水势测定方法
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告实验名称：植物组织水势的测定实验目的：了解各种植物组织中的水势变化规律，学习测定水势的实验操作方法。
实验原理：植物体内水势是维持植物生命活动的重要因素之一，水势可以影响水分的吸收和输送。
本实验采用“压延法”来测定不同植物组织（根、茎、叶）的水势大小。
实验步骤：1. 将需要测定水势的植物材料用钳子夹住，轻轻挥动，然后用手指指甲将其切断，割端要尽量平齐，不要碰到虫眼等杂质。
2. 将切口快速放入水中，利用吸水作用使水分上升，排除空气。
3. 将切口快速从水中取出，然后将其放到压延仪内，尽可能保持植物细胞的原有形态。
4. 向下轻压压延仪的拉杆，停留一段时间几秒钟，等到细胞的状况稳定后，读取示数，记录下此时的长度和标尺读数。
5. 再稍微压紧，停2~3秒左右，再读取示数，再记录下此时的长度和标尺读数。
6. 将杆恢复到原位，并将植物组织切口处擦干净。
7. 分别测定不同植物组织的水势。
根据水势的特点，以水分势值为y轴，切口位移长度为x轴，绘制出水势变化的曲线。
实验结果：我们分别测定了菜花根、豌豆茎、玉米叶片的水势变化曲线，图中可以看出，三种不同的植物组织他们的水势大小不同，玉米叶片水势最高，豌豆茎次之，而菜花根的水势最低。
这说明植物的吸收生长需要水分的支持，不同器官的水势不同。
实验结论：本实验内容重点在于掌握测水势的方法和水势的变化规律，同时还有机会深入了解植物的生长过程。
测定出不同植物组织的水势差异信息，说明不同的植物器官在吸水输液中扮演着不同的角色。
实验有效地理论与实践相结合，深化了我们对植物体内水分代谢的认识。
测定植物组织水势的方法及其原理
测定植物组织水势的方法及其原理测定植物组织水势是研究植物生理学中的重要课题之一。
水势是指植物细胞内外水分的自由能差，是植物体内水分运输和调节的关键指标。
本文将介绍几种常用的测定植物组织水势的方法及其原理。
一、压力室法压力室法是一种直接测定植物组织水势的方法。
其原理基于植物细胞内外水势的平衡关系。
在实验中，将待测组织样品放入一个密封的压力室中，通过增加压力，使压力室内外的水势达到平衡。
通过测量加入压力之前和之后的压力差，可以计算出组织的水势值。
二、渗透势法渗透势法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于渗透压对水势的影响。
在实验中，将待测组织样品放入含有不同浓度溶液的渗透槽中，使组织与外界形成渗透平衡。
通过测量组织与溶液之间的渗透压差，可以计算出组织的水势值。
三、压力-容积曲线法压力-容积曲线法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于植物细胞的压力-容积关系。
在实验中，将待测组织样品置于不同的外界压力下，测量组织的容积变化。
通过绘制压力-容积曲线，可以确定组织的压力势和水势值。
四、气体法气体法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于气体扩散对水势的影响。
在实验中，将待测组织样品置于密闭的容器中，通过测量容器内气体的湿度变化，可以计算出组织的水势值。
以上所述的方法各有优缺点，选择合适的方法取决于实验目的、样品特性和实验条件等因素。
此外，还可以结合其他生理指标的测定结果，综合分析植物组织的水势状况。
测定植物组织水势的方法包括压力室法、渗透势法、压力-容积曲线法和气体法等。
这些方法基于不同的原理，通过测量不同的参数来间接或直接地确定植物组织的水势值。
在实际应用中，需要根据具体情况选择合适的方法，并结合其他指标进行综合分析，以全面了解植物的水分状况。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
一、目的
学会用小液流法测定植物组织的水势
二、材料用具及仪器药品
花生叶片、试管、移液管（10ml，0.1ml）、洗耳球、镊子、小方块、钻孔器、牙签、玻璃棒、蔗糖、次甲基蓝
三、方法步骤
1、将1mol/L蔗糖溶液的母液分别配成0.1、0.
2、0.
3、0.
4、0.
