】R363心肌缺血再灌注(ischemia/reperfusion， I/R)损伤是心脏缺血性疾病和心脏外科手术后常见的一种病理生理现象。
低氧工作站哪些优势可以描述
低氧工作站哪些优势可以描述
低氧工作站作用和构成
低氧工作站是一种用于细胞培养、细胞实验和生化实验的实验室设备。
它通过控制培养箱内的氧气浓度，使细胞能够在低氧环境下生长和繁殖。
低氧工作站由主控制箱、气体控制箱、培养箱和氧气传感器等组成。
工作原理是基于氧气分子的渗透性和扩散性。
主控制箱中放置着氧气控制器，在气体控制箱内部会通过气体阀门将氧气和氮气等气体控制在一定比例下，向培养箱内不断注入气体。
在培养箱内部，设置了氧气传感器，可以实时监测培养箱内的氧气浓度，并将数据反馈给主控制箱。
主控制箱根据氧气传感器测量的数据，精确地控制氧气的浓度。
低氧工作站产品特点：
1、尺寸小巧，非常适于小样本的研究工作；
2、采用高质量材料制造，四面透明可视，并具有良好的绝缘性和抗腐蚀性；
3、提供全自动湿度控制、氧气检测系统、内置电源插座、聚光照明、催化剂、培养皿搁架、手套；
4、传输舱：在仪器顶部的传输舱，一次可放10只培养皿，可快速取放培养皿；
5、裸手操作：只需裸露双手就可操作，操作者手腕周围有空气密封垫，更大有效工作空间，使用气体更加节省，操作人员可在数秒内将手伸入工作台内，可保持很好的厌氧环境；。
7.细胞低氧工作站
细胞低氧工作站一、主要用途：用于微生物在厌氧（微氧）环境中的接种、连续培养、传代，培养基转换和观察、鉴定等工作。
可同时对国标中志贺氏菌（厌氧、41.5℃）、空肠弯曲菌（微需氧、25℃）、产气荚膜梭菌（厌氧、36℃）、肉毒杆菌（厌氧、35℃）、乳酸菌（厌氧、36℃）进行培养，也可同时对需要不同二氧化碳含量的微生物进行培养。
二、功能特点。
1、控制氧气浓度，模拟体内低氧环境。
2、控制二氧化碳浓度，提供细胞生长的最佳条件。
3、全自动湿度控制系统，完美地湿度调控。
4、HEPA过滤系统。
5、无袖操作与传统袖套操作系统可选。
6、厌氧模式与低氧模式灵活切换，也可以只配置艳厌氧模式。
三、技术参数。
1、配置快速转移闸容量，容量≥12L，转移闸利用N2吹洗，在60秒内顺利完成将样品或设备转出或转进工作站内。
2、转移闸智能保护功能，保证内部环境不受影响。
3、内部尺寸：高度≥535mm,宽度：≥760mm，深度≥580mm。
4、侧面板可以整体取下，用于小型设备的出入，箱体的清洁，清洁箱体可用消毒液，有效消毒灭菌，对箱体无损伤。
5、厌氧模式采用双气，低氧模式采用三气。
6、参数设置，设备状态监控及报警都在彩色7寸触摸屏上实现.7、全自动微度控制系统，最高湿度可达90%（选配超声波加湿系统情况下）。
8、标配荧光灯254nm紫外灭菌灯.9、HEPA过滤系统可使箱内环境达到100级。
10、标配单皿转移系统，用于转移单个小培养皿。
11、标配厌氧指示系统，指示液与指示泵，可以选配数字厌氧指示（0-3000ppm）。
12、氧气控制范围：厌氧模式：低于50ppm。
氧气模式：0.1-23%递增。
13、二氧化碳控制范围：0.1-20%递增,0.1%递增。
14、温度控制范围：0-85%。
15、温度：控制温度范围：室温+3℃至50℃，显示精度0.1℃，均一度±0.3℃。
16、标配无袖快速操作系统，满足完全裸手操作，无需抽真空充氮气，可选配传统套袖操作系统。