5、0.6mol/L的蔗糖溶液各10ml分别注入6支大试管中，摇匀
2、从上述的大试管中各取2ml溶液，分别放到另6支小试管中，各试管塞上软木塞
3、用钻孔器钻取叶圆片（花生叶、菠菜均可），依次分别在小试管的蔗糖溶液中各放入叶圆片40片（钻孔器的直径为6mm），叶圆片要全部浸在溶液中，塞上木塞，每隔5分钟摇动一次
4、30分钟后，用牙签取次甲基蓝结晶少许，分别投入小试管中，摇匀
5、用0.1ml的移液管从小试管中吸取溶液约0.1ml，然后将之插入相对应浓度的大试管中的中部，慢慢放出蓝色液，并观察记录小液流的流向，从中找出小液流停止不动的该溶液的浓度（每一浓度配备0.1ml移液管一支）
6、量出该蔗糖溶液的温度
7、根据公式φs=-CiRT，求出组织的水势
四、实验报告
i：渗透系数R：气体常数C：溶液的摩尔浓度
计算所测材料的水势φn（φs）
五、思考
在干旱地方生长的植物的水势较高还是较低？为什么？。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定是研究植物水分平衡的重要方法之一。
水势是指植物细胞内水分与外界水分之间的压力差，是植物水分平衡的重要指标。
水势的测定可以帮助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
植物组织水势的测定方法有很多种，其中比较常用的是压膜法和压力室法。
压膜法是将植物组织放在一块半透膜上，然后在膜的一侧施加一定的压力，使水分从组织中流出，从而测定组织的水势。
压力室法则是将植物组织放在一个密闭的压力室中，通过改变室内的压力来测定组织的水势。
在进行植物组织水势的测定时，需要注意以下几点。
首先，要选择新鲜的、健康的植物组织进行测定，以保证测定结果的准确性。
其次，要在测定前将植物组织放在水中浸泡一段时间，使其达到水分平衡状态。
最后，在进行测定时要注意操作的精细和准确，以避免误差的产生。
植物组织水势的测定可以帮助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
例如，在干旱地区，可以通过测定植物组织的水势来判断植物是否缺水，从而采取相应的措施，如增加灌溉量、改善土壤水分状况等，以保证植物的正常生长和发育。
植物组织水势的测定是研究植物水分平衡的重要方法之一，可以帮
助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
在进行测定时，需要注意操作的精细和准确，以保证测定结果的准确性。
植物细胞水势测定方法
植物细胞水势测定方法植物细胞水势的测定可有趣啦。
一、小液流法。
这是比较常用的一种方法哦。
我们得先准备好蔗糖溶液，配成一系列不同浓度的，就像做魔法药水一样。
把植物组织切成小块，分别放入这些不同浓度的蔗糖溶液里。
放置一段时间后，植物组织和蔗糖溶液之间就会发生水分的交换。
然后我们从每个溶液里取一点溶液，用一种特殊的小液滴装置，把它滴到对应的没有放过植物组织的蔗糖溶液里。
如果小液滴下沉，就说明植物组织里的水势比这个蔗糖溶液的水势低，水就从蔗糖溶液跑到植物组织里去了；要是小液滴上浮呢，那就是植物组织水势比蔗糖溶液高，水从植物组织跑到蔗糖溶液啦。
通过这种方式，找到小液滴既不上浮也不下沉的那个蔗糖溶液浓度，就能根据公式算出植物细胞的水势啦。
二、压力室法。
这个方法有点像给植物细胞做个小压力测试呢。
把植物的茎或者叶柄切断，然后迅速把它放到压力室里面。
慢慢给压力室增加压力，就像给植物细胞打气一样。
当看到从切断的地方有汁液开始往外冒的时候，这个时候的压力数值就和植物细胞的水势有关系啦。
这个方法对于那些比较高大的植物的水势测定很有用哦。
不过操作的时候要小心一点，就像对待一个小宝贝，可不能太粗鲁啦。
三、露点法。
这就更神奇啦。
有专门的露点仪呢。
把植物组织放在一个小空间里，这个仪器可以检测这个小空间里的水汽情况。
植物细胞的水势会影响周围水汽的状态，通过测量水汽达到露点时的一些参数，就能算出植物细胞的水势。
就好像是通过水汽的小秘密来窥探植物细胞水势的小秘密一样。
不同的方法都有它们的特点，在实际测定植物细胞水势的时候，我们可以根据植物的种类、实验的条件还有我们自己的小喜好来选择合适的方法呢。
不管用哪种方法，都是为了更好地了解植物细胞里的小世界，就像打开一扇通往植物秘密花园的小窗户。
水势测定方法
叶片水势测定方法---小叶流法一、目的通过实验，掌握用小液流法测定植物组织水势的原理和方法。
二、原理水势代表水的能量水平，水总是从水势高处流向低处。
水进入植物体内并分布到各组织器官中的快慢或难易由水势差来决定，水势越高，植物组织的吸水能力越差，而供给水能力越强。
当植物组织与一系列浓度递增的溶液接触后，如果植物组织水势大于（或小于）外液的水势，则组织失水（或吸水），使外液浓度变低（或变高），密度变小（或变大）。
如果植物组织的水势等于外液的水势时，植物组织既不失水也不吸水，外液浓度不变。
当取浸泡过植物组织的溶液的小滴（亦称小液流，为便于观察应先染色），分别放入原来浓度相同而未浸泡植物组织的溶液中部时，小液流就会因密度不同而发生上升或下沉或不动的情况。
小液流在其中不动的溶液的水势（该溶液为等渗浓度），即等于植物组织的水势。
三、材料、设备及试剂1. 材料：植物叶片；马铃薯块茎等。
2. 仪器设备：试管；小瓶；小塞子；打孔器(直径0.5㎝)；尖头镊子；移液管（1ml、5ml、10ml）；注射针钩头滴管；刀片。
3. 试剂：1mol·L－1蔗糖液；甲烯蓝粉。
四、实验步骤1. 系列糖浓度配制1.1 取干燥洁净试管6支，贴上标签，编号，用1mol·L－1蔗糖母液配成0.05、0.1、0.15、0.2、0.25、0.30 mol·L－1浓度的糖液，各管总量为10ml，并塞上塞子（防止浓度改变），作为甲组。
1.2 另取干燥洁净的小瓶6个，标明0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30mol·L －1浓度,分别从甲组取相应浓度糖液1ml盛于小瓶中，随即塞上塞子，作为乙组。
2. 取样及测定2.1选取生长一致的叶片，用直径为0.5cm的打孔器钻取圆片，在玻璃皿内混匀，然后用镊子把圆片放进乙组小瓶中，每瓶放15～20片，（若采用植物块茎如马铃薯，先用打孔器钻取圆条，然后切成约1mm厚圆片，每瓶放5片），立即塞紧塞子，放置40min左右，其间轻轻摇动几次，以加速平衡。
植物组织中水势的测定
小液流法测定植物组织水势的原理 ？
商务工作计划通用模版
植物组织的水势高于外液的渗透势（溶质势） ：
组织吸水，外液浓度变大；ψw植物<ψS
当植物组织与外液接触时发生水分交换：
外液浓度保持不变； ψw植物＝ψS
组织失水，外液浓度变小；ψw植物> ψS
植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势）：
溶液浓度
0.05
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
液滴移动方向
加样器的使用
正确使用： 注意事项：吸取溶液后不能倒置
所取材料在植株上的部位要一致，打取叶圆片要避开主脉和伤口。
取材以及打取叶圆片的过程操作要迅速，以免失水。到实验材料生长处操作。
甲烯蓝易吸附在试管壁上，先用水洗刷，再用铬酸洗液浸泡。， 铬酸洗液回收，可以重复使用。
纸擦干叶片， 勿水洗！
试剂：
05，0.1，0.2，0.3，0.4，0.5 mol·kg-1H2O
用具： 特制试管架1个； 10ml试管12支（具橡皮塞）
CaCl2溶液：
甲烯蓝粉末
（为什么使用特制的试管架？）
（二）实验用品
（三）操作步骤
选取均匀一致的植物叶片8～10片（勿水洗！），打取叶圆片60余片，甲组试管内各加入叶圆片10个，使叶片浸入溶液，盖上橡皮塞，平衡20min以上。期间多次摇动试管，以加速水分平衡。
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
液滴移动方向Leabharlann 无平衡浓度结果溶液浓度
0.05
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
液滴移动方向
错误结果
实验一水势的测定
实验一植物组织水势的测定12级生科2班组长：孙文文（刘琼后春静冯娟娟）一．实验原理：当植物的组织或细胞分别放在一系列浓度递增的蔗糖溶液中时，植物的组织和蔗糖溶液各具一定的水势，水势总是由水势高的地方流向水势低的地方，因而蔗糖溶液的水势发生变化，用毛细吸管吸取水势变化后的蔗糖溶液（染色），滴入其对应的蔗糖溶液中，观察液滴的流动方向，若向上流动，说明组织的渗透势高于周围的蔗糖溶液的渗透势，因而排水，糖液变稀，比重变小，若向下流动，说明组织的渗透势低于周围的蔗糖溶液的渗透势，因而向内吸水，糖液变浓，比重变大；若糖液停留不动，说明植物组织的水势。
ψw=-icRT向内吸水和向外排水的量相等，则植物组织的水势和周围糖液的水势处于动态平衡，此时植物组织的水势等于周围这糖溶液的水势因溶液的浓度是已知的可根据公式计算出其渗透势，即为植物组织二，试验方法和步骤：①取干燥洁净的试管9个作为甲组，分别加入0.1∽0.9mol/l的蔗糖溶液约4ml,另取9个干燥洁净试管作为乙组，分别依次加入6ml的0.1∽0.9mol/l的蔗糖溶液，上述试管各加标签标明浓度。