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8月12日具体配置及参数一、低氧工作站：1.★箱体材料：箱体采用材料须经退火处理的聚丙烯酸(亚克力)，厚道≥10mm；2.★可容纳≥900个90mm的平皿，培养区域不小于210升；3.★内置HEPA高效空气过滤器，腔体内达到一级净化标准（ISO 14644-1Class 3）；4.★操作界面采用PLC可编程逻辑控制系统，可设置五个不同级别的用户密码及工程师代码，触屏上清晰显示警报和状态信息5.转移闸容积不小于12升，采用N2吹洗，可容纳至少40块培养皿，在60秒内顺利完成将样品或设备转出或转进工作站内；6.转移闸供气：氮气吹洗，60秒内完成；7.★具有转移闸智能保护功能：在转移闸内部不完成氮气气体吹洗的情况下，无法打开内部自动门。
在内门打开的时候，外部转移闸的门也无法打开8.氧气控制范围及精度：0.1%-20%, 精度0.1%；9.★氧气探头使用寿命至少2年。
氧气探头经AD转换，将0%及20.9%两点的电化学信号强弱用直观的数字显示，探头性能及寿命情况由数字显示；10.氧气探头校正：直接用压缩空气和纯氮气校正；11.配置红外二氧化碳控制模块，二氧化碳控制范围0.1%--15%，显示精度0.1%，探头控制精度±0.02%+2%读数值；12.温度控制范围：高于环境温度5℃至45℃，腔体内温度均一性±0.6℃，显示精度0.1℃，控制精度0.1℃；13.双灯管带通风降温装置的荧光照明系统，带最长240分钟延时关闭功能；14.★仪器内置降低湿度控制单元，采用Peltier半导体冷凝器降低湿度；15.标配舷舱式袖套，舷舱内由无线脚踏开关控制抽真空及充氮气；16.配置裸手操作装置；17.配置内置双电源插座；18.配置可移动前面板，19.配置数据记录模块，记录氧气、温度、湿度、二氧化碳浓度的变化情况，可直观在屏幕上查看数据曲线；20.须具备以下可通过后期升级实现功能扩展：1). 主动增湿系统：水滴泵至105度加热板产生湿蒸汽，并自动喷入腔体内，可控制相对湿度最高达到90%，2). 真空吸液口：配合外置真空泵，用于细胞培养过程换培养基时使用，科研人员无需取出细胞培养瓶即可在工作站内更换培养液详细配置：1. 低氧细胞工作站（标配可移动前面板），1台；2. 氮气减压阀，1个3. 氢气减压阀，1个4. 空气减压阀，1个5. 二氧化碳气减压阀，1个6．内置氧气探头，1个7. 内置红外二氧化碳探头，1个8. 蒸发除湿器，1个9. HEPA过滤系统，1套10. 内置双电源插座，1 套11. 自动袖套充气系统，1个12. 袖套，1副13. 手套固定O型圈，2个14. 手腕密封圈，1个15. 气管连接工具，1套16. 滑石粉，1份二、小动物荧光发光三维成像系统：主要供能及应用领域1、系统需具备以下功能：1）具备生物发光及荧光二维成像功能；2）具备可提供深度、浓度信息的生物发光及荧光三维成像功能；3）具备基于切伦科夫辐射原理的放射性同位素成像功能；4）数据可与CT、MRI、PET/SPECT等其他分子影像系统联用。
2、系统可应用领域：神经疾病、癌症、干细胞、感染、炎症、免疫疾病、心血管疾病、代谢疾病、基因治疗等多种疾病分子机理及相关药物研发的临床前研究，并可提供相应技术方案及配套试剂。
主要技术参数1、成像主机*1.1、采用背照射、背部薄化科学一级CCD。
1.2、CCD采用电制冷方式，工作温度需达到绝对-90℃，温度可视化。
1.3、CCD尺寸不小于2.6×2.6 cm；CCD有效像素数量不少于800万像素；CCD量子效率大于80%；CCD读数噪音不高于3个电子（bin=1,2,4）。
1.4、采用定焦镜头，最大光圈可达f/1，可自动聚焦。
*1.5、成像视野范围可调，能够满足至少5只小鼠同时成像；荧光光源采用长寿命高效激光光源。
*1.6、同时具备荧光反射及透射扫描成像模式，能有效进行浅层及深层荧光信号的成像。
*1.7、发射滤光轮安装不得少于18个高分辨窄带发射光滤片，覆盖波段不低于490-850nm。