②去待测叶片数片，用打孔器打小圆片约100片，放置培养皿中混匀，在装4ml蔗糖溶液的试管中各加10个圆片，使叶片完全浸入到溶液中，加塞放置大约30分钟，期间应经常摇动试管。
③打开塞子，用大头针向各试管中加入少许甲稀蓝粉末，充分摇匀，使溶液变蓝。
④用弯头毛细吸管吸取甲组试管中的蓝色溶液，将弯头滴管插入对应浓度的的乙组的溶液浓度中部，缓慢挤出少许，观察蓝色液流的动向，若上升，则植物组织失水，表明植物组织的水势高于蔗糖溶液的水势；若下降，则植物组织吸水，表明植物组织的水势低于蔗糖溶液的水势；若糖液静止不动，则说明植物组织的水势等于周围蔗糖溶液的水势，此浓度即为与叶片组织细胞水势相等的糖液浓度。
⑤结果计算：将求得的与细胞水势相等的蔗糖溶液浓度值带入下列公式，计算出该溶液的渗透势，即为组织细胞的水势。
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叶片水势测定方法---小叶流法
一、目的
通过实验，掌握用小液流法测定植物组织水势的原理和方法。
二、原理
水势代表水的能量水平，水总是从水势高处流向低处。
水进入植物体内并分布到各组织器官中的快慢或难易由水势差来决定，水势越高，植物组织的吸水能力越差，而供给水能力越强。
当植物组织与一系列浓度递增的溶液接触后，如果植物组织水势大于（或小于）外液的水势，则组织失水（或吸水），使外液浓度变低（或变高），密度变小（或变大）。
如果植物组织的水势等于外液的水势时，植物组织既不失水也不吸水，外液浓度不变。
当取浸泡过植物组织的溶液的小滴（亦称小液流，为便于观察应先染色），分别放入原来浓度相同而未浸泡植物组织的溶液中部时，小液流就会因密度不同而发生上升或下沉或不动的情况。
小液流在其中不动的溶液的水势（该溶液为等渗浓度），即等于植物组织的水势。
三、材料、设备及试剂
1. 材料：植物叶片；马铃薯块茎等。
2. 仪器设备：试管；小瓶；小塞子；打孔器(直径㎝)；尖头镊子；移液管（1ml、5ml、
10ml）；注射针钩头滴管；刀片。
3. 试剂：1mol·L－1蔗糖液；甲烯蓝粉。
四、实验步骤
1. 系列糖浓度配制
取干燥洁净试管6支，贴上标签，编号，用1mol·L－1蔗糖母液配成、、、、、mol·L－1浓度的糖液，各管总量为10ml，并塞上塞子（防止浓度改变），作为甲组。
另取干燥洁净的小瓶6个，标明、、、、、·L－1浓度,分别从甲组取相应浓度糖液1ml盛于小瓶中，随即塞上塞子，作为乙组。
2. 取样及测定
选取生长一致的叶片，用直径为0.5cm的打孔器钻取圆片，在玻璃皿内混匀，然后用镊子把圆片放进乙组小瓶中，每瓶放15～20片，（若采用植物块茎如马铃薯，先用打孔器钻取圆条，然后切成约1mm厚圆片，每瓶放5片），立即塞紧塞子，放置40min左右，其间轻轻摇动几次，以加速平衡。
到预定时间后，各小瓶加入几粒甲烯蓝粉染色，摇匀，取6支干燥洁净的注射针钩头滴管，分别从乙组中取出溶液，插入甲组原相应浓度蔗糖溶液的中部，轻轻
挤出钩头滴管内的溶液，使成小液滴，并小心地抽出钩头滴管（注意勿搅动溶液），注意观察那些管的小液滴往上移动，那些管的小液滴往下移动，那一管的小液滴静止不动。
如果某一管中的小液滴悬浮不动，则说明该管溶液与小液流的密度相等，也即植物组织与该浓度糖液间未发生水分净交换，植物组织的水势等于该糖液的水势，根据公式算出该糖液水势也即得出植物组织水势。
若前一浓度溶液小液流下沉，而后一浓度溶液中上浮，则组织的水势值介于两糖液水势之间，可取平均值计算。
结果记录
按下表记录实验结果
系列浓度糖液的配置和实验结果记录表
需配糖液浓度（mol·L－1） 1 mol·L－1糖液（ml）蒸馏水 (ml) 小液流移动方向（上、下或不动）
五、植物组织水势值计算
将测得的等渗浓度值代入以下公式计算出植物组织的水势：
公式中：ψW=ψл=－iCRT（MPa）
ψW —植物组织水势,单位：Mpa（兆帕）
ψл —溶液的渗透势（即溶液的水势）
C —等渗浓度（mol·L－1）
R —气体常数（0.0083 L·MPa·mol－1·K－1）
T —热力学温度（273 + t℃）
i —解离系数（蔗糖 =1；CaCl2 =）
六、注意事项
1. 配制糖液浓度要准确，并充分摇匀。
2. 取样时选材要一致。
3. 打孔时要避开大叶脉。
4. 加甲烯蓝要适量，过多会影响溶液浓度，过少则很难识别小液流移动方向。
参考资料：。