*1.8、具备偏振镜激光扫描器，用于动物体表三维拓扑结构的绘制。
1.9、仪器具备定时自检功能，可自动去除仪器本身产生的背景信号，仪器出厂前需经过国际标准的NIST光学校准。
2、图像获取及分析软件2.1、软件包含生物发光及荧光二维及三维图像获取及数据分析模块；具有完成生物发光及荧光二维成像、光谱分离、三维成像的智能向导功能，可简单快速的进行以上操作。
2.2、具备荧光光谱分离算法，可进行背景光去除及多探针成像分析所需的纯光谱信息提取、多光谱分离、信号光谱特征分类、图像叠加等操作。
2.3、定量标准以动物体表单位时间、单位面积、单位弧度发出的光子数作为定量单位，确保在不同成像参数获得的结果一致。
2.4、具备圆形、矩形、轮廓线、不同规格微孔板等多种ROI圈选模式，用于信号的定量分析。
*2.5、具备生物发光及荧光三维结果定量方法，能给出光学信号在体内的深度、发光体积、定位、三维发光强度等三维定量信息，并结合细胞或荧光探针的体外微孔板成像结果，给出体内发光细胞的数量或荧光探针的浓度信息。
2.6、可输出或载入DICOM影像格式，具备完成多模式影像融合的功能，能实现三维光学影像与CT、PET、SPECT及MRI等影像结果的融合叠加。
3、附件组件3.1 配备与Bruker MRI 7T联用所需的小鼠成像转移适配器组件。
3.2配备与Siemens Inveon联用所需的小鼠成像转移适配器组件。
3.3配备大鼠气体麻醉接口。
4、小动物气体麻醉系统4.1、气体麻醉系统的蒸发罐、真空泵、流量控制、尾气吸收等装置均集成化；4.2、具备预麻醉盒，用于小鼠成像麻醉前的预麻醉；麻醉系统同时连接于预麻醉盒及成像主；可同时麻醉5只以上小鼠。
5、技术能力5.1、为保障发表文章的严谨性，需保障我校科研人员在使用该仪器时在生物发光及荧光蛋白活体成像领域不侵犯第三方的技术专利。
5.2、用以此技术发表过高水平的文章，提供在Nature、Sciences、Cell上发表的超过200篇文章供参考（提供文献名单）。
5.3、原厂具有生物发光细胞株及载体40种以上，小动物荧光试剂40种以上（包括酶激活类、靶向类、血管及生理学成像类、荧光染料及纳米颗粒类），且需要提供具体清单。
6、电脑工作平台操作系统：Windows 7或以上；核心处理器：Quad Core 2.8 GHz或以上；内存：12 GB, 1333MHz DDR3，SDRAM或以上；显卡：2GB NVIDIA Quadro 4000 with 256 CUDA Cores或以上；硬盘：1 TB SATA 7200 RPM或以上；显示器：20”flat panel monitor或以上；标配网卡及CD/DVD 刻录光驱；标配USB 2.0接口。
详细配置：1、小动物荧光发光三维成像主机一套（包含成像主机一台，图像获取软件一个，不少于4个数据分析软件以及数据采集及分析工作站一台）2、小动物气体麻醉装置一台3、与Bruker MRI联用所需小鼠成像转移适配器组件一套4、与Siemens Inveon Mico-CT联用所需小鼠成像转移适配器组件一套大鼠气体麻醉接口一个三、双转盘活细胞共聚焦实时成像分析系统：1、高速共聚焦扫描单元*1.1微透镜双转盘扫描，针孔直径50 μm，固定转盘转速5000rpm，扫描帧速≥1000 fps；1.2提供多路激光接口，内置不少于三组发射光全反射镜二色分光镜切换，提供多模式升级空间，端口切换皆能由软件电动控制；*2、多光谱分析探测系统具备多光谱探测器，利用液晶可调谐滤光系统（可见光范围的明场及荧光检测），步进1nm，采集每个像素点的光谱数据曲线，“纯光谱计算技术”和光谱学、成熟的算法完全扣除背景荧光的干扰，并可对同一样本的9种的荧光标记和10种明场标记进行检测、分离及定量，能够扣除自发荧光，去除信号间断串色干扰，提高信噪比。
3、高灵敏度CCD探测器（EMCCD）3.1探测头类型：真空封装气/水冷式探测头EMCCD；单位像素面积≥16 µm×16µm；有效成像面积≥8 mm×8 mm；最大读出速率≥60fps @ 512×512；*3.2最大电子倍增增益≥1200倍；3.3、光电转换量子效率：> 90%；4、激光耦合单元4.1包含405、488、561、640nm固态激光器，光束出口功率≥50mW；4.2激光控制：每个激光器均由独立的驱动电路或声光控制器（AOTF）单独控制，确保光路输出的灵活性和准确性，输出功率0~100%连续可调；4.3提供三路激光输出端口，分别导向至共聚焦扫描单元、FRAP模块和TIRF模块；激光输出在端口间的切换为软件控制；5、同步控制系统5.1主要同步部件：共聚焦扫描单元，CCD，明场光闸，激光切换，高速压电陶瓷Z轴扫描平台，电动X-Y载物台和激光诱导动力学模块；*5.2同步方式：以智能光闸方式实现EMCCD曝光与转盘转速的自动同步化，转盘转速维持5000rpm最高速运转；5.3光闸模式优化：软件提供最大速度、最大样品保护和两相平衡三种光闸管理模式；在样品保护模式下，确保激光照射样本只在CCD采集图像时进行，CCD传输数据时激光闸口关闭，减少光漂白和光毒性的影响；6、全电动倒置荧光显微装置6.1具有DIC、荧光功能，电动滤色块、电动聚光镜、电动物镜转轮；100%目镜/左侧/右侧光路分光，左、右及目镜光路间全电动切换；6.2显微镜透射LED冷光源；荧光滤块：蓝紫，蓝色，绿色；6.4物镜：10×，20×，40×，Plan Apo DIC；60×oil Plan Apo DIC6.5硬件防漂移系统，和共聚焦系统配合使用以有效解决系统长时间工作时载物台的漂移问题；7、显微镜适用电动X-Y载物台7.1步进精度<0.05μm，往复精度<0.1μm；7.2 行程114mm×75mm，最大移动速度60mm/s；具备智能扫描技术（IST）确保定位准确可靠；8、及高速压电陶瓷Z轴马达8.1载物台型高速/高精度压电陶瓷Piezo Z-stage；8.2往复精度误差：<0.5%行程；Z轴任意两点间移动速度<20 ms；负载：≥500g；9、显微镜适用细胞培养装置：恒温培养室：系统工作时提供事宜的细胞培养环境，与NanoZ匹配；10、防震台：自动水平，自动充气，执行元件采用德国FEFTO静音空气压缩机气源，噪声低；11、图像采集工作站11.164位Windows XP/Windows 7操作系统；双CPU：Intel Xeon X5550 –2.66GHz×811.2 显卡：显存≥1GB；硬盘：支持双硬盘同时高速读写，2X500GB (7,200 rpm) SATA II hard drive，SATA RAID 0 (2 hard drives)；内存：32 GB，30′′宽屏液晶显示器，分辨率可达2560×1600；12、采集控制软件*12.1 具备3D Stitch拼图功能，可采集长时程多视野3D拼接图像；*12.2 具备高级Rules逻辑程序编辑功能，软件可响应时间、设备参数或键盘快捷键变化等触发条件，自动调整采集方案或执行暂停、恢复及终止采集程序命令；12.3 提供“样品保护”模式和“采集速率”模式，提高采集方案可控性；具备参考通道（Reference Channel）功能，可对荧光通道进行3D层切的同时，仅采集单层明场通道图像；*12.4 图像采集结果以Library数据集的形式存储，可直接在此Library中构建三维图像和进行三维定量分析，以此实现采集和专业分析间的无缝切换